Name: La valutazione non invasiva della Cardiac Anomalie in Experimental Autoimmune miocardite da Risonanza Magnetica Imaging Microscopy nel mouse (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-06-20T15:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 24 s
Description: Impara a valutare le anomalie cardiache non invasive nella miocardite autoimmune sperimentale utilizzando la microscopia a risonanza magnetica nel topo. Questo metodo permette di calcolare volume telediastolico e frazione di eiezione in vivo.

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Questo lavoro è stato supportato dal National Institutes of Health (HL114669). CM ha ricevuto una borsa di ricerca post-dottorato assegnata dalla Myocarditis Foundation, NJ.

DICHIARAZIONE ETICA: Tutte le procedure di polizia sono state condotte in conformità con le linee guida per la cura e l&#39;uso di animali da laboratorio e approvati dalla University of Nebraska-Lincoln, Lincoln, NE. 1. Induzione di autoimmune sperimentale miocardite <ol><li> Preparare la soluzione sciogliendo peptide MyHC-α 334-352 in 1x PBS ad una concentrazione finale di 2 ml mg/1.5. </li><li> Preparare la tossina della pertosse (PT) aggiungendo 1 ml di PBS sterile 1x in una fiala contenente 50 mg di PT liofilizzate per ottenere una concentrazione magazzino di 50 ng / ml. Prendere 20 ml di brodo in una provetta sterile da 1,5 ml e aggiungere 980 ml di sterile 1x PBS per ottenere una concentrazione di lavoro di 1 ng / ml. </li><li> Preparare adiuvante completo di Freund (CFA) con l&#39;aggiunta di 40 mg di Mycobacterium tuberculosis H37Rv (MTB) estratto a 10 ml di CFA per ottenere una concentrazione finale5 mg / ml. </li><li> Preparare l&#39;emulsione peptide-CFA. NOTA: Per l&#39;induzione EAM, l&#39;emulsione peptide-CFA è stato somministrato a 150 ml contenenti 100 mg di MyHC-α 334-352 per animale. Ad esempio, per immunizzare topi dieci usano 1,5 ml di emulsione peptide-CFA contenente 1 mg di MyHC-α 334-352. <ol><li> Per preparare 1,5 ml di emulsione, un&#39;aliquota 750 microlitri di MyHC-α 334-352 soluzione di peptide in una provetta da 1,5 ml, e CFA integrati con MTB in un&#39;altra provetta da 1,5 ml. Usando una siringa luer-lok 3 ml, aspirare la soluzione peptide prima, seguita dalla estratto CFA / MTB. </li><li> Collegare la siringa al rubinetto a 3 vie e collegare l&#39;altra uscita del rubinetto ad un vuoto siringa 3 ml. Regolare la pervietà del rubinetto in modo che la miscela peptidica-CFA scorre da una siringa all&#39;altra con ragionevolmente buona resistenza. </li><li> Mescolare spingendo il contenuto da una siringa all&#39;altra ripetutamente per ~ 1 min e poi posizionare l&#39;intero gruppo sul ghiaccio per ~ 3 min. Ripetere questaprocedura un minimo di 10x. </li><li> Determinare la consistenza dell&#39;emulsione ponendo attenzione una piccola goccia su ancora acqua in un becher da 100 ml in vetro. La gocciolina non dovrebbe disperdere in acqua. Se è così, continuare a mescolare fino ad ottenere la consistenza desiderata. </li><li> Trasferire il contenuto di emulsione da 3 ml siringhe in 1 ml siringhe Luer-Lok sostituendo una delle due siringhe da 3 ml collegati al rubinetto con la siringa da 1 ml, e inserire un ago 27 G ½ alla siringa 1 ml. </li></ol></li><li> Iniettare 150 ml di emulsione peptide-CFA in dosi per via sottocutanea divisi nelle due regioni inguinali di sei-otto settimane di età femminile A / J topi (~ 75 ml ciascuna). </li><li> Somministrare 100 ml di sospensione PT (100 ng) per via intraperitoneale a ciascun animale al giorno 0 e il giorno 2 post-immunizzazione. </li><li> Ripetere la procedura immunizzazione al giorno 7 somministrando 150 ml di emulsione peptide-CFA in