Name: A Procedura piccolo volume per concentrazione virale da Water (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-02-03T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 28 s
Description: Scopri la concentrazione virale da piccoli volumi d'acqua utilizzando filtri in vetro cellulosa e la tecnica secondaria Sea Light per l'adenovirus umano. Questo metodo ottimizza il recupero virale per il monitoraggio ambientale.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Vorremmo ringraziare il Dr. Nicholas J. Ashbolt e il Dr. G. Shay Fout per la loro revisione del manoscritto.

1. Preparazione di cristalleria e Filter Contenitori <ol style="margin-left: 40px;"><li> Se non diversamente specificato, sterilizzare tutti i bicchieri, contenitori e soluzioni di filtro a 121 ° C per 15 minuti. Per garantire la sterilità, coprire tutte le aperture o le superfici esposte sia con fogli di alluminio o di carta nastro fissato prima della sterilizzazione. </li><li> Montare apparato di filtrazione allegando alloggiamento del filtro (diametro di 47 mm) a 1 L braccio laterale beuta. Raccogliere filtri necessari: 47 mm di diametro filtri a disco elettropositivi / electronegative. </li><li> Preparare 1 L di estratto di carne bovina 1,5% (flocculanti; produce particelle Floc quando pH della soluzione si abbassa a 3,5, o non flocculante, che non fa aggregato a pH 3,5), con 0,05 M glicina, sciogliendo 15 g di estratto di carne bovina in 1 L di acqua deionizzata e l&#39;aggiunta di 3,75 g di glicina. NOTA: estratti di carne non floccaggio richiedono l&#39;aggiunta di celite prima concentrazione terziaria. </li><li> Aggiungi eluizione polyph additivo sodioosphate di estratto di carne bovina ad una concentrazione di 0,1%. </li><li> Aggiungere 1 soluzione di acido cloridrico M, gocciolamento, di miscelazione estratto di carne, pH della soluzione a pH desiderato. Estratto di carne bovina Autoclave per 15-30 minuti a 121 ° C. </li><li> Misura 0,1 g di fine, media, o grande celite particelle (per l&#39;utilizzo con estratto di carne non-flocculanti solo). </li><li> Preparare vuoto / aspirazione collegando tubazioni compatibile beuta braccio laterale e alla presa di vuoto. </li></ol> 2. preparazione di soluzioni e virus Stock <ol style="margin-left: 40px;"><li> Preparare 1 L di 1 M HCl. </li><li> Preparare 1 L di 1 M NaOH. </li><li> Preparare la soluzione PBS 1x (137 mM NaCl, 2.7 mM KCl, 1.47 mm K 2 PO 4 e 4,3 mm NaH 2 PO 4). <ol><li> Regolare il pH di 1x PBS a 9,0 con 1 M NaOH. </li></ol></li><li> Preparare e diluire magazzino virus per 10 4 -10 5 numero più probabile (MPN) ml -1 mescolando 1 ml di virus con 9 ml di PBS (pH7), come precedentemente descritto 8,13. Conservare a -80 ° C in aliquote di 1 ml. <ol><li> Sterilizzare virus magazzino filtrando siringa (0,22 micron dimensione dei pori) per rimuovere potenziali contaminanti. </li></ol></li><li> Declorata Tap Water <ol><li> Misura 1 L di acqua di rubinetto sterile utilizzando una sterile cilindro graduato e versare in un bicchiere contenente 2 L ancoretta magnetica. </li><li> Aggiungere 0,7 g di tiosolfato di sodio e mescolare fino a granuli si dissolvono. Regolare il pH dell&#39;acqua di rubinetto a 7-7,5 se necessario con 1 M HCl o soluzione 1 M NaOH. </li><li> Spike virus Thaw (1 ml) e aggiungere intero volume di picco per 1 L di acqua di rubinetto sterili senza cloro. Mescolare per 10 min. </li><li> Preparare un metodo vuoto (acqua di rubinetto declorurata senza adenovirus) con ogni esperimento e processo nello stesso modo come il campione spillo. </li></ol></li></ol> 3. Preparazione di Millipore Filtro Apparatus <ol style="margin-left: 40px;"><li> Rimuovere copertura sterile su filtro. Garantirela misura adeguata tra il corpo del filtro ciotola superiore e schermo del filtro inferiore per evitare perdite campione durante la filtrazione. </li><li> Rimuovere copertura sterile dal 1 boccetta L Erlenmeyer. Assicurarsi che il tappo del gruppo filtrante adatta comodamente in cima apertura beuta, creando una buona tenuta. </li><li> Rimuovere ciotola superiore dell&#39;unità filtrante dallo schermo del filtro inferiore e portare 47 millimetri disco filtro elettropositivo esattamente sopra lo schermo con una pinza sterile. Attaccare il filtro ciotola alloggi a schermo inferiore e bloccare in posizione ruotando in senso antiorario. </li></ol> 4. Toccare filtrazione dell&#39;acqua (concentrazione primaria) <ol style="margin-left: 40px;"><li> Misurare 100 ml di virus a spillo l&#39;acqua del rubinetto con sterile cilindro graduato. </li><li> Versare 100 ml di virus spillo l&#39;acqua del rubinetto in scatola del filtro contenente sia un / filtri di cellulosa 47 millimetri di vetro pieghettata o un filtro rigido in fibra di nano-allumina / vetro. </li><li> Consentire all&#39;acqua di passare lentamente attraverso il filtro. Applicare delicato vuoto per rimuovere residui residui oacqua di rubinetto f dalla superficie del filtro. </li><li> Se si utilizza il trattamento tripsina, aggiungere 5 ml di 0,25% tripsina per filtrare la superficie e incubare per 5 min. </li><li> Lavare tripsina dalla superficie del filtro con 50 ml di acqua deionizzata sterile. </li></ol> 5. Virus eluizione da filtro <ol style="margin-left: 40px;"><li> Smontare la scatola del filtro da 2 fiasco L Erlenmeyer, e posizionarlo sul pallone da 250 ml braccio laterale. </li><li> Misurare 100 ml di estratto di carne utilizzando cilindro