Name: A Procedura piccolo volume per concentrazione virale da Water (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-02-03T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 28 s
Description: Scopri la concentrazione virale da piccoli volumi d'acqua utilizzando filtri in vetro cellulosa e la tecnica secondaria Sea Light per l'adenovirus umano. Questo metodo ottimizza il recupero virale per il monitoraggio ambientale.

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Vorremmo ringraziare il Dr. Nicholas J. Ashbolt e il Dr. G. Shay Fout per la loro revisione del manoscritto.

1. Preparazione di cristalleria e Filter Contenitori <ol style="margin-left: 40px;"><li> Se non diversamente specificato, sterilizzare tutti i bicchieri, contenitori e soluzioni di filtro a 121 ° C per 15 minuti. Per garantire la sterilità, coprire tutte le aperture o le superfici esposte sia con fogli di alluminio o di carta nastro fissato prima della sterilizzazione. </li><li> Montare apparato di filtrazione allegando alloggiamento del filtro (diametro di 47 mm) a 1 L braccio laterale beuta. Raccogliere filtri necessari: 47 mm di diametro filtri a disco elettropositivi / electronegative. </li><li> Preparare 1 L di estratto di carne bovina 1,5% (flocculanti; produce particelle Floc quando pH della soluzione si abbassa a 3,5, o non flocculante, che non fa aggregato a pH 3,5), con 0,05 M glicina, sciogliendo 15 g di estratto di carne bovina in 1 L di acqua deionizzata e l&#39;aggiunta di 3,75 g di glicina. NOTA: estratti di carne non floccaggio richiedono l&#39;aggiunta di celite prima concentrazione terziaria. </li><li> Aggiungi eluizione polyph additivo sodioosphate di estratto di carne bovina ad una concentrazione di 0,1%. </li><li> Aggiungere 1 soluzione di acido cloridrico M, gocciolamento, di miscelazione estratto di carne, pH della soluzione a pH desiderato. Estratto di carne bovina Autoclave per 15-30 minuti a 121 ° C. </li><li> Misura 0,1 g di fine, media, o grande celite particelle (per l&#39;utilizzo con estratto di carne non-flocculanti solo). </li><li> Preparare vuoto / aspirazione collegando tubazioni compatibile beuta braccio laterale e alla presa di vuoto. </li></ol> 2. preparazione di soluzioni e virus Stock <ol style="margin-left: 40px;"><li> Preparare 1 L di 1 M HCl. </li><li> Preparare 1 L di 1 M NaOH. </li><li> Preparare la soluzione PBS 1x (137 mM NaCl, 2.7 mM KCl, 1.47 mm K 2 PO 4 e 4,3 mm NaH 2 PO 4). <ol><li> Regolare il pH di 1x PBS a 9,0 con 1 M NaOH. </li></ol></li><li> Preparare e diluire magazzino virus per 10 4 -10 5 numero più probabile (MPN) ml -1 mescolando 1 ml di virus con 9 ml di PBS (pH7), come precedentemente descritto 8,13. Conservare a -80 ° C in aliquote di 1 ml. <ol><li> Sterilizzare virus magazzino filtrando siringa (0,22 micron dimensione dei pori) per rimuovere potenziali contaminanti. </li></ol></li><li> Declorata Tap Water <ol><li> Misura 1 L di acqua di rubinetto sterile utilizzando una sterile cilindro graduato e versare in un bicchiere contenente 2 L ancoretta magnetica. </li><li> Aggiungere 0,7 g di tiosolfato di sodio e mescolare fino a granuli si dissolvono. Regolare il pH dell&#39;acqua di rubinetto a 7-7,5 se necessario con 1 M HCl o soluzione 1 M NaOH. </li><li> Spike virus Thaw (1 ml) e aggiungere intero volume di picco per 1 L di acqua di rubinetto sterili senza cloro. Mescolare per 10 min. </li><li> Preparare un metodo vuoto (acqua di rubinetto declorurata senza adenovirus) con ogni esperimento e processo nello stesso modo come il campione spillo. </li></ol></li></ol> 3. Preparazione di Millipore Filtro Apparatus <ol style="margin-left: 40px;"><li> Rimuovere copertura sterile su filtro. Garantirela misura adeguata tra il corpo del filtro ciotola superiore e schermo del filtro inferiore per evitare perdite campione durante la filtrazione. </li><li> Rimuovere copertura sterile dal 1 boccetta L Erlenmeyer. Assicurarsi che il tappo del gruppo filtrante adatta comodamente in cima apertura beuta, creando una buona tenuta. </li><li> Rimuovere ciotola superiore dell&#39;unità filtrante dallo schermo del filtro inferiore e portare 47 millimetri disco filtro elettropositivo esattamente sopra lo schermo con una pinza sterile. Attaccare il filtro ciotola alloggi a schermo inferiore e bloccare in posizione ruotando in senso antiorario. </li></ol> 4. Toccare filtrazione dell&#39;acqua (concentrazione primaria) <ol style="margin-left: 40px;"><li> Misurare 100 ml di virus a spillo l&#39;acqua del rubinetto con sterile cilindro graduato. </li><li> Versare 100 ml di virus spillo l&#39;acqua del rubinetto in scatola del filtro contenente sia un / filtri di cellulosa 47 millimetri di vetro pieghettata o un filtro rigido in fibra di nano-allumina / vetro. </li><li> Consentire all&#39;acqua di passare lentamente attraverso il filtro. Applicare delicato vuoto per rimuovere residui residui oacqua di rubinetto f dalla superficie del filtro. </li><li> Se si utilizza il trattamento tripsina, aggiungere 5 ml di 0,25% tripsina per filtrare la superficie e incubare per 5 min. </li><li> Lavare tripsina dalla superficie del filtro con 50 ml di acqua deionizzata sterile. </li></ol> 5. Virus eluizione da filtro <ol style="margin-left: 40px;"><li> Smontare la scatola del filtro da 2 fiasco L Erlenmeyer, e posizionarlo sul pallone da 250 ml braccio laterale. </li><li> Misurare 100 ml di estratto di carne utilizzando cilindro graduato. Versare lentamente 100 ml di estratto di carne in scatola del filtro. </li><li> Lasciare estratto di carne bovina per versare attraverso il filtro, catturando estratto di carne in un piccolo (250 ml) beuta. Applicare il vuoto per tirare attraverso estratto di carne residuo dal filtro. </li></ol> 6. Celite Concentrazione secondaria <ol style="margin-left: 40px;"><li> Flaconi di trasferimento contengono i virus eluiti ad una piastra scalpore. Aggiungere sterile ancoretta magnetica e posto sul piatto mescolare, mescolare per creare una leggera vortice. </li><li> Aggiungere 0,1 g di celitepolvere 100 ml di estratto di carne e consentire celite per disperdere. Posizionare la sonda pH sterile in estratto di carne. </li><li> Aggiungere goccia a goccia 1 M HCl per estratto di carne per raggiungere pH 4,0. Lasciare miscelare lentamente per 10 min. </li><li> Mettere 47 millimetri di pre-filtro sul corpo del filtro (come descritto in precedenza) con un pallone 2 L Erlenmeyer. </li><li> Versare 100 ml di estratto di manzo / miscela celite over pre-filtro. Lasciare estratto di carne bovina per versare attraverso. Applicare leggero vuoto per tirare attraverso estratto di carne residuo dal filtro. </li><li> Posizionare la clip tubo metallico sulla fine del becco filtro. Attaccare sterile 15 ml tubo di raccolta in polipropilene a clip di tubo di metallo. Posizionare la scatola del filtro di nuovo in beuta. </li><li> Aggiungere 5 ml di tampone 1x PBS, pH 9.0 su celite raccolte sul pre-filtro. </li><li> Lasciare PBS goccioli attraverso pre-filtro. Applicare leggero vuoto per tirare attraverso residuo PBS in 15 ml tubo di raccolta. </li></ol> 7. Flocculazione Organic Concentrazione secondaria <ol style="margin-left: 40px;"><li>Trasferire i bicchieri contenenti il ​​virus eluito a un piatto