Name: Approfittando di ridotta interazione Droplet-superficie per ottimizzare il trasporto di Bioanalytes in microfluidica digitale (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-11-10T15:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 57 s
Description: Scopri come fabbricare dispositivi di dewetting a campo per trasportare gocce con bioanaliti senza additivi. Questo metodo utilizza substrati conduttivi rivestiti di fuliggine e polimeri fluorurati liquidi.

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Ringraziamo la Fondazione Lindback per il sostegno finanziario, e il dottor Alexander Sidorenko e Elza Chu per le discussioni fruttuose e assistenza tecnica, e il professor Robert Smith per l&#39;assistenza con la C. saggi elegans.

NOTA: Nelle procedure descritte di seguito, le linee guida di sicurezza di laboratorio devono essere sempre seguite. Di particolare importanza è la sicurezza quando si tratta di alta tensione (&gt; 500 V) e prodotti chimici di trattamento. 1. Rivestimento di un substrato conduttivo con la candela fuliggine <ol><li> Taglio di metallo in rame in rettangoli (75 x 43 mm, spessore di 0,5 mm). Pulire ogni substrato di rame per immersione in mordenzante di rame per circa 30 secondi, lavare con acqua corrente per circa 20 secondi, e asciugare con carta. NOTA: Se si utilizza il metodo 1 di seguito, cambiare le dimensioni di 75 x 25 mm per adattarsi alla macchina. </li><li> Sweep una candela di paraffina candela sotto il substrato di rame per 30-45 secondi, per ottenere un rivestimento di fuliggine approssimativamente uniforme (spessore di circa 40 micron). Mantenere il substrato ~ 1 cm all&#39;interno della fiamma. Non toccare la superficie di fuliggine fragile. </li></ol> 2. Proteggere lo strato di fuliggine con rivestimento NOTA: Lo strato di fuliggine è molto fragileE deve essere ricoperta per protezione. Due alternative semplici (metodi 1 e 2 di seguito) sono suggeriti qui, ma i protocolli più robusti sono attualmente in fase di sviluppo. <ol><li> Metodo 1 <ol><li> Caricare il campione nell&#39;evaporatore metallo o sistema di sputtering. Seguendo le procedure di funzionamento del sistema, evacuare la camera, e inizia la deposizione controllata di oro sullo strato di fuliggine (150-200 nm). Lasciare raffreddare l&#39;apparecchio a temperatura ambiente. </li><li> Dip-coat substrato metallizzato in una soluzione di 1-dodecantiolo (1% v / v, in etanolo al 95%, ACS / USP grado), per 10 min all&#39;interno di una cappa chimica. Quindi, tenendo il dispositivo ad un angolo vicino a 60 °, lavare delicatamente la superficie con diverse gocce di solo etanolo. Lasciate che i dispositivi a secco, durante la notte. </li></ol></li><li> Metodo 2 <ol><li> In una cappa chimica, subito dopo il rivestimento del substrato di fuliggine e mentre il substrato è ancora calda della fiamma candela, versare alcune gocce di liquido fluorurato su un lato dellasubstrato, e inclinare il substrato ad un angolo di circa 90 °. Deposita più gocce, e far rotolare su tutta la superficie di fuliggine. NOTA: Quando la goccia cade su un punto, la fuliggine verrà spazzato via da quella zona. Lasciare le goccioline di liquido fluorurato diffusione il più possibile. </li><li> Cuocere il substrato su una piastra calda (160 ° C per 15 min) all&#39;interno di una cappa chimica. </li><li> Lasciate che il substrato sedersi durante la notte a temperatura ambiente prima dell&#39;uso. Conservare a tempo indeterminato. </li></ol></li></ol> 3. Realizzazione di Top elettrodi (adattato da Abdelgawad et al. 12) <ol><li> Disegnare gli elettrodi che utilizzano software di progettazione grafica. Ciascun elettrodo è lungo 2 mm di larghezza 0,3 mm, e la distanza tra gli elettrodi è di 0,3 mm. Il divario tra i contatti (a scatto nel connettore, vedi sotto) è di 2,3 mm (figura 1). </li><li> Tagliare un laminato di rame flessibile (35 micron di spessore) nel formato di Monarch (3,87 x 7,5 