graduato. Versare lentamente 100 ml di estratto di carne in scatola del filtro. </li><li> Lasciare estratto di carne bovina per versare attraverso il filtro, catturando estratto di carne in un piccolo (250 ml) beuta. Applicare il vuoto per tirare attraverso estratto di carne residuo dal filtro. </li></ol> 6. Celite Concentrazione secondaria <ol style="margin-left: 40px;"><li> Flaconi di trasferimento contengono i virus eluiti ad una piastra scalpore. Aggiungere sterile ancoretta magnetica e posto sul piatto mescolare, mescolare per creare una leggera vortice. </li><li> Aggiungere 0,1 g di celitepolvere 100 ml di estratto di carne e consentire celite per disperdere. Posizionare la sonda pH sterile in estratto di carne. </li><li> Aggiungere goccia a goccia 1 M HCl per estratto di carne per raggiungere pH 4,0. Lasciare miscelare lentamente per 10 min. </li><li> Mettere 47 millimetri di pre-filtro sul corpo del filtro (come descritto in precedenza) con un pallone 2 L Erlenmeyer. </li><li> Versare 100 ml di estratto di manzo / miscela celite over pre-filtro. Lasciare estratto di carne bovina per versare attraverso. Applicare leggero vuoto per tirare attraverso estratto di carne residuo dal filtro. </li><li> Posizionare la clip tubo metallico sulla fine del becco filtro. Attaccare sterile 15 ml tubo di raccolta in polipropilene a clip di tubo di metallo. Posizionare la scatola del filtro di nuovo in beuta. </li><li> Aggiungere 5 ml di tampone 1x PBS, pH 9.0 su celite raccolte sul pre-filtro. </li><li> Lasciare PBS goccioli attraverso pre-filtro. Applicare leggero vuoto per tirare attraverso residuo PBS in 15 ml tubo di raccolta. </li></ol> 7. Flocculazione Organic Concentrazione secondaria <ol style="margin-left: 40px;"><li>Trasferire i bicchieri contenenti il ​​virus eluito a un piatto mescolare. Aggiungere sterile ancoretta magnetica a 100 ml di estratto di carne e mescolare per creare una leggera vortice. </li><li> Posizionare la sonda pH sterile in estratto di carne. </li><li> Aggiungere 1 M HCl goccia saggio estratto di carne e aggiustare il pH a 3,5. Mescolare per 30 min. </li><li> Versare l&#39;eluato in 250 ml provette coniche e centrifugare a 2500 xg per 15 minuti a 4 ° C. </li><li> Eliminare il surnatante facendo attenzione a non a non disturbare il pellet. Risospendere il pellet in 5 ml di PBS 1x, pH 9. </li><li> Centrifugare la sospensione a 4.000 xg per 10 minuti a 4 ° C. Eliminare il surnatante e scartare il pellet. </li><li> Regolare il pH a 7-7.5, filtrare sterilizzare attraverso 0,22 micron filtro siringa e congelamento a -80 ° C. </li></ol> 8. Viral Nucleic Acid Extraction <ol style="margin-left: 40px;"><li> Estrarre gli acidi nucleici virali utilizzando un kit commerciale adeguata secondo le istruzioni del produttore. </li></ol> &lt;p class = &quot;jove_title&quot;&gt; 9. AdV 40/41 qPCR <ol style="margin-left: 40px;"><li> Utilizzare primer e sonde, nonché miscela di reazione e profili cicli termici come pubblicato 8,13. NOTA: limite stimato di rilevamento per il dosaggio è di circa 5 unità qPCR per reazione. </li><li> Aggiungere componenti di miscele di amplificazione PCR a concentrazioni come segue: Tris 10 mM (pH 8,3), 50 mM KCl, 4,5 mM MgCl 2, 10 mM dNTPs, 10 mM primer e della sonda 1 mM e 0,5 ml di polimerasi in modo che i volumi finali di 45 microlitri può essere aggiunto al numero appropriato di pozzetti in una piastra di reazione PCR da 96 pozzetti. </li><li> Carico 45 ml di miscela di amplificazione PCR per ciascun pozzetto appropriata di un pozzo 96, reazione veloce PCR piastra. </li><li> Aggiungere 5 ml di DNA estratto campione adeguati pozzetti della piastra PCR. </li><li> Coprire piastra con calore guarnizione del coperchio resistente, girare la piastra per spostare eventuali gocce di fondo dei pozzetti della piastra PCR. </li><li> Impostare PCR cicli di amplificazione come follOWS: 95 ° C per 10 minuti, seguiti da 40 cicli di 95 ° C per 15 sec e 60 ° C per 1 min. </li></ol> 10. Analisi dei dati <ol style="margin-left: 40px;"><li> Analizzare misurazioni in triplicato delle diluizioni seriali 5-fold dei campioni abbracciano 1: 5 a 1: 625 gamma di diluizione per determinare il numero più probabile (MPN) delle particelle virali, come precedentemente descritto 8,13. </li><li> Analizzare diluizioni seriali 5-fold di picchi sperimentali adenovirus abbracciano 1: 5 a 1: 15.625 serie di diluizione per determinare il numero più probabile (MPN) delle particelle virali. </li><li> Utilizzando la calcolatrice EPA MPN (http://www.epa.gov/nerlcwww/online.html), regolare la calcolatrice per spiegare il tipo di diluizione (1: 5 o 1:10), il numero di diluizioni effettuate, e il numero di replicare campioni in serie di diluizioni. </li><li> Eseguire log 10 trasformazione dei dati, seguiti normalizzando ad una unità di volume (ad esempio, 1 ml, 100 ml, etc. </em&gt;). Calcola recuperi per dato esperimento dividendo il numero di particelle virali presenti nel campione concentrati con il numero di particelle virali presenti in picchi sperimentali. </li><li> Valutare l&#39;effetto delle diverse variabili sperimentali (ad esempio, diversi tipi Celite, intervalli di pH, diversi tipi di filtro e diverse tecniche di concentrazione secondari) sui recuperi Adv eseguendo test statistici parametrici e non parametrici (es paired t-test, uno o due -way ANOVA) a seconda della distribuzione dei dati e il disegno sperimentale. </li></ol>

