Name: Contrôlée corticale modèle dimpact pour Traumatic Brain Injury (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-08-05T16:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 30 s
Description: Découvrez le modèle d'impact cortical contrôlé pour étudier les lésions cérébrales traumatiques chez la souris. Cette méthode permet d'induire des blessures reproductibles et d'analyser la cavité lésionnelle par imagerie et immunohistochimie.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Ce travail a été soutenu par un financement du cordon Indiana épinière et cerveau de subventions de recherche de blessures (200-12) SCBI, Ralph W. et Grace M. bourse de recherche Showalter, Indiana University Research Grant biologique, NIH subventions RR025761 et 1R21NS072631-01A.

Protection des animaux Homme C57 BL / 6 souris ont été logées en groupe et maintenus dans un cycle 12/12 h de lumière / obscurité avec une connexion pour accéder à la nourriture et de l&#39;eau ad libitum. Les animaux utilisés dans ce protocole étaient âgés de 10-12 semaines. Toutes les procédures ont été réalisées selon des protocoles approuvés par le Comité de soins et l&#39;utilisation des animaux de l&#39;Université d&#39;Indiana. 1. Préparation chirurgicale <ol><li> Anesthésier la souris en utilisant un mélange de kétamine / xylazine (87,7 mg / ml de kétamine et de 12,3 mg / ml de xylazine) et à administrer (1 ml / kg) par injection IP. </li><li> Raser la tête de la souris entre les oreilles. </li><li> Appliquer une gelée à base de pétrole pour les yeux de la souris afin d&#39;éviter le dessèchement pendant la chirurgie. </li><li> Nettoyer la zone rasée avec 10% de l&#39;iode. Ensuite, utilisez 70% d&#39;éthanol pour nettoyer l&#39;iode. </li><li> Fixez la tête de la souris dans le cadre stéréotaxique utilisant les barres d&#39;oreilles et la plaque de morsure. S&#39;assurer que le cerveau est stable. </li></ol> 2. Craniectomie </p&gt; <ol><li> Faire une incision longitudinale dans le milieu de la tête avec des ciseaux. Utilisez une pince hémostatique pour maintenir la peau sur le côté gauche. </li><li> Utilisez un coton-tige pour enlever le sang et les tissus de l&#39;os pour exposer le crâne. Laisser crâne exposé à sécher pendant 1 min. </li><li> Utilisez une pince pour appliquer la pression et faire en sorte que le crâne reste immobile. Identifier les repères anatomiques Lambda (caudale aspect) et Bregma (aspect le frontal). Dessiner un cercle au centre du bregma et lambda avec un diamètre de 4 mm et de 0,5 mm de la ligne médiane. </li><li> Utilisez une perceuse pour couper le long du cercle marqué. Soufflez doucement la poussière d&#39;os loin. Ne pas percer complètement à travers l&#39;os pour éviter d&#39;endommager la dure-mère. </li><li> Utilisez une pince pour retirer les os et exposer la dure-mère. </li></ol> 3. Impaction Le système d&#39;impact comprend un boîtier de commande pour définir les paramètres d&#39;impact, un actionneur pour effectuer l&#39;impaction, et un cadre stéréotaxique pour sécuriser l&#39;acteuator et chef de la souris pour l&#39;impact. <ol><li> Pré-régler la vitesse de l&#39;actionneur à 3 m / sec avant l&#39;intervention chirurgicale. </li><li> Prédéfinie différente profondeur de déformation pour induire différents niveaux de gravité des blessures. des profondeurs de déformation de 0.0-0.2 mm, 0,5-1,0 mm et 1,2-2,0 mm entraînerait TCC légers, modérés et sévères, respectivement. Ce protocole a expliqué comment parvenir à une lésion cérébrale modérément sévère avec une profondeur de 1 mm de déformation en utilisant une vitesse de 3 m / sec. </li><li> Fixez l&#39;actionneur au titulaire dans le cadre stéréotaxique et d&#39;utiliser les micro-manipulateurs déplacer pour fixer le, bout plat rond de l&#39;actionneur (de 3 mm de diamètre) dans le centre de la zone ouverte du crâne. Puis ajustez la pointe à un angle parallèle à la surface de lieu de l&#39;impact. </li><li> Établir le point zéro par déplacement vers le bas de l&#39;actionneur dans le modèle s&#39;étendant jusqu&#39;à la pointe touche la surface du site d&#39;impact. Ensuite, réglez le canal de Z sur le panneau de contrôle stéréotaxique à zéro. </li><li> Rétracter la pointe de frappetout en bougeant l&#39;actionneur vers le bas de 1 mm. </li><li> Appuyez sur le bouton de l&#39;impact de grève le site de la lésion et d&#39;atteindre une profondeur de 1 mm de déformation. </li></ol> 4. Blessures fermeture du site <ol><li> Utilisez applicateurs de coton-tige pour enlever tout effet de sang après, mais ne touchez pas la zone de blessure. </li><li> Placez la souris sur un bloc chaud pour maintenir la température du corps. </li><li> Une fois le saignement a cessé, suturer la plaie fermée. Mettre l&#39;animal dans la cage propre et lui permettre de se remettre de la chirurgie la nuit sur le pavé chaud. </li><li> Administrer buprénorphine 0,05-0,10 mg / kg SQ chaque 8-12 heures pendant 2 jours après la chirurgie. </li></ol>

