Name: La valutazione non invasiva della Cardiac Anomalie in Experimental Autoimmune miocardite da Risonanza Magnetica Imaging Microscopy nel mouse (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-06-20T15:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 24 s
Description: Impara a valutare le anomalie cardiache non invasive nella miocardite autoimmune sperimentale utilizzando la microscopia a risonanza magnetica nel topo. Questo metodo permette di calcolare volume telediastolico e frazione di eiezione in vivo.

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Questo lavoro è stato supportato dal National Institutes of Health (HL114669). CM ha ricevuto una borsa di ricerca post-dottorato assegnata dalla Myocarditis Foundation, NJ.

DICHIARAZIONE ETICA: Tutte le procedure di polizia sono state condotte in conformità con le linee guida per la cura e l&#39;uso di animali da laboratorio e approvati dalla University of Nebraska-Lincoln, Lincoln, NE. 1. Induzione di autoimmune sperimentale miocardite <ol><li> Preparare la soluzione sciogliendo peptide MyHC-α 334-352 in 1x PBS ad una concentrazione finale di 2 ml mg/1.5. </li><li> Preparare la tossina della pertosse (PT) aggiungendo 1 ml di PBS sterile 1x in una fiala contenente 50 mg di PT liofilizzate per ottenere una concentrazione magazzino di 50 ng / ml. Prendere 20 ml di brodo in una provetta sterile da 1,5 ml e aggiungere 980 ml di sterile 1x PBS per ottenere una concentrazione di lavoro di 1 ng / ml. </li><li> Preparare adiuvante completo di Freund (CFA) con l&#39;aggiunta di 40 mg di Mycobacterium tuberculosis H37Rv (MTB) estratto a 10 ml di CFA per ottenere una concentrazione finale5 mg / ml. </li><li> Preparare l&#39;emulsione peptide-CFA. NOTA: Per l&#39;induzione EAM, l&#39;emulsione peptide-CFA è stato somministrato a 150 ml contenenti 100 mg di MyHC-α 334-352 per animale. Ad esempio, per immunizzare topi dieci usano 1,5 ml di emulsione peptide-CFA contenente 1 mg di MyHC-α 334-352. <ol><li> Per preparare 1,5 ml di emulsione, un&#39;aliquota 750 microlitri di MyHC-α 334-352 soluzione di peptide in una provetta da 1,5 ml, e CFA integrati con MTB in un&#39;altra provetta da 1,5 ml. Usando una siringa luer-lok 3 ml, aspirare la soluzione peptide prima, seguita dalla estratto CFA / MTB. </li><li> Collegare la siringa al rubinetto a 3 vie e collegare l&#39;altra uscita del rubinetto ad un vuoto siringa 3 ml. Regolare la pervietà del rubinetto in modo che la miscela peptidica-CFA scorre da una siringa all&#39;altra con ragionevolmente buona resistenza. </li><li> Mescolare spingendo il contenuto da una siringa all&#39;altra ripetutamente per ~ 1 min e poi posizionare l&#39;intero gruppo sul ghiaccio per ~ 3 min. Ripetere questaprocedura un minimo di 10x. </li><li> Determinare la consistenza dell&#39;emulsione ponendo attenzione una piccola goccia su ancora acqua in un becher da 100 ml in vetro. La gocciolina non dovrebbe disperdere in acqua. Se è così, continuare a mescolare fino ad ottenere la consistenza desiderata. </li><li> Trasferire il contenuto di emulsione da 3 ml siringhe in 1 ml siringhe Luer-Lok sostituendo una delle due siringhe da 3 ml collegati al rubinetto con la siringa da 1 ml, e inserire un ago 27 G ½ alla siringa 1 ml. </li></ol></li><li> Iniettare 150 ml di emulsione peptide-CFA in dosi per via sottocutanea divisi nelle due regioni inguinali di sei-otto settimane di età femminile A / J topi (~ 75 ml ciascuna). </li><li> Somministrare 100 ml di sospensione PT (100 ng) per via intraperitoneale a ciascun animale al giorno 0 e il giorno 2 post-immunizzazione. </li><li> Ripetere la procedura immunizzazione al giorno 7 somministrando 150 ml di emulsione peptide-CFA in dosi parziali sottocutanea in entrambi i lati di tegli sterno (~ 75 ml ciascuna). Preparare questa emulsione fresca come sopra. Poi, il giorno 21, sottoporre gli animali a immagini MRM, vedere il punto 3. </li></ol> 2. Manipolazione di animali <ol><li> Posizionare ciascun topo in una camera di induzione anestetica contenente 2% isoflurano miscela di aria con una piastra elettrica posta sotto per mantenere il calore, e trasferire l&#39;animale a un titolare animale appositamente progettato (Figura 1). </li><li> Immobilizzare l&#39;animale in posizione prona sul supporto animale così il muso si inserisce il cono per mantenere l&#39;anestesia (Figura 1). Fissare la testa del topo con un morso-bar attaccato ai denti anteriori del mouse. </li><li> Accendere il riscaldamento soffio d&#39;aria con il suo tubo di scarico inserita nel foro verticale dello scanner per mantenere la temperatura corporea degli animali durante l&#39;esperimento. </li><li> Mantenere l&#39;anestesia a 0,5 al 2% isoflurano con un flusso di 2 ml / min durante l&#39;intera sessione di imaging. Confermareanestesia con il metodo pinch punta, previsto nessun movimento. </li><li> Impostare un sensore pneumatico cuscino, coda di topo / caviglia cardiofrequenzimetro a fibra ottica ossimetria, e la sonda di temperatura rettale per controllare la respirazione, il battito cardiaco e la temperatura corporea, rispettivamente (Figura 1). Nota: gating cardiaco viene eseguita mediante ossimetria Pulse, che permette il monitoraggio non invasivo della saturazione arteriosa di ossigeno nel sangue. Il sensore pulsossimetria deve essere attaccato alla caviglia sinistra, e il piede deve essere fissato con un anello di filo e nastro per mantenere la caviglia nel sensore. Imaging MRM si ottiene gating la respirazione e segnali cardiaci senza l&#39;uso di mezzi di contrasto. </li></ol> 