<ol><li>Sinclair, R. G., Jones, E. L., Gerba, C. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Viruses+in+recreational+water-borne+disease+outbreaks%3A+a+review%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Applied+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Viruses in recreational water-borne disease outbreaks: a review.</a> Journal of Applied Microbiology. 107, 1769-1780 (2009).</li>
<li>WHO. Guidelines for Safe Recreational Water Environments. , World Health Organization. Geneva. (2003).</li>
<li>Westrell, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Norovirus+outbreaks+linked+to+oyster+consumption+in+the+United+Kingdom%5BTitle%5D)+AND+%22Euro+Surveillance+%3A+Bulletin+Europeen+Sur+les+Maladies+Transmissibles+%3D+European+Communicable+Disease+Bulletin%22%5BJournal%5D)">Norovirus outbreaks linked to oyster consumption in the United Kingdom.</a> Euro Surveillance : Bulletin Europeen Sur les Maladies Transmissibles = European Communicable Disease Bulletin. 15, Norway, France, Sweden and Denmark. (2010).</li>
<li>Wong, K., Fong, T. T., Bibby, K., Molina, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Application+of+enteric+viruses+for+fecal+pollution+source+tracking+in+environmental+waters%5BTitle%5D)+AND+%22Environment+International%22%5BJournal%5D)">Application of enteric viruses for fecal pollution source tracking in environmental waters.</a> Environment International. 45, 151-164 (2012).</li>
<li>Cashdollar, J. L., Wymer, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methods+for+primary+concentration+of+viruses+from+water+samples%3A+a+review+and+meta-analysis+of+recent+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Applied+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Methods for primary concentration of viruses from water samples: a review and meta-analysis of recent studies.</a> Journal of Applied Microbiology. 115, 1-11 (2013).</li>
<li>Ikner, L. A., Soto-Beltran, M., Bright, K. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((New+method+using+a+positively+charged+microporous+filter+and+ultrafiltration+for+concentration+of+viruses+from+tap+water%5BTitle%5D)+AND+%22Applied+and+Environmental+Microbiology%22%5BJournal%5D)">New method using a positively charged microporous filter and ultrafiltration for concentration of viruses from tap water.</a> Applied and Environmental Microbiology. 77, 3500-3506 (2011).</li>
<li>Karim, M. R., Rhodes, E. R., Brinkman, N., Wymer, L., Fout, G. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((New+electropositive+filter+for+concentrating+enteroviruses+and+noroviruses+from+large+volumes+of+water%5BTitle%5D)+AND+%22Applied+and+Environmental+Microbiology%22%5BJournal%5D)">New electropositive filter for concentrating enteroviruses and noroviruses from large volumes of water.</a> Applied and Environmental Microbiology. 75, 2393-2399 (2009).</li>
<li>McMinn, B. R., Cashdollar, J. L., Grimm, A. C., Fout, G. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+the+celite+secondary+concentration+procedure+and+an+alternate+elution+buffer+for+the+recovery+of+enteric+adenoviruses+40+and+41%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Virological+Methods%22%5BJournal%5D)">Evaluation of the celite secondary concentration procedure and an alternate elution buffer for the recovery of enteric adenoviruses 40 and 41.</a> Journal of Virological Methods. 179, 423-428 (2012).</li>
<li>Katzenelson, E., Fattal, B., Hostovesky, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Organic+flocculation%3A+an+efficient+second-step+concentration+method+for+the+detection+of+viruses+in+tap+water%5BTitle%5D)+AND+%22Applied+and+Environmental+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Organic flocculation: an efficient second-step concentration method for the detection of viruses in tap water.</a> Applied and Environmental Microbiology. 32, 638-639 (1976).</li>
<li>Fout, G. S., Schaefer, F. W. 3rd, Messer, J. W., Dahling, D. R. ICR microbial laboratory manual. 178, US Environmental Protection Agency. Washington, D.C. (1996).</li>
<li>Calgua, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+and+application+of+a+one-step+low+cost+procedure+to+concentrate+viruses+from+seawater+samples%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Virological+Methods%22%5BJournal%5D)">Development and application of a one-step low cost procedure to concentrate viruses from seawater samples.</a> Journal of Virological Methods. 153, 79-83 (2008).</li>
<li>Calgua, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Detection+and+quantification+of+classic+and+emerging+viruses+by+skimmed-milk+flocculation+and+PCR+in+river+water+from+two+geographical+areas%5BTitle%5D)+AND+%22Water+Research%22%5BJournal%5D)">Detection and quantification of classic and emerging viruses by skimmed-milk flocculation and PCR in river water from two geographical areas.</a> Water Research. 47, 2797-2810 (2013).</li>
<li>McMinn, B. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimization+of+adenovirus+40+and+41+recovery+from+tap+water+using+small+disk+filters%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Virological+Methods%22%5BJournal%5D)">Optimization of adenovirus 40 and 41 recovery from tap water using small disk filters.</a> Journal of Virological Methods. 193 (2), 284-290 (2013).</li>
<li>Brinkman, N. E., Haffler, T. D., Cashdollar, J. L., Rhodes, E. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+methods+using+celite+to+concentrate+norovirus%2C+adenovirus+and+enterovirus+from+wastewater%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Virological+Methods%22%5BJournal%5D)">Evaluation of methods using celite to concentrate norovirus, adenovirus and enterovirus from wastewater.</a> Journal of Virological Methods. 193, 140-146 (2013).</li>
