Name: Whole-mount Imaging di embrione di topo Sensory Axon Proiezioni (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-12-09T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 37 s
Description: Impara a valutare i fenotipi di crescita degli assoni sensoriali in embrioni di topo usando il reporter tau lae. Questo metodo ottimizzato consente la visualizzazione delle proiezioni assonali nocicettive per studiare i meccanismi dello sviluppo neuronale.

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Gli autori desiderano ringraziare il Dr. Louis Reichardt per i topi TrkA taulacZ e Dr. Annette Markus per la discussione penetranti e suggerimenti. Questo lavoro è stato sostenuto da fondi di avvio dalla Fondazione Burke e assegno di ricerca della Fondazione Whitehall 2010-08-61, un assegno di ricerca da Wings for Life Foundation (WFL-US-028/14), concedere ZB1-1102-1 dal Christopher e Dana Reeve Foundation, e le sovvenzioni 1R01EY022409 e 3R01EY022409-01S1 dal National Eye Institute, a JZ. KJO è un collega Goldsmith.

NOTA: Tutte le procedure sono conformi alla Guida NIH per l&#39;uso e la cura di animali da laboratorio. Il protocollo animale è stato approvato dal IACUC al Weill Cornell Medical College. 1. Preparazione del tessuto <ol><li> Euthanize femmine scaduta a gravidanza per dislocazione cervicale 15. Sezionare embrionali E16 - E18 embrioni da femmine scaduta a gravidanza e posto embrioni singolarmente nei pozzetti di un piatto 6-bene, pieni di fosfato salino freddo tamponata (PBS). </li><li> Sciacquare embrioni in PBS freddo. </li><li> Rimuovere una piccola porzione della membrana amniotica dell&#39;embrione e posto in una soluzione di proteinasi K pre-preparato per la successiva genotipizzazione. In alternativa, se la membrana amniotica è perso, rimuovere una piccola porzione della punta della coda dell&#39;embrione e metterlo in soluzione proteinasi K </li><li> Poke i fori nella pelle in tutto l&#39;embrione utilizzando perni di insetti (almeno 100 per lato). </li><li> Rimuovere PBS e aggiungere lentamente fresco 2% paraformaldeide (PFA),pH 7.4, al pozzo. </li><li> Agitare delicatamente per 2 ore a 4 ° C. </li><li> Risciacquare embrioni due volte in PBS e conservare in PBS a 4 ° C fino colorazione. </li></ol> 2. Genotipizzazione <ol><li> Immergere membrane amniotiche o croce embrione in proteinasi K miscela secondo le istruzioni del produttore. </li><li> Incubare a 56 ° C per 10 min. </li><li> Estrarre DNA utilizzando un kit di purificazione di DNA disponibile in commercio. </li><li> Prendere 0,5 l di totali 200 microlitri purificati soluzione di DNA genomico, combinarlo con 0,5 ml di ciascuna delle senso e antisenso primer specifici geni (10 micron), 2 microlitri dNTP Mix (2,5 mm di dATP, dCTP, dGTP e dTTP) , 0,2 microlitri polimerasi Taq (5 U / ml) e 2 microlitri tampone PCR (10x), aggiungere H 2 O per un volume totale di 20 microlitri. NOTA: sequenze primer sono le seguenti (Tabella 1): TrkA: TrkA_F: GCG GGC GCC GCC GCG ATG, TrkA_R: GAA GCC GCC TGC GCG GCT CTG CCA GGG TG; PCR fragLunghezza mento: 400 paia di basi (bp). Bax: In5R: GTT GAC CAG AGT GGC GTA GG, Ex5F: TGA TCA GAA CCA TCA TG, neor: CCG CTT CCA TTG CTC AGC GG; PCR lunghezze frammento: wild type, 304 bp; Bax null, 507 bp. TauLacZ: lacZup: ACA ACG TCG TGA GTG GGA AAA, lacZdown: ATC AAC ATT AAA TGT GAG CGA G; PCR frammento lunghezza: 360 bp. </li><li> Eseguire un PCR con il seguente programma per TrkA: passo 1: 1 min a 95 ° C, punto 2: 10 sec a 95 ° C, punto 3: 20 sec a 68 ° C, il punto 4: 30 sec a 72 ° C. Ripetere i punti 2 - 4 per 40 cicli. <ol><li> Per LacZ e Bax, eseguire una PCR con il seguente programma: punto 1: 1 min a 95 ° C, punto 2: 10 sec a 95 ° C, punto 3: 1 min a 54 ° C, il punto 4: 1 min a 72 ° C, ripetere i punti 2 - 4 per 35 cicli. </li></ol></li><li> Campioni