Name: Non terminale Tecniche di prelievo di sangue in Guinea Pigs (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-10-11T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 58 s
Description: Impara quattro tecniche di prelievo ematico non terminale in cavie, sia in stato di veglia che anestesizzate. Questi metodi illustrano il campionamento dalla vena laterale e tarsale, essenziali per la ricerca etica.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Riconosciamo il sapiente aiuto di Annie B. Kristensen, Elisabeth V. Andersen, Belinda B. Bringtoft ed i custodi degli animali presso il Dipartimento di Medicina Sperimentale, Frederiksberg Campus, Facoltà di Scienze della Salute e Scienze Mediche, Università di Copenhagen, Danimarca. Jacob Lønholdt viene ringraziato per l&#39;eccellente assistenza tecnica per le riprese delle procedure. Questo studio è stato sostenuto in parte dal Centro LIFEPHARM di Farmacologia in vivo e Università di Copenhagen.

Le procedure illustrate sono state eseguite secondo protocolli approvati dal danese Animal Sperimentazione Ispettorato sotto il Ministero dell&#39;alimentazione, dell&#39;agricoltura e della pesca. 1 Prelievo di sangue dal laterale safena o tarsale Vena <ol><li> Eseguire questa procedura senza anestesia e con l&#39;aiuto di un investigatore, una gestione della cavia, e una raccolta del campione. </li><li> Radere la regione tarsale della zampa posteriore con un rasoio elettrico fino a quando le vene sono visibili. Assicurarsi che la zona è abbastanza grande da evitare pelliccia interferire con il sito di puntura. </li><li> Posizionare la zampa posteriore in un bagno di acqua tiepida e strofinare delicatamente la gamba, rendendo le vene più dilatati ed evidenti. </li><li> Pulire la gamba con un asciugamano pulito e disinfettare il sito di puntura con una garza o un batuffolo di cotone imbevuto di alcool al 70%. </li><li> Trattenere la cavia ed estendere la gamba posteriore verso il basso, mentre applicando una leggera pressione immediatamente al di sopra del ginocchio to fornire stasi. </li><li> Pungere la vena con un ago 21 G o bisturi. Raccogliere esempio sangue., Utilizzando un tubo di raccolta o capillare. Manipolare delicatamente la gamba per aiutare il flusso di sangue. </li><li> Rilasciare stasi, una volta ottenuto il campione. Applicare un pezzo di garza o cotone lana con una leggera pressione sul sito di puntura finché il sanguinamento si è fermato. </li><li> Ritorna l&#39;animale nella sua gabbia e monitor per 5-10 minuti al fine di garantire l&#39;emostasi. </li></ol> 2 Prelievo di sangue dalla vena dell&#39;orecchio <ol><li> Eseguire questa procedura senza anestesia da solo o preferibilmente con l&#39;aiuto di un collega. </li><li> Disinfettare la superficie dorsale del padiglione auricolare con una garza o un batuffolo di cotone imbevuto di alcool al 70%. </li><li> Applicare una leggera pressione alla base dell&#39;orecchio per fornire stasi. </li><li> Pungere la vena con un ago 21 G o bisturi, e raccogliere il sangue. </li><li> Rilasciare stasi, una volta ottenuto il campione, Applicare un pezzo di garza o cotone idrofilo con gepressione ntle al sito di puntura finché il sanguinamento si è fermato. </li><li> Ritorna l&#39;animale nella sua gabbia e monitor per 5-10 minuti al fine di garantire l&#39;emostasi. </li></ol> 3 Prelievo di sangue dalla giugulare Vena <ol><li> Effettuare questa procedura utilizzando l&#39;aiuto di un investigatore supplementare; una gestione della cavia e una raccolta del campione. </li><li> Anestetizzare la cavia con un anestetico adatto per tutta la durata di questa procedura. Una miscela di tiletamina (0,93 mg / kg), zolazepam (0,93 mg / kg), xilazina (1.49 mg / kg) e butorfanolo (0,06 mg / kg) può essere utilizzato. </li><li> Posizionare la cavia anestetizzata sulla sua schiena e ritrarre delicatamente le zampe anteriori caudalmente. </li><li> Shave e disinfettare (ad es., Con il 70% di alcol), la parte ventrale del collo. </li><li> Rivestire la siringa sia con eparina o EDTA prima del campionamento, al fine di ridurre il rischio di coagulazione. </li><li> Palpare la clavicola e inserire un G 25 (o 23 G) ago montato su una siringa da 1 ml approximately 1 centimetro lateralmente alla linea mediana a livello dell&#39;articolazione della spalla. Tenere la siringa in una leggera inclinazione verso l&#39;alto e mediale, mentre applicando una leggera pressione negativa. Evitare di danneggiare le strutture sottostanti come la vena giugulare si trova abbastanza superficiale. Inclinare il collo della cavia leggermente all&#39;indietro per fornire maggiore stasi della vena. </li><li> Rilasciare le zampe anteriori quando si ottiene il campione di sangue, e alleviare stasi prima che l&#39;ago viene retratto. Usare un pezzo secco di garza o di cotone per applicare una leggera pressione sul sito di puntura. </li><li> Ritorna l&#39;animale in una gabbia di recupero e monitorare al fine di garantire l&#39;emostasi e il recupero dall&#39;anestesia. </li></ol>