dosi parziali sottocutanea in entrambi i lati di tegli sterno (~ 75 ml ciascuna). Preparare questa emulsione fresca come sopra. Poi, il giorno 21, sottoporre gli animali a immagini MRM, vedere il punto 3. </li></ol> 2. Manipolazione di animali <ol><li> Posizionare ciascun topo in una camera di induzione anestetica contenente 2% isoflurano miscela di aria con una piastra elettrica posta sotto per mantenere il calore, e trasferire l&#39;animale a un titolare animale appositamente progettato (Figura 1). </li><li> Immobilizzare l&#39;animale in posizione prona sul supporto animale così il muso si inserisce il cono per mantenere l&#39;anestesia (Figura 1). Fissare la testa del topo con un morso-bar attaccato ai denti anteriori del mouse. </li><li> Accendere il riscaldamento soffio d&#39;aria con il suo tubo di scarico inserita nel foro verticale dello scanner per mantenere la temperatura corporea degli animali durante l&#39;esperimento. </li><li> Mantenere l&#39;anestesia a 0,5 al 2% isoflurano con un flusso di 2 ml / min durante l&#39;intera sessione di imaging. Confermareanestesia con il metodo pinch punta, previsto nessun movimento. </li><li> Impostare un sensore pneumatico cuscino, coda di topo / caviglia cardiofrequenzimetro a fibra ottica ossimetria, e la sonda di temperatura rettale per controllare la respirazione, il battito cardiaco e la temperatura corporea, rispettivamente (Figura 1). Nota: gating cardiaco viene eseguita mediante ossimetria Pulse, che permette il monitoraggio non invasivo della saturazione arteriosa di ossigeno nel sangue. Il sensore pulsossimetria deve essere attaccato alla caviglia sinistra, e il piede deve essere fissato con un anello di filo e nastro per mantenere la caviglia nel sensore. Imaging MRM si ottiene gating la respirazione e segnali cardiaci senza l&#39;uso di mezzi di contrasto. </li></ol> 3. Acquisizione Immagine <ol><li> Dopo aver preparato la (Figura 1) animale, posizionare il mouse al centro dello scanner MRM con cuore posizionato al centro del campo di vista (FOV), dove il campo magnetico è massima omogeneità. NOTA: A wide-bore(89 mm) 9.4 T magnete verticale-foro dotato di gradienti triplice asse di 100 g / cm e 4 cm radiofrequenza (RF) bobina di imaging deve essere utilizzato per ottenere ad alta risoluzione tridimensionale (3D) immagini. Nota: Assicurati di forniture non-magnetici quando si utilizza uno scanner MRI. </li><li> Eseguire l&#39;interfaccia di imaging e selezionare &quot;Nuovo studio&quot; dal menu &quot;Opzioni di studio&quot;. Digitare &quot;mtune&quot; al bar dei comandi ed eseguirlo per tirare su il &quot;Tune GUI&quot;. Quindi selezionare &quot;Start Probe Tune&quot; e fare clic sul pulsante &quot;Autoscale&quot;. Il Tune GUI cambierà per mostrare il RFsignal. Utilizzare la melodia / coi remoti manopole alla fine della bobina per sintonizzare la bobina RF alla frequenza di risonanza protonica (400 MHz). Sulla scheda &quot;Start&quot; vai alla pagina &quot;Scansione preliminare&quot; per eseguire la calibrazione della frequenza e della potenza cliccando sui relativi pulsanti. Premi il pulsante XYZ (rapida) sul &#39;&quot;scheda di&quot; Shim studio&#39; linguetta per tirare su la pagina di spessoramento.Vai alla pagina di spessore, selezionare tutte le iterazioni, e premere il pulsante shim per eseguire l&#39;auto spessoramento. </li><li> Selezionare una sequenza esploratore dalla scheda &quot;Studio&quot; dell&#39;interfaccia di imaging per localizzare il cuore del mouse. Sulla scheda &quot;Acquire&quot; cambiare il FOV a 35 mm 2 e mantenere le impostazioni predefinite della macchina. Fare clic su Start per eseguire la sequenza; regolare la posizione del supporto animale se il cuore