<ol><li>Menon, D. K., Schwab, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Position+statement%3A+definition+of+traumatic+brain+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Arch+Phys+Med+Rehabil%22%5BJournal%5D)">Position statement: definition of traumatic brain injury.</a> Arch Phys Med Rehabil. 91 (11), 1637-1640 (2010).</li>
<li>Lighthall, J. W., Dixon, C. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Experimental+models+of+brain+injury%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurotrauma%22%5BJournal%5D)">Experimental models of brain injury.</a> J Neurotrauma. 6 (2), 83-97 (1989).</li>
<li>Dixon, C. E., Clfton, G. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+controlled+cortical+impact+model+of+traumatic+brain+injury+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Methods%22%5BJournal%5D)">A controlled cortical impact model of traumatic brain injury in the rat.</a> J Neurosci Methods. 39 (3), 253-262 (1991).</li>
<li>Scheff, S. W., Baldwin, S. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Morris+water+maze+deficits+in+rats+following+traumatic+brain+injury%3A+lateral+controlled+cortical+impact%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurotrauma%22%5BJournal%5D)">Morris water maze deficits in rats following traumatic brain injury: lateral controlled cortical impact.</a> J Neurotrauma. 14 (9), 615-627 (1997).</li>
<li>Smith, D. H., Soares, H. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+model+of+parasagittal+controlled+cortical+impact+in+the+mouse%3A+cognitive+and+histopathologic+effects%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurotrauma%22%5BJournal%5D)">A model of parasagittal controlled cortical impact in the mouse: cognitive and histopathologic effects.</a> J Neurotrauma. 12 (2), 169-178 (1995).</li>
<li>Hannay, H. J., Feldman, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Validation+of+a+controlled+cortical+impact+model+of+head+injury+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurotrauma%22%5BJournal%5D)">Validation of a controlled cortical impact model of head injury in mice.</a> J Neurotrauma. 16 (11), 1103-1114 (1999).</li>
<li>Natale, J. E., Ahmed, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+expression+profile+changes+are+commonly+modulated+across+models+and+species+after+traumatic+brain+injury%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurotrauma%22%5BJournal%5D)">Gene expression profile changes are commonly modulated across models and species after traumatic brain injury.</a> J Neurotrauma. 20 (10), 907-927 (2003).</li>
<li>Anderson, R. W., Brown, C. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impact+mechanics+and+axonal+injury+in+a+sheep+model%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurotrauma%22%5BJournal%5D)">Impact mechanics and axonal injury in a sheep model.</a> J Neurotrauma. 20 (10), 961-974 (2003).</li>
<li>Lighthall, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Controlled+cortical+impact%3A+a+new+experimental+brain+injury+model%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurotrauma%22%5BJournal%5D)">Controlled cortical impact: a new experimental brain injury model.</a> J Neurotrauma. 5 (1), 1-15 (1988).</li>
<li>Chen, S., Pickard, J. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Time+course+of+cellular+pathology+after+controlled+cortical+impact+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Neurol%22%5BJournal%5D)">Time course of cellular pathology after controlled cortical impact injury.</a> Exp Neurol. 182 (1), 87-102 (2003).</li>
<li>Long, J. B., Bentley, T. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Blast+overpressure+in+rats%3A+recreating+a+battlefield+injury+in+the+laboratory%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurotrauma%22%5BJournal%5D)">Blast overpressure in rats: recreating a battlefield injury in the laboratory.</a> J Neurotrauma. 26 (6), 827-840 (2009).</li>
<li>Clark, R. S., Schiding, J. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neutrophil+accumulation+after+traumatic+brain+injury+in+rats%3A+comparison+of+weight+drop+and+controlled+cortical+impact+models%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurotrauma%22%5BJournal%5D)">Neutrophil accumulation after traumatic brain injury in rats: comparison of weight drop and controlled cortical impact models.</a> J Neurotrauma. 11 (5), 499-506 (1994).</li>
<li>Werner, C., Engelhard, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pathophysiology+of+traumatic+brain+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Br+J+Anaesth%22%5BJournal%5D)">Pathophysiology of traumatic brain injury.</a> Br J Anaesth. 99 (1), 4-9 (2007).</li>
<li>Colicos, M. A., Dixon, C. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Delayed%2C+selective+neuronal+death+following+experimental+cortical+impact+injury+in+rats%3A+possible+role+in+memory+deficits%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Delayed, selective neuronal death following experimental cortical impact injury in rats: possible role in memory deficits.</a> Brain Res. 739 (1-2), 111-119 (1996).</li>
<li>Raghavendra Rao, V. L., Dogan, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Traumatic+brain+injury+leads+to+increased+expression+of+peripheral-type+benzodiazepine+receptors%2C+neuronal+death%2C+and+activation+of+astrocytes+and+microglia+in+rat+thalamus%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Neurol%22%5BJournal%5D)">Traumatic brain injury leads to increased expression of peripheral-type benzodiazepine receptors, neuronal death, and activation of astrocytes and microglia in rat thalamus.</a> Exp Neurol. 161 (1), 102-114 (2000).</li>
<li>Gao, X., Chen, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Moderate+traumatic+brain+injury+promotes+neural+precursor+proliferation+without+increasing+neurogenesis+in+the+adult+hippocampus%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Neurol%22%5BJournal%5D)">Moderate traumatic brain injury promotes neural precursor proliferation without increasing neurogenesis in the adult hippocampus.</a> Exp Neurol. 239, 38-48 (2013).</li>
</ol>