Run PCR su un gel di agarosio 2% a 100 V in 1x tampone Tris-acetato-EDTA per 20 minuti con una corsia di scala DNA per valutare lunghezze frammento. </li><li> Analizzare gli embrioni per la presenza di tipo selvaggio TrkA, TRKA-tauLacZ e Bax alleli nulli. I genotipi di embrioni sperimentali sono TrkA taulacZ / WT: Bax - / - e TrkA taulacZ / taulacZ: Bax - / -, a seconda delle questioni sperimentali. Gli embrioni privi del giornalista tauLacZ saranno negativi per assonale colorazione e può quindi servire come controlli negativi per calibrare il processo di colorazione. </li></ol> 3. Embryo Colorazione <ol><li> Utilizzare un kit commerciale per lacZ colorazione con alcune modifiche come descritto di seguito nelle sezioni 3,2-3,8. Qui, utilizzare il kit Millipore. </li><li> Immergere embrioni in tampone A per almeno 1 ora, scuotendo leggermente a temperatura ambiente. </li><li> Direttamente immergere embrioni in tampone B per almeno 15 minuti, agitando dolcemente alla temperatura ambiente. </li><li> Mentre gli embrioni sono in Buffer A / B, soluzione Tissue Base pre-caldo a 37 ° C. Utilizzare 5 ml di soluzione di tessuto di base per embrione. </li><li> Mentre gli embrioni sono in Buffer A / B, preparare fresco 5-bromo- 4- cloro- 3- indolil α-D-galattopiranoside (X-gal) ad una concentrazione di 40 mg / ml in 100% dimetilsolfossido (DMSO). </li><li> Diluire X-gal nella soluzione Tissue Base pre-riscaldato ad una concentrazione di 1 mg / ml e si aggiungono 5 ml di X-gal / miscela Base Tissue in una fiala di scintillazione in vetro. </li><li> Trasferire gli embrioni in una fiala di scintillazione di vetro contenente miscela Base X-gal / tessuto. Sigillare coperchio con Parafilm e incubare a 37 ° C durante la notte, controllando la presenza di blu macchia. </li><li> Embrioni Postfix con freschi 4% PFA, pH 7.4. Agitare delicatamente per 4 ore a 4 ° C. </li><li> Sciacquare embrioni due volte in PBS freddo. </li></ol> 4. Tissue Disidratazione e Clearing <ol><li> Luogo embrioni in metanolo al 50% al 50% della miscela / PBS per 30 minuti a temperatura ambiente, agitando in fiale di vetro. </li><li> Continuare a disidratare in 75% metanolo / 25% PBS per 30 minuti a temperatura ambiente agitando in flaconcini di vetro. </li><li> Continuare a disidratare in metanolo al 90% / 10% PBS per 30 min a temperatura ambiente agitando in flaconcini di vetro. </li><li> Continuare a disidratare in metanolo 100% per 30 min (2x) a temperatura ambiente agitando in flaconcini di vetro. </li><li> Mentre embrioni sono disidratazione, preparare un 1: 1 (v: v) miscela di alcool benzoile e benzoil benzoato. NOTA: alcol benzoile e benzoil benzoato è tossico. </li><li> Immergere embrioni in 1: 1 (v: v) miscela di metanolo 100%: 100% BABB per 15 min. Utilizzare il vetro solo perché il BABB si dissolverà in plastica. </li><li> Immergere embrioni in 100% BABB completamente chiaro il tessuto e visualizzare X-gal colorazione nell&#39;embrione eliminato. NOTA: L&#39;immagine appena possibile perché la macchia X-gal sbiadiscono nel tempo. </li></ol> 5. intero monte Imaging <ol><li> Stabilizzare l&#39;embrione, immerso in 100% BABB, agli angoli appropriati per fotografia con pinze di metallo. Illuminare utilizzando una combinazione di up-light e sotto-light fonti. </li><li> Acquisire le immagini con un microscopio dissezionedotato di una fotocamera digitale. Prendere esposizioni multiple in campo chiaro a cinque piani focali successivi 0,5 millimetri di distanza lungo l&#39;asse Z. I tempi di esposizione e f-stop possono variare a seconda di illuminazione e telecamere specifiche e devono essere ottimizzati per ogni installazione. </li><li> Utilizzare software standard di elaborazione delle immagini per elaborare immagini sovrapposte e generare fotomontaggi. </li></ol>