non è al centro del FOV, sintonizzare la bobina RF e avere nuovamente le immagini scout. </li><li> Fare clic sul pulsante &quot;GEMS&quot; sequenza sulla scheda &quot;Studio&quot;, quindi inserire i parametri di acquisizione sulla scheda &quot;Acquire&quot; corrispondente ottenere due piani ortogonali lungo l&#39;asse corto e lungo l&#39;asse del cuore 20,21. NOTA: I parametri tipici di acquisizione per la scansione gradient-echo sono: spessore di strato, 1 mm; tempo di ripetizione (TR), 200 msec; tempo di eco (TE), 2.67 msec (minimo); flip angle, 25 °; dimensione della matrice inplane, 128 x 128; FOV, 22 millimetri2; numero di acquisizioni, 4; e un tempo approssimativo di acquisizione di 1 min e 30 sec. </li><li> Sulla scheda &quot;Adv&quot;, selezionare la sequenza &quot;CINE&quot; per raccogliere i asse corto cine immagini RM ossimetria-gated impulsi al fine di misurare i parametri anatomici e funzionali LV. Regolare la posizione e l&#39;angolo delle fette di imaging basata sulla vista asse lungo del cuore con il mouse hovering e trascinamento. Inserire i seguenti parametri di imaging nella scheda &quot;Acquisisci&quot; per ottenere il gradiente echo sequenza cine: TR, 500 msec; TE, 5 msec; FOV 22 mm 2; matrice di acquisizione, 256 x 256; spessore di strato, 1 mm; numero di acquisizioni, 8; numero di fotogrammi, 6; e un tempo di acquisizione di ~ 17 min. Fare clic su Start per avviare l&#39;acquisizione. </li><li> Convertire le immagini acquisite in formato DICOM utilizzando la scheda &quot;I / O&quot; del software di imaging e trasferire i file corrispondenti al centro dati per l&#39;elaborazione. </li><li> Al termine della procedura di imaging, tuttiow i topi di recuperare dall&#39;anestesia all&#39;interno del filtro-top gabbie. Non lasciare incustoditi i topi fino a che riprendano conoscenza sufficiente a mantenere decubito sternale e conservarle per ulteriori studi, se necessario. </li></ol> 4. Analisi dei dati del Cardiac Magnetic Resonance Imaging Microscopy <ol><li> Utilizzare il software di settore per analizzare i parametri anatomici e funzionali del LV 19. Con il caricamento delle immagini cine formato DICOM nel software utilizzando il &quot;Image File Open (s)&quot; sottomenu del menu &quot;File&quot;. Sulla GUI selezionare &#39;MRGE&#39; come la tecnica di imaging, &#39;Cine&#39; come il tipo di immagine e &#39;asse corto medio-ventricolare&#39; come piano di vista dell&#39;immagine. </li><li> Specificare le cornici di tempo da utilizzare per end-diastole e sistole-end attraverso il &quot;Set temporale corrente per porre fine diastole&quot; e &quot;Set temporale corrente per porre fine sistole&quot;, rispettivamente sottomenu del menu &quot;Modifica&quot;. </li><li>In primo luogo fate clic sul pulsante di comando &quot;LV&quot; e poi il &quot;EPI&quot; pulsanti di comando sul pannello in basso a destra &quot;ENDO&quot; e per disegnare manualmente il endocardio ventricolo sinistro ed epicardio, rispettivamente. Rimuovere i muscoli papillari premendo il pulsante di comando corrispondente, allo scopo di aumentare la precisione dei calcoli. </li><li> Leggere i parametri quantificati LV come volume diastolico, il volume sistolica, gittata sistolica e frazione di eiezione sul pannello in alto a destra. Fare clic sul pulsante di comando &quot;Varie&quot; e poi il pulsante di comando &quot;Misura pinza&quot; per misurare i parametri LV quali lo spessore della parete, e il diametro ventricolare 22. </li><li> Fare clic sul sottomenu &quot;Salva Sia Immagine Pile e segmentazione&quot; del menu &quot;File&quot; per salvare le immagini, comprese le segmentazioni, in formato &#39;. Mat&#39; per rielaborare le immagini, se necessario. </li></ol>