pollici). Utilizzare altre dimensioni if compatibile con la stampante. Caricare il laminato nel vassoio di alimentazione manuale di una stampante a colori. </li><li> Assicurarsi di utilizzare &quot;nero ricco&quot;, o &quot;Registrazione nero&quot;, quando si stampa su foglio di rame (vedi Abdelgawad et al. 12 per i dettagli) per consentire uno strato più denso di inchiostro nero sul supporto di rame, proteggendo il motivo stampato durante l&#39;incisione . Lasciate che il supporto stampato asciugare completamente, durante la notte. </li><li> All&#39;interno di una cappa chimica, riscaldamento (40 ° C) un becher con 50 ml di mordenzante rame. Immergere il laminato stampato nel bicchiere, e agitare delicatamente nella soluzione per circa 10 min. Tempo di attacco dipende dalla soluzione mordenzante rame. Ogni pochi minuti, controllare la corrosione e vedere se il modello è intatto. </li><li> Lavare accuratamente il laminato con acqua e rimuovere il rivestimento con acetone ed etanolo nella cappa chimica. Lavare, ancora una volta, e asciugare delicatamente il laminato con il tovagliolo di carta. </li><li> Fissare accuratamente il laminato con elettrodi ad un glass slitta (75 x 25 mm, spessore di ~ 1 mm), con nastro biadesivo. Evitare di sacche d&#39;aria. </li><li> Attaccare un film di perfluoroalkoxy PFA agli elettrodi con i nastri. Questo serve per evitare contatti accidentali degli elettrodi con la goccia, che danneggia migliori elettrodi a causa di corto circuito. </li></ol> 4. L&#39;interfaccia elettronica (circuito in figura 2) <ol><li> Saldare i relè ed i condensatori C a un circuito universale. </li><li> Montare il resto dei 10 comandi dei relè di una breadboard per i circuiti elettronici. </li><li> Filo di ingresso ogni driver di relè a un canale nella scheda di controllo. </li><li> Scatto con attenzione i primi elettrodi in un connettore (Figura 3). Filo uscita ogni driver del relè ad un elettrodo superiore, come mostrato in figura. Si noti che esiste un connettore contatto a terra tra una coppia di fili dal relè, per minimizzare il rumore elettrico. NOTA: Il connettore si siede su una piattaforma regolabile per controllare tha distanza (0,1-0,5 mm) tra superiore e inferiore (fuliggine rivestito) substrato. </li><li> Utilizzare un programma per controllare la temporizzazione per alta tensione (HV) applicazione (circa 0,8 sec) a 4 elettrodi contemporaneamente, spostando 1 elettrodo nella direzione del moto (cioè per 0,8 secondi, azionare 1234, poi 2345, 3456, ecc ., 0.8 sec per ciascun gruppo, e poi indietro, si muove in modo gocciolina nella direzione opposta pure). </li></ol> 5. Visualizzazione Droplet e Manipolazione <ol><li> Per registrare il movimento gocciolina, utilizzare il sistema di visualizzazione, che si compone di un 24X - assemblaggio ingrandimento 96X combinato con una telecamera CCD. Collegare il videoregistratore alla fotocamera tramite S-video. </li><li> Pipettare una goccia 4 ml contenente C. elegans nel supporto sul fondo del substrato fuliggine rivestito. </li><li> Portare i primi elettrodi a ca 0.3 mm sopra la goccia. La gocciolina dovrebbe essere vicino al centro, proprio sotto il quinto elettrodi, per facilitare le operazioni. </li><li> Accendere l&#39;interfaccia elettronica e alta tensione (500 V RMS) e regolare la distanza elettrodo superiore alla goccia finché inizia a muoversi. Non lasciate che i primi elettrodi toccano la goccia. </li><li> Raccogliere dati registrando il numero di trasferimenti gocciolina successo sul dispositivo in risposta agli impulsi elettrici. Un esperimento di successo è caratterizzata da almeno 700 trasferimenti goccioline, cioè, un trasferimento dopo ogni impulso elettrico. </li><li> Raccogliere dati continuo, fino alla gocciolina non si muove più in risposta a 5 a 10 impulsi. NOTA: Quando la superficie comincia a degradare, il movimento potrebbe essere ripristinato portando i primi elettrodi più vicino alla goccia. </li></ol>