<li>Albinsson, B., Kidd, A. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adenovirus+type+41+lacks+an+RGD+alpha%28v%29-integrin+binding+motif+on+the+penton+base+and+undergoes+delayed+uptake+in+A549+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Virus+Research%22%5BJournal%5D)">Adenovirus type 41 lacks an RGD alpha(v)-integrin binding motif on the penton base and undergoes delayed uptake in A549 cells.</a> Virus Research. 64, 125-136 (1999).</li>
<li>He, C., Lian, J. S., Jiang, Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electronic+structures+and+hydrogen+bond+network+of+high-density+and+very+high-density+amorphous+ices%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Physical+Chemistry.+B%22%5BJournal%5D)">Electronic structures and hydrogen bond network of high-density and very high-density amorphous ices.</a> The Journal of Physical Chemistry. B. 109, 19893-19896 (2005).</li>
<li>Sedmak, G., Bina, D., Macdonald, J., Couillard, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nine-year+study+of+the+occurrence+of+culturable+viruses+in+source+water+for+two+drinking+water+treatment+plants+and+the+influent+and+effluent+of+a+Wastewater+Treatment+Plant+in+Milwaukee%2C+Wisconsin%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">Nine-year study of the occurrence of culturable viruses in source water for two drinking water treatment plants and the influent and effluent of a Wastewater Treatment Plant in Milwaukee, Wisconsin.</a> 71, 1042-1050 (2005).</li>
<li>Soto-Beltran, M., Ikner, L. A., Bright, K. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effectiveness+of+poliovirus+concentration+and+recovery+from+treated+wastewater+by+two+electropositive+filter+methods%5BTitle%5D)+AND+%22Food+and+Environmental+Virology%22%5BJournal%5D)">Effectiveness of poliovirus concentration and recovery from treated wastewater by two electropositive filter methods.</a> Food and Environmental Virology. 5, 91-96 (2013).</li>
<li>Haramoto, E., Katayama, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Application+of+acidic+elution+to+virus+concentration+using+electropositive+filters%5BTitle%5D)+AND+%22Food+and+Environmental+Virology%22%5BJournal%5D)">Application of acidic elution to virus concentration using electropositive filters.</a> Food and Environmental Virology. 5, 77-80 (2013).</li>
<li>Lee, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+electropositive+filtration+for+recovering+norovirus+in+water%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Water+and+Health%22%5BJournal%5D)">Evaluation of electropositive filtration for recovering norovirus in water.</a> Journal of Water and Health. 9, 27-36 (2011).</li>
<li>Gibbons, C. D., Rodriguez, R. A., Tallon, L., Sobsey, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+positively+charged+alumina+nanofibre+cartridge+filters+for+the+primary+concentration+of+noroviruses%2C+adenoviruses+and+male-specific+coliphages+from+seawater%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Applied+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Evaluation of positively charged alumina nanofibre cartridge filters for the primary concentration of noroviruses, adenoviruses and male-specific coliphages from seawater.</a> Journal of Applied Microbiology. 109, 635-641 (2010).</li>
<li>Hill, V. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+a+rapid+method+for+simultaneous+recovery+of+diverse+microbes+in+drinking+water+by+ultrafiltration+with+sodium+polyphosphate+and+surfactants%5BTitle%5D)+AND+%22Applied+and+Environmental+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Development of a rapid method for simultaneous recovery of diverse microbes in drinking water by ultrafiltration with sodium polyphosphate and surfactants.</a> Applied and Environmental Microbiology. 71, 6878-6884 (2005).</li>
<li>Polaczyk, A. L., Roberts, J. M., Hill, V. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+1MDS+electropositive+microfilters+for+simultaneous+recovery+of+multiple+microbe+classes+from+tap+water%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Microbiological+Methods%22%5BJournal%5D)">Evaluation of 1MDS electropositive microfilters for simultaneous recovery of multiple microbe classes from tap water.</a> Journal of Microbiological Methods. 68, 260-266 (2007).</li>
<li>Rhodes, E. R., Hamilton, D. W., See, M. J., Wymer, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+hollow-fiber+ultrafiltration+primary+concentration+of+pathogens+and+secondary+concentration+of+viruses+from+water%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Virological+Methods%22%5BJournal%5D)">Evaluation of hollow-fiber ultrafiltration primary concentration of pathogens and secondary concentration of viruses from water.</a> Journal of Virological Methods. 176, 38-45 (2011).</li>
<li>Melnick, J. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Round+robin+investigation+of+methods+for+the+recovery+of+poliovirus+from+drinking+water%5BTitle%5D)+AND+%22Applied+and+Environmental+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Round robin investigation of methods for the recovery of poliovirus from drinking water.</a> Applied and Environmental Microbiology. 47, 144-150 (1984).</li>
<li>Schwab, K. J., De Leon, R., Sobsey, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Concentration+and+purification+of+beef+extract+mock+eluates+from+water+samples+for+the+detection+of+enteroviruses%2C+hepatitis+A+virus%2C+and+Norwalk+virus+by+reverse+transcription-PCR%5BTitle%5D)+AND+%22Applied+and+Environmental+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Concentration and purification of beef extract mock eluates from water samples for the detection of enteroviruses, hepatitis A virus, and Norwalk virus by reverse transcription-PCR.</a> Applied and Environmental Microbiology. 61, 531-537 (1995).</li>
</ol>