<ol><li>Verze, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cutaneous+innervation+in+hereditary+sensory+and+autonomic+neuropathy+type+IV%5BTitle%5D)+AND+%22Neurology%22%5BJournal%5D)">Cutaneous innervation in hereditary sensory and autonomic neuropathy type IV.</a> Neurology. 55, 126-128 (2000).</li>
<li>Sethna, N. F., Meier, P. M., Zurakowski, D., Berde, C. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cutaneous+sensory+abnormalities+in+children+and+adolescents+with+complex+regional+pain+syndromes%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">Cutaneous sensory abnormalities in children and adolescents with complex regional pain syndromes.</a> Pain. 131, 153-161 (2007).</li>
<li>Uceyler, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Small+fibers+in+Fabry+disease%3A+baseline+and+follow-up+data+under+enzyme+replacement+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22J+Peripher+Nerv+Syst%22%5BJournal%5D)">Small fibers in Fabry disease: baseline and follow-up data under enzyme replacement therapy.</a> J Peripher Nerv Syst. 16, 304-314 (2011).</li>
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<li>White, F. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synchronous+onset+of+NGF+and+TrkA+survival+dependence+in+developing+dorsal+root+ganglia%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Synchronous onset of NGF and TrkA survival dependence in developing dorsal root ganglia.</a> J Neurosci. 16, 4662-4672 (1996).</li>
<li>Farinas, I., Wilkinson, G. A., Backus, C., Reichardt, L. F., Patapoutian, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+neurotrophin+and+Trk+receptor+functions+in+developing+sensory+ganglia%3A+direct+NT-3+activation+of+TrkB+neurons+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Characterization of neurotrophin and Trk receptor functions in developing sensory ganglia: direct NT-3 activation of TrkB neurons in vivo.</a> Neuron. 21, 325-334 (1998).</li>
<li>Markus, A., Zhong, J., Snider, W. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Raf+and+akt+mediate+distinct+aspects+of+sensory+axon+growth%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Raf and akt mediate distinct aspects of sensory axon growth.</a> Neuron. 35, 65-76 (2002).</li>
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<li>Zhong, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Raf+kinase+signaling+functions+in+sensory+neuron+differentiation+and+axon+growth+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Raf kinase signaling functions in sensory neuron differentiation and axon growth in vivo.</a> Nature. 10, 598-607 (2007).</li>
<li>Bulfone, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+olfactory+sensory+map+develops+in+the+absence+of+normal+projection+neurons+or+GABAergic+interneurons%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">An olfactory sensory map develops in the absence of normal projection neurons or GABAergic interneurons.</a> Neuron. 21, 1273-1282 (1998).</li>
<li>Moqrich, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expressing+TrkC+from+the+TrkA+locus+causes+a+subset+of+dorsal+root+ganglia+neurons+to+switch+fate%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Expressing TrkC from the TrkA locus causes a subset of dorsal root ganglia neurons to switch fate.</a> Nature. 7, 812-818 (2004).</li>
<li>Knudson, C. M., Tung, K. S., Tourtellotte, W. G., Brown, G. A., Korsmeyer, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bax-deficient+mice+with+lymphoid+hyperplasia+and+male+germ+cell+death%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Bax-deficient mice with lymphoid hyperplasia and male germ cell death.</a> Science. 270 (5233), 96-99 (1995).</li>
<li>Lentz, S. I., Knudson, C. M., Korsmeyer, S. J., Snider, W. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neurotrophins+support+the+development+of+diverse+sensory+axon+morphologies%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Neurotrophins support the development of diverse sensory axon morphologies.</a> J. Neurosci. 19, 1038-1048 (1999).</li>
<li>Patel, T. D., Jackman, A., Rice, F. L., Kucera, J., Snider, W. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+sensory+neurons+in+the+absence+of+NGF%2FTrkA+signaling+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Development of sensory neurons in the absence of NGF/TrkA signaling in vivo.</a> Neuron. 25, 345-357 (2000).</li>
<li>Donovan, K. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((B-RAF+kinase+drives+developmental+axon+growth+and+promotes+axon+regeneration+in+the+injured+mature+CNS%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+experimental+medicine%22%5BJournal%5D)">B-RAF kinase drives developmental axon growth and promotes axon regeneration in the injured mature CNS.</a> The Journal of experimental medicine. 211, 801-814 (2014).</li>
<li>Mercer, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+of+endogenous+oncogenic+V600EB-raf+induces+proliferation+and+developmental+defects+in+mice+and+transformation+of+primary+fibroblasts%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+research%22%5BJournal%5D)">Expression of endogenous oncogenic V600EB-raf induces proliferation and developmental defects in mice and transformation of primary fibroblasts.</a> Cancer research. 65, 11493-11500 (2005).</li>
<li>Tronche, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Disruption+of+the+glucocorticoid+receptor+gene+in+the+nervous+system+results+in+reduced+anxiety%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+genetics%22%5BJournal%5D)">Disruption of the glucocorticoid receptor gene in the nervous system results in reduced anxiety.</a> Nature genetics. 23, 99-103 (1999).</li>
<li>Madisen, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+toolbox+of+Cre-dependent+optogenetic+transgenic+mice+for+light-induced+activation+and+silencing%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Neurosci%22%5BJournal%5D)">A toolbox of Cre-dependent optogenetic transgenic mice for light-induced activation and silencing.</a> Nat Neurosci. 15, 793-802 (2012).</li>
<li>Feng, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+Neuronal+Subsets+in+Transgenic+Mice+Expressing+Multiple+Spectral+Variants+of+GFP%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Imaging Neuronal Subsets in Transgenic Mice Expressing Multiple Spectral Variants of GFP.</a> Neuron. 28, 41-51 (2000).</li>
<li>Schmidt, H., Rathjen, F. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DiI-labeling+of+DRG+neurons+to+study+axonal+branching+in+a+whole+mount+preparation+of+mouse+embryonic+spinal+cord%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">DiI-labeling of DRG neurons to study axonal branching in a whole mount preparation of mouse embryonic spinal cord.</a> J Vis Exp. , (2011).</li>
</ol>