mescolare. Aggiungere sterile ancoretta magnetica a 100 ml di estratto di carne e mescolare per creare una leggera vortice. </li><li> Posizionare la sonda pH sterile in estratto di carne. </li><li> Aggiungere 1 M HCl goccia saggio estratto di carne e aggiustare il pH a 3,5. Mescolare per 30 min. </li><li> Versare l&#39;eluato in 250 ml provette coniche e centrifugare a 2500 xg per 15 minuti a 4 ° C. </li><li> Eliminare il surnatante facendo attenzione a non a non disturbare il pellet. Risospendere il pellet in 5 ml di PBS 1x, pH 9. </li><li> Centrifugare la sospensione a 4.000 xg per 10 minuti a 4 ° C. Eliminare il surnatante e scartare il pellet. </li><li> Regolare il pH a 7-7.5, filtrare sterilizzare attraverso 0,22 micron filtro siringa e congelamento a -80 ° C. </li></ol> 8. Viral Nucleic Acid Extraction <ol style="margin-left: 40px;"><li> Estrarre gli acidi nucleici virali utilizzando un kit commerciale adeguata secondo le istruzioni del produttore. </li></ol> &lt;p class = &quot;jove_title&quot;&gt; 9. AdV 40/41 qPCR <ol style="margin-left: 40px;"><li> Utilizzare primer e sonde, nonché miscela di reazione e profili cicli termici come pubblicato 8,13. NOTA: limite stimato di rilevamento per il dosaggio è di circa 5 unità qPCR per reazione. </li><li> Aggiungere componenti di miscele di amplificazione PCR a concentrazioni come segue: Tris 10 mM (pH 8,3), 50 mM KCl, 4,5 mM MgCl 2, 10 mM dNTPs, 10 mM primer e della sonda 1 mM e 0,5 ml di polimerasi in modo che i volumi finali di 45 microlitri può essere aggiunto al numero appropriato di pozzetti in una piastra di reazione PCR da 96 pozzetti. </li><li> Carico 45 ml di miscela di amplificazione PCR per ciascun pozzetto appropriata di un pozzo 96, reazione veloce PCR piastra. </li><li> Aggiungere 5 ml di DNA estratto campione adeguati pozzetti della piastra PCR. </li><li> Coprire piastra con calore guarnizione del coperchio resistente, girare la piastra per spostare eventuali gocce di fondo dei pozzetti della piastra PCR. </li><li> Impostare PCR cicli di amplificazione come follOWS: 95 ° C per 10 minuti, seguiti da 40 cicli di 95 ° C per 15 sec e 60 ° C per 1 min. </li></ol> 10. Analisi dei dati <ol style="margin-left: 40px;"><li> Analizzare misurazioni in triplicato delle diluizioni seriali 5-fold dei campioni abbracciano 1: 5 a 1: 625 gamma di diluizione per determinare il numero più probabile (MPN) delle particelle virali, come precedentemente descritto 8,13. </li><li> Analizzare diluizioni seriali 5-fold di picchi sperimentali adenovirus abbracciano 1: 5 a 1: 15.625 serie di diluizione per determinare il numero più probabile (MPN) delle particelle virali. </li><li> Utilizzando la calcolatrice EPA MPN (http://www.epa.gov/nerlcwww/online.html), regolare la calcolatrice per spiegare il tipo di diluizione (1: 5 o 1:10), il numero di diluizioni effettuate, e il numero di replicare campioni in serie di diluizioni. </li><li> Eseguire log 10 trasformazione dei dati, seguiti normalizzando ad una unità di volume (ad esempio, 1 ml, 100 ml, etc. </em&gt;). Calcola recuperi per dato esperimento dividendo il numero di particelle virali presenti nel campione concentrati con il numero di particelle virali presenti in picchi sperimentali. </li><li> Valutare l&#39;effetto delle diverse variabili sperimentali (ad esempio, diversi tipi Celite, intervalli di pH, diversi tipi di filtro e diverse tecniche di concentrazione secondari) sui recuperi Adv eseguendo test statistici parametrici e non parametrici (es paired t-test, uno o due -way ANOVA) a seconda della distribuzione dei dati e il disegno sperimentale. </li></ol>

