Name: Glutammato e ipossia come modello di stress per lisolato perfuso vertebrati Retina (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-03-22T15:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 48 s
Description: Scopri un modello di stress retinico con glutammato e ipossia per testare agenti neuroprotettivi usando la retina bovina isolata. Questo metodo standardizzato misura le risposte elettroretinografiche.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Questo articolo è dedicato alla mia amata moglie Maren e al nostro piccolo Karl.

1. Preparazione di occhi bovini <ol><li> Ottenere occhi bovini subito dopo la macellazione. </li><li> Trasporto gli occhi protetti in &quot;Sickel soluzione&quot; un mezzo speciale contenente NaCl 120 mM, KCl 2 mM, 0,1 mM MgCl 2, 0,15 mM CaCl 2, 1.5 mM NaH 2 PO 4, 13,5 mM Na 2 HPO 4 e 5 mM di glucosio a RT. </li><li> Eseguire la preparazione della retina in condizioni adatte scuri con una luce rossa fioca. </li><li> Rimuovere la parte anteriore dell&#39;occhio. Eseguire un&#39;incisione ca. equatoriale 4 millimetri posteriormente al limbus. Successivamente rimuovere cornea, iride, corpo ciliare e obiettivo in un unico pezzo. Tenere le retine in Sickel-soluzione. </li><li> Meccanicamente allentare i collegamenti vetrose alla superficie retinica e rimuovere il vitreo dalla tazza occhio aperto. </li><li> Successivamente suddividere l&#39;occhio in quattro quadranti e pugni fuori turno aree di ca. 7 mm con un trapano. </li><li> Separare delicatamente la retinadal epitelio pigmentato e posizionarlo su un dispositivo di registrazione all&#39;interno di una scatola al riparo dalla luce. Il dispositivo di registrazione è costituito da un manutentore plastica con una maglia nel mezzo; posizionare la retina sulla maglia e poi fissare con un anello di plastica direttamente sugli elettrodi. NOTA: Il manutentore plastica ha due canali per permettere un flusso costante di fluido. </li></ol> 2. Registrazione del Elettroretinogramma (ERG) <ol><li> Per registrare l&#39;elettroretinogramma, utilizzare due elettrodi di argento / cloruro di argento-su entrambi i lati della retina e profumato retina ad una velocità costante di perfusione ca. 1 ml / min e temperatura costante di 37 ° C. Utilizzare il &quot;Sickel-soluzione&quot; satura di ossigeno. </li><li> Prima di avviare la misurazione, scuro adattare la retina (proteggerlo dalla luce durante tutte le misure) e utilizzare gli intervalli di stimolo di cinque minuti. Utilizzare un 1 Hz singolo flash allo xeno bianco per la stimolazione con un&#39;intensità impostato 6.3 mlx sulla superficie della retina. </li&gt; <li> Uso calibrato filtri di densità neutri e uno stimolo luce 10 usec controllato da un timer in modo da avere una risposta ottimale. </li><li> Per