<ol><li>DeOgburn, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+increased+dietary+cholesterol+with+carbohydrate+restriction+on+hepatic+lipid+metabolism+in+Guinea+pigs%5BTitle%5D)+AND+%22Comp.Med%22%5BJournal%5D)">Effects of increased dietary cholesterol with carbohydrate restriction on hepatic lipid metabolism in Guinea pigs.</a> Comp.Med. 62 (2), 109-115 (2012).</li>
<li>Fernandez, M., Volek, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Guinea+pigs+a+suitable+animal+model+to+study+lipoprotein+metabolism%2C+atherosclerosis+and+inflammation%5BTitle%5D)+AND+%22Nutr+Metab+%28Lond%29%22%5BJournal%5D)">Guinea pigs a suitable animal model to study lipoprotein metabolism, atherosclerosis and inflammation.</a> Nutr Metab (Lond). 3 (17), (2006).</li>
<li>Frikke-Schmidt, H., Tveden-Nyborg, P., Birck, M. M., Lykkesfeldt, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+dietary+fat+and+cholesterol+exacerbates+chronic+vitamin+C+deficiency+in+guinea+pigs%5BTitle%5D)+AND+%22Br+J+Nutr%22%5BJournal%5D)">High dietary fat and cholesterol exacerbates chronic vitamin C deficiency in guinea pigs.</a> Br J Nutr. 105 (1), 54-61 (2011).</li>
<li>Hem, A., Smith, A. J., Solberg, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Saphenous+vein+puncture+for+blood+sampling+of+the+mouse%2C+rat%2C+hamster%2C+gerbil%2C+guinea+pig%2C+ferret+and+mink%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Anim%22%5BJournal%5D)">Saphenous vein puncture for blood sampling of the mouse, rat, hamster, gerbil, guinea pig, ferret and mink.</a> Lab Anim. 32 (4), 364-368 (1998).</li>
<li>Parasuraman, S., Raveendran, R., Kesavan, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Blood+sample+collection+in+small+laboratory+animals%5BTitle%5D)+AND+%22J+Pharmacol+Pharmacother%22%5BJournal%5D)">Blood sample collection in small laboratory animals.</a> J Pharmacol Pharmacother. 1 (2), 87-93 (2010).</li>
<li>Guillen, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((FELASA+guidelines+and+recommendations%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am+Assoc+Lab+Anim+Sci%22%5BJournal%5D)">FELASA guidelines and recommendations.</a> J Am Assoc Lab Anim Sci. 51 (3), 311-321 (2012).</li>
<li>Ye, P., Cheah, I. K., Halliwell, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+fat+diets+and+pathology+in+the+guinea+pig+Atherosclerosis+or+liver+damage%5BTitle%5D)+AND+%22Biochim+Biophys+Acta%22%5BJournal%5D)">High fat diets and pathology in the guinea pig Atherosclerosis or liver damage.</a> Biochim Biophys Acta. 1832 (2), 355-364 (2013).</li>
<li>Tveden-Nyborg, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Maternal+vitamin+C+deficiency+during+pregnancy+persistently+impairs+hippocampal+neurogenesis+in+offspring+of+guinea+pigs%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Maternal vitamin C deficiency during pregnancy persistently impairs hippocampal neurogenesis in offspring of guinea pigs.</a> PLoS One. 7 (10), 12-18391 (2012).</li>
<li>Schjoldager, J. G., Tveden-Nyborg, P., Lykkesfeldt, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prolonged+maternal+vitamin+C+deficiency+overrides+preferential+fetal+ascorbate+transport+but+does+not+influence+perinatal+survival+in+guinea+pigs%5BTitle%5D)+AND+%22Br+J+Nutr%22%5BJournal%5D)">Prolonged maternal vitamin C deficiency overrides preferential fetal ascorbate transport but does not influence perinatal survival in guinea pigs.</a> Br J Nutr. 110 (9), 1573-1579 (2013).</li>