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Filtri electropositive sono utili nella concentrazione virus dall&#39;acqua; Tuttavia questi filtri possono differire nella loro struttura e composizione che potrebbe a sua volta alterare la loro efficacia. Ad aggravare questo problema, le strutture e le spese del capside variano tra i ceppi virali che richiedono tecniche di concentrazione essere adattati per garantire il recupero ottimale 15. Attraverso semplici modifiche delle tecniche di concentrazione esistenti (ad esempio, filtri elettropositivi...

Virus enterici umani sono importanti agenti eziologici di malattie trasmesse dall&#39;acqua 1-3, ma sono generalmente presenti in numero ridotto nelle acque ambientali contaminate, rendendo la loro individuazione difficile senza concentrazione. Le procedure utilizzate per concentrare virus includono tipicamente una fase di filtrazione, seguita da filtro eluizione, e concentrazione secondaria dell&#39;eluato filtro. Una procedura di filtrazione comune si basa sull&#39;uso di membrane cariche quali filtri elettropositivi (recentemente recensito in 4,5). Questi filtri si basano sulla cattura virus sospese in acqua utilizzando interazioni elettrostatiche tra la superficie del filtro (carica positiva) e particelle di virus mirati (carica negativa). Due filtri elettropositivi che sono commercialmente disponibili si basano su questa tecnologia, i filtri di vetro / cellulosa e nano-allumina / fibra di vetro. I costi filtro di vetro / cellulosa sono fino a 10 volte quella del nano-allumina / fibra di vetro, che limitano l&#39;uso del vetro / ceFiltri llulose per il monitoraggio virus di routine. Recenti studi hanno concluso differenze sono nominali tra questi due filtri in recupero di enterovirus da 6,7 all&#39;acqua ambiente, giustificare l&#39;uso di una più economica alternativa filtro. Altre opzioni di filtro come filtri elettronegativi e lana di vetro sono stati studiati, tuttavia, richiedono sia il pretrattamento dell&#39;acqua di fonte (filtri elettronegativi) o non sono disponibili in commercio (filtri di lana di vetro). Lo sviluppo di procedure di concentrazione del virus si è prevalentemente concentrata sull&#39;ottimizzazione tecniche di concentrazione primari (filtri) al fine di migliorare i recuperi virus dall&#39;acqua. Tuttavia, le procedure di concentrazione secondarie, che riducono il volume di eluente tipicamente da 1 L a millilitro volumi, possono anche avere un impatto significativo sui recuperi virus 8. Concentrazione media di virus enterici basa tipicamente su un agente flocculante come alcuni tipi di estratto di carne (floccu organicamento) o il latte scremato flocculazione 9-12 per rimuovere particelle di virus da superfici filtranti. Recentemente, un&#39;altra procedura concentrazione secondaria con estratto di carne insieme con l&#39;aggiunta di celite (particelle fini) ha mostrato risultati promettenti per il recupero adenovirus, enterovirus e norovirus 8,13,14. Opere concentrazione Celite sotto principi simili a quella del metodo di flocculazione organica che particelle virali connettono e vengono rilasciate da particelle (floc o celite) alterando il pH della soluzione di sospensione. Il confronto tra queste due tecniche di concentrazione secondari sono stati valutati nel recupero di adenovirus spillo (ADV) i tipi 40 e 41 8. Questo studio ha concluso che le due tecniche di concentrazione secondari erano statisticamente simili nel recupero di adenovirus. Tuttavia, il metodo richiede una flocculazione organica 30 min. incubazione a pH 3,5, mentre la tecnica celite richiede una breve incubazione (10 min) a pH 4.0. Il flocculat organicaion richiede anche l&#39;uso di costose attrezzature di laboratorio (centrifughe) per raccogliere particelle Floc momento della concentrazione terziaria, la tecnica celite in contrasto utilizza solo attrezzature di laboratorio di base (filtrazione sotto vuoto) per separare particelle Celite da sospensione. Alcune combinazioni di filtri e tecniche di eluizione secondaria può colpire anche i recuperi di virus. Uno studio ha concluso che alcune combinazioni di primari (filtri elettropositivi) e tecniche di concentrazione secondari (Celite o flocculazione organica) hanno avuto un impatto significativo recupero di adenovirus 13. Questi risultati suggeriscono che l&#39;ottimizzazione è necessaria al fine di recuperare in modo ottimale virus bersaglio da una data matrice acqua quando utilizzando queste tecniche. L&#39;ottimizzazione è un dispendio di tempo, di processo arduo molti ricercatori evitare attivamente poiché numerose variabili saranno valutati (tipo di filtro / marca, soluzione di eluizione pH, celite / flocculazione organica). Per questo study, una procedura è stata sviluppata per individuare le condizioni ottimali per la concentrazione del virus da acqua utilizzando spillo adenovirus umano ceppi 40 e 41. Presumibilmente, dal momento che ogni tipo di virus visualizza una morfologia capside unica e carica capside specifico, possono avere bisogno di essere ottimizzato per ogni virus protocolli di concentrazione obiettivo per raggiungere il recupero virale ottimale. Questo studio fornisce un approccio per AdV 40 e 41 concentrazione mediante: 1) valutare recuperi virus in acqua di rubinetto utilizzando dischi filtranti elettropositivi seguiti da 2) valutazione di un metodo di flocculazione organica stabilita rispetto alla tecnica celite come concentrazione secondaria, e 3) valutazione buffer di eluizione per la concentrazione terziaria.