Gli autori dichiarano che non vi sono interessi concorrenti.

La procedura di colorazione X-gal sopra descritto di topi embrionali TrkA taulacZ permette la visualizzazione rapida e dettagliata delle proiezioni assoni lunga distanza nell&#39;embrione fisso intatto. A causa del fondo nulla Bax questi topi permettono di sondare di meccanismi di segnalazione che possono contribuire sia alla crescita degli assoni e la sopravvivenza neuronale. Accoppiamento con transgenici o knockout mice di interesse consente per la valutazione complessiva di fenotipi asson...

Creazione di precise reti neuronali è un complesso processo evolutivo essenziale per la funzionalità del sistema nervoso. Disturbi in questo processo porta a una disfunzione neuronale che è stato coinvolto in malattie neurologiche umane 1-3. Per studiare i meccanismi molecolari alla base della crescita degli assoni e di destinazione innervazione nei mammiferi, abbiamo sviluppato un protocollo per visualizzare le traiettorie assonali di TrkA-esprimere i neuroni sensoriali utilizzando una combinazione di due linee di topi geneticamente modificati. TrkA è un recettore per il fattore di crescita nervoso NGF ed è un marcatore funzionale dei neuroni sensoriali nocicettivi 4. TrkA è altamente espresso nei neuroni nocicettivi durante lo sviluppo precoce e media di sopravvivenza dei neuroni NGF-dipendente, la crescita degli assoni, arborization e destinazione innervazione 5-9. Nei topi TrkA taulacZ, il tipo selvatico gene TrkA è sostituito da un&#39;espressione taulacZ cassette 10, tale che la morfologia assonale dei neuroni TrkA-positive putativi può essere visualizzata dal β-gal (X-gal) colorazione 11. Usando una linea TrkA taulacZ / WT eterozigote, possiamo esaminare i fattori che possono regolare o interferire con lo sviluppo di sensoriali proiezioni afferenti in vivo. Inoltre, l&#39;espressione TrkA è assente in omozigoti topi TrkA taulacZ / taulacZ, che possono quindi essere utilizzati per valutare la crescita degli assoni promuovere meccanismi in assenza di segnalazione NGF / TrkA. Poiché i neuroni nocicettivi dipendono NGF / TrkA segnalazione non solo per la crescita degli assoni, ma anche per la sopravvivenza, ci avvaliamo di un&#39;altra linea di topi, manca la pro-apoptotico gene Bax, di inibire l&#39;apoptosi nei neuroni DRG embrionali, sottraendoli morte cellulare che è altrimenti osservata in assenza di segnalazione TrkA. La Bax - / - sfondo 12 consente quindi per la molecudissezione lar di vie di segnalazione che riguardano specificamente assone 7-9,13-15 crescita. In TrkA - / -: Bax - / - mice, neuroni DRG sopravvivono, ma sensoriale innervazione afferente nella pelle è completamente aboliti 14,15. Siamo in grado di attivare selettivamente vie di segnalazione per determinare i rispettivi contributi allo sviluppo delle proiezioni assoni. L&#39;utilità di questo metodo è che permette la valutazione delle variazioni di fenotipi di crescita assonale quando diverse modificazioni genetiche sono allevati sul TrkA taulacZ / taulacZ: Bax - / - o TrkA taulacZ / WT: Bax - / - sfondi.