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Non sono stati dichiarati conflitti di interesse.

Questo studio descrive la procedura MRM e la sua utilità come strumento non invasivo per verificare anomalie cardiache in topi affetti da miocardite autoimmune. Poiché le caratteristiche istologiche di EAM assomigliano miocardite postinfettiva degli esseri umani, modelli murini sono comunemente impiegati per delineare i meccanismi immunitari di lesioni miocardiche 23-25. Tuttavia, gli animali affetti da miocardite appaiono clinicamente normali, e la diagnosi è fatta sulla base di istologia al termine degli es...

L&#39;insufficienza cardiaca è la causa principale delle morti, e miocardite è una causa predominante di insufficienza cardiaca nei giovani adolescenti 1. La maggior parte dei pazienti affetti da miocardite rimangono asintomatici e la malattia viene spontaneamente risolti 2. Tuttavia, il 10-20% dei soggetti colpiti in grado di sviluppare malattie croniche, portando a cardiomiopatia dilatativa (DCM) 3. Vari modelli animali sono stati sviluppati per studiare la patogenesi immunitaria di miocardite. La malattia può essere indotta in miocardite-suscettibile A / J e topi Balb / c immunizzando gli animali con miosina cardiaca catena pesante (MyHC)-α o dei suoi frammenti peptidici immunodominanti o infettando con agenti patogeni come virus Coxsackie B3 4-9. Questo studio coinvolge MyHC-α miocardite 334-352 indotta in A / J topi. Nonostante mostrando infiltrazioni del miocardio, gli animali miocardite colpite appaiono clinicamente normali; diagnosi si basa sulla valutazione istologica di cuori per l&#39;infiammazione 7 bisnd ecocardiografia 10. Microscopia a risonanza magnetica (MRM) è un metodo comunemente utilizzato per ottenere imaging cardiovascolare ad alta risoluzione piani tridimensionali, che consenta di valutare dettagli funzionali al livello dei vasi sanguigni minute (fino a 10 micron di diametro), ma questo livello di potere risolvente è non realizzabili con la routine risonanza magnetica (MRI) procedura di scansione, in cui, la risoluzione viene generalmente ottenuta 1 mm 11-14. MRM offre un vantaggio in quanto permette l&#39;acquisizione di immagini ad alta risoluzione e anche per ricavare i parametri di prestazione nei momenti iniziali della malattia processo 14. Clinicamente, l&#39;imaging MRM è stato ampiamente applicato per studiare i parametri funzionali del malato cuore, polmoni o cervello 15-17. In questo studio, è mostrato l&#39;uso di una tecnica MRM come strumento non invasivo per verificare anomalie cardiache in A / J topi affetti da miocardite autoimmune. Specificamente, tegli Imaging MRM permette la quantificazione dei parametri funzionali quali ventricolare sinistra (LV) volume telediastolico e frazione di eiezione (EF) con ragionevole precisione 18. Le definizioni dei rispettivi parametri sono: fine LV volume telediastolico, volume di sangue nel ventricolo sinistro a fine ciclo diastolica e frazione di eiezione, stroke volume / volume telediastolico. L&#39;analisi dei dati viene effettuata utilizzando il software liberamente disponibile segmento sviluppato per l&#39;elaborazione immagini cardiovascolari DICOM acquisiti da scanner a risonanza magnetica 19. I dati hanno rivelato un aumento dello spessore della parete LV negli animali myocarditic, corrispondente ad una diminuzione del volume telediastolico LV, gittata sistolica e frazione di eiezione, rispetto a questi parametri funzionali in topi sani.