<table><tbody><tr><td>Adenovirus 40 stock</td><td>ATCC</td><td>VR-931</td><td></td></tr><tr><td>Adenovirus 41 stock</td><td>ATCC</td><td>VR-930</td><td></td></tr><tr><td>Sodium Thiosulfate</td><td>Fluka Chemical Co.</td><td>72051</td><td></td></tr><tr><td>Celites #577</td><td>Fluka Chemical Co.</td><td>22142</td><td></td></tr><tr><td>NanoCeram 47 mm</td><td>Argonide</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>1MDS 47 mm</td><td>3M</td><td>6408502</td><td></td></tr><tr><td>AP-20 Prefiltro 47 mm</td><td>Millipore Corp.</td><td></td><td></td>AP2004700</tr><tr><td>Glicina</td><td>Sigma</td><td>50046-1KG</td><td></td></tr><tr><td>Polifosfato di sodio</td><td>Acros Organics</td><td>390930010</td><td></td></tr><tr><td>Tripsina</td><td>Gibco</td><td>25200</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>Sigma</td><td>P5368</td><td></td></tr><tr><td>Acido cloridrico</td><td>Fisher</td><td>A481-212</td><td></td></tr><tr><td>BBL Estratto di manzo</td><td>BD Biosciences</td><td>212303</td><td></td></tr><tr><td>Difco Estratto di manzo</td><td>BD Biosciences</td><td>211520</td><td></td></tr><tr><td>ABI 7900 Sistema di PCR in tempo reale</td><td>ABI</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Alloggiamento del filtro in acciaio inossidabile</td><td>Millipore Corp.</td><td></td><td></td>XX2004720</tr><tr><td>Kit di estrazione del DNA del sangue</td><td>Qiagen&nbsp;</td><td>51104</td><td></td></tr><tr><td>EPA MPN Calcolatore</td><td></td><td></td><td>http://www.epa.gov/nerlcwww/online.html</td></tr></tbody></table>

a procedura piccolo volume per concentrazione virale da water

A Small Volume Procedure for Viral Concentration from Water

La concentrazione su piccola scala di virus (volumi di campione da 1 a 10 L, qui simulati con campioni d'acqua da 100 ml) è un modo efficiente ed economico per identificare i parametri ottimali per la concentrazione del virus. I virus possono essere concentrati dall'acqua mediante filtrazione (elettropositiva, elettronegativa, lana di vetro o esclusione dimensionale), seguita da una concentrazione secondaria con estratto di manzo per rilasciare i virus dalle superfici filtranti e infine da una concentrazione terziaria che si traduce in un volume di 5-30 ml di concentrato virale. Al fine di identificare le procedure di concentrazione ottimale, sono stati valutati due diversi filtri elettropositivi (un filtro vetro/cellulosa [1MDS] e un filtro nano-allumina/vetro [NanoCeram]), nonché diverse tecniche di concentrazione secondaria; La tecnica Celite in cui sono state valutate tre diverse dimensioni delle particelle di Celite (fine, media e grande) seguita dal confronto di questa tecnica con quella del metodo di flocculazione organica consolidato. Vari additivi di eluizione sono stati inoltre valutati per la loro capacità di migliorare il rilascio di particelle di adenovirus (AdV) dalle superfici del filtro. Il celite a particelle fini ha recuperato livelli simili di AdV40 e 41 a quelli del metodo di flocculazione organica stabilito quando sono stati aggiunti picchi virali durante la concentrazione secondaria. Il filtro vetro/cellulosa ha recuperato livelli più elevati di entrambi, AdV40 e 41, rispetto a quello di un filtro in nano-allumina/fibra di vetro. Sebbene non statisticamente significativo, l'aggiunta di eluante dell'estratto di manzo modificato con polifosfato di sodio allo 0,1% ha recuperato il 10% in più di particelle AdV rispetto all'estratto di manzo non modificato.