<li>Greulich, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Secretory+products+of+guinea+pig+epicardial+fat+induce+insulin+resistance+and+impair+primary+adult+rat+cardiomyocyte+function%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Mol+Med%22%5BJournal%5D)">Secretory products of guinea pig epicardial fat induce insulin resistance and impair primary adult rat cardiomyocyte function.</a> J Cell Mol Med. 15 (11), 2399-2410 (2011).</li>
<li>Swifka, J., Weiss, J., Addicks, K., Eckel, J., Rosen, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epicardial+fat+from+guinea+pig+a+model+to+study+the+paracrine+network+of+interactions+between+epicardial+fat+and+myocardium%5BTitle%5D)+AND+%22Cardiovasc+Drugs+Ther%22%5BJournal%5D)">Epicardial fat from guinea pig a model to study the paracrine network of interactions between epicardial fat and myocardium.</a> Cardiovasc Drugs Ther. 22 (2), 107-114 (2008).</li>
<li>Pilny, A. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clinical+hematology+of+rodent+species%5BTitle%5D)+AND+%22Vet.Clin+North+Am+Exot+Anim+Pract%22%5BJournal%5D)">Clinical hematology of rodent species.</a> Vet.Clin North Am Exot Anim Pract. 11 (3), 523-vii (2008).</li>
<li>Franco, N. H., Olsson, I. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Scientists+and+the+3Rs%3A+attitudes+to+animal+use+in+biomedical+research+and+the+effect+of+mandatory+training+in+laboratory+animal+science%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Anim%22%5BJournal%5D)">Scientists and the 3Rs: attitudes to animal use in biomedical research and the effect of mandatory training in laboratory animal science.</a> Lab Anim. 48 (1), 50-60 (2014).</li>
<li>Van, L. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((eAssessing+the+application+of+the+3Rs+a+survey+among+animal+welfare+officers+in+The+Netherlands%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Anim%22%5BJournal%5D)">eAssessing the application of the 3Rs a survey among animal welfare officers in The Netherlands.</a> Lab Anim. 47 (3), 210-219 (2013).</li>
<li>Sloan, R. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+doses+of+ketamine-xylazine+anesthesia+reduce+cardiac+ischemia-reperfusion+injury+in+guinea+pigs%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am+Assoc+Lab+Anim+Sci%22%5BJournal%5D)">High doses of ketamine-xylazine anesthesia reduce cardiac ischemia-reperfusion injury in guinea pigs.</a> J Am Assoc Lab Anim Sci. 50 (3), 349-354 (2011).</li>
<li>Jacobson, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+anaesthetic+regimen+for+surgical+procedures+in+guinea+pigs%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Anim%22%5BJournal%5D)">A novel anaesthetic regimen for surgical procedures in guinea pigs.</a> Lab Anim. 35 (3), 271-276 (2001).</li>
<li>Saha, J. K., Xia, J., Grondin, J. M., Engle, S. K., Jakubowski, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acute+hyperglycemia+induced+by+ketamine+xylazine+anesthesia+in+rats+mechanisms+and+implications+for+preclinical+models%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Biol+Med%28Maywood%29%22%5BJournal%5D)">Acute hyperglycemia induced by ketamine xylazine anesthesia in rats mechanisms and implications for preclinical models.</a> Exp Biol Med(Maywood). 230 (10), 777-784 (2005).</li>
</ol>