3. Acquisizione Immagine <ol><li> Dopo aver preparato la (Figura 1) animale, posizionare il mouse al centro dello scanner MRM con cuore posizionato al centro del campo di vista (FOV), dove il campo magnetico è massima omogeneità. NOTA: A wide-bore(89 mm) 9.4 T magnete verticale-foro dotato di gradienti triplice asse di 100 g / cm e 4 cm radiofrequenza (RF) bobina di imaging deve essere utilizzato per ottenere ad alta risoluzione tridimensionale (3D) immagini. Nota: Assicurati di forniture non-magnetici quando si utilizza uno scanner MRI. </li><li> Eseguire l&#39;interfaccia di imaging e selezionare &quot;Nuovo studio&quot; dal menu &quot;Opzioni di studio&quot;. Digitare &quot;mtune&quot; al bar dei comandi ed eseguirlo per tirare su il &quot;Tune GUI&quot;. Quindi selezionare &quot;Start Probe Tune&quot; e fare clic sul pulsante &quot;Autoscale&quot;. Il Tune GUI cambierà per mostrare il RFsignal. Utilizzare la melodia / coi remoti manopole alla fine della bobina per sintonizzare la bobina RF alla frequenza di risonanza protonica (400 MHz). Sulla scheda &quot;Start&quot; vai alla pagina &quot;Scansione preliminare&quot; per eseguire la calibrazione della frequenza e della potenza cliccando sui relativi pulsanti. Premi il pulsante XYZ (rapida) sul &#39;&quot;scheda di&quot; Shim studio&#39; linguetta per tirare su la pagina di spessoramento.Vai alla pagina di spessore, selezionare tutte le iterazioni, e premere il pulsante shim per eseguire l&#39;auto spessoramento. </li><li> Selezionare una sequenza esploratore dalla scheda &quot;Studio&quot; dell&#39;interfaccia di imaging per localizzare il cuore del mouse. Sulla scheda &quot;Acquire&quot; cambiare il FOV a 35 mm 2 e mantenere le impostazioni predefinite della macchina. Fare clic su Start per eseguire la sequenza; regolare la posizione del supporto animale se il cuore non è al centro del FOV, sintonizzare la bobina RF e avere nuovamente le immagini scout. </li><li> Fare clic sul pulsante &quot;GEMS&quot; sequenza sulla scheda &quot;Studio&quot;, quindi inserire i parametri di acquisizione sulla scheda &quot;Acquire&quot; corrispondente ottenere due piani ortogonali lungo l&#39;asse corto e lungo l&#39;asse del cuore 20,21. NOTA: I parametri tipici di acquisizione per la scansione gradient-echo sono: spessore di strato, 1 mm; tempo di ripetizione (TR), 200 msec; tempo di eco (TE), 2.67 msec (minimo); flip angle, 25 °; dimensione della matrice inplane, 128 x 128; FOV, 22 millimetri2; numero di acquisizioni, 4; e un tempo approssimativo di acquisizione di 1 min e 30 sec. </li><li> Sulla scheda &quot;Adv&quot;, selezionare la sequenza &quot;CINE&quot; per raccogliere i asse corto cine immagini RM ossimetria-gated impulsi al fine di misurare i parametri anatomici e funzionali LV. Regolare la posizione e l&#39;angolo delle fette di imaging basata sulla vista asse lungo del cuore con il mouse hovering e trascinamento. Inserire i seguenti parametri di imaging nella scheda &quot;Acquisisci&quot; per ottenere il gradiente echo sequenza cine: TR, 500 msec; TE, 5 msec; FOV 22 mm 2; matrice di acquisizione, 256 x 256; spessore di strato, 1 mm; numero di acquisizioni, 8; numero di fotogrammi, 6; e un tempo di acquisizione di ~ 17 min. Fare clic su Start per avviare l&#39;acquisizione. </li><li> Convertire le immagini acquisite in formato DICOM utilizzando la scheda &quot;I / O&quot; del software di imaging e trasferire i file corrispondenti al centro dati per l&#39;elaborazione. </li><li> Al termine della procedura di imaging, tuttiow i topi di recuperare dall&#39;anestesia all&#39;interno del filtro-top gabbie. Non lasciare incustoditi i topi fino a che riprendano conoscenza sufficiente a mantenere decubito sternale e conservarle per ulteriori studi, se necessario. </li></ol> 4. Analisi dei dati del Cardiac Magnetic Resonance Imaging Microscopy <ol><li> Utilizzare il software di settore per analizzare i parametri anatomici e funzionali del LV 19. Con il caricamento delle immagini cine formato DICOM nel software utilizzando il &quot;Image File Open (s)&quot; sottomenu del menu &quot;File&quot;. Sulla GUI selezionare &#39;MRGE&#39; come la tecnica di imaging, &#39;Cine&#39; come il tipo di immagine e &#39;asse corto medio-ventricolare&#39; come piano di vista dell&#39;immagine. </li><li> Specificare le cornici di tempo da utilizzare per end-diastole e sistole-end attraverso il &quot;Set temporale corrente per porre fine diastole&quot; e &quot;Set temporale corrente per porre fine sistole&quot;, rispettivamente sottomenu del menu &quot;Modifica&quot;. </li><li>In primo luogo fate clic sul pulsante di comando &quot;LV&quot; e poi il &quot;EPI&quot; pulsanti di comando sul pannello in basso a destra &quot;ENDO&quot; e per disegnare manualmente il endocardio ventricolo sinistro ed epicardio, rispettivamente. Rimuovere i muscoli papillari premendo il pulsante di comando corrispondente, allo scopo di aumentare la precisione dei calcoli. </li><li> Leggere i parametri quantificati LV come volume diastolico, il volume sistolica, gittata sistolica e frazione di eiezione sul pannello in alto a destra. Fare clic sul pulsante di comando &quot;Varie&quot; e poi il pulsante di comando &quot;Misura pinza&quot; per misurare i parametri LV quali lo spessore della parete, e il diametro ventricolare 22. </li><li> Fare clic sul sottomenu &quot;Salva Sia Immagine Pile e segmentazione&quot; del menu &quot;File&quot; per salvare le immagini, comprese le segmentazioni, in formato &#39;. Mat&#39; per rielaborare le immagini, se necessario. </li></ol>