Nessun interesse finanziario in competizione. 
Le opinioni espresse in questo articolo sono quelle degli autori e non riflettono necessariamente le opinioni o le politiche dell'Agenzia per la protezione dell'ambiente degli Stati Uniti. La menzione di nomi commerciali o prodotti commerciali non costituisce approvazione o raccomandazione per l'uso.

Filtri electropositive sono utili nella concentrazione virus dall&#39;acqua; Tuttavia questi filtri possono differire nella loro struttura e composizione che potrebbe a sua volta alterare la loro efficacia. Ad aggravare questo problema, le strutture e le spese del capside variano tra i ceppi virali che richiedono tecniche di concentrazione essere adattati per garantire il recupero ottimale 15. Attraverso semplici modifiche delle tecniche di concentrazione esistenti (ad esempio, filtri elettropositivi...

Virus enterici umani sono importanti agenti eziologici di malattie trasmesse dall&#39;acqua 1-3, ma sono generalmente presenti in numero ridotto nelle acque ambientali contaminate, rendendo la loro individuazione difficile senza concentrazione. Le procedure utilizzate per concentrare virus includono tipicamente una fase di filtrazione, seguita da filtro eluizione, e concentrazione secondaria dell&#39;eluato filtro. Una procedura di filtrazione comune si basa sull&#39;uso di membrane cariche quali filtri elettropositivi (recentemente recensito in 4,5). Questi filtri si basano sulla cattura virus sospese in acqua utilizzando interazioni elettrostatiche tra la superficie del filtro (carica positiva) e particelle di virus mirati (carica negativa). Due filtri elettropositivi che sono commercialmente disponibili si basano su questa tecnologia, i filtri di vetro / cellulosa e nano-allumina / fibra di vetro. I costi filtro di vetro / cellulosa sono fino a 10 volte quella del nano-allumina / fibra di vetro, che limitano l&#39;uso del vetro / ceFiltri llulose per il monitoraggio virus di routine. Recenti studi hanno concluso differenze sono nominali tra questi due filtri in recupero di enterovirus da 6,7 all&#39;acqua ambiente, giustificare l&#39;uso di una più economica alternativa filtro. Altre opzioni di filtro come filtri elettronegativi e lana di vetro sono stati studiati, tuttavia, richiedono sia il pretrattamento dell&#39;acqua di fonte (filtri elettronegativi) o non sono disponibili in commercio (filtri di lana di vetro). Lo sviluppo di procedure di concentrazione del virus si è prevalentemente concentrata sull&#39;ottimizzazione tecniche di concentrazione primari (filtri) al fine di migliorare i recuperi virus dall&#39;acqua. Tuttavia, le procedure di concentrazione secondarie, che riducono il volume di eluente tipicamente da 1 L a millilitro volumi, possono anche avere un impatto significativo sui recuperi virus 8. Concentrazione media di virus enterici basa tipicamente su un agente flocculante come alcuni tipi di estratto di carne (floccu organicamento) o il latte scremato flocculazione 9-12 per rimuovere particelle di virus da superfici filtranti. Recentemente, un&#39;altra procedura concentrazione secondaria con estratto di carne insieme con l&#39;aggiunta di celite (particelle fini) ha mostrato risultati promettenti per il recupero adenovirus, enterovirus e norovirus 8,13,14. Opere concentrazione Celite sotto principi simili a quella del metodo di flocculazione organica che particelle virali connettono e vengono rilasciate da particelle (floc o celite) alterando il pH della soluzione di sospensione. Il confronto tra queste due tecniche di concentrazione secondari sono stati valutati nel recupero di adenovirus spillo (ADV) i tipi 40 e 41 8. Questo studio ha concluso che le due