<ol><li>Fair, R. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Digital+microfluidics%3A+is+a+true+lab-on-a-chip+possible%5BTitle%5D)+AND+%22Microfluid+Nanofluid%22%5BJournal%5D)">Digital microfluidics: is a true lab-on-a-chip possible.</a> Microfluid Nanofluid. 3 (3), 245-281 (2007).</li>
<li>Gupta, S., Alargova, R. G., Kilpatrick, P. K., Velev, O. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((On-Chip+Dielectrophoretic+Coassembly+of+Live+Cells+and+Particles+into+Responsive+Biomaterials%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">On-Chip Dielectrophoretic Coassembly of Live Cells and Particles into Responsive Biomaterials.</a> Langmuir. 26 (5), 3441-3452 (2009).</li>
<li>Shih, S. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dried+blood+spot+analysis+by+digital+microfluidics+coupled+to+nanoelectrospray+ionization+mass+spectrometry%5BTitle%5D)+AND+%22Anal+Chem%22%5BJournal%5D)">Dried blood spot analysis by digital microfluidics coupled to nanoelectrospray ionization mass spectrometry.</a> Anal Chem. 84 (8), 3731-3738 (2012).</li>
<li>Gorbatsova, J., Borissova, M., Kaljurand, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrowetting-on-dielectric+actuation+of+droplets+with+capillary+electrophoretic+zones+for+off-line+mass+spectrometric+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Chromatogr%22%5BJournal%5D)">Electrowetting-on-dielectric actuation of droplets with capillary electrophoretic zones for off-line mass spectrometric analysis.</a> J Chromatogr. 1234 (0), 9-15 (2012).</li>
<li>Qin, J., Wheeler, A. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Maze+exploration+and+learning+in+C.+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Maze exploration and learning in C. elegans.</a> Lab Chip. 7 (2), 186-192 (2007).</li>
<li>Koc, Y., de Mello, A. J., McHale, G., Newton, M. I., Roach, P., Shirtcliffe, N. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nano-scale+superhydrophobicity%3A+suppression+of+protein+adsorption+and+promotion+of+flow-induced+detachment%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Nano-scale superhydrophobicity: suppression of protein adsorption and promotion of flow-induced detachment.</a> Lab Chip. 8 (4), 582-586 (2008).</li>
<li>Perry, G., Thomy, V., Das, M. R., Coffinier, Y., Boukherroub, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inhibiting+protein+biofouling+using+graphene+oxide+in+droplet-based+microfluidic+microsystems%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Inhibiting protein biofouling using graphene oxide in droplet-based microfluidic microsystems.</a> Lab Chip. 12 (9), 1601-1604 (2012).</li>
<li>Kumari, N., Garimella, S. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrowetting-Induced+Dewetting+Transitions+on+Superhydrophobic+Surfaces%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">Electrowetting-Induced Dewetting Transitions on Superhydrophobic Surfaces.</a> Langmuir. 27 (17), 10342-10346 (2011).</li>
<li>Freire, S. L. S., Tanner, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Additive-Free+Digital+Microfluidics%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">Additive-Free Digital Microfluidics.</a> Langmuir. 29 (28), 9024-9030 (2013).</li>
<li>Deng, X., Mammen, L., Butt, H. -J., Vollmer, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Candle+Soot+as+a+Template+for+a+Transparent+Robust+Superamphiphobic+Coating%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Candle Soot as a Template for a Transparent Robust Superamphiphobic Coating.</a> Science. 335, 67-70 (2011).</li>
<li>Kang, K. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((How+Electrostatic+Fields+Change+Contact+Angle+in+Electrowetting%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">How Electrostatic Fields Change Contact Angle in Electrowetting.</a> Langmuir. 18 (26), 10318-10322 (2002).</li>
<li>Abdelgawad, M., Watson, M. W. L., Young, E. W. K., Mudrik, J. M., Ungrin, M. D., Wheeler, A. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Soft+lithography%3A+masters+on+demand%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Soft lithography: masters on demand.</a> Lab Chip. 8 (8), 1379-1385 (2008).</li>
<li>Barbulovic-Nad, I., Yang, H., Park, P. S., Wheeler, A. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Digital+microfluidics+for+cell-based+assays%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Digital microfluidics for cell-based assays.</a> Lab Chip. 8 (4), 519-526 (2008).</li>
<li>Brenner, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+genetics+of+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">The genetics of Caenorhabditis elegans.</a> Genetics. 77 (1), 71-94 (1974).</li>
</ol>

Gli autori dichiarano di non avere interessi finanziari concorrenti.