<table><tbody><tr><td>Myhc-a 334-352 (DSAFDVLSFTAEEKAGVYK)</td><td>Neopeptide, Cambridge, MA</td><td></td><td>Negozio a 4 &#176; C</td></tr><tr><td>CFA</td><td>Sigma Aldrich, St Louis, MO</td><td>5881</td><td>Negozio a 4 &#176; C</td></tr><tr><td>MTB H37Rv estratto</td><td>Difco Laboratories, Detroit, MI</td><td>231141</td><td>Store a 4 &#176; C</td></tr><tr><td>PT</td><td>Elenco Biologicals Laboratories, Campbell, CA</td><td>181</td><td>Negozio a 4 &#176; C</td></tr><tr><td>1x PBS</td><td>Corning, Manassas, VA</td><td>21-040-CV</td><td>Store a 4 &#176; C</td></tr><tr><td>Isoflurano</td><td>Piramal Healthcare, Mumbai, India</td><td>NDC66794-013-25</td><td></td></tr><tr><td>Topi femmina A/J</td><td>Jackson Laboratories, Bar Harbor, ME</td><td>646</td><td></td></tr><tr><td>Luer-lok sterile 1 ml di sirringa</td><td>BD, Franklin Lakes, NJ</td><td>309628</td><td></td></tr><tr><td>Luer-lok sterile 3 ml di sirringa</td><td>BD, Franklin Lakes, NJ</td><td>309657</td><td></td></tr><tr><td>Ago sterile, 18 G</td><td>BD, Franklin Lakes, NJ</td><td></td><td></td>305195</tr><tr><td>Ago sterile, 27 1/2 G</td><td>BD, Franklin Lakes, NJ</td><td>305109</td><td></td></tr><tr><td>Rubinetto a 3 vie</td><td>Smiths Medical ASD, Inc. Dublin, OH</td><td>MX5311L</td> Rotoli di <td></td></tr><tr><td>bende di garza Kerlix</td><td>Covidien, Mansfield, MA</td><td>6720</td><td></td></tr><tr><td>Kimwipes</td><td>Kimberly-Clark Professional, Roswell, GA</td><td>34155</td><td></td></tr><tr><td>Protouch Stockinette</td><td>Medline Industries, Mundelein, IL</td><td>30-1001</td><td></td></tr><tr><td>Forbici e pinze chirurgiche sterili</td><td>INOX tool Corporation</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Micro forno</td><td>GE Healthcare,&nbsp;</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sistema di terapia del caldo e del freddo ThermiPAQ&nbsp;</td><td>Theramics Corporation, Springfield, IL</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Lampada riscaldante per rettili</td><td>Energy Savers Unlimited, Inc. Carson, CA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Nastri trasporatori 3M</td><td>Target Corporation, MN</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Up and Up Unguento antibiotico polimixina B solfato/bacitracina/neomicina solfato</td><td>Target Corporation, MN</td><td></td><td></td></tr><tr><td>North Safety DeciDamp-2PVC tappi per le orecchie in schiuma</td><td>North Safety Prodotti, Smithfield, RI</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Applicatore con punta in cotone, 6' &rsquo; gambo di legno&nbsp;</td><td>Jorgensen Laboratories, Inc. Loveland, CO</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Camera di induzione per anestesia&nbsp;</td><td>Summit Anesthesia Solutions, Ann Harbor, MI</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sistema di supporto per anestesia Summit per la regolazione del flusso di anestesia.</td><td>Summit Anesthesia Solutions, Ann Harbor, MI</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Supporto per animali appositamente progettato</td><td>Agilent Technologies, Santa Clara, CA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Bickford&nbsp; Omnicon F/Aria&nbsp; unità di filtraggio del gas per anestesia&nbsp;</td><td>A.M. Bickford, Inc. Wales Center, NY</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Modulo pulsossimetro, sistema di monitoraggio e gating per piccoli animali compatibile con la risonanza magnetica.</td><td>Strumenti per piccoli animali, Inc. Stony Brook, NY</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Bombola di ossigeno&nbsp;</td><td>Matheson-Tri Gas, zona centro-settentrionale, Lincoln, NE</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Regolatore del gas&nbsp;</td><td>Western Medica, West Lake, OH</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Modulo di interruzione del segnale, sistema di monitoraggio e gating per piccoli animali compatibile con la risonanza magnetica</td><td>Small Animal Instruments, Inc. Stony Brook, NY</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Scanner MR con foro centrale verticale da 9,4 T (400 MHz) da 89 mm</td><td>Agilent Technologies, Santa Clara, CA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Bobina RF per micro-imaging da 4 cm</td><td>Agilent Technologies, Santa Clara, CA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Monitor PC SAM</td><td>Small Animal Instruments, Inc. Stony Brook, NY</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Software di analisi delle immagini mediche quantitative</td><td>http://segment.heiberg.se; &nbsp; Segmento v1.8 R1430,&nbsp; Medviso, regione di Oresunds, Svezia</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Software Matlab</td><td>The Mathworks, Inc. Natick, MA</td><td></td><td></td></tr> <tr><td></td><td></td><td></td><td>Computer-Sistema operativo Unix</td></tr></tbody></table>

la valutazione non invasiva della cardiac anomalie in experimental autoimmune miocardite da risonanza magnetica imaging microscopy nel mouse

Noninvasive Assessment of Cardiac Abnormalities in Experimental Autoimmune Myocarditis by Magnetic Resonance Microscopy Imaging in the Mouse