<ol><li>Heidenreich, P. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Forecasting+the+future+of+cardiovascular+disease+in+the+United+States%3A+a+policy+statement+from+the+American+Heart+Association%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Forecasting the future of cardiovascular disease in the United States: a policy statement from the American Heart Association.</a> Circulation. 123 (8), 933-944 (2011).</li>
<li>Fujinami, R. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+mimicry%2C+bystander+activation%2C+or+viral+persistence%3A+infections+and+autoimmune+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Microbiol+Rev%22%5BJournal%5D)">Molecular mimicry, bystander activation, or viral persistence: infections and autoimmune disease.</a> Clin Microbiol Rev. 19 (1), 80-94 (2006).</li>
<li>Cihakova, D., Rose, N. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pathogenesis+of+myocarditis+and+dilated+cardiomyopathy%5BTitle%5D)+AND+%22Adv+Immunol%22%5BJournal%5D)">Pathogenesis of myocarditis and dilated cardiomyopathy.</a> Adv Immunol. 99, 95-114 (2008).</li>
<li>Donermeyer, D. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Myocarditis-inducing+epitope+of+myosin+binds+constitutively+and+stably+to+I-Ak+on+antigen-presenting+cells+in+the+heart%5BTitle%5D)+AND+%22J+Exp+Med%22%5BJournal%5D)">Myocarditis-inducing epitope of myosin binds constitutively and stably to I-Ak on antigen-presenting cells in the heart.</a> J Exp Med. 182 (5), 1291-1300 (1995).</li>
<li>Gangaplara, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Coxsackievirus+B3+infection+leads+to+the+generation+of+cardiac+myosin+heavy+chain-alpha-reactive+CD4+T+cells+in+A%2FJ+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Immunol%22%5BJournal%5D)">Coxsackievirus B3 infection leads to the generation of cardiac myosin heavy chain-alpha-reactive CD4 T cells in A/J mice.</a> Clin Immunol. 144 (3), 237-249 (2012).</li>
<li>Huber, S. A., Lodge, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Coxsackievirus+B-3+myocarditis+in+Balb%2Fc+mice.+Evidence+for+autoimmunity+to+myocyte+antigens%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Pathol%22%5BJournal%5D)">Coxsackievirus B-3 myocarditis in Balb/c mice. Evidence for autoimmunity to myocyte antigens.</a> Am J Pathol. 116 (1), 21-29 (1984).</li>
<li>Massilamany, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+novel+mimicry+epitopes+for+cardiac+myosin+heavy+chain-alpha+that+induce+autoimmune+myocarditis+in+A%2FJ+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Immunol%22%5BJournal%5D)">Identification of novel mimicry epitopes for cardiac myosin heavy chain-alpha that induce autoimmune myocarditis in A/J mice.</a> Cell Immunol. 271, 438-449 (2011).</li>
<li>Pummerer, C. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+cardiac+myosin+peptides+capable+of+inducing+autoimmune+myocarditis+in+BALB%2Fc+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Invest%22%5BJournal%5D)">Identification of cardiac myosin peptides capable of inducing autoimmune myocarditis in BALB/c mice.</a> J Clin Invest. 97 (9), 2057-2062 (1996).</li>
<li>Rose, N. R., Hill, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+pathogenesis+of+postinfectious+myocarditis%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Immunol+Immunopathol%22%5BJournal%5D)">The pathogenesis of postinfectious myocarditis.</a> Clin Immunol Immunopathol. 80, (1996).</li>
<li>Saraste, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Coronary+flow+reserve+and+heart+failure+in+experimental+coxsackievirus+myocarditis.+A+transthoracic+Doppler+echocardiography+study%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Heart+Circ+Physiol%22%5BJournal%5D)">Coronary flow reserve and heart failure in experimental coxsackievirus myocarditis. A transthoracic Doppler echocardiography study.</a> Am J Physiol Heart Circ Physiol. 291, (2006).</li>
<li>Altes, T. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hyperpolarized+3He+MR+lung+ventilation+imaging+in+asthmatics%3A+preliminary+findings%5BTitle%5D)+AND+%22J+Magn+Reson+Imaging%22%5BJournal%5D)">Hyperpolarized 3He MR lung ventilation imaging in asthmatics: preliminary findings.</a> J Magn Reson Imaging. 13 (3), 378-384 (2001).</li>
<li>Driehuys, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Small+animal+imaging+with+magnetic+resonance+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22ILAR+J%22%5BJournal%5D)">Small animal imaging with magnetic resonance microscopy.</a> ILAR J. 49 (1), 35-53 (2008).</li>
<li>Smith, B. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Magnetic+resonance+microscopy+with+cardiovascular+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Cardiovasc+Med%22%5BJournal%5D)">Magnetic resonance microscopy with cardiovascular applications.</a> Trends Cardiovasc Med. 6 (8), 247-254 (1996).</li>
<li>Potter, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Magnetic+resonance+microscopy+approaches+to+molecular+imaging%3A+sensitivity+vs+specificity%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Biochem+Suppl%22%5BJournal%5D)">Magnetic resonance microscopy approaches to molecular imaging: sensitivity vs specificity.</a> J Cell Biochem Suppl. 39, 147-153 (2002).</li>
<li>Benveniste, H., Blackband, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MR+microscopy+and+high+resolution+small+animal+MRI%3A+applications+in+neuroscience+research%5BTitle%5D)+AND+%22Prog+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">MR microscopy and high resolution small animal MRI: applications in neuroscience research.</a> Prog Neurobiol. 67, 393-420 (2002).</li>
<li>Epstein, F. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MR+tagging+early+after+myocardial+infarction+in+mice+demonstrates+contractile+dysfunction+in+adjacent+and+remote+regions%5BTitle%5D)+AND+%22Magn+Reson+Med%22%5BJournal%5D)">MR tagging early after myocardial infarction in mice demonstrates contractile dysfunction in adjacent and remote regions.</a> Magn Reson Med. 48 (2), 399-403 (2002).</li>
<li>Gewalt, S. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MR+microscopy+of+the+rat+lung+using+projection+reconstruction%5BTitle%5D)+AND+%22Magn+Reson+Med%22%5BJournal%5D)">MR microscopy of the rat lung using projection reconstruction.</a> Magn Reson Med. 29 (1), 99-106 (1993).</li>
<li>Kern, M. J. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aKern%2C+MJ+%22The+cardiac+catheterization+handbook.%2C+Edn+5th%22">The cardiac catheterization handbook., Edn 5th</a>. , (2011).</li>
<li>Heiberg, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Design+and+validation+of+Segment--freely+available+software+for+cardiovascular+image+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Med+Imaging%22%5BJournal%5D)">Design and validation of Segment--freely available software for cardiovascular image analysis.</a> BMC Med Imaging. 10, (2010).</li>
<li>Cranney, G. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Left+ventricular+volume+measurement+using+cardiac+axis+nuclear+magnetic+resonance+imaging.+Validation+by+calibrated+ventricular+angiography%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Left ventricular volume measurement using cardiac axis nuclear magnetic resonance imaging. Validation by calibrated ventricular angiography.</a> Circulation. 82 (1), 154-163 (1990).</li>
<li>Hiba, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+and+respiratory+double+self-gated+cine+MRI+in+the+mouse+at+7+T%5BTitle%5D)+AND+%22Magn+Reson+Med%22%5BJournal%5D)">Cardiac and respiratory double self-gated cine MRI in the mouse at 7 T.</a> Magn Reson Med. 55 (3), 506-513 (2006).</li>
<li>Bryant, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+failure+in+transgenic+mice+with+myocardial+expression+of+tumor+necrosis+factor-alpha%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Cardiac failure in transgenic mice with myocardial expression of tumor necrosis factor-alpha.</a> Circulation. 97 (14), 1375-1381 (1998).</li>
<li>Neu, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+myosin-induced+myocarditis+as+a+model+of+postinfectious+autoimmunity%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+Heart+J%22%5BJournal%5D)">Cardiac myosin-induced myocarditis as a model of postinfectious autoimmunity.</a> Eur Heart J. 12 Suppl D, 117-120 (1991).</li>
<li>Neumann, D. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+multiple+heart+autoantibodies+in+mice+with+coxsackievirus+B3-+and+cardiac+myosin-induced+autoimmune+myocarditis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol%22%5BJournal%5D)">Induction of multiple heart autoantibodies in mice with coxsackievirus B3- and cardiac myosin-induced autoimmune myocarditis.</a> J Immunol. 152 (1), 343-350 (1994).</li>
<li>Rose, N. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Postinfectious+autoimmunity%3A+two+distinct+phases+of+coxsackievirus+B3-induced+myocarditis%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+N+Y+Acad+Sci%22%5BJournal%5D)">Postinfectious autoimmunity: two distinct phases of coxsackievirus B3-induced myocarditis.</a> Ann N Y Acad Sci. 475, 146-156 (1986).</li>
<li>Farmer, J. B., Levy, G. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+method+for+recording+the+electrocardiogram+and+heart+rate+from+conscious+animals%5BTitle%5D)+AND+%22Br+J+Pharmacol+Chemother%22%5BJournal%5D)">A simple method for recording the electrocardiogram and heart rate from conscious animals.</a> Br J Pharmacol Chemother. 32 (1), 193-200 (1968).</li>
</ol>