La fase più critica del protocollo è la protezione dello strato di fuliggine, direttamente associata con il successo in goccioline movimento. Metallizzazione lo strato di fuliggine (precedenti metodi 1) permette di quasi il 100% di successo fabbricazione. Tuttavia, il tempo massimo di funzionamento è di circa 10 minuti; eventualmente, le frazioni delle gocce sono bagnare la fuliggine attraverso buchi nello strato di metallo. Rivestimento lo strato di fuliggine con il liquido fluorurato è l&#39;alternativa più semplice e...

La miniaturizzazione dei dispositivi che funzionano con i liquidi è di fondamentale importanza per lo sviluppo di piattaforme &quot;lab-on-a-chip&quot;. In questo senso, gli ultimi due decenni hanno visto un significativo progresso nel campo della microfluidica, con una varietà di applicazioni. 1-5 contrasto con il trasporto di liquido nei canali chiusi (microfluidica canale), DMF manipola goccioline su array di elettrodi. Uno dei meriti più interessanti di questa tecnica è l&#39;assenza di parti mobili per il trasporto di fluidi, e il movimento è immediatamente fermato spegnendo segnali elettrici. Tuttavia, il movimento delle gocce dipende contenuti gocciolina, certamente una caratteristica indesiderabile per una piattaforma universale &quot;lab-on-a-chip&quot;. Goccioline contenenti proteine ​​e altri analiti aderire alle superfici dei dispositivi, diventando inamovibile. Probabilmente, questo è stato il limite maggiore per ampliare la gamma di applicazioni DMF; 6-8alternative per ridurre al minimo la formazione di incrostazioni di superficie indesiderato comportano l&#39;aggiunta di specie chimiche in più per la goccia o dei suoi dintorni, che potrebbe potenzialmente influenzare il contenuto delle gocce. In precedenza, il nostro gruppo ha sviluppato un dispositivo per consentire il trasporto di cellule e proteine ​​in DMF, senza additivi aggiunti (dispositivi di campo-DW). 9 Ciò è stato ottenuto combinando una superficie basata sulla candela fuliggine, 10 con una geometria dispositivo che favorisce goccia di rotolamento e conduce ad una forza verso l&#39;alto sul droplet, diminuendo ulteriormente l&#39;interazione gocciolina superficie. In questo approccio, il movimento gocciolina non è associato con bagnatura superficiale. 11 L&#39;obiettivo del metodo dettagliato di seguito descritto è quello di realizzare un dispositivo DMF in grado di trasportare goccioline contenenti proteine, cellule e interi organismi, senza additivi supplementari. I dispositivi di campo-DW aprono la strada per le piattaforme interamente controllate di lavoro in gran parte indipendentemente goccia chimicory. Qui, anche simulazioni presenti mostrando che, nonostante l&#39;alta tensione necessaria per il funzionamento del dispositivo, la caduta di tensione attraverso la goccia è una piccola frazione della tensione applicata, indicando effetti trascurabili sulla bioanalytes all&#39;interno della gocciolina. Infatti, prove preliminari con Caenorhabditis elegans (C. elegans), un nematode utilizzato per una varietà di studi in biologia, mostrano che i vermi nuotano indisturbati come vengono applicate tensioni.