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Les étapes les plus importantes pour générer des succès TCC cohérentes en utilisant un système d&#39;impact magnétique électronique pour provoquer une CCI sont: 1) fixer de façon stable la tête de la souris dans le cadre stéréotaxique; 2) la génération de la même taille de la fenêtre de l&#39;os entre les souris et l&#39;enlèvement de l&#39;os sans endommager la dure-dessous pendant craniectomy; 3) positionner correctement la pointe de percussion dans le centre de la zone ouverte et établir le point zéro avant d&#39;imp...

Lésion cérébrale traumatique (TBI) est définie comme une altération de la fonction du cerveau, ou d&#39;autres preuves de la pathologie du cerveau, causée par une force extérieure 1. TCC restent un grave problème de santé à travers le monde, notamment aux États-Unis. Selon les Centers for Disease Control and Prevention, au moins 1,7 million de TCC se produisent chaque année aux Etats-Unis résultant de 30,5% de tous les décès liés à des blessures. En 2000, les coûts médicaux directs et les coûts indirects de la TCC ont totalisé un montant estimé à $ 76,5 milliards aux États-Unis seulement. Bien que les progrès technologiques et thérapeutiques depuis des décennies précédentes ont permis d&#39;améliorer la qualité et la durée de vie des personnes souffrant de TCC, aucune pharmaceutique efficace ou des traitements préventifs existent actuellement. En raison de la complexité et des effets de grande portée de TCC, y compris les lésions tissulaires, la mort cellulaire, et la dégénérescence de l&#39;axone, il n&#39;ya pas deux blessures sont identiques; donc, pas de modèle de TBI courant pour animaux reproduit fidèlementtous les aspects de TBI comme on le voit chez les humains. Cependant, les modèles animaux ne fournissent la capacité de produire des blessures presque identiques nécessaires pour enquêter sur divers effets de TBI avec l&#39;espoir de comprendre davantage les manifestations cliniques de la TCC. Le modèle commandé incidence cortical (CCI) utilise un système d&#39;impact pour fournir un impact physique à la dure-mère d&#39;un animal exposé. Il induit TCC allant de légère à sévère similaires à ceux rencontrés par les humains. Cette blessure a été caractérisée sur le furet 2 et a ensuite été adapté pour une utilisation chez le rat 3,4, souris 5-7, et les moutons 8. Depuis la première caractérisation, le site de la lésion a été placé à la fois au-dessus de la ligne médiane de 2,9 et le cortex latéral 10. CCI fournit une méthode facile et précise d&#39;enquêter sur les effets et les traitements potentiels pour les TCC. En plus du modèle de CCI, la percussion de fluide et la perte de poids sont des modèles de commonly utilisé pour produire les TCC. Cependant, ces modèles présentent des limitations, y compris les moins de contrôle sur les paramètres de blessures, produire des changements histopathalogical pas vu dans les TCC humaine, et une