tecniche di concentrazione secondari erano statisticamente simili nel recupero di adenovirus. Tuttavia, il metodo richiede una flocculazione organica 30 min. incubazione a pH 3,5, mentre la tecnica celite richiede una breve incubazione (10 min) a pH 4.0. Il flocculat organicaion richiede anche l&#39;uso di costose attrezzature di laboratorio (centrifughe) per raccogliere particelle Floc momento della concentrazione terziaria, la tecnica celite in contrasto utilizza solo attrezzature di laboratorio di base (filtrazione sotto vuoto) per separare particelle Celite da sospensione. Alcune combinazioni di filtri e tecniche di eluizione secondaria può colpire anche i recuperi di virus. Uno studio ha concluso che alcune combinazioni di primari (filtri elettropositivi) e tecniche di concentrazione secondari (Celite o flocculazione organica) hanno avuto un impatto significativo recupero di adenovirus 13. Questi risultati suggeriscono che l&#39;ottimizzazione è necessaria al fine di recuperare in modo ottimale virus bersaglio da una data matrice acqua quando utilizzando queste tecniche. L&#39;ottimizzazione è un dispendio di tempo, di processo arduo molti ricercatori evitare attivamente poiché numerose variabili saranno valutati (tipo di filtro / marca, soluzione di eluizione pH, celite / flocculazione organica). Per questo study, una procedura è stata sviluppata per individuare le condizioni ottimali per la concentrazione del virus da acqua utilizzando spillo adenovirus umano ceppi 40 e 41. Presumibilmente, dal momento che ogni tipo di virus visualizza una morfologia capside unica e carica capside specifico, possono avere bisogno di essere ottimizzato per ogni virus protocolli di concentrazione obiettivo per raggiungere il recupero virale ottimale. Questo studio fornisce un approccio per AdV 40 e 41 concentrazione mediante: 1) valutare recuperi virus in acqua di rubinetto utilizzando dischi filtranti elettropositivi seguiti da 2) valutazione di un metodo di flocculazione organica stabilita rispetto alla tecnica celite come concentrazione secondaria, e 3) valutazione buffer di eluizione per la concentrazione terziaria.

<table><tbody><tr><td>Adenovirus 40 stock</td><td>ATCC</td><td>VR-931</td><td></td></tr><tr><td>Adenovirus 41 stock</td><td>ATCC</td><td>VR-930</td><td></td></tr><tr><td>Sodium Thiosulfate</td><td>Fluka Chemical Co.</td><td>72051</td><td></td></tr><tr><td>Celites #577</td><td>Fluka Chemical Co.</td><td>22142</td><td></td></tr><tr><td>NanoCeram 47 mm</td><td>Argonide</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>1MDS 47 mm</td><td>3M</td><td>6408502</td><td></td></tr><tr><td>AP-20 Prefiltro 47 mm</td><td>Millipore Corp.</td><td></td><td></td>AP2004700</tr><tr><td>Glicina</td><td>Sigma</td><td>50046-1KG</td><td></td></tr><tr><td>Polifosfato di sodio</td><td>Acros Organics</td><td>390930010</td><td></td></tr><tr><td>Tripsina</td><td>Gibco</td><td>25200</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>Sigma</td><td>P5368</td><td></td></tr><tr><td>Acido cloridrico</td><td>Fisher</td><td>A481-212</td><td></td></tr><tr><td>BBL Estratto di manzo</td><td>BD Biosciences</td><td>212303</td><td></td></tr><tr><td>Difco Estratto di manzo</td><td>BD Biosciences</td><td>211520</td><td></td></tr><tr><td>ABI 7900 Sistema di PCR in tempo reale</td><td>ABI</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Alloggiamento del filtro in acciaio inossidabile</td><td>Millipore Corp.</td><td></td><td></td>XX2004720</tr><tr><td>Kit di estrazione del DNA del sangue</td><td>Qiagen&nbsp;</td><td>51104</td><td></td></tr><tr><td>EPA MPN Calcolatore</td><td></td><td></td><td>http://www.epa.gov/nerlcwww/online.html</td></tr></tbody></table>