<html> Selezione Celite Tre diversi tipi di celite stati testati prima della selezione della variante migliore performante. Celites con ammenda di particelle di medie dimensioni realizzati i più alti recuperi adenovirus. L&#39;uso di grandi celites comportato recuperi inferiori sia AdV40 e 41 (range 32% -100%) (Figura 1). Recuperi medi di adenovirus 40 erano 144% ± 52% (fine), 115% ± 28% (medio) e il 82% ± 53% celites (grande) di particelle e per AdV41, 132% ± 39% (fine), 83%...

È stato sviluppato un approccio per identificare le condizioni ottimali di concentrazione virale per campioni d'acqua di piccolo volume utilizzando punte di adenovirus umano. Le tecniche qui descritte sono utilizzate per identificare i parametri di concentrazione per altri bersagli virali e applicate alla sperimentazione della concentrazione virale su larga scala.

A Procedura piccolo volume per concentrazione virale da Water

Small-scale concentration of viruses (sample volumes 1-10 L, here simulated with spiked 100 ml water samples) is an efficient, cost-effective way to ...

L'obiettivo generale del seguente esperimento è ottimizzare il recupero di virus dall'acqua mediante una tecnica su piccola scala originariamente progettata per ottimizzare la concentrazione dei virus. Un filtro di cellulosa in vetro si è rivelato il miglior filtro elettropositivo per concentrare l'adenovirus dall'acqua. Per l'eluzione secondaria, una tecnica di concentrazione secondaria con celite si è dimostrata la più efficace per eluire l'adenovirus dalle superfici del filtro. La tecnica risultante consente il recupero maggiore di adenovirus dall'acqua di rubinetto, in base alla percentuale di recupero più elevata osservata tra tutte le combinazioni di filtri ed eluenti testate. Il vantaggio principale di questa tecnica rispetto ai metodi esistenti, come la concentrazione su larga scala per volume, è che utilizza volumi di campione più piccoli, consentendo di valutare rapidamente e facilmente una molteplicità di variabili di concentrazione. Quando ci si prepara per questo protocollo, avere a disposizione tutte le soluzioni necessarie, inclusa la soluzione virale filtrata a 0,22 micron a una concentrazione di 10-100.000 MPN per millilitro. Iniziare misurando un litro di acqua di rubinetto sterile. Trasferirla in un becher da due litri contenente una barretta magnetica per l'agitazione. Durante l'agitazione, aggiungere 0,7 grammi di tiosolfato di sodio e lasciare che si sciolga completamente. Successivamente, regolare il pH a un valore compreso tra 7 e 7,5 aggiungendo goccia a goccia soluzioni concentrate di acido o base a molarità uno. Poi, arricchire l'acqua con il virus. Aggiungere un millilitro completo della soluzione virale preparata. Coprire il becher con una pellicola sterile e lasciare che il virus si mescoli all'acqua per 10 minuti. Nel frattempo, preparare il filtro Millipore. Innanzitutto, rimuoverlo dall'imballaggio e verificare che si adatti perfettamente tra la coppa superiore e la griglia inferiore. Successivamente, controllare che il materiale in sughero del filtro si adatti saldamente al bordo di un pallone con bocca laterale da un litro. Ora rimuovere la coppa superiore del filtro e, con una pinzetta, posizionare un disco filtrante elettropositivo da 47 millimetri esattamente al centro della griglia filtrante. Quindi riattaccare la coppa e fissarla ruotandola in senso antiorario.Misurare 100 millilitri di acqua di rubinetto contaminata utilizzando un cilindro sterile. Successivamente, trasferire l'acqua nel supporto del filtro preparato sulla fiala da due litri. Il disco elettropositivo nel filtro può essere in vetro-cellulosa pieghettato o in fibra di vetro nano-alluminata. Si può utilizzare un vuoto leggero per far passare l'acqua residua attraverso il filtro.Ora, spostare il