Non sono stati dichiarati conflitti di interesse.

Questo studio descrive la procedura MRM e la sua utilità come strumento non invasivo per verificare anomalie cardiache in topi affetti da miocardite autoimmune. Poiché le caratteristiche istologiche di EAM assomigliano miocardite postinfettiva degli esseri umani, modelli murini sono comunemente impiegati per delineare i meccanismi immunitari di lesioni miocardiche 23-25. Tuttavia, gli animali affetti da miocardite appaiono clinicamente normali, e la diagnosi è fatta sulla base di istologia al termine degli es...

L&#39;insufficienza cardiaca è la causa principale delle morti, e miocardite è una causa predominante di insufficienza cardiaca nei giovani adolescenti 1. La maggior parte dei pazienti affetti da miocardite rimangono asintomatici e la malattia viene spontaneamente risolti 2. Tuttavia, il 10-20% dei soggetti colpiti in grado di sviluppare malattie croniche, portando a cardiomiopatia dilatativa (DCM) 3. Vari modelli animali sono stati sviluppati per studiare la patogenesi immunitaria di miocardite. La malattia può essere indotta in miocardite-suscettibile A / J e topi Balb / c immunizzando gli animali con miosina cardiaca catena pesante (MyHC)-α o dei suoi frammenti peptidici immunodominanti o infettando con agenti patogeni come virus Coxsackie B3 4-9. Questo studio coinvolge MyHC-α miocardite 334-352 indotta in A / J topi. Nonostante mostrando infiltrazioni del miocardio, gli animali miocardite colpite appaiono clinicamente normali; diagnosi si basa sulla valutazione istologica di cuori per l&#39;infiammazione 7 bisnd ecocardiografia 10. Microscopia a risonanza magnetica (MRM) è un metodo comunemente utilizzato per ottenere imaging cardiovascolare ad alta risoluzione piani tridimensionali, che consenta di valutare dettagli funzionali al livello dei vasi sanguigni minute (fino a 10 micron di diametro), ma questo livello di potere risolvente è non realizzabili con la routine risonanza magnetica (MRI) procedura di scansione, in cui, la risoluzione viene generalmente ottenuta 1 mm 11-14. MRM offre un vantaggio in quanto permette l&#39;acquisizione di immagini ad alta risoluzione e anche per ricavare i parametri di prestazione nei momenti iniziali della malattia processo 14. Clinicamente, l&#39;imaging MRM è stato ampiamente applicato per studiare i parametri funzionali del malato cuore, polmoni o cervello 15-17. In questo studio, è mostrato l&#39;uso di una tecnica MRM come strumento non invasivo per verificare anomalie cardiache in A / J topi affetti da miocardite autoimmune. Specificamente, tegli Imaging MRM permette la quantificazione dei parametri funzionali quali ventricolare sinistra (LV) volume telediastolico e frazione di eiezione (EF) con ragionevole precisione 18. Le definizioni dei rispettivi parametri sono: fine LV volume telediastolico, volume di sangue nel ventricolo sinistro a fine ciclo diastolica e frazione di eiezione, stroke volume / volume telediastolico. L&#39;analisi dei dati viene effettuata utilizzando il software liberamente disponibile segmento sviluppato per l&#39;elaborazione immagini cardiovascolari DICOM acquisiti da scanner a risonanza magnetica 19. I dati hanno rivelato un aumento dello spessore della parete LV negli animali myocarditic, corrispondente ad una diminuzione del volume telediastolico LV, gittata sistolica e frazione di eiezione, rispetto a questi parametri funzionali in topi sani.

<table><tbody><tr><td>Myhc-a 334-352 (DSAFDVLSFTAEEKAGVYK)</td><td>Neopeptide, Cambridge, MA</td><td></td><td>Negozio a 4 &#176; C</td></tr><tr><td>CFA</td><td>Sigma Aldrich, St Louis, MO</td><td>5881</td><td>Negozio a 4 &#176; C</td></tr><tr><td>MTB H37Rv estratto</td><td>Difco Laboratories, Detroit, MI</td><td>231141</td><td>Store a 4 &#176; C</td></tr><tr><td>PT</td><td>Elenco Biologicals Laboratories, Campbell, CA</td><td>181</td><td>Negozio a 4 &#176; C</td></tr><tr><td>1x PBS</td><td>Corning, Manassas, VA</td><td>21-040-CV</td><td>Store a 4 &#176; C</td></tr><tr><td>Isoflurano</td><td>Piramal Healthcare, Mumbai, India</td><td>NDC66794-013-25</td><td></td></tr><tr><td>Topi femmina A/J</td><td>Jackson Laboratories, Bar Harbor, ME</td><td>646</td><td></td></tr><tr><td>Luer-lok sterile 1 ml di sirringa</td><td>BD, Franklin Lakes, NJ</td><td>309628</td><td></td></tr><tr><td>Luer-lok sterile 3 ml di sirringa</td><td>BD, Franklin Lakes, NJ</td><td>309657</td><td></td></tr><tr><td>Ago sterile, 18 G</td><td>BD, Franklin Lakes, NJ</td><td></td><td></td>305195</tr><tr><td>Ago sterile, 27 1/2 G</td><td>BD, Franklin Lakes, NJ</td><td>305109</td><td></td></tr><tr><td>Rubinetto a 3 vie</td><td>Smiths Medical ASD, Inc. Dublin, OH</td><td>MX5311L</td> Rotoli di <td></td></tr><tr><td>bende di garza Kerlix</td><td>Covidien, Mansfield, MA</td><td>6720</td><td></td></tr><tr><td>Kimwipes</td><td>Kimberly-Clark Professional, Roswell, GA</td><td>34155</td><td></td></tr><tr><td>Protouch Stockinette</td><td>Medline Industries, Mundelein, IL</td><td>30-1001</td><td></td></tr><tr><td>Forbici e pinze chirurgiche sterili</td><td>INOX tool Corporation</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Micro forno</td><td>GE Healthcare,&nbsp;</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sistema di terapia del caldo e del freddo ThermiPAQ&nbsp;</td><td>Theramics Corporation, Springfield, IL</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Lampada riscaldante per rettili</td><td>Energy Savers Unlimited, Inc. Carson, CA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Nastri trasporatori 3M</td><td>Target Corporation, MN</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Up and Up Unguento antibiotico polimixina B solfato/bacitracina/neomicina solfato</td><td>Target Corporation, MN</td><td></td><td></td></tr><tr><td>North Safety DeciDamp-2PVC tappi per le orecchie in schiuma</td><td>North Safety Prodotti, Smithfield, RI</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Applicatore con punta in cotone, 6' &rsquo; gambo di legno&nbsp;</td><td>Jorgensen Laboratories, Inc. Loveland, CO</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Camera di induzione per anestesia&nbsp;</td><td>Summit Anesthesia Solutions, Ann Harbor, MI</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sistema di supporto per anestesia Summit per la regolazione del flusso di anestesia.</td><td>Summit Anesthesia Solutions, Ann Harbor, MI</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Supporto per animali appositamente progettato</td><td>Agilent Technologies, Santa Clara, CA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Bickford&nbsp; Omnicon F/Aria&nbsp; unità di filtraggio del gas per anestesia&nbsp;</td><td>A.M. Bickford, Inc. Wales Center, NY</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Modulo pulsossimetro, sistema di monitoraggio e gating per piccoli animali compatibile con la risonanza magnetica.</td><td>Strumenti per piccoli animali, Inc. Stony Brook, NY</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Bombola di ossigeno&nbsp;</td><td>Matheson-Tri Gas, zona centro-settentrionale, Lincoln, NE</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Regolatore del gas&nbsp;</td><td>Western Medica, West Lake, OH</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Modulo di interruzione del segnale, sistema di monitoraggio e gating per piccoli animali compatibile con la risonanza magnetica</td><td>Small Animal Instruments, Inc. Stony Brook, NY</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Scanner MR con foro centrale verticale da 9,4 T (400 MHz) da 89 mm</td><td>Agilent Technologies, Santa Clara, CA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Bobina RF per micro-imaging da 4 cm</td><td>Agilent Technologies, Santa Clara, CA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Monitor PC SAM</td><td>Small Animal Instruments, Inc. Stony Brook, NY</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Software di analisi delle immagini mediche quantitative</td><td>http://segment.heiberg.se; &nbsp; Segmento v1.8 R1430,&nbsp; Medviso, regione di Oresunds, Svezia</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Software Matlab</td><td>The Mathworks, Inc. Natick, MA</td><td></td><td></td></tr> <tr><td></td><td></td><td></td><td>Computer-Sistema operativo Unix</td></tr></tbody></table>