plus grande incidence de décès accidentel chez les souris 3,5,10. Le modèle de l&#39;onde de choc est également utilisé pour produire des TCC. Bien que le modèle de l&#39;onde de choc ne reproduit pas les changements observés histopathalogical suite d&#39;un choc mécanique, ce modèle ne produit précisément TCC rencontrées notamment par des militaires 11. Le modèle d&#39;impact cortical contrôlé est facile à contrôler grâce au contrôle précis de paramètres de déformation tels que le temps, la vitesse et la profondeur de l&#39;impact 5. Une telle précision permet de reproduire les blessures à peu près identiques à travers tout un groupe d&#39;animaux plus réalisables. Plus important encore, la CCI reproduit TCC avec des caractéristiques observées dans les TCC humaine 12. Cependant, il n&#39;existe pas de modèle animal unique qui est tout à fait réussi à reproduire le spectre complet de pathologique changes observés après TBI. D&#39;autres recherches sont nécessaires pour révéler pleinement les changements aigus et chroniques qui se produisent après TBI. Deux types de blessures surviennent après un TCC: blessures primaires et secondaires. La lésion primaire se produit au moment de l&#39;impact et n&#39;est pas sensible à des traitements thérapeutiques; Toutefois, les blessures secondaires qui persistent après la blessure initiale sont soumis à des traitements 13. Le modèle d&#39;impact corticale contrôlée produit la lésion primaire, permettant ainsi aux chercheurs d&#39;étudier les effets de la TCC et traitements thérapeutiques potentiels pour les effets potentiellement durables de blessures secondaires. Les domaines de recherche potentiel en utilisant le modèle de la CCI comprennent la mort neuronale, l&#39;oedème cérébral, la neurogenèse, effets vasculaires, les changements histopathalogical, et les déficits de mémoire et plus 3,13-16.

<table><tbody><tr><td>Povidone iodée 7,5 %</td> <td>Produit Purdue L.P.</td><td></td><td>Gommage chirurgical</td></tr><tr><td>Applicateurs à embout en coton</td><td>Henry Schein</td><td>100-6015</td><td>Enlever le sang et les débris</td></tr><tr><td>Ciseaux</td><td>Outils scientifiques fins</td><td>14084-08</td><td>Chirurgie</td></tr><tr><td>Forcept</td><td>Outils scientifiques fins</td><td>11293-00</td><td>Chirurgie</td></tr><tr><td>Hemostat</td><td>Outils scientifiques fins</td><td>13021-12</td><td>Chirurgie</td></tr><tr><td>Micro perceuse sans fil</td><td>rechargeable Stoelting</td><td>58610</td><td>Combiner avec des meules pour générer la fenêtre osseuse</td></tr><tr><td>Fraises pour Micro Drill</td><td>Outils de sciences fines</td><td>19007-05</td><td></td></tr><tr><td>Suture monofilament</td><td>Ethicon</td><td>G697</td><td>Suture</td></tr><tr><td>tert-amylique alcool</td><td>Sigma</td><td>152463-250ML</td><td>Fabrication de 2,5 % Avertin</td></tr><tr><td>2,2,2-tribromoéthanol</td><td>Sigma</td><td>T48402-25G</td><td>Fabrication de 2,5 % Avertin</td></tr></tbody></table>