misurare ed elaborare i dati, filtrare l&#39;ERG e amplificarlo (100 Hz filtro passa alto, 50 filtro notch Hz, 100.000 x amplificazione) utilizzando un RPS312RM amplificatore Grass. Prova a filtrare le eventuali frequenze di disturbo che possono disturbare il segnale. Per elaborare i dati, utilizzare una scheda di acquisizione dati digitali da analogico a un computer desktop (PC compatibile). </li><li> Dopo il periodo di adattamento al buio sotto perfusione costante misurare le ampiezze del segnale elettrico fino sono registrati ampiezze b-onda stabili. NOTA: Le ampiezze sono considerate stabili se cinque misurazioni singole raggiungono un valore medio e discostano meno del 10%. Un buon esempio di singole misurazioni è riportata nella figura 1. </li><li> Per iniziare il test, sostituiscono l&#39;ossigeno puro o azoto puro (numero di singoli esperimenti, n = 5) per verificare ipossiao 250 micron glutammato (n = 5). </li><li> Registrare le risposte elettriche ogni 5 minuti per 45 min. </li><li> Dopo il periodo di prova, profumato le retine con medie standard satura di ossigeno per 75 minuti e guardare i cambiamenti di ampiezza b-wave. Questa è la fase di washout. Misurare l&#39;ampiezza dell&#39;onda b dal trogolo di un onda al picco del b-onda. </li><li> Per studiare l&#39;effetto di ipossia o glutammato sulle potenzialità fotorecettori in condizioni scotopiche, sopprimere la b-wave con l&#39;aggiunta di 1 mM di soluzione nutritiva. </li><li> Dopo aver registrato un potenziale fotorecettore stabile per 30 min, eseguire la procedura come prima, esponendo le retine 45 min alle diverse soluzioni di irrigazione con 1 mM aspartato. Utilizzare lo stesso periodo di washout (passo 2,8), come accennato in precedenza. </li></ol> Analisi 3. Dati <ol><li> Per valutare statisticamente i dati, garantire una distribuzione normale per tutti i dati, ad esempio utilizzando il Kolmogorov-SmirnovTest 15. </li><li> Calcolare la riduzione delle a- e b-onda ampiezze in percentuale dopo la fase di esposizione rispetto all&#39;ultima misura prima dell&#39;esposizione. Confrontare la riduzione delle ERG-ampiezze dopo 45 min - al termine del periodo di esposizione - ERG misurata prima dell&#39;applicazione. </li><li> Confrontare l&#39;onda a- e b- al termine della fase di washout all&#39;ampiezza corrispondente prima dell&#39;esposizione ad esaminare una possibile ripresa. </li><li> Per l&#39;analisi statistica, utilizzare il software statistico JMP software o software SPSS. Calcolare i dati tutto come media ± deviazione standard. Stimare significatività con il test statistico appropriato. NOTA: Questi test potrebbero essere diverse a seconda del campo di applicazione sperimentale. In questa impostazione, utilizzare paired t-test di Student. </li></ol>