la valutazione non invasiva della cardiac anomalie in experimental autoimmune miocardite da risonanza magnetica imaging microscopy nel mouse

Noninvasive Assessment of Cardiac Abnormalities in Experimental Autoimmune Myocarditis by Magnetic Resonance Microscopy Imaging in the Mouse

La miocardite è una infiammazione del miocardio, ma solo circa il 10% di questi spettacoli manifestazioni cliniche interessate della malattia. Per studiare gli eventi del sistema immunitario di lesioni del miocardio, vari modelli murini di miocardite sono stati ampiamente utilizzati. Questo studio ha coinvolto sperimentale miocardite autoimmune (EAM) indotto con miosina cardiaca catena pesante (MyHC)-α 334-352 in A / J topi; gli animali colpiti sviluppano miocardite linfocitica ma senza segni clinici evidenti. In questo modello, l&#39;utilità di microscopia a risonanza magnetica (MRM) come modalità non invasiva per determinare le cardiaci cambiamenti strutturali e funzionali in animali immunizzati con MyHC-α 334-352 è mostrato. EAM e topi sani sono stati ripresi con un 9.4 T (400 MHz) 89 millimetri scanner foro centrale verticale dotato di una sonda di imaging a radiofrequenza 4 centimetri millepiedi e 100 g / cm gradienti triple assi. Immagini cardiache sono state acquisite da animali anestetizzati utilizzando una sequenza di impulsi cine-based gradient-echo, e l&#39;animaLS sono stati monitorati dalla respirazione e pulsossimetria. L&#39;analisi ha rivelato un aumento dello spessore della parete ventricolare in topi EAM, con una corrispondente diminuzione del diametro interno dei ventricoli, se confrontato con topi sani. I dati suggeriscono che i cambiamenti morfologici e funzionali nei cuori infiammati possono essere non invasiva monitorato da MRM di animali vivi. In conclusione, MRM offre un vantaggio di valutare la progressione e regressione delle lesioni miocardiche in malattie causate da agenti infettivi, così come la risposta alle terapie.

In questa relazione, viene mostrato l&#39;utilità della tecnica MRM come una modalità non invasiva per determinare i cambiamenti strutturali e funzionali nei cuori di animali affetti da EAM. La miocardite è stata indotta in A / J topi immunizzando gli animali con MyHC-α 334-352 in CFA 7, e gli animali sono stati sottoposti ad esperimenti MRM al giorno 21 post-vaccinazione. La rappresentazione MRM è stata effettuata su animali vivi in ​​anestesia isoflurano a 9.4 T (400 MHz per i protoni), utilizzando un magne...

Questo studio dimostra il successo dell'affermazione della risonanza magnetica come strumento non invasivo per valutare le anomalie cardiache nei topi affetti da miocardite autoimmune. I dati indicano che la tecnica può essere utilizzata per monitorare la progressione della malattia negli animali vivi.

La valutazione non invasiva della Cardiac Anomalie in Experimental Autoimmune miocardite da Risonanza Magnetica Imaging Microscopy nel mouse

Myocarditis is an inflammation of the myocardium, but only ~10% of those affected show clinical manifestations of the disease. To study the immune events ...