<table><tbody><tr><td>Candela di paraffina</td><td></td><td></td><td>Qualsiasi candela di paraffina</td></tr><tr><td>Sistema di sputtering</td><td>Denton Vacuum, Moorestown, NJ</td><td></td><td>Sputter coater Desk V HP dotato di un bersaglio Au.</td></tr><tr><td>1-dodecanetiolo</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>471364</td><td></td></tr><tr><td>Teflon</td><td>Dupont</td><td>AF-1600</td><td></td></tr><tr><td>Fluorinert FC-40</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F9755</td><td>Liquido fluorurato: Preparare la resina Teflon-AF in Fluorinert FC-40, 1:100 (p/l), per creare il rivestimento idrofobo.</td></tr><tr><td>Software di progettazione grafica -Adobe Illustrator</td><td>Adobe Systems</td><td></td><td>Potrebbero essere utilizzati anche altri software.</td></tr><tr><td>Laminato di rame</td><td>Stampante laser Dupont</td><td>LF9110</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Xerox</td><td>Phaser 6360 o simile</td><td>Verificare la compatibilità con "nero ricco" o "nero di registrazione" (vedere il testo).</td></tr><tr><td>Copper Etchant</td><td>Transene</td><td>CE-100</td><td></td></tr><tr><td>Film Perfluoroalcossi (PFA)</td><td>McMaster-Carr</td><td>84955K22</td><td></td></tr><tr><td>Breadboard</td><td>Allied Electronics</td><td>70012450 o simile</td><td>Abbastanza grande da consentire l'assemblaggio di 10 driver.</td></tr><tr><td>Scheda a circuito universale</td><td>Allied Electronics</td><td>70219535 o simile</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Connettore Allied Electronics</td><td>5145154-8 o simile</td><td></td></tr><tr><td>Scheda di controllo e programma di controllo (software LabView)</td><td>National Instruments</td><td>NI-6229 o simile</td><td></td></tr><tr><td>Amplificatore ad alta tensione</td><td>Trek</td><td>PZD700</td><td></td></tr><tr><td>Condensatori C e C1, 100 nF, 60 V</td><td>Allied&nbsp;</td><td></td><td></td>8817183</tr><tr><td>Transistor T, NPN</td><td>Allied&nbsp;</td><td></td><td></td></tr><tr><td>9350289 diodo D, 1N4007</td><td>Allied&nbsp;</td><td></td><td></td>2660007</tr><tr><td>Relè&nbsp;</td><td>Alleati&nbsp;</td><td></td><td></td>8862527</tr><tr><td>Sistema di visualizzazione</td><td>Edmund Optics</td><td>VZM 200i o simile</td><td>Sistema di ingrandimento 24X &#8211; 96X. È combinato con una telecamera a colori CCD Hitachi KP-D20B da 1/2 pollice.</td></tr><tr><td>Registratore</td><td>Sony</td><td>GV-D1000 NTSC o simile</td><td>È collegato alla fotocamera tramite un cavo S-video.</td></tr><tr><td>Simulazioni</td><td>COMSOL Multiphysics</td><td>V. 4.4</td><td></td></tr></tbody></table>

approfittando di ridotta interazione droplet-superficie per ottimizzare il trasporto di bioanalytes in microfluidica digitale

Taking Advantage of Reduced Droplet-surface Interaction to Optimize Transport of Bioanalytes in Digital Microfluidics

La microfluidica digitale (DMF), una tecnica per la manipolazione delle goccioline, è un'alternativa promettente per lo sviluppo di piattaforme "lab-on-a-chip". Spesso, il movimento delle goccioline si basa sulla bagnatura di una superficie, direttamente associata all'applicazione di un campo elettrico; Le interazioni superficiali, tuttavia, rendono il movimento dipendente dal contenuto di goccioline, limitando l'ampiezza delle applicazioni della tecnica.
Sono state presentate alcune alternative per ridurre al minimo questa dipendenza. Tuttavia, si basano sull'aggiunta di specie chimiche extra alla gocciolina o all'ambiente circostante, che potrebbero potenzialmente interagire con le porzioni di goccioline. Per affrontare questa sfida, il nostro gruppo ha recentemente sviluppato dispositivi Field-DW per consentire il trasporto di cellule e proteine nel DMF, senza additivi aggiuntivi.
Qui, viene fornito il protocollo per la fabbricazione e il funzionamento del dispositivo, inclusa l'interfaccia elettronica per il controllo del movimento. Continuiamo anche gli studi con i dispositivi, dimostrando che possono essere trasportati anche organismi modello multicellulari, relativamente grandi, probabilmente non influenzati dai campi elettrici necessari per il funzionamento del dispositivo.

In precedenza, abbiamo utilizzato i dispositivi di campo-DW per consentire il movimento delle proteine ​​in DMF. In particolare, goccioline con albumina di siero bovino (BSA) possono essere spostati ad una concentrazione di 2000 volte superiore a quanto precedentemente riportato da altri autori (senza additivi). Ciò è dovuto alla ridotta interazione tra la goccia e la superficie; la figura 4 mostra una gocciolina contenente fluorescente-tag BSA (vedi Freire et al 9 per ulteriori info...