La miocardite è una infiammazione del miocardio, ma solo circa il 10% di questi spettacoli manifestazioni cliniche interessate della malattia. Per studiare gli eventi del sistema immunitario di lesioni del miocardio, vari modelli murini di miocardite sono stati ampiamente utilizzati. Questo studio ha coinvolto sperimentale miocardite autoimmune (EAM) indotto con miosina cardiaca catena pesante (MyHC)-α 334-352 in A / J topi; gli animali colpiti sviluppano miocardite linfocitica ma senza segni clinici evidenti. In questo modello, l&#39;utilità di microscopia a risonanza magnetica (MRM) come modalità non invasiva per determinare le cardiaci cambiamenti strutturali e funzionali in animali immunizzati con MyHC-α 334-352 è mostrato. EAM e topi sani sono stati ripresi con un 9.4 T (400 MHz) 89 millimetri scanner foro centrale verticale dotato di una sonda di imaging a radiofrequenza 4 centimetri millepiedi e 100 g / cm gradienti triple assi. Immagini cardiache sono state acquisite da animali anestetizzati utilizzando una sequenza di impulsi cine-based gradient-echo, e l&#39;animaLS sono stati monitorati dalla respirazione e pulsossimetria. L&#39;analisi ha rivelato un aumento dello spessore della parete ventricolare in topi EAM, con una corrispondente diminuzione del diametro interno dei ventricoli, se confrontato con topi sani. I dati suggeriscono che i cambiamenti morfologici e funzionali nei cuori infiammati possono essere non invasiva monitorato da MRM di animali vivi. In conclusione, MRM offre un vantaggio di valutare la progressione e regressione delle lesioni miocardiche in malattie causate da agenti infettivi, così come la risposta alle terapie.

In questa relazione, viene mostrato l&#39;utilità della tecnica MRM come una modalità non invasiva per determinare i cambiamenti strutturali e funzionali nei cuori di animali affetti da EAM. La miocardite è stata indotta in A / J topi immunizzando gli animali con MyHC-α 334-352 in CFA 7, e gli animali sono stati sottoposti ad esperimenti MRM al giorno 21 post-vaccinazione. La rappresentazione MRM è stata effettuata su animali vivi in ​​anestesia isoflurano a 9.4 T (400 MHz per i protoni), utilizzando un magne...

Questo studio dimostra il successo dell'affermazione della risonanza magnetica come strumento non invasivo per valutare le anomalie cardiache nei topi affetti da miocardite autoimmune. I dati indicano che la tecnica può essere utilizzata per monitorare la progressione della malattia negli animali vivi.

La valutazione non invasiva della Cardiac Anomalie in Experimental Autoimmune miocardite da Risonanza Magnetica Imaging Microscopy nel mouse

Myocarditis is an inflammation of the myocardium, but only ~10% of those affected show clinical manifestations of the disease. To study the immune events ...

L'obiettivo generale di questa procedura è accertare anomalie funzionali cardiache mediante l'immagine dei cuori in animali vivi affetti da malattia cardiaca infiammatoria. Questo viene ottenuto innanzitutto inducendo la malattia, ad esempio la miocardite. Il secondo passaggio consiste nel preparare l'animale per l'immagine mediante microscopia a risonanza magnetica e posizionarlo nel supporto per animali.Successivamente, il topo viene posizionato all'interno del magnete per acquisire le immagini cardiache. L'ultimo passaggio consiste nell'analizzare i parametri funzionali cardiaci utilizzando il software Segment. In definitiva, questa tecnica viene utilizzata per calcolare il volume telediastolico e la frazione di eiezione in topi affetti da miocardite autoimmune.Il principale vantaggio di questa tecnica rispetto ai metodi esistenti, come l'istopatologia, è che è non invasiva e fornisce una visione tridimensionale ad alta risoluzione del cuore. Questo metodo può contribuire a rispondere a domande fondamentali nel campo della cardiologia relative alla diagnosi delle malattie cardiache infiammatorie. In generale, le persone nuove rispetto a questo metodo potranno incontrare difficol

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Alta frequenza Doppler è una nuova tecnologia per la valutazione della funzione miocardica regionale. Questo lavoro presenta prima prova che dimostrano l'applicabilità di questa piattaforma di imaging versatile per la misura ripetuta di ceppo del miocardio, insufficienza dp / dt, e mitralica nella ischemia-riperfuso (IR) cuore murini.