<table><tbody><tr><td>PFA</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P6418</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>Life Tech</td><td>10010-023</td><td></td></tr><tr><td>Soluzione di risciacquo per tessuti A</td><td>Millipore</td><td>BG-6-B</td><td></td></tr><tr><td>Soluzione di risciacquo per tessuti B</td><td>Millipore</td><td>BG-7-B</td><td></td></tr><tr><td>Soluzione di base per macchie di tessuti</td><td>Millipore</td><td>BG-8-C</td><td></td></tr><tr><td>X-gal</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>B4252</td><td></td></tr><tr><td>Fiala di scintilazione in vetro</td><td>Kimble Chase</td><td>74500-20</td><td></td></tr><tr><td>Incubatrice</td><td>Labline</td><td>Modello 120</td><td></td></tr><tr><td>Perni per insetti</td><td>FST</td><td>26000-30</td><td></td></tr><tr><td>DMSO</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D8418</td><td></td></tr><tr><td>Piatto a 6 pozzetti</td><td>USA Scientific</td><td>CC7672-7506</td><td></td></tr><tr><td>Primer</td><td>IDT</td><td>primer DNA</td><td></td> personalizzati</tr><tr><td>Takara dNTP miscela</td><td>Takara</td><td>4030</td><td></td></tr><tr><td>Takara LA tampone</td><td>Takara</td><td>RR002A</td><td></td></tr><tr><td>Takara LA Taq Takara</td><td></td><td>RR002A</td><td></td></tr><tr><td>PCR macchina</td><td>Bio-Rad</td><td>DNA Engine Dyad</td><td></td></tr><tr><td>Benzyl alcohol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>B-1042</td><td></td></tr><tr><td>Benzyl benzoate</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>B-6630</td><td></td></tr><tr><td>Microscopio da dissezione</td><td>Leica</td><td>M205A</td><td></td></tr><tr><td>Fotocamera</td><td>Leica</td><td>DFC310FX</td><td></td></tr><tr><td>Luce anulare</td><td>Leica&nbsp;</td><td>MEB110</td><td></td></tr><tr><td>Photoshop Adobe</td><td></td><td>Photoshop 4.0</td><td></td></tr></tbody></table>

whole-mount imaging di embrione di topo sensory axon proiezioni

Whole-mount Imaging of Mouse Embryo Sensory Axon Projections

La visualizzazione del full-length proiezioni neuronali in embrioni è essenziale per acquisire una comprensione di come mammiferi reti neuronali si sviluppano. Qui si descrive un metodo per etichettare in situ un sottoinsieme di gangli delle radici dorsali (DRG) proiezioni assoni di valutare le loro caratteristiche fenotipiche con diverse linee di topi geneticamente manipolati. I neuroni TrkA-positivi sono neuroni nocicettori, dedicati alla trasmissione di segnali di dolore. Utilizziamo una linea di topi TrkA taulacZ etichettare le traiettorie di tutti assoni periferici TrkA-positivo nel topo embrione intatto. Abbiamo inoltre alleviamo la linea TrkA taulacZ su uno sfondo nullo Bax, che abolisce in sostanza l&#39;apoptosi neuronale, al fine di valutare le domande di crescita relative indipendentemente possibili effetti delle manipolazioni genetiche sulla sopravvivenza neuronale. Successivamente, i topi geneticamente modificati di interesse sono allevati con il TrkA TaulLinea nullo ACZ / Bax e sono quindi pronti per lo studio utilizzando le tecniche qui descritte. Questa presentazione include informazioni dettagliate sui piani di allevamento del mouse, la genotipizzazione al momento della dissezione, preparazione del tessuto, colorazione e di compensazione per consentire la visualizzazione del full-length traiettorie assonali in tutto il montaggio di preparazione.