Gli autori non hanno nulla da rivelare. Tutte le procedure sono state approvate dalla legge Sperimentazione Animale della Danimarca, che è in accordo con il Consiglio d&#39;Europa Convenzione ETS 123.

Rispetto ai topi e ratti, cavie sono timorosi per natura e devono essere affrontati con calma e gestite correttamente, al fine di ridurre lo stress. Da un punto di vista del benessere degli animali, agendo con cura è naturalmente una priorità; tuttavia, questo sarà anche ridurre il rischio di effetti di ansia associati sui dati raccolti ad es., aumento dei livelli ematici di corticosteroidi e di glucosio 12. Allo stesso modo, la gestione quotidiana sarà abituare gli animali a procedure normali e può ...

La cavia è un modello valido e convalidato animale sperimentale a causa di un numero di somiglianze biologiche per l&#39;uomo, come l&#39;esigenza di un approvvigionamento alimentare di vitamina C, lipoproteine ​​plasmatiche paragonabili enzimi che metabolizzano e profili delle lipoproteine, così come similitudini in comune con placentazione umana e sviluppo prenatale 1-3,7,8. Questo rende la cavia un modello attraente e adatto per studiare gli effetti delle malattie dieta associata come la malattia non alcolica steatosi epatica, malattie cardiovascolari e gli effetti putativi di carenza di vitamina C, ma anche l&#39;effetto di esempio., Intervento dietetico materno sulla via di sviluppo prole. Ripetuto prelievo di sangue è spesso richiesto sia lungo e breve termine in studi in vivo. A causa delle differenze anatomiche specie-specifici è necessaria la modulazione della tecnica di campionamento al fine di ottenere campioni di sangue di cavie rispetto ad altri modelli di roditori <sup&gt; 4,5. Questo include la variazione nel corso di vene e arterie, e anche che le cavie non hanno una coda, quindi hanno i requisiti e le diverse opzioni sia per il campionamento e la manipolazione. Campionamento dalla safena o vena tarso, induce il minimo disagio e lo stress negli animali e non richiede anestesia 3,9. Questa tecnica permette ripetuta campioni di piccole quantità di sangue (100-400 ml), ad es., Per determinare i marcatori biochimici nel plasma. Se un campione ancora più piccolo è sufficiente (50-100 ml), questo può facilmente essere ottenuto pungere la vena dell&#39;orecchio. Questa tecnica può anche essere effettuata in animali coscienti ed è utile ad esempio quando si misura la glicemia 10,11. Campionamento dalla vena giugulare consente la raccolta di grandi quantità di sangue (1-2 ml), ma richiede l&#39;anestesia. Qui, vi presentiamo quattro diverse tecniche di campionamento del sangue sia per cavie coscienti o anestetizzati. Il procedures sono tutte le procedure non-terminali a condizione che i volumi di campione e il numero di campioni non superino le linee guida per la raccolta del sangue negli animali da laboratorio 6. E &#39;nell&#39;interesse della buona scienza, nonché di benessere degli animali che lo stress dovrebbe essere ridotto al minimo. Di conseguenza, solo ben addestrato e personale competente deve eseguire le procedure sugli animali.

<table><tbody><tr><td>Rasoio elettrico</td><td>Wella (Contura), Danimarca</td><td>273207</td><td>È possibile utilizzare un prodotto alternativo. Fornitori multipli</td></tr><tr><td>Siringhe&nbsp;</td><td>B.Braun-Omnifix-F, Germania</td><td>9161406V</td><td>È possibile utilizzare un prodotto alternativo. </td></tr><tr><td>Aghi</td><td>BD Microlance, Spagna</td><td>301156</td><td>È possibile utilizzare un prodotto alternativo. Fornitori multipli</td></tr><tr><td>Provetta di raccolta per microvette&nbsp;</td><td>Sarstedt, D-51588N&uuml; mbrecht, Germania</td><td>201.288.100</td><td>È possibile utilizzare un prodotto alternativo. Più fornitori</td></tr><tr><td>Analizzatore Accu-Check</td><td>Roche A/S Diagnostics, Danimarca</td><td></td><td>È possibile utilizzare un prodotto alternativo. Più fornitori</td></tr><tr><td>Eparina 5000 IE/ml</td><td>LEO Pharma, Danimarca</td><td></td><td>Può essere utilizzato un prodotto alternativo. Più fornitori</td></tr><tr><td>Anestesia</td><td>Zoletil 50, Chemvet, Danimarca</td><td></td><td>È possibile utilizzare un prodotto alternativo. Più fornitori</td></tr><tr><td>Anestesia</td><td>Narcoxyl vet 20 mg/ml, Intervet, Danimarca</td><td></td><td>Può essere utilizzato un prodotto alternativo. Più fornitori</td></tr><tr><td>Anestesia</td><td>Torbugesic vet 10 mg/ml, Scanvet, Danimarca</td><td></td><td>Può essere utilizzato un prodotto alternativo. </td></tr><tr>Unguento <td></td><td></td><td>neutro per gli occhi</td><td>Può essere utilizzato un prodotto alternativo. Fornitori multipli</td></tr><tr><td>Garza o batuffolo di cotone&nbsp;</td><td></td><td></td><td>È possibile utilizzare un prodotto alternativo. Più fornitori</td></tr><tr><td>Disinfettante (70% di alcol)</td><td></td><td></td><td>È possibile utilizzare un prodotto alternativo. Fornitori multipli</td></tr></tbody></table>