<ol><li>Varma, D. D., Cugati, S., Lee, A. W., Chen, C. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+review+of+central+retinal+artery+occlusion%3A+clinical+presentation+and+management%5BTitle%5D)+AND+%22Eye+%28Lond%29%22%5BJournal%5D)">A review of central retinal artery occlusion: clinical presentation and management.</a> Eye (Lond). 27, 688-697 (2013).</li>
<li>Resch, M., Suveges, I., Nemeth, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hypertension-related+eye+disorders%29%5BTitle%5D)+AND+%22Orv+Hetil%22%5BJournal%5D)">Hypertension-related eye disorders).</a> Orv Hetil. 154, 1773-1780 (2013).</li>
<li>Feltgen, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multicenter+study+of+the+European+Assessment+Group+for+Lysis+in+the+Eye+%28EAGLE%29+for+the+treatment+of+central+retinal+artery+occlusion%3A+design+issues+and+implications.+EAGLE+Study+report+no.+1+%3A+EAGLE+Study+report+no.+1%5BTitle%5D)+AND+%22Graefes+Arch+Clin+Exp+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Multicenter study of the European Assessment Group for Lysis in the Eye (EAGLE) for the treatment of central retinal artery occlusion: design issues and implications. EAGLE Study report no. 1 : EAGLE Study report no. 1.</a> Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 244, 950-956 (2006).</li>
<li>Dreyer, E. B., Zurakowski, D., Schumer, R. A., Podos, S. M., Lipton, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Elevated+glutamate+levels+in+the+vitreous+body+of+humans+and+monkeys+with+glaucoma%5BTitle%5D)+AND+%22Arch+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Elevated glutamate levels in the vitreous body of humans and monkeys with glaucoma.</a> Arch Ophthalmol. 114, 299-305 (1996).</li>
<li>Bertram, K. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Amino-acid+levels+in+subretinal+and+vitreous+fluid+of+patients+with+retinal+detachment%5BTitle%5D)+AND+%22Eye+%28Lond%29%22%5BJournal%5D)">Amino-acid levels in subretinal and vitreous fluid of patients with retinal detachment.</a> Eye (Lond). 22, 582-589 (2008).</li>
<li>Diederen, R. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Increased+glutamate+levels+in+the+vitreous+of+patients+with+retinal+detachment%29%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Eye+Res%22%5BJournal%5D)">Increased glutamate levels in the vitreous of patients with retinal detachment).</a> Exp Eye Res. 83, 45-50 (2006).</li>
<li>Ientile, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Apoptosis+and+necrosis+occurring+in+excitotoxic+cell+death+in+isolated+chick+embryo+retina%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurochem%22%5BJournal%5D)">Apoptosis and necrosis occurring in excitotoxic cell death in isolated chick embryo retina.</a> J Neurochem. 79, 71-78 (2001).</li>
<li>Mali, R. S., Cheng, M., Chintala, S. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Plasminogen+activators+promote+excitotoxicity-induced+retinal+damage%5BTitle%5D)+AND+%22FASEB+J%22%5BJournal%5D)">Plasminogen activators promote excitotoxicity-induced retinal damage.</a> FASEB J. 19, 1280-1289 (2005).</li>
<li>Ambati, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Elevated+gamma-aminobutyric+acid%2C+glutamate%2C+and+vascular+endothelial+growth+factor+levels+in+the+vitreous+of+patients+with+proliferative+diabetic+retinopathy%5BTitle%5D)+AND+%22Arch+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Elevated gamma-aminobutyric acid, glutamate, and vascular endothelial growth factor levels in the vitreous of patients with proliferative diabetic retinopathy.</a> Arch Ophthalmol. 115, 1161-1166 (1997).</li>
<li>Vorwerk, C. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Depression+of+retinal+glutamate+transporter+function+leads+to+elevated+intravitreal+glutamate+levels+and+ganglion+cell+death%5BTitle%5D)+AND+%22Invest+Ophthalmol+Vis+Sci%22%5BJournal%5D)">Depression of retinal glutamate transporter function leads to elevated intravitreal glutamate levels and ganglion cell death.</a> Invest Ophthalmol Vis Sci. 41, 3615-3621 (2000).</li>
<li>Schultheiss, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dulbecco%27s+Modified+Eagle+Medium+is+neuroprotective+when+compared+to+standard+vitrectomy+irrigation+solution%5BTitle%5D)+AND+%22Graefes+Arch+Clin+Exp+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Dulbecco's Modified Eagle Medium is neuroprotective when compared to standard vitrectomy irrigation solution.</a> Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 251, 1613-1619 (2013).</li>