contrôlée corticale modèle d&#39;impact pour traumatic brain injury

Controlled Cortical Impact Model for Traumatic Brain Injury

Chaque année, plus d’un million d’Américains souffrent d’un traumatisme crânien. Combiné à l’incidence des traumatismes crâniens dans le monde, les effets physiques, émotionnels, sociaux et économiques sont stupéfiants. Par conséquent, des recherches supplémentaires sur les effets des TCC et les traitements efficaces sont nécessaires. Le modèle d’impact cortical contrôlé (ICC) induit des lésions cérébrales traumatiques allant de légères à graves. Cette méthode utilise un impacteur rigide pour délivrer de l’énergie mécanique à une dure-mère intacte exposée à la suite d’une craniectomie. L’impact est effectué sous des paramètres précis à une vitesse définie pour atteindre une profondeur de déformation prédéterminée. Bien qu’il existe d’autres modèles de TCC, tels que la perte de poids et la percussion fluide, le CCI est plus précis, plus facile à contrôler et, surtout, produit des lésions cérébrales traumatiques similaires à celles observées chez les humains. Cependant, aucun modèle de TCC n’est actuellement capable de reproduire des changements pathologiques identiques à ceux observés chez les patients humains. Le modèle CCI permet d’étudier les effets à court et à long terme des TCC, tels que la mort neuronale, les déficits de mémoire et l’œdème cérébral, ainsi que les traitements thérapeutiques potentiels pour les TCC.

Le modèle d'impact corticale contrôlée produit TCC allant de sévérité légère à sévère. Après l'impact de la quantité de gonflement crânien, hémorragie, et la distorsion du crâne sur le site de l'impact, révéler la gravité des blessures résultant des paramètres de vitesse et de profondeur de déformation. TCC légers se traduisent par un gonflement crânien sur le site d'impact et un léger saignement en raison de la violation de la durée limitée. Un TCC modéré présente gonflement crânien et a augmenté de saignement en raiso...

Les traumatismes crâniens (TCC) restent un grave problème de santé. À l’aide du modèle de chirurgie à impact cortical contrôlé, des recherches sur les effets du TCC et les méthodes de traitement possibles peuvent être effectuées.

Contrôlée corticale modèle d&#39;impact pour Traumatic Brain Injury

Every year over a million Americans suffer a traumatic brain injury (TBI).  Combined with the incidence of TBIs worldwide, the physical, emotional, ...