Ad alta frequenza ad alta risoluzione Ecocardiografia: Prima Prova a non invasiva misura ripetuta di deformazione miocardica, contrattilità, e rigurgito mitralico in Ischemia-riperfuso Cuore Murine

Contrasto per risonanza magnetica cardiaca (CMR) consente...

Valutazione della funzione cardiaca e Morfologia miocardica Utilizzando Small Animal Look-Locker Inversion Recovery (SALLI) MRI nei ratti

Descriviamo come eseguire l'imaging MRI e PET del cuore del topo. Il protocollo è studiato su misura per valutare l'efficacia del trattamento in modelli di infarto del miocardio e insufficienza cardiaca.

Risonanza magnetica e PET in modelli murini di infarto miocardico

Questo metodo delinea l'uso della tomografia micro-computerizzata quantistica (MicroCT) per valutare la morfologia cardiaca, la funzione, la perfusione, il metabolismo e la vitalità con l'agente di contrasto iodato nei topi con ischemia miocardica indotta sperimentalmente. La tecnica può essere applicata per l'imaging longitudinale in vivo non distruttivo ad alto rendimento di vari modelli animali di cardiopatia umana.

In Vivo quantitativa valutazione della struttura del miocardio, la funzione, la perfusione e sostenibilità Utilizzando cardiaca micro-tomografia computerizzata

L'esame ecocardiografico è frequente nei topi. Sono stati sviluppati dispositivi costosi ultrasuono ad alta definizione per questo scopo. Questo protocollo descrive una procedura ecocardiografica conveniente combinata con analisi morfometriche istologico per determinare la morfologia cardiaca.

Esame ecocardiografico ed istologico della morfologia cardiaca nel topo

Questo studio descrive un protocollo completo di risonanza magnetica cardiovascolare (CMR) per quantificare i parametri funzionali ventricolari sinistri del cuore del topo. Il protocollo descrive l'acquisizione, la post-elaborazione e l'analisi delle immagini CMR, nonché la valutazione di diversi parametri funzionali cardiaci.

Quantificazione della funzione ventricolare sinistra del cuore di topo, del ceppo miocardico e delle forze emodinamiche mediante risonanza magnetica cardiovascolare

Riportiamo un metodo per la ricostruzione mesoscopica dell'intero cuore del topo combinando nuovi progressi nella trasformazione e colorazione dei tessuti con lo sviluppo di un microscopio a foglio di luce a scansione assiale.

Imaging ottico mesoscopico dell'intero cuore del topo

Qui descriviamo un metodo semplice e riproducibile che può indurre infarto miocardico o danno da ischemia-riperfusione miocardica nei topi mediante legatura di precisione dell'arteria coronaria discendente anteriore sinistra attraverso la micromanipolazione.

Induzione di infarto miocardico e danno da ischemia-riperfusione miocardica nei topi

La ricostruzione tridimensionale (3D) del danno cardiaco nell'infarto miocardico acuto riperfuso (repAMI) consente una quantificazione e una co-localizzazione fedeli dei modelli associati che influenzano la malattia. In questo caso, viene fornito un approccio automatizzabile di imaging guidato da foglio luminoso per la misurazione contemporanea del danno cardiaco, dell'area a rischio e della risposta delle cellule immunitarie.

Analisi 3D simultanea del danno cardiaco e della risposta immunitaria nell'infarto miocardico acuto riperfuso mediante microscopia a fluorescenza a foglio di luce

Un metodo pratico e preciso per misurare i parametri ceppo nel tessuto miocardico è di grande valore clinico, poiché è stato dimostrato, che il ceppo è un marker più sensibile e precedenti per la disfunzione contrattile rispetto al parametro di uso frequente EF.

Risonanza Magnetica Derivato valutazione di deformazione miocardica Utilizzo del rilevamento delle caratteristiche

Impara a valutare le anomalie cardiache non invasive nella miocardite autoimmune sperimentale utilizzando la microscopia a risonanza magnetica nel topo. Questo metodo permette di calcolare volume telediastolico e frazione di eiezione in vivo.

La valutazione non invasiva della Cardiac Anomalie in Experimental Autoimmune miocardite da Risonanza Magnetica Imaging Microscopy nel mouse (Video) | JoVE Journal

La valutazione non invasiva della Cardiac Anomalie in Experimental Autoimmune miocardite da Risonanza Magnetica Imaging Microscopy nel mouse

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