L'obiettivo generale di questa procedura è accertare anomalie funzionali cardiache mediante l'immagine dei cuori in animali vivi affetti da malattia cardiaca infiammatoria. Questo viene ottenuto innanzitutto inducendo la malattia, ad esempio la miocardite. Il secondo passaggio consiste nel preparare l'animale per l'immagine mediante microscopia a risonanza magnetica e posizionarlo nel supporto per animali.Successivamente, il topo viene posizionato all'interno del magnete per acquisire le immagini cardiache. L'ultimo passaggio consiste nell'analizzare i parametri funzionali cardiaci utilizzando il software Segment. In definitiva, questa tecnica viene utilizzata per calcolare il volume telediastolico e la frazione di eiezione in topi affetti da miocardite autoimmune.Il principale vantaggio di questa tecnica rispetto ai metodi esistenti, come l'istopatologia, è che è non invasiva e fornisce una visione tridimensionale ad alta risoluzione del cuore. Questo metodo può contribuire a rispondere a domande fondamentali nel campo della cardiologia relative alla diagnosi delle malattie cardiache infiammatorie. In generale, le persone nuove rispetto a questo metodo potranno incontrare difficoltà a causa della scarsa familiarità con il preparativo degli animali per l'acquisizione di immagini mediante risonanza magnetica microscopica.Pertanto, la dimostrazione visiva di questo metodo è fondamentale. Iniziare il protocollo preparando innanzitutto una soluzione peptidica per indurre miocardite autoimmune, sciogliendo il peptide della catena pesante alfa della miosina cardiaca 334-352 in soluzione salina tamponata al fosfato fino a una concentrazione finale di due milligrammi per 1,5 millilitri. Successivamente, preparare la tossina della pertosse aggiungendo un millilitro di soluzione salina tamponata al fosfato sterile 1x a un flaconcino contenente 50 microgrammi di tossina della pertosse liofilizzata.Per ottenere una concentrazione stock di 50 nanogrammi per microlitro. Prelevare quindi 20 microlitri della soluzione stock in un tubo sterile da 1,5 millilitro e aggiungere 980 microlitri di soluzione salina fosfato sterile 1x per ottenere una concentrazione di lavoro di 1 nanogrammo per microlitro. Preparare inoltre l'adjuvante completo di Freund o CFA aggiungendo 40 milligrammi di estratto di Mycobacterium tuberculosis H37RV o MTB a 10 millilitri di CFA per ottenere una concentrazione finale di 5 milligrammi per millilitro.Ora preparare l'emulsione di CFA per ottenere un'aliquote di 1,5 millilitri di emulsione: aggiungere 750 microlitri di soluzione del peptide della catena pesante alfa della miocina cardiaca, peptide 3 34 a 3 52, in un tubo da 1,5 millilitri e prelevare un volume uguale di CFA integrato con estratto MTB in un altro tubo da 1,5 millilitri. Successivamente, utilizzando una siringa da tre millilitri con blocco a baionetta, aspirare prima la soluzione peptidica, seguita dall'estratto C-F-A-M-T-B. Collegare la siringa a un rubinetto a tre vie e connettere l'altra uscita del rubinetto a una siringa vuota da tre millilitri.Regolare il foro aperto del rubinetto. In modo che la miscela di peptidi CFA fluisca da una siringa all'altra con una resistenza ragionevolmente elevata. Mescolare spingendo ripetutamente il contenuto da una siringa all'altra per circa un minuto, quindi posizionare l'intero apparato sul ghiaccio per circa tre minuti.Ripetere questa procedura almeno 10 volte. Verificare la consistenza dell'emulsione posizionando con attenzione una piccola goccia su acqua stagnante in un becher di vetro da 100 millilitri. La goccia non dovrebbe disperdersi nell'acqua; in caso contrario, continuare a mescolare fino a raggiungere la consistenza desiderata.Trasferire il contenuto dell'emulsione da siringhe da tre millilitri in una siringa da un millilitro. Collegare la siringa da un millilitro al rubinetto a tre vie sostituendo una delle due siringhe da tre millilitri precedentemente collegate. Quindi, fissare un ago da 27 e mezzo gauge.Iniettare 150 microlitri di emulsione peptidica CFA in dosi frazionate per via sottocutanea nelle due regioni inguinali di topi femmine aj. di sei-otto settimane di età. Somministrare quindi 100 microlitri di sospensione di tossina pertussica per via intraperitoneale a ciascun animale al giorno zero e al giorno due dopo l'immunizzazione. Ripetere la procedura di immunizzazione al giorno sette somministrando 150 microlitri di emulsione peptidica CFA in dosi frazionate per via sottocutanea su entrambi i lati dello sterno.Preparare questa emulsione fresca come descritto. Quindi, al giorno 21, sottoporre gli animali all'immagine MRM per la preparazione all'acquisizione. Posizionare innanzitutto ogni topo in una camera di induzione anestetica contenente una miscela di aria fluorata con 2% di ISO, dotata di un tappetino riscaldante per mantenere il calore.Quindi trasferire l'animale in un apposito supporto per animali. Fissare la testa con una barretta per il morso per immobilizzare l'animale in posizione prona. Il muso deve essere inserito nel cono nasale per mantenere l'anestesia.Accendere il riscaldatore ad aria calda con il tubo di uscita inserito nel vano verticale dello scanner per mantenere la temperatura corporea dell'animale durante l'esperimento. Mantenere l'anestesia al 1-2% di isoflurano con una portata di due millilitri al minuto per tutta la durata della sessione di imaging. Verificare il livello di anestesia eseguendo una compressione del dito del piede.Successivamente, impostare un sensore pneumatico a cuscino e una sonda per la temperatura rettale per monitorare la respirazione e la temperatura corporea durante tutta la sessione di