L’objectif global de cette procédure est de produire des lésions cérébrales traumatiques à l’aide du modèle d’impact cortical contrôlé. Ceci est accompli en anesthésique et en préparant d’abord une souris pour la chirurgie. La deuxième étape de la procédure consiste à effectuer une craniectomie C.La troisième étape consiste à configurer le système d’impact avec les paramètres souhaités. La dernière étape consiste à impacter le cerveau exposé. En fin de compte, les résultats peuvent montrer la cavité de la lésion corticale grâce à l’imagerie du cerveau disséqué et à l’immunohistochimie.En général, les personnes qui ne connaissent pas cette méthode auront du mal à générer des lésions cérébrales cohérentes. La démonstration de la procédure sera faite par le Dr Shang Gao, associé de recherche dans notre laboratoire. Après l’anesthésie, une souris se rase la tête entre les oreilles, nettoie la peau exposée avec des gommages alternés à 10 % d’iode et 70 % d’éthanol.Ensuite, assurez-vous de lubrifier les yeux pour qu’ils ne se dessèchent pas. Fixez ensuite la souris dans le cadre stéréotaxique, en utilisant les barres d’oreille et la plaque de morsure. La tête doit être très stable.Commencez la craniectomie par une incision longitudinale au milieu de la tête à l’aide de ciseaux. Ensuite, utilisez un hémostat pour maintenir la peau sur le côté avec un applicateur à embout en coton Essuyez, nettoyez et exposez l’os du crâne. Laissez-le sécher une minute avant de continuer.Une fois sec, utilisez une pince pour appliquer une pression sur le crâne. Assurez-vous que la préparation reste immobile. Identifiez les points de repère lambda et breg ma.Ensuite, en leur centre, dessinez un cercle d’un diamètre de quatre millimètres qui se trouve à un demi-millimètre de la ligne médiane. Ensuite, percez le long du cercle marqué pour rendre l’os facile à casser, mais ne pénétrez pas jusqu’à la dure-mère. Enlevez la poussière au besoin.Ensuite, utilisez des pinces pour briser le cercle de l’os, exposant la dure-mère. La craniectomie C est l’étape la plus critique. La production de paramètres cohérents de la fenêtre osseuse permettra d’obtenir une gravité constante des blessures.Assurez-vous que la taille de foret, la vitesse et la force appropriées sont bien utilisées. Le système d’impact utilise un actionneur pour effectuer l’impact dans le crâne et a certains paramètres qui doivent être réglés. Réglez la vitesse de l’actionneur sur trois mètres par seconde.Ensuite, fixez l’actionneur au cadre stéréotaxique. À l’aide des micromanipulateurs, positionnez l’actionneur de trois millimètres de large sur la zone ouverte du crâne. Ajustez ensuite l’extrémité de l’actionneur de manière à ce qu’elle soit parallèle à la surface de l’impact.Pour régler le point zéro, déployez l’actionneur et abaissez-le jusqu’à ce que la pointe touche juste l’endroit de l’impact. Réglez le canal Z correspondant sur le cadre sur zéro. Rétractez maintenant l’embout d’un millimètre, dans ce cas.Réglez ensuite la profondeur de déformation pour la lésion cérébrale traumatique appropriée, qui déplacera l’actionneur. Appuyez ensuite sur le bouton d’impact pour faire la blessure après l’impact. Nettoyez le sang avec un applicateur à embout de coton, mais ne touchez pas la blessure.Déplacez la souris sur un coussin chaud et surveillez la blessure Lorsque le saignement a cessé, suturez la plaie, puis remettez la souris dans une cage propre sur un coussin chaud et laissez-la y récupérer pendant la nuit. Après l’impact, l’ampleur de l’enflure, du saignement et de la distorsion crânienne révèle la véritable gravité de la blessure. Une violation limitée à complète de la dure-mère fera une grande différence dans la quantité de saignement et fera un traumatisme crânien léger à modéré.La fixation du tissu et sa visualisation au microscope permettent de distinguer facilement un traumatisme crânien modéré et sévère. Ici, nis. La coloration L est utilisée pour comparer un contrôle à une souris qui a reçu une cavité TBIA modérée qui s’étend profondément dans le cortex.Ce modèle peut être utilisé pour enquêter sur de telles diffamations ainsi que sur la mort neuronale et d’autres changements histopathologiques causés par des lésions cérébrales Une fois maîtrisée, cette technique peut être complétée en 15 minutes si elle est exécutée correctement.

controlled-cortical-impact-model-for-traumatic-brain-injury

Research

Recherche

JoVE Journal

Medicine

Médecine

Cette vidéo montre la procédure d’induction d’un traumatisme crânien (TCC) dans un modèle murin. Une souris anesthésiée avec le crâne exposé est prélevée pour créer une ouverture dans le crâne, puis une lésion corticale contrôlée est induite à l’aide d’un dispositif d’impact. La blessure endommage le tissu cérébral, entraînant une altération de la fonction cognitive et de la coordination motrice.