I genotipi di TrkA WT / taulacZ: Bax - / - e TrkA taulacZ / taulacZ: Bax - / - gli embrioni possono essere inequivocabilmente determinati dal genotipo normale PCR (Figura 1). Display colorazione X-gal dettagliate pergole assonale periferici per via sottocutanea in embrioni convenzionalmente macchiati (figure 2, 3 bis), e in tutto l'embrione dopo schiarimento del tessuto (figure 3b, 4). Abbiamo alle...

Presentiamo qui un protocollo ottimizzato per genotipizzare, colorare e preparare topi fetali per l'imaging di proiezioni di assoni nocicettori periferici nell'intero animale, come metodo efficace per valutare i fenotipi di crescita degli assoni sensoriali nello sviluppo di topi geneticamente modificati.

Whole-mount Imaging di embrione di topo Sensory Axon Proiezioni

The visualization of full-length neuronal projections in embryos is essential to gain an understanding of how mammalian neuronal networks develop. Here we ...

L'obiettivo generale del seguente esperimento è quello di valutare efficacemente i fenotipi di crescita degli assoni sensoriali nei topi fetali in via di sviluppo. Ciò si ottiene allevando e genotipizzando correttamente i topi reporter tre a tau laxy in modo tale che i saggi di colorazione a valle possano essere eseguiti come seconda fase. Gli embrioni di topo vengono fissati e colorati per consentire la visualizzazione delle proiezioni sensoriali degli assoni nell'intero animale.Successivamente, gli embrioni vengono disidratati e purificati per visualizzare completamente le proiezioni assoniche profonde che altrimenti non sarebbero visibili. I risultati dimostrano che questi metodi sono un mezzo efficace per valutare rapidamente i fenotipi di crescita degli assoni nocicettivi embrionali. Utilizzando la traccia un reporter Tau Lae, questo metodo può aiutare a rispondere a domande chiave nel campo della crescita degli assoni sensoriali, consentendo ai ricercatori di incrociare il loro gene di interesse sulla traccia di uno sfondo Z tlac e di eseguire lo screening di eventuali cambiamenti nei fenotipi di crescita degli assoni sensoriali.Le implicazioni della nostra tecnica si estendo

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Fonte: &lt;a style='decorazione testo:nessuno;' href='https://app.jove.com/v/57546/visualization-of-motor-axon-navigation-and-quantification-of-axon-arborization-in-mouse-embryos-using-light-sheet-fluorescence-microscopy'&gt;Liau, E. S. et al. Visualizzazione della navigazione degli assoni motori e quantificazione dell'arborizzazione degli assoni negli embrioni di topo utilizzando la microscopia a fluorescenza a foglio leggero. J. Vis. Exp. (2018). Questo video dimostra l'uso della microscopia...

Visualizzazione delle proiezioni dei motoneuroni e della ramificazione degli assoni mediante microscopia a fluorescenza a foglio di luce

Fonte: Jeong, S. Visualizzazione del modello di proiezione assonale dei motoneuroni embrionali in Drosophila. J. Vis. Exp. (2017)Questo video dimostra la visualizzazione delle proiezioni assonali negli embrioni  Drosophila. L'immunomarcatura dei motoneuroni, la dissezione precisa per esporre le strutture neuronali e la microscopia a contrasto interferenale-differenziale rivelano collettivamente un'architettura neuronale dettagliata, enfatizzando i modelli di proiezione assonale.

Visualizzazione dei modelli di proiezione assonale dei motoneuroni embrionali in Drosophila

Progenitrici neurali mitosi è un parametro critico della neurogenesi. Gran parte della nostra comprensione delle progenitrici neurali mitosi si basa sull'analisi del tessuto fisso. Vivo imaging in fettine cerebrali embrionali è una tecnica versatile per valutare mitosi con alta risoluzione temporale e spaziale in un ambiente controllato.