imaging. Un sensore di pulsossimetria a fibra ottica dovrebbe inoltre essere applicato alla caviglia sinistra e il piede deve essere fissato con un laccio a cappio e bloccato con del nastro adesivo per mantenerlo in posizione. L'imaging verrà ottenuto sincronizzando i segnali respiratori e cardiaci, senza l'uso di alcun agente di contrasto.Per ottenere immagini tridimensionali ad alta risoluzione di microscopia a risonanza magnetica, si dovrebbe utilizzare un magnete verticale a largo foro da 9,4 Tesla. Dopo aver preparato l'animale, posizionare il mouse nello scanner con il cuore al centro del campo visivo. Successivamente, eseguire l'interfaccia di imaging, selezionare il nuovo tipo di studio nel menu della barra dei comandi, aprire la pagina di taratura, quindi selezionare avvio della sonda, taratura e autoscala.Utilizzare le manopole di accordo remoto poste all'estremità della bobina per accordare la bobina RF alla frequenza di risonanza del protone di 400 megahertz. Successivamente, passare alla pagina di pre-scan. Per eseguire la calibrazione della frequenza e della potenza, premere il pulsante rapido x, Y, Z per aprire la pagina di shim.Quindi selezionare tutte le iterazioni ed eseguire l'autoshimming. Selezionare una sequenza scout. Modificare il campo visivo a 35 millimetri.Mantenere le altre impostazioni predefinite ed eseguire la sequenza. Se il cuore non si trova al centro del campo visivo, regolare la posizione del supporto per l'animale, rituningare la bobina RF e riacquisire l'immagine preliminare. Quindi selezionare la sequenza gem.Immettere i parametri di acquisizione mostrati qui nella scheda "acquire" per ottenere due piani ortogonali lungo l'asse corto e l'asse lungo del cuore. Successivamente, selezionare la sequenza cine per acquisire le immagini cine dell'asse corto con pulsossimetria e misurare i parametri del ventricolo sinistro, nonché quelli anatomici e funzionali. Immettere i parametri mostrati qui per ottenere la sequenza cine a gradiente eco.Regolare la posizione e l'angolo delle sezioni di imaging in base alla vista dell'asse lungo del cuore. Quindi eseguire la sequenza. Al termine dell'imaging.Convertire le immagini acquisite in formato DICOM utilizzando la scheda IO e trasferire i file corrispondenti al centro dati per l'elaborazione. Al termine della procedura di imaging, permettere all'animale di riprendersi dall'anestesia all'interno di una gabbia con coperchio filtrante. Non lasciare il topo incustodito fino a quando non abbia riacquistato una coscienza sufficiente da mantenere una posizione sterno-abdominale.Qui, il software di segmentazione viene utilizzato per analizzare i parametri anatomici e funzionali del ventricolo sinistro. Iniziare caricando nel software le immagini cine in formato DICOM. Quindi selezionare MRGE come tecnica di imaging, cine come tipo di immagine e asse corto a livello midventricolare.Per il piano di visualizzazione dell'immagine, specificare i timeframe da utilizzare per la fine della diastole e la fine della sistole usando rispettivamente le voci di menu impostare il timeframe corrente alla fine della diastole e impostare il timeframe corrente alla fine della sistole nel menu modifica. Successivamente, utilizzare i pulsanti di comando del VS e poi quelli di endo ed EPI nel pannello in basso a destra. Per disegnare manualmente il ventricolo sinistro, l'endocardio e l'epicardio, rimuovere i muscoli papillari premendo il corrispondente pulsante di comando.Per aumentare l'accuratezza dei calcoli, leggere i parametri quantificati del ventricolo sinistro, come volume diastolico, volume sistolico, volume d'espulsione e frazione di eiezione, nel pannello in alto a destra. Quindi utilizzare il pulsante di comando mis e successivamente il pulsante di comando del calibro di misurazione per misurare i parametri del ventricolo sinistro, come lo spessore della parete e il diametro ventricolare. Infine, assicurarsi di utilizzare l'opzione salva entrambi i pacchetti di immagini e la segmentazione per salvare le immagini, inclusa la segmentazione in formato dot mat, in modo da poterle rielaborare secondo necessità.L'angolo secondo cui il cuore è stato sezionato per l'acquisizione dell'immagine in vista a due camere può essere osservato qui. In questo caso, si può notare un aumento approssimativo di 1,5 volte dello spessore del ventricolo sinistro, indicativo di difetti strutturali nei cuori di topi affetti da miocardite autoimmune sperimentale rispetto a topi sani. La gittata cardiaca, misurata in base al volume del ventricolo sinistro e alla frazione di eiezione durante la diastole, era ridotta nei topi affetti da miocardite autoimmune rispetto ai topi sani.Infine, i cuori dei gruppi trattati sopra descritti sono stati valutati per l'infiammazione mediante valutazione istologica con colorazione ematossilina ed eosina; tale analisi ha evidenziato infiltrati multifocali di linfociti nei cuori di topi con miocardite, ma non in quelli sani. Durante l'esecuzione di questa procedura, è fondamentale garantire che la temperatura corporea dell'animale rimanga costante, in modo che la frequenza cardiaca e quella respiratoria non subiscano variazioni significative durante gli esperimenti. Ciò è essenziale per ottenere risultati riproducibili.Dopo aver visto questo video, dovresti avere una buona comprensione della tecnica microscopica di risonanza magnetica per valutare le anomalie funzionali delle malattie cardiache infiammatorie come la miocardite nei topi. Ma non dimenticare che lavorare con campi magnetici elevati può essere estremamente pericoloso, pertanto il supporto per l'animale e gli altri componenti devono essere non magnetici.