<li>Januschowski, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparing+the+effects+of+two+different+irrigation+solutions+on+an+isolated+perfused+vertebrate+retina%5BTitle%5D)+AND+%22Ophthalmic+Res%22%5BJournal%5D)">Comparing the effects of two different irrigation solutions on an isolated perfused vertebrate retina.</a> Ophthalmic Res. 48, 59-66 (2012).</li>
<li>Sickel, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Respiratory+and+Electrical+Responses+to+Light+Simulation+in+the+Retina+of+the+Frog%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Respiratory and Electrical Responses to Light Simulation in the Retina of the Frog.</a> Science. 148, 648-651 (1965).</li>
<li>Luke, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+isolated+perfused+bovine+retina--a+sensitive+tool+for+pharmacological+research+on+retinal+function.+Brain+research%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+research+protocols%22%5BJournal%5D)">The isolated perfused bovine retina--a sensitive tool for pharmacological research on retinal function. Brain research.</a> Brain research protocols. 16, 27-36 (2005).</li>
<li>Henderson, A. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Testing+experimental+data+for+univariate+normality%5BTitle%5D)+AND+%22Clinica+chimica+acta%3B+international+journal+of+clinical+chemistry%22%5BJournal%5D)">Testing experimental data for univariate normality.</a> Clinica chimica acta; international journal of clinical chemistry. 366, 112-129 (2006).</li>
<li>Alt, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+neuroprotective+potential+of+Rho-kinase+inhibition+in+promoting+cell+survival+and+reducing+reactive+gliosis+in+response+to+hypoxia+in+isolated+bovine+retina%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Physiol+Biochem%22%5BJournal%5D)">The neuroprotective potential of Rho-kinase inhibition in promoting cell survival and reducing reactive gliosis in response to hypoxia in isolated bovine retina.</a> Cell Physiol Biochem. 32, 218-234 (2013).</li>
<li>Green, D. G., Kapousta-Bruneau, N. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrophysiological+properties+of+a+new+isolated+rat+retina+preparation%5BTitle%5D)+AND+%22Vision+research%22%5BJournal%5D)">Electrophysiological properties of a new isolated rat retina preparation.</a> Vision research. 39, 2165-2177 (1999).</li>
<li>Richter, S. H., Garner, J. P., Wurbel, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Environmental+standardization%3A+cure+or+cause+of+poor+reproducibility+in+animal+experiments%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Environmental standardization: cure or cause of poor reproducibility in animal experiments.</a> Nat Methods. 6, 257-261 (2009).</li>
<li>Dutescu, R. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multifocal+ERG+recordings+under+visual+control+of+the+stimulated+fundus+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Investigative+ophthalmology+%26+visual+science%22%5BJournal%5D)">Multifocal ERG recordings under visual control of the stimulated fundus in mice.</a> Investigative ophthalmology & visual science. 54, 2582-2589 (2013).</li>
<li>Perlman, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Testing+retinal+toxicity+of+drugs+in+animal+models+using+electrophysiological+and+morphological+techniques%5BTitle%5D)+AND+%22Doc+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Testing retinal toxicity of drugs in animal models using electrophysiological and morphological techniques.</a> Doc Ophthalmol. 118, 3-28 (2009).</li>
<li>Mukhopadhyay, A., Gupta, A., Mukherjee, S., Chaudhuri, K., Ray, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Did+myocilin+evolve+from+two+different+primordial+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Vis%22%5BJournal%5D)">Did myocilin evolve from two different primordial proteins.</a> Mol Vis. 8, 271-279 (2002).</li>
<li>Januschowski, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluating+retinal+toxicity+of+a+new+heavy+intraocular+dye%2C+using+a+model+of+perfused+and+isolated+retinal+cultures+of+bovine+and+human+origin%5BTitle%5D)+AND+%22Graefes+Arch+Clin+Exp+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Evaluating retinal toxicity of a new heavy intraocular dye, using a model of perfused and isolated retinal cultures of bovine and human origin.</a> Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 250, 1013-1022 (2012).</li>
<li>Luke, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+isolated+perfused+bovine+retina--a+sensitive+tool+for+pharmacological+research+on+retinal+function%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Res+Brain+Res+Protoc%22%5BJournal%5D)">The isolated perfused bovine retina--a sensitive tool for pharmacological research on retinal function.</a> Brain Res Brain Res Protoc. 16, 27-36 (2005).</li>
</ol>