Immagini dal vivo della mitosi in via di sviluppo embrionali di topo Cortex

Pelle dei mammiferi contiene una gamma diversificata di strutture - come i follicoli piliferi e le terminazioni nervose - che presentano modelli distintivi di organizzazione spaziale. Analizzando pelle come cavalcatura piatto approfitta della geometria 2-dimensionale di questo tessuto per produrre tutto spessore immagini ad alta risoluzione delle strutture cutanee.

Appartamento Monte Imaging di pelle di topo e la sua applicazione alla analisi del follicolo pilifero patterning e sensoriale Axon Morfologia

Questo lavoro descrive un metodo immunohistochemistico standard per visualizzare le proiezioni dei neuroni motori degli embrioni di Drosophila melanogaster a tarda fase 16. La preparazione filettata di embrioni fissi macchiati con FasII anticorpo fornisce un potente strumento per caratterizzare i geni richiesti per la ricerca del percorso dell'assone motore e il riconoscimento del bersaglio durante lo sviluppo neurale.

Visualizzazione del modello di proiezione Axonal dei motoni embrionali in<em&gt; Drosophila</em

Qui, descriviamo un protocollo per la visualizzazione di proiezione del neurone di motore e arborization assone in embrioni di topo transgenici Hb9::GFP . Dopo immunostaining per motoneuroni, abbiamo usato Microscopia di fluorescenza del foglio leggero agli embrioni di immagine per la successiva analisi quantitativa. Questo protocollo è applicabile ad altri processi di navigazione di neuroni nel sistema nervoso centrale.

Visualizzazione di navigazione motore Axon e quantificazione di Axon Arborization negli embrioni del Mouse utilizzando la microscopia a fluorescenza foglio leggero

Qui descriviamo una procedura per tessuto di compensazione, l'etichettatura fluorescente e su larga scala di formazione immagine del tessuto di cervello di topo che, quindi, permette la visualizzazione dell'organizzazione tridimensionale dei tipi delle cellule nella neocorteccia.

Formazione immagine tridimensionale su larga scala di organizzazione cellulare nella neocorteccia Mouse

La combinazione di microscopia elettronica di trasmissione e trasduzione nell'utero è un approccio potente per studiare i cambiamenti morfologici nell'ultrastruttura bene del sistema nervoso durante lo sviluppo. Questo metodo combinato consente approfondimenti cambiamenti nei dettagli strutturali sottostanti la neuroplasticità rispetto alla loro rappresentazione topografica.

Valutazione dei parametri di neuroplasticità ultrastrutturali dopo In Utero trasduzione del Mouse cervello e midollo spinale

Questo protocollo ha lo scopo di dimostrare come microiniettare una miscela DNA/DOTAP in boccioli di occhiali di embrioni di Xenopus laevis di un giorno, e come immaginare e ricostruire singole proteine fluorescenti verdi (GFP) che esprimono arbori assonali ottici nei midbrain intatti, vivono girini Xenopus.

Microiniezione di DNA in boccioli di occhiali in embrioni di Xenopus lavis e imaging di GFP Expressing Optic Aboral Arbors in Intact, Living Xenopus Tadpoles

Durante lo sviluppo della corteccia cerebrale, i neuroni e le cellule gliali hanno origine nella zona ventricolare che riveste il ventricolo e migrano verso la superficie del cervello. Molti geni sono coinvolti in questo processo. Questo protocollo introduce la tecnica per l'imaging time-lapse di neuroni in migrazione e progenitori gliali.

Imaging time-lapse di neuroni in migrazione e progenitori gliali in fette di cervello embrionale di topo

Questo studio presenta un approccio di imaging a due fotoni in vivo per visualizzare le strutture dei terminali assonici dei meccanorecettori (LTMR) a bassa soglia nella pelle delle zampe anteriori dei topi. Utilizzando immagini ripetute ad alta risoluzione di singoli assoni, questo metodo offre una nuova piattaforma per studiare la struttura e la funzione del circuito sensoriale cutaneo durante lo sviluppo e negli adulti.

Imaging a due fotoni intravitali della morfologia degli assoni sensoriali del tatto nella pelle del topo

Impara a valutare i fenotipi di crescita degli assoni sensoriali in embrioni di topo usando il reporter tau lae. Questo metodo ottimizzato consente la visualizzazione delle proiezioni assonali nocicettive per studiare i meccanismi dello sviluppo neuronale.

Whole-mount Imaging di embrione di topo Sensory Axon Proiezioni

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