a procedura piccolo volume per concentrazione virale da water

A Small Volume Procedure for Viral Concentration from Water

La concentrazione su piccola scala di virus (volumi di campione da 1 a 10 L, qui simulati con campioni d'acqua da 100 ml) è un modo efficiente ed economico per identificare i parametri ottimali per la concentrazione del virus. I virus possono essere concentrati dall'acqua mediante filtrazione (elettropositiva, elettronegativa, lana di vetro o esclusione dimensionale), seguita da una concentrazione secondaria con estratto di manzo per rilasciare i virus dalle superfici filtranti e infine da una concentrazione terziaria che si traduce in un volume di 5-30 ml di concentrato virale. Al fine di identificare le procedure di concentrazione ottimale, sono stati valutati due diversi filtri elettropositivi (un filtro vetro/cellulosa [1MDS] e un filtro nano-allumina/vetro [NanoCeram]), nonché diverse tecniche di concentrazione secondaria; La tecnica Celite in cui sono state valutate tre diverse dimensioni delle particelle di Celite (fine, media e grande) seguita dal confronto di questa tecnica con quella del metodo di flocculazione organica consolidato. Vari additivi di eluizione sono stati inoltre valutati per la loro capacità di migliorare il rilascio di particelle di adenovirus (AdV) dalle superfici del filtro. Il celite a particelle fini ha recuperato livelli simili di AdV40 e 41 a quelli del metodo di flocculazione organica stabilito quando sono stati aggiunti picchi virali durante la concentrazione secondaria. Il filtro vetro/cellulosa ha recuperato livelli più elevati di entrambi, AdV40 e 41, rispetto a quello di un filtro in nano-allumina/fibra di vetro. Sebbene non statisticamente significativo, l'aggiunta di eluante dell'estratto di manzo modificato con polifosfato di sodio allo 0,1% ha recuperato il 10% in più di particelle AdV rispetto all'estratto di manzo non modificato.

<html> Selezione Celite Tre diversi tipi di celite stati testati prima della selezione della variante migliore performante. Celites con ammenda di particelle di medie dimensioni realizzati i più alti recuperi adenovirus. L&#39;uso di grandi celites comportato recuperi inferiori sia AdV40 e 41 (range 32% -100%) (Figura 1). Recuperi medi di adenovirus 40 erano 144% ± 52% (fine), 115% ± 28% (medio) e il 82% ± 53% celites (grande) di particelle e per AdV41, 132% ± 39% (fine), 83%...

È stato sviluppato un approccio per identificare le condizioni ottimali di concentrazione virale per campioni d'acqua di piccolo volume utilizzando punte di adenovirus umano. Le tecniche qui descritte sono utilizzate per identificare i parametri di concentrazione per altri bersagli virali e applicate alla sperimentazione della concentrazione virale su larga scala.

A Procedura piccolo volume per concentrazione virale da Water

Small-scale concentration of viruses (sample volumes 1-10 L, here simulated with spiked 100 ml water samples) is an efficient, cost-effective way to ...

L'obiettivo generale del seguente esperimento è ottimizzare il recupero di virus dall'acqua mediante una tecnica su piccola scala originariamente progettata per ottimizzare le concentrazioni virali. Un filtro di cellulosa in vetro si è rivelato il filtro elettropositivo migliore per concentrare l'adenovirus dall'acqua. Per l'eluzione secondaria, una tecnica di concentrazione secondaria con celite si è dimostrata la più efficace nell'eluire l'adenovirus dalle superfici del filtro. La tecnica risultante consente il recupero maggiore di adenovirus dall'acqua di rubinetto, in base alla percentuale di recupero più elevata osservata tra tutte le combinazioni di filtri ed eluenti testate. Il principale vantaggio di questa tecnica rispetto ai metodi esistenti, come la concentrazione su larga scala di volumi, è che utilizza volumi di campione più piccoli, consentendo di valutare rapidamente e facilmente una molteplicità di variabili di concentrazione. Quando ci si prepara per questo protocollo, avere a disposizione tutte le soluzioni necessarie, inclusa la soluzione virale filtrata con filtro da 0,22 micron a una concentrazione di 10-100.000 MPN per millilitro. Iniziare misurando un litro d

a-small-volume-procedure-for-viral-concentration-from-water

Research

Ricerca

JoVE Journal

Environment

Ambiente

Lago di eutrofizzazione è un problema di qualità delle acque in tutto il mondo, rendendo la necessità di identificare e controllare le fonti di nutrienti critici. Determinazione Laboratorio di fosforo tassi di rilascio di carote di sedimento è un valido approccio per determinare il ruolo del fosforo carico interno e guidare le decisioni di gestione.