Génération d’un modèle murin de lésion cérébrale traumatique à l’aide d’un dispositif d’impact

La commotion cérébrale est le type de traumatisme crânien le plus courant. Par conséquent, un modèle animal de commotion cérébrale répétitive, qui reproduit les caractéristiques importantes d’une blessure chez les patients, peut fournir un moyen d’étudier les commotions cérébrales de manière rigoureuse, contrôlée et efficace.

Une blessure à la tête modèle Répétitive commotionnant chez la souris

Ce protocole démontre des méthodologies pour un modèle de souris des dommages traumatiques de cerveau de crâne ouvert et de la transplantation des cellules pluripotentes pluripotentes de cellules souches induites cultivées dans le site de blessure. Les essais comportementaux et histologiques des résultats de ces procédures sont également décrits en bref.

Modèle d'impact cortical contrôlé des dommages de cerveau de souris avec la transplantation thérapeutique des cellules neurales pluripotentes induites par l'homme de cellules souches

Ici nous décrivons un protocole pour l'induction des dommages de cerveau traumatiques murins par l'intermédiaire d'un impact cortical contrôlé à tête ouverte.

Modèle murine de l'impact cortical contrôlé pour l'induction des dommages traumatiques de cerveau

L’hémorragie intraparenchymateuse et la neuroinflammation accompagnées d’une contusion cérébrale peuvent déclencher de graves lésions cérébrales secondaires. Ce protocole détaille un modèle d’impact cortical contrôlé (ICC) chez la souris, permettant aux chercheurs d’étudier l’hémorragie, la contusion et les réponses immunitaires post-traumatiques, et d’explorer des thérapies potentielles.

Un modèle préclinique d’impact cortical contrôlé pour l’hémorragie traumatique, la contusion et la neuroinflammation

Le protocole décrit une lésion cérébrale traumatique légère dans un modèle murin. En particulier, un protocole étape par étape pour induire un léger traumatisme crânien fermé de la ligne médiane et la caractérisation du modèle animal est entièrement expliqué.

Modèle à tête fermée contrôlé électromagnétique de lésion cérébrale traumatique légère chez la souris

Ici, il est démontré comment un modèle de traumatisme crânien fermé éveillé peut être utilisé pour examiner les effets des lésions cérébrales traumatiques légères répétées (r-mTBI) sur la plasticité synaptique dans l’hippocampe. Le modèle reproduit des caractéristiques importantes du r-mTBI chez les patients et est utilisé conjointement avec l’électrophysiologie in vitro .

Évaluation des changements dans la plasticité synaptique à l’aide d’un modèle éveillé de traumatisme crânien traumatique léger

Ce protocole présente un modèle murin modifié de lésions cérébrales traumatiques légères répétitives (TCLr) induites par une méthode de traumatisme crânien fermé (CHI). L’approche comprend une fenêtre crânienne amincie et une percussion fluide pour réduire l’inflammation généralement causée par l’exposition aux méninges, ainsi qu’une reproductibilité et une précision améliorées dans la modélisation des TCL chez les rongeurs.

Modèle murin modifié de lésion cérébrale traumatique légère répétitive incorporant une fenêtre de crâne amincie et une percussion fluide

Ici, nous présentons un protocole pour établir un modèle animal de traumatisme crânien fermé reproduisant le résultat de la neuroimage d’une lésion cérébrale traumatique légère non compliquée avec la structure cérébrale préservée dans la phase aiguë et l’atrophie cérébrale à long terme. L’imagerie par résonance magnétique longitudinale est la principale méthode utilisée pour la preuve.

Développement d’un modèle simple de traumatisme craniocérébral léger modifié par la méthode de chute de poids et mis en évidence par imagerie par résonance magnétique

Un modèle murin de blessure ventilateur pulmonaire induite est un outil important pour étudier une lésion pulmonaire...

La ventilation à pression contrôlée pour induire lésion pulmonaire aiguë chez la souris

Découvrez le modèle d'impact cortical contrôlé pour étudier les lésions cérébrales traumatiques chez la souris. Cette méthode permet d'induire des blessures reproductibles et d'analyser la cavité lésionnelle par imagerie et immunohistochimie.

Contrôlée corticale modèle d'impact pour Traumatic Brain Injury

Explorer plus de vidéos