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

In questo studio, è stato trovato un significativo rilievo l&#39;ampiezza dell&#39;onda b dopo 45 min di ipossia. Tale riduzione è ancora significativo dopo la fase di lavaggio. Potrebbe essere osservato un effetto simile sul potenziale fotorecettori. I risultati sono supportati da altri dati pubblicati 16 e ci danno l&#39;opportunità di studiare i possibili effetti neuroprotettivi dopo ipossia. Dopo 45 min di esposizione 250 mM glutammato, abbiamo tro...

Neuroprotezione è stato un forte campo di indagine nella ricerca oculistico negli ultimi decenni. La retina è una rete neuronale altamente sensibile che dipende sensibilmente l&#39;ossigenazione ed è fortemente influenzato dal metabolismo delle sue cellule circostanti. Le principali patologie oculari legate a danni delle cellule nervose sono occlusioni vascolari retiniche, glaucoma e distacco della retina. Occlusione dell&#39;arteria retinica, come esempio per occlusione vascolare retinica, porta ad una improvvisa perdita della vista a causa di ipossia della retina interna 1. E &#39;spesso associata a patologie vascolari generali 2 e porta ad una perdita visiva permanente 1, con solo l&#39;8% dei pazienti sottoposti acuità visiva significativamente 1. Sebbene fibrinolisi arteriosa è stato suggerito come opzione di trattamento, il beneficio non può essere mostrato in uno studio clinico randomizzato 3. Glaucoma e distacco della retinaentrambi hanno un aumento della concentrazione di glutammato 4-6. Glutammato in condizioni fisiologiche è rilevato come un trasmettitore eccitatorio tutto il sistema nervoso centrale e della retina interna 7,8. Elevati livelli di glutammato sono stati trovati non solo in glaucoma e distacco della retina 5,6 ma anche in retinopatia diabetica proliferativa 9. Un aumento glutammato eventualmente porta alla eccitotossicità e, di conseguenza, il danno delle cellule nervose 10. Nella maggior parte dei casi di distacco della retina e in alcuni casi di chirurgia proliferative retinopatia diabetica sulla retina (pars plana vitrectomia) sono necessari. Durante pars plana vitrectomia manipolazione meccanica, luce brillante della fibra ottica o sollecitazione di taglio esercitata da elevate portate di soluzioni per l&#39;irrigazione durante lunghi operazioni esercitare un ulteriore stress sulla retina 11,12. Tutte le malattie di cui hanno in comune che la patologia è localizzato al Retinun solo e posa la comunità oftalmologico con la sfida di trovare il modo di proteggere la retina come un sistema neurosensoriale. L&#39;elettroretinogramma (ERG) è il metodo standard per la valutazione della funzione in vivo fotorecettore (a-onda) e la funzione della retina interna (b-onda). L&#39;ERG è misurata con argento-elettrodi introdotti nella cornea e gli occhi sono stimolata da un crescente livello di luce per rilevare i difetti di barre o coni o nella retina interna. Diversi difetti nella retina possono essere rilevate da cambiamenti di ampiezza (la forza della risposta) o la latenza (la risposta-intervallo-to-) della ERG. Diverse ERG protocollo e metodi di misurazione (pattern-ERG, multifocale-ERG o campo chiaro ERG) permettono un&#39;ulteriore differenziazione dei difetti. La tecnica della retina isolato è stato introdotto recentemente, consentendo di valutare gli effetti sulla retina senza interferenze da esempio un animale di studioreazioni generali 13,14. E &#39;stato lo scopo di questo studio per valutare e introdurre un modello di stress definito e standardizzato per ipossia e lo stress glutammato sulla retina isolata superfused. Quindi, speriamo di gettare le basi per futuri studi sugli effetti neuroprotettivi di alcuni agenti o soluzioni di irrigazione intraoculari.

<table><tbody><tr><td>120 mM NaCl&nbsp;</td><td>Merck Pharma, Germania</td><td>1.064.041.000</td><td></td></tr><tr><td>2 mM KCl,&nbsp; &nbsp;</td><td>Merck Pharma, Germania</td><td>1.050.010.250</td><td></td></tr><tr><td>0,1 mM MgCl2,&nbsp;</td><td>Merck Pharma, Germania</td><td>58.330.250</td><td></td></tr><tr><td>0,15 mM CaCl2</td><td>Merck Pharma, Germania</td><td>111 TA106282</td><td></td></tr><tr><td>1,5 mM NaH2PO4/13,5 mM Na2HPO4&nbsp; &nbsp;</td><td>Merck Pharma, Germania</td><td>1.065.860.500</td><td></td></tr><tr><td>5 mM di glucosio</td><td>Merck Pharma, Germania</td><td>40.741.000</td><td></td></tr></tbody></table>

glutammato e ipossia come modello di stress per l&#39;isolato perfuso vertebrati retina