Laboratorio-determinato Fosforo Flux dal lago di sedimenti come misura di fosforo interno Loading

L'obiettivo di questa procedura è dimostrare la riproducibilità e l'adattabilità dell'utilizzo di un formato di piastra per microtitolazione per lo screening delle microalghe. Questo screening rapido combina la fluorimetria WATER-Pulse-Amplitude-Modulated (WATER-PAM) per misurare la resa fotosintetica come indicatore della salute del fotosistema II (PSII) con co-colture batteriche-algali di piccolo volume.

Un piccolo volume Bioassay per valutare batterica / fitoplancton Co-cultura Utilizzando WATER-Pulse-modulata in ampiezza (WATER-PAM) fluorometria

Il lisimetro Anidride carbonica gradiente strumento crea un 250-500 microlitri L -1 anidride carbonica sfumatura lineare nella comunità vegetali camere abitazioni prateria a temperatura controllata in argilla, argilla limosa, e monoliti di sabbia del suolo. L'impianto viene utilizzato per determinare come i livelli di biossido di carbonio passati e futuri influenzano ciclo del carbonio pascoli.

A CO<sub&gt; 2</sub&gt; Gradiente di concentrazione strumento per il test di CO<sub&gt; 2</sub&gt; Arricchimento e del suolo Effetti sulla Prateria Ecosistema Funzione

Viene presentato un protocollo per l'estrazione e la pre-concentrazione di estradiolo da campioni d'acqua utilizzando un sistema automatizzato e miniaturizzato.

Un metodo semplice per Automated fase solida estrazione di campioni di acqua per l&#39;analisi immunologiche di piccole inquinanti

Una metodologia per l'ottenimento di informazioni visive e quantitative struttura radice da computerizzata a raggi X dei dati acquisiti tomografia a-terreno è presentato.

Estrazione metriche per sistemi di radici tridimensionali: volume e superficie di analisi da In-terreno a raggi X Tomografia Computerizzata dati

Questo studio presenta un metodo di scavo per indagare idrogeologico del sottosuolo, geochimica, ed eterogeneità microbiologica di un lisimetro terreno. Il lisimetro simula un versante artificiale che inizialmente era in condizioni omogenee ed era stato sottoposto a circa 5.000 mm di acqua in otto cicli di irrigazione in un periodo di 18 mesi.

Terreno lisimetro scavo per accoppiate idrologici, geochimiche e microbiologiche Investigations

Le microplastiche agiscono come vettori di contaminanti organici potenzialmente tossici con effetti imprevedibili. Questo protocollo descrive una metodologia alternativa per valutare i livelli di pesticidi organocloruri adsorbiti sui pellet di plastica e identificare la struttura chimica del polimero. Il fuoco è sulla estrazione del fluido pressurizzato e la riflessione totale attenuata che Fourier trasforma la spettroscopia a infrarossi.

Estrazione di pesticidi di organochlorato da pellicole di plastica e analisi di tipo plastico

Modelli spaziali di erosione e deposizione possono essere dedotte dalle differenze in elevazione di terreno mappato a incrementi di tempo appropriato. Tali cambiamenti in elevazione sono correlati ai cambiamenti in carbonati vicino alla superficie del suolo. Qui vengono descritti metodi ripetibile per misure in campo e in laboratorio di questi metodi di analisi quantitativi e dati.

Misura e mappatura modelli di erosione e deposizione relazionati al suolo carbonato concentrazioni sotto gestione agricola

Nutrienti presenti in forma di particolato possono contribuire significativamente all'utenza complessiva nelle acque di drenaggio agricolo. Questo studio descrive un nuovo metodo per acquisire ponderati per il flusso di acqua e particelle in sospensione dalla fattoria canale di drenaggio per l'intera durata dell'evento di drenaggio.

Acquisizione ponderati per il flusso di acqua e particelle in sospensione dai canali agricoli durante eventi di drenaggio

Questo protocollo descrive un tecnica per ripristino degradati Everglades albero isole che esperienza inondazione di piantagione di alberi e di soluzione semplici e convenienti. Il design crea un'isola (a comparsa) che galleggia inizialmente e aggiunge elevazione per promuovere la crescita in condizioni allagate e sopravvivenza dell'albero.

Una semplice tecnica di impianto per ristabilire gli alberi dove si verifica frequente Inundation

Scopri la concentrazione virale da piccoli volumi d'acqua utilizzando filtri in vetro cellulosa e la tecnica secondaria Sea Light per l'adenovirus umano. Questo metodo ottimizza il recupero virale per il monitoraggio ambientale.

A Procedura piccolo volume per concentrazione virale da Water

Esplora altri video