Viene descritto il protocollo per la fabbricazione e il funzionamento dei dispositivi di deumidificazione sul campo (Field-DW), così come gli studi preliminari sugli effetti dei campi elettrici sul contenuto delle goccioline.

Approfittando di ridotta interazione Droplet-superficie per ottimizzare il trasporto di Bioanalytes in microfluidica digitale

Digital microfluidics (DMF), a technique for manipulation of droplets, is a promising alternative for the development of &#8220;lab-on-a-chip&#8221; ...

L'obiettivo generale di questa procedura è quello di fabbricare un dispositivo di deumidificazione sul campo in grado di trasportare goccioline con bioanaliti senza additivi. Ciò si ottiene rivestendo prima un substrato conduttivo con fuliggine di candela. Il substrato fungerà da elettrodo inferiore del dispositivo.Il secondo passo consiste nel proteggere lo strato di fuliggine applicando polimeri fluoro liquidi. Quindi, fabbricare gli elettrodi superiori del dispositivo. Quindi collegare gli elettrodi superiore e inferiore all'elettronica dell'esperimento.Il passaggio finale consiste nel posizionare un campione tra gli elettrodi per testare il dispositivo. In definitiva, i risultati mostrano che i dispositivi di deumidificazione sul campo possono supportare il trasferimento continuo di goccioline in risposta a ciascun impulso elettrico per almeno 700 impulsi. I principali vantaggi di questa tecnica rispetto ai metodi esistenti come l'elettrobagnatura sono che il campo elettrico non porta alla bagnatura e non c'è bisogno di additivi aggiuntivi per il trasporto delle goccioline.Le implicazioni di questa tecnica si estendono verso lo sviluppo di un laboratorio completamente automatizzato su una piattaforma di chip che funziona indipendentemente dalla chimica delle goccioline, a dimostrare le procedure saranno Michael Kowski e Selena fare ricercatori universitari del mio laboratorio. Il primo passo è preparare il substrato conduttivo per l'elettrodo di terra. A tale scopo, una lastra di rame è stata tagliata in rettangoli.I rettangoli sono 75 millimetri per 43 millimetri con uno spessore di 0,5 millimetri. Pronto, un contenitore di incisione su rame per pulire i substrati. Questo video seguirà il protocollo utilizzando un solo substrato.Immergere il supporto nell'incisione per circa 30 secondi. Dopo l'immersione, recuperare il supporto e lavarlo correndo. Toccateci sopra dell'acqua, asciugatelo con della carta e, prima di procedere, posizionatelo orizzontalmente su un supporto che ne consenta l'accesso alla sua superficie rivolta verso il basso.Per questo video viene utilizzato un anello aperto montato. Tenere a portata di mano una miscela di fluoropolimero liquido e un contagocce per la sua applicazione. Procurati una candela di paraffina per fornire la fuliggine che verrà applicata.Accendilo e continua spazzando la candela sotto il substrato di rame. Mantenere la parte superiore della fiamma a circa un centimetro sotto il fondo del substrato. Continua a spazzare la candela per 30-45 secondi.Fare attenzione a non toccare la superficie della fuliggine. Dopo aver rivestito il substrato con fuliggine, rimuovere e spegnere la candela immediatamente. Usa una pinzetta per afferrare il substrato e ruotarlo per esporre il lato coperto di fuliggine.Mentre è ancora caldo, utilizzare un contagocce per depositare goccioline del fluoropolimero liquido sui bordi per localizzare il disturbo dello strato di fuliggine. Una volta applicate le gocce, inclinare il substrato in modo che sia quasi verticale. Quindi depositare altre goccioline e lasciarle rotolare su tutta la superficie