Glutamate and Hypoxia as a Stress Model for the Isolated Perfused Vertebrate Retina

Neuroprotezione è stato un forte campo di indagine nella ricerca oculistico negli ultimi decenni e colpisce malattie come il glaucoma, occlusione vascolare retinica, distacco della retina, e la retinopatia diabetica. E &#39;stato l&#39;oggetto di questo studio di introdurre un modello di stress test standardizzato per il futuro terapeutico preclinica. Retine bovini sono stati preparati e perfusi con una soluzione standard di ossigeno satura, e l&#39;ERG è stato registrato. Dopo la registrazione di b-onde stabili, ipossia (puro N 2) o di stress glutammato (250 micron glutammato) è stata esercitata per 45 min. Per studiare gli effetti sulla funzione dei fotorecettori da solo, 1 aspartato mM è stato aggiunto per ottenere un-onde. ERG-recupero è stato monitorato per 75 min. Per ipossia, una diminuzione in onda ampiezza del 87,0% è stato osservato (p &lt;0.01) dopo un tempo di esposizione di 45 min (diminuzione del 36,5% dopo la fine del washout p = 0,03). Inoltre, un dim inizialefacilità di ampiezze b-onda di 87.23% è stato registrato, che ha raggiunto la significatività statistica (p &lt;0.01, diminuzione del 25,5% alla fine del lavaggio, p = 0,03). Per 250 micron glutammato, una prima riduzione di 7,8% ampiezze un onda (p&gt; 0.05) seguita da una riduzione di 1,9% (p&gt; 0.05). Una riduzione del 83,7% delle ampiezze b-onda (p &lt;0,01) è stato osservato; dopo un lavaggio di 75 min la riduzione è stata del 2,3% (p = 0.62). In questo studio, un modello standardizzato di stress è presentato che può essere utile per identificare i possibili effetti neuroprotettivi in ​​futuro.

Dopo 1 ora di perfusione dei preparati della retina con una soluzione standard di ossigeno-saturi (Figure 1A e B) ERG-ampiezze mostravano stabilizzazione e meno variazione ampiezze tra singole misurazioni. pH, pressione osmotica, la temperatura, e pO 2 (tranne per il test ipossia) sono state mantenute costanti per tutte le prove. Per isolare il segnale fotorecettore dal segnale della retina interna, 1 mM aspartato è stato aggiunto alla soluzione standard per sopprime...

Con questo studio, si introduce un modello di stress standardizzato per l&#39;isolato retina superfused bovina per futuri test terapeutici preclinica. L&#39;effetto di una ipossia (puro N 2) o di stress glutammato (250 uM glutammato) sulla funzione della retina rappresentato da a- e ampiezze b-onda è stata valutata.

Glutammato e ipossia come modello di stress per l&#39;isolato perfuso vertebrati Retina

Neuroprotection has been a strong field of investigation in ophthalmological research in the past decades and affects diseases such as glaucoma, retinal ...