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Riportiamo un metodo per la ricostruzione mesoscopica dell'intero cuore del topo combinando nuovi progressi nella trasformazione e colorazione dei tessuti con lo sviluppo di un microscopio a foglio di luce a scansione assiale.

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La ricostruzione tridimensionale (3D) del danno cardiaco nell'infarto miocardico acuto riperfuso (repAMI) consente una quantificazione e una co-localizzazione fedeli dei modelli associati che influenzano la malattia. In questo caso, viene fornito un approccio automatizzabile di imaging guidato da foglio luminoso per la misurazione contemporanea del danno cardiaco, dell'area a rischio e della risposta delle cellule immunitarie.

Analisi 3D simultanea del danno cardiaco e della risposta immunitaria nell'infarto miocardico acuto riperfuso mediante microscopia a fluorescenza a foglio di luce

Un metodo pratico e preciso per misurare i parametri ceppo nel tessuto miocardico è di grande valore clinico, poiché è stato dimostrato, che il ceppo è un marker più sensibile e precedenti per la disfunzione contrattile rispetto al parametro di uso frequente EF.

Risonanza Magnetica Derivato valutazione di deformazione miocardica Utilizzo del rilevamento delle caratteristiche

Impara a valutare le anomalie cardiache non invasive nella miocardite autoimmune sperimentale utilizzando la microscopia a risonanza magnetica nel topo. Questo metodo permette di calcolare volume telediastolico e frazione di eiezione in vivo.

La valutazione non invasiva della Cardiac Anomalie in Experimental Autoimmune miocardite da Risonanza Magnetica Imaging Microscopy nel mouse (Video) | JoVE Journal

La valutazione non invasiva della Cardiac Anomalie in Experimental Autoimmune miocardite da Risonanza Magnetica Imaging Microscopy nel mouse

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