della fuliggine diffondendosi.Il più possibile. Continuare portando il substrato su una piastra calda tenuta a 160 gradi Celsius. Sempre all'interno della cappa chimica, posizionare il lato di fuliggine del substrato rivolto verso l'alto su una piastra calda per cuocere per 15 minuti.Dopo 15 minuti, rimuovere il substrato dalla piastra riscaldante e lasciarlo riposare per una notte a temperatura ambiente prima di utilizzarlo come elettrodo inferiore. Il substrato può essere conservato a tempo indeterminato quando l'elettrodo di terra è pronto per l'uso. Il passo successivo consiste nel preparare gli elettrodi superiori.Questo video utilizza elettrodi fabbricati seguendo un protocollo tratto dalla letteratura. Il design dell'elettrodo è stato stampato su un sottile laminato di rame inciso e pulito per arrivare a questo punto. Ciascuno dei 10 elettrodi è largo due millimetri e largo 0,3 millimetri.Gli elettrodi saranno montati su un vetrino di 75 millimetri per 25 millimetri e spesso circa un millimetro. Applicare del nastro biadesivo su un'estremità del vetrino ed evitare di introdurre sacche d'aria. Quindi fissare con cura il laminato al vetrino in modo che gli elettrodi siano vicini al bordo.Quindi, tagliare un pezzo di pellicola per Fluor al coy circa la larghezza del vetrino. Posizionare la pellicola sugli elettrodi per evitare cortocircuiti accidentali. Attaccalo con del nastro adesivo.Gli elettrodi possono ora essere utilizzati con l'interfaccia elettronica. Portare sia l'elettrodo superiore che quello inferiore nella configurazione sperimentale per completare il dispositivo di bagnatura sul campo. Nella configurazione sperimentale, l'elettrodo inferiore è collegato a terra elettricamente.Al di sopra di esso, gli elettrodi superiori sono collegati ai relè tramite un connettore regolabile in altezza. Controlla il dispositivo microfluidico con un programma per computer che sposta una gocciolina tra elettrodi adiacenti. In questo esperimento, verrà visualizzato il movimento delle goccioline nel dispositivo microfluidico.Utilizzare un gruppo di ingrandimento 24 96 combinato con una telecamera CCD. Collegare un videoregistratore alla fotocamera utilizzando S video. A questo punto, procurarsi un campione per l'esperimento, in questo caso C elegance e pipetta media da quattro microlitri di gocciolina.Posizionare la gocciolina sull'elettrodo inferiore rivestito di fuliggine in modo che si trovi al centro degli elettrodi superiori. Quindi regolare la posizione degli elettrodi superiori, in modo che si trovino a circa 0,3 millimetri sopra la gocciolina. Con l'interfaccia elettronica e l'alta tensione accese, regolare l'altezza dell'elettrodo superiore fino a quando la goccia inizia a muoversi.Non lasciare che l'elettrodo tocchi la gocciolina. Una volta che il movimento delle goccioline è stabile, avviare la registrazione con la fotocamera fino a quando la gocciolina non si muove in risposta a 5-10 impulsi. Questo video mostra il trasferimento riuscito di C elgan in mezzo tra gli elettrodi di un dispositivo a duetto di campo.Precedenti lavori con albumina sierica bovina marcata in fluorescenza o BSA aiutano a dimostrare l'interazione tra i campioni e il substrato a sinistra. Il BSA si trova su una superficie ricoperta di fuliggine a differenza di una superficie che utilizza solo un liquido fluorurato. Il campione BSA mostra una forte interazione di superficie.Dopo aver visto questo video, dovresti avere una buona comprensione di come fabbricare, sentire i dispositivi per matrimoni. Non dimenticare di seguire le linee guida sulla sicurezza del laboratorio.

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Microfluidica digitale è una tecnica caratterizzata dalla manipolazione di goccioline discreti (~ nL - ml) su una serie di elettrodi con l'applicazione di campi elettrici. E 'adatto per lo svolgimento rapido, sequenziale, miniaturizzati test automatizzati biochimici. Qui riportiamo una piattaforma in grado di automatizzare diverse fasi di lavorazione proteomica.

Microfluidica digitale per trattamento automatizzato di proteomica

Piattaforme microfluidica gocce a base sono candidati promettenti per la sperimentazione ad alto rendimento in quanto sono in grado di generare picolitri, auto-compartimenti imbarcazioni a buon mercato a prezzi kHz. Attraverso l'integrazione con veloce, sensibile e ad alta risoluzione metodi di spettroscopia di fluorescenza, la grande quantità di informazioni generate all'interno di questi sistemi possono essere estratte in modo efficiente, sfruttato ed utilizzato.

Metodi di rilevamento a fluorescenza per piattaforme goccia microfluidica

Abbiamo sviluppato una coltura cellulare automatizzata e piattaforma di interrogatorio per esperimenti di stimolazione cellulare micro-scala. La piattaforma offre un controllo semplice, versatile e preciso nel coltivare e stimolare le piccole popolazioni di cellule, e recuperando lisati per le analisi molecolari. La piattaforma è adatto a studi che impiegano cellule preziosi e / o reagenti.

Una piattaforma automatizzata versatile per micro-scala Cellulari esperimenti di stimolazione

Vi presentiamo un sistema di introduzione del campione goccia discreto per accoppiamento induttivo spettrometria di massa di plasma (ICPMS). Si basa su un chip microfluidico economico e getta che genera goccioline altamente monodisperse in una gamma di dimensioni di 40-60 micron a frequenze da 90 a 7.000 Hz.

Un chip microfluidico per ICPMS introduzione del campione

Descriviamo un saggio digitale endpoint per quantificare gli acidi nucleici con una lettura semplificata (analogica). Misuriamo la fluorescenza di massa di saggi digitali basati su goccioline utilizzando una macchina qPCR standard piuttosto che una strumentazione specializzata e confermiamo i nostri risultati mediante microscopia.

Semplice Lettura di massa di Digital acido nucleico quantificazione Assays

Una piattaforma di biosensore microfluidica è stata progettata e fabbricato con tecnologia photoresist film asciutto low-cost per la quantificazione rapida e sensibile di vari analiti. Questo sistema monouso consente la lettura elettrochimica di on-chip-immobilizzata analisi enzima-collegata mediante la tecnica della stop-flow.

Film secco basati su Photoresist biosensore elettrochimico Microfluidic Platform: Fabbricazione di dispositivi, saggio su chip preparazione e funzionamento del sistema

Questo articolo presenta un protocollo per il seeding scarsa popolazione delle cellule usando puntali per dispositivi microfluidici gocciolina al fine di fornire una maggiore efficienza di incapsulamento di cellule in goccioline.

Metodo basato su un puntale per semina cellule a goccia microfluidici piattaforme

Microfluidico digitale basato sull'elettrowetting è una tecnica che utilizza un cambiamento basato sulla tensione nell'angolo di contatto apparente di una goccia di microlitro-volume per facilitarne la manipolazione. La combinazione di questo con perline magnetiche funzionalizzate consente l'integrazione di più operazioni di unità di laboratorio per la preparazione del campione e l'identificazione di agenti patogeni utilizzando Immunosorbent Assay (ELISA) legato all'enzima.

Piattaforma di microfluidica digitale basata su Electrowetting per l'analisi automatizzata di Immunosorbent legata all'enzima

Descriviamo un kit educativo che consente agli utenti di eseguire più esperimenti e acquisire un'esperienza pratica sulla microfluidica digitale.

Un kit versatile basato sull'attuazione digitale delle goccioline microfluidici per l'educazione scientifica

I saggi di goccioline acqua-in-olio sono utili per la chimica analitica, l'evoluzione enzimatica e l'analisi di singole cellule, ma in genere richiedono microfluidica per formare le goccioline. Qui, descriviamo l'emulsificazione modellata con particelle, un approccio privo di microfluidi per eseguire saggi di goccioline.

L'emulsione con modellazione di particelle consente saggi di goccioline prive di microfluidi

Qui viene presentata la fabbricazione di un dispositivo a doppio strato basato su polidimetilsilossano (PDMS) per la produzione di librerie combinatorie in emulsioni acqua-in-olio (tappi). L'hardware e il software necessari per automatizzare la produzione di tappi sono dettagliati nel protocollo e viene dimostrata anche la produzione di una libreria quantitativa di tappi fluorescenti.

Dispositivo microfluidico a doppio strato per la produzione di tappi combinatori

Scopri come fabbricare dispositivi di dewetting a campo per trasportare gocce con bioanaliti senza additivi. Questo metodo utilizza substrati conduttivi rivestiti di fuliggine e polimeri fluorurati liquidi.

Approfittando di ridotta interazione Droplet-superficie per ottimizzare il trasporto di Bioanalytes in microfluidica digitale

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