L'obiettivo generale del seguente esperimento è introdurre lo stress da glutammato o da ipossia come modello potenziale per testare l'efficacia di agenti neuroprotettivi. Questo viene ottenuto innanzitutto recuperando occhi bovini freschi enucleati ed eseguendo una rapida, sebbene traumatica, escissione della retina. Successivamente, dopo aver incubato le retine in una soluzione nutritiva speciale, si utilizzano elettrodi per registrare una serie di elettroretinogrammi (ERG) stabili di base.Quindi, il glutammato viene aggiunto alla soluzione nutritiva oppure l'ipossia viene indotta aggiungendo azoto al 100% al posto dell'ossigeno. Infine, viene registrato un ERG per osservare l'effetto dello stress da glutammato o dell'ipossia sulle ampiezze delle onde A e B. I risultati mostrano un cambiamento della funzione retinica quando la retina è esposta a ipossia o stress da glutammato, evidenziato dalle registrazioni dell'ERG.Il principale vantaggio di questa tecnica rispetto ai metodi esistenti come la coltura cellulare o le registrazioni di ERG in vivo è che è possibile eseguire test funzionali, a differenza delle colture cellulari, senza la variabilità derivante dalla posizione dell'elettrodo o dall'anestesia generale, come avviene negli esperimenti in vivo. Questo metodo può contribuire a rispondere a domande fondamentali nel campo farmacologico, ad esempio testando agenti neuroprotettivi. Le implicazioni di questa tecnica si estendono alla terapia o alla diagnosi di malattie acute o croniche.Ora è possibile testare potenziali agenti neuroprotettivi utilizzando questo modello di stress. Sebbene questo metodo possa fornire informazioni utili nel campo dell'oftalmologia, può essere applicato anche ad altre aree mediche, come le malattie neurodegenerative. In generale, le persone alle prime armi con questa tecnica potrebbero incontrare difficoltà a causa della tecnica di preparazione.Il modello è stato sviluppato dal Professor Sickle a Colonia, ed egli era un grande neurofisiologo. Dopo aver ottenuto occhi bovini da un animale macellato, collocarli in soluzione di Sickle a temperatura ambiente per il trasporto in laboratorio, utilizzando una luce rossa tenue in condizioni di adattamento al buio. Rimuovere la parte anteriore dell'occhio, quindi effettuare un'incisione equatoriale a circa quattro millimetri posteriormente al limbo ed asportare in un unico pezzo cornea, iride, corpo ciliare e cristallino.Mantenere le retine nella soluzione a mezzaluna. Successivamente, allentare meccanicamente le aderenze del vitreo alla superficie retinica e rimuovere il vitreo dalla coppa oculare aperta. Quindi dividere l'occhio in quattro quadranti ed utilizzare un punch TR per ottenere aree rotonde di circa sette millimetri di diametro.Separare delicatamente la retina dall'epitelio pigmentato e posizionarla su un dispositivo di registrazione; trasferire la retina su una griglia e utilizzare un anello di plastica per fissarla sugli elettrodi. Quindi posizionare il dispositivo di registrazione all'interno di una scatola protetta dalla luce. Prima di effettuare le misurazioni, adattare la retina al buio, quindi applicare filtri neutri calibrati e uno stimolo luminoso di 10 microsecondi. A intervalli di cinque minuti, applicare un singolo lampo bianco allo xenon a 1 hertz per la stimolazione, con un'intensità di 6,3, corrispondente all'intensità luminosa o MLX sulla superficie retinica.Dopo il periodo di adattamento al buio con perfusione costante, misurare le ampiezze del segnale elettrico fino a quando non vengono registrate ampiezze stabili dell'onda a. Per iniziare il test, sostituire l'ossigeno puro con azoto puro per testare l'ipossia oppure con glutammato 250 micromolare. Registrare le risposte elettriche ogni cinque minuti per 45 minuti.Misurare l'ampiezza dell'onda B dal minimo dell'onda A fino al picco dell'onda B per studiare l'effetto dell'ipossia o del glutammato sul potenziale dei fotoricettori. In condizioni scotopiche, aggiungere un millimolare di aspartato alla soluzione nutritiva per sopprimere l'onda B; per valutare statisticamente i dati, utilizzare il test di Kolmogorov-Smirnov per verificare la distribuzione normale di tutti i dati. Calcolare la riduzione delle ampiezze delle onde A e B e le percentuali dopo la fase di esposizione.In confronto all'ultima misurazione effettuata prima dell'esposizione, confrontare la riduzione delle ampiezze del potenziale evocato retinico (ERG) dopo 45 minuti, al termine del periodo di esposizione, con l'ERG misurato prima dell'applicazione. Confrontare l'onda a e l'onda b al termine della fase di lavaggio con le corrispondenti ampiezze prima dell'esposizione. Per esaminare un eventuale recupero ai fini dell'analisi statistica, utilizzare il software statistico JMP o il software SPSS