supporto del filtro in un pallone con attacco laterale da 250 millilitri. Misurare 100 millilitri di estratto di carne e versarli lentamente sul filtro. Lasciare che l'estratto passi lentamente e utilizzare una leggera aspirazione per far passare il residuo.Procedere quindi con una delle due opzioni secondarie di concentrazione.Per concentrare il virus utilizzando la celite, trasferire il contenuto del flacone da 250 millilitri, che contiene il virus, su un agitatore magnetico. Utilizzando una barretta magnetica, creare un piccolo vortice. Successivamente, aggiungere 0,1 grammi di polvere di celite a 100 millilitri di estratto di carne. Lasciare disperdere la celite e prepararsi a regolare il pH della soluzione. Aggiungendo goccia a goccia acido cloridrico 0,1 molare, abbassare il pH a 4,0.Quindi lasciare miscelare la soluzione per 10 minuti. Durante la miscelazione, fissare il filtro preliminare da 47 millilitri a un pallone da due litri. Versare ora 100 millilitri della miscela di estratto di carne e celite attraverso il filtro preliminare. Può essere utilizzato un leggero vuoto per completare l'operazione. Successivamente, posizionare una pinza metallica per tubo all'estremità del beccuccio di un alloggiamento per filtro. Alla pinza, fissare un tubo di raccolta sterile in polipropilene da 15 millilitri e quindi rimontare il filtro sul matraccio.Ora eluire il virus dalle particelle di Celite in cinque millilitri di PBS 1X a pH 9. Lasciare che la maggior parte del PBS defluisca per gravità nel tubo da 15 millilitri ed aspirare il residuo con una leggera aspirazione. Per concentrare il virus mediante flocculazione organica, trasferire il contenuto del matraccio da 250 millilitri contenente il virus su un agitatore magnetico. Utilizzando una barretta magnetica, creare un piccolo vortice. Regolare il pH della soluzione a 3,5 aggiungendo goccia a goccia acido cloridrico 1 M. Successivamente, lasciare agitare la miscela per mezz'ora. Trasferire quindi la soluzione in un tubo conico sterile da 250 millilitri per centrifuga. Centrifugare la soluzione a 2.500 ×g per 15 minuti a quattro gradi Celsius. Al termine della centrifugazione, prestare attenzione a non disturbare il pellet durante la manipolazione dei tubi. Decantare con attenzione il soprannatante e risospendere il pellet in cinque millilitri di PBS a pH 9. Assicurarsi che il pellet sia completamente disciolto. Centrifugare quindi la risospensione a 4.000 ×g per 10 minuti a quattro gradi Celsius. Raccogliere ora il soprannatante, che contiene il virus concentrato. Il pellet può essere scartato.Nell'ottimizzazione di questo protocollo, sono stati confrontati tre tipi di celite. La celite di dimensioni maggiori ha determinato minori rese sia per ADV 40 che per ADV 41.L'eluzione del filtro è stata testata a un pH compreso tra 7,5 e 12 per determinare il valore più efficace per il recupero delle particelle di ADV dai filtri. Il recupero più elevato è stato ottenuto utilizzando un filtro in cellulosa-vetro abbinato all'estrazione con estratto di manzo a pH 10 e con celite. Il risultato è stato lo stesso con ADV 40 e ADV 41.L'estrazione di carne a pH 10 si è rivelata superiore alla flocculazione organica.Il metodo ottimizzato è stato confrontato con l'aggiunta del 25% di tripsina e con l'intintegrazione dell'estratto di carne con polifosfato di sodio allo 0,1%. Nessuno dei due trattamenti ha migliorato significativamente il recupero di ADV. Una volta padroneggiata, questa tecnica può essere eseguita in 45 minuti se effettuata correttamente.

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Produzione e purificazione in coltura in sospensione di virus adeno-associati mediante centrifugazione a gradiente di densità di iodixanolo per applicazioni in vivo

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