non terminale tecniche di prelievo di sangue in guinea pigs

Non-Terminal Blood Sampling Techniques in Guinea Pigs

Le cavie possiedono diverse analogie biologiche per l&#39;uomo e sono convalidati modelli animali sperimentali 1-3. Tuttavia, l&#39;uso di cavie rappresenta attualmente una zona relativamente ristretta dei dati di ricerca e descrittivi sulla metodologia specifica è corrispondentemente scarsa. Le caratteristiche anatomiche di cavie sono leggermente diversi da altri modelli di roditori, quindi la modulazione di tecniche di campionamento per ospitare per specie-specifiche differenze, ad es., Rispetto ai topi e ratti, sono necessari per ottenere campioni di qualità sufficiente e di alta. Per quanto sia lungo e breve termine in studi in vivo spesso richiedono ripetuto sangue campionamento la scelta della tecnica deve essere ben considerato, al fine di ridurre lo stress e il disagio negli animali, ma anche per garantire la sopravvivenza, nonché la conformità con i requisiti di dimensione del campione e accessibilità. Campioni di sangue venoso possono essere ottenuti ad un certo numero di siti in cavie ad es., La safena e giugularevene, ogni tecnica contenente sia vantaggi che svantaggi 4,5. Qui, vi presentiamo quattro diverse tecniche di campionamento del sangue sia per cavie coscienti o anestetizzati. Le procedure sono tutte le procedure non-terminali a condizione che i volumi di campione e il numero di campioni non superino le linee guida per la raccolta del sangue negli animali da laboratorio 6. Tutti i metodi descritti sono stati accuratamente testati e applicati per ripetute in vivo prelievo di sangue in studi all&#39;interno della nostra struttura di ricerca.

Quattro diversi approcci alla non-terminali vivo tecniche di campionamento del sangue in entrambi in cavie coscienti o anestetizzati sono stati presentati. Figura 1 illustra il corso della safena laterale e vena tarsale nella cavia e possibili siti di puntura. Vene dell'orecchio visibili sulla superficie dorsale di un orecchio cavia sono illustrati nella Figura 2 Queste vene possono essere usate per il prelievo di sangue quando è richiesto solo un volume molto piccolo....

Anche se un modello noto, la cavia rappresenta attualmente una nicchia in scienze animali sperimentali e dati limitati sono disponibili sul esecuzione della maggior parte delle procedure. Qui vi presentiamo quattro diversi approcci alla non-terminale in tecniche di campionamento del sangue in vivo su cavie sia coscienti o anestetizzati.

Non terminale Tecniche di prelievo di sangue in Guinea Pigs

Guinea pigs possess several biological similarities to humans and are validated experimental animal models1-3. However, the use of guinea pigs currently ...

L'obiettivo generale di questo video è quello di illustrare la metodologia di quattro diverse tecniche di prelievo del sangue nei porcellini d'India. Le procedure mostrate non sono terminali a meno che i volumi o il numero di campioni non superino le linee guida per la raccolta del sangue. Negli animali da laboratorio, qui vediamo la causa della vena venosa laterale e della vena tarsale.La vena ecografica corre dorsalmente e lateralmente sopra l'articolazione tarsale. Da ciascuna zampa posteriore devono essere prelevati un massimo di tre campioni e si possono raccogliere da 100 a 400 microlitri di sangue per campione. L'attrezzatura necessaria include un rasoio elettrico, un bagno con acqua calda, un asciugamano pulito, un batuffolo di cotone, un disinfettante come alcol al 70%, aghi sterili, 21 gorge o tubi di raccolta più piccoli.E se l'obiettivo è misurare la glicemia e il campionatore AccuCheck, il prelievo di sangue dal cefeo o dalla vena tarsale può essere effettuato in cavie senza anestesia. Il porcellino d'India viene trattenuto da un assistente addestrato e dovrebbe essere utilizzata una tecnica settica. I peli che ricoprono la zona tarsale vengono rasati con un rasoio ele

non-terminal-blood-sampling-techniques-in-guinea-pigs

Research

Ricerca

JoVE Journal

Biology

Biologia

I prelievi di sangue sono necessari in un gran numero di studi, ad esempio per studiare il profilo farmacocinetico di un composto. Qui, dimostriamo come disegnare sangue topi utilizzando due tecniche: prelievo di sangue dalla vena safena o da puntura cardiaca.

Disegno di sangue di ratti attraverso la vena safena e da puntura cardiaca

I campioni di sangue sono utili per valutare i biomarcatori degli stati fisiologici o della malattia in vivo. Qui descriviamo la metodologia per campionare il sangue dalla vena laterale della coda nel ratto. Questo metodo fornisce campioni rapidi con dolore e invasività minimi.

Prelievo di sangue dalla vena della coda laterale del Topo

Qui, presentiamo un protocollo per raccogliere campioni di sangue dalla vena succlavia del ratto.

Puntura della vena succlavia come metodo alternativo di raccolta del campione di sangue in ratti

Lo sviluppo del test ELISpot interferone per la cavia PBMCs permette la caratterizzazione delle risposte delle cellule T in questo modello altamente rilevante per lo studio delle malattie infettive. Abbiamo applicato il test per misurare le risposte delle cellule T associate intradermica consegna di vaccini a DNA.

Ottimizzazione del interferone-gamma ELISpot analisi di risposte a cellula T misura nel modello cavia dopo la vaccinazione

Questo articolo dimostra un approccio extradurale per annientare il sacco endolofico della cavia e ferire il condotto endolintico con un plettro fine al fine di indurre idrami sperimentali endomphatic.

Un approccio chirurgico rivisto per indurre idramici endolymphatic in Guinea Pig

La velocità di filtrazione glomerulare (GFR) è il marker ideale per valutare la funzionalità renale. Tuttavia, il metodo di misurazione standard che utilizza l'iniezione di inulina con analisi seriale del sangue e delle urine non è pratico. Questo articolo delinea un metodo pratico per misurare la GFR transdermica nei suinetti.

Misurazione transdermica della velocità di filtrazione glomerulare nei suinetti ventilati meccanicamente

Qui, presentiamo un protocollo per offrire alternative di raccolta del sangue rapide, facili e affidabili per il modello di ratto. Descriviamo tre diversi metodi di prelievo del sangue in base al contesto: puntura della vena della coda in anestesia o su un animale cosciente e puntura della vena del pene dorsale in anestesia.

Puntura modificata della vena della coda e della vena del pene per il prelievo di sangue nel modello di ratto

Questo video documenta i metodi per la raccolta di campioni di acqua marina costiera e il loro trattamento per varie applicazioni a valle compresa la concentrazione della biomassa, purificazione degli acidi nucleici, l'abbondanza delle cellule, nutriente e analisi gas tracciante.

Campionamento di acqua di mare e di raccolta

Questo protocollo illustra come voltaggio-sensibile coloranti attivare la registrazione ottica di attività elettrica da intatte le reti neurali, come i plessi della cavia sistema nervoso enterico, con una risoluzione regolabile che va dal singolo cellule gangliari a più circuiti.

La registrazione ottica di attività elettrica in Guinea-maiale Reti enterici utilizzando tensione sensibile Coloranti

Tecniche di Imaging Ca 2 + Segnalazione di sperma umano

Impara quattro tecniche di prelievo ematico non terminale in cavie, sia in stato di veglia che anestesizzate. Questi metodi illustrano il campionamento dalla vena laterale e tarsale, essenziali per la ricerca etica.

Non terminale Tecniche di prelievo di sangue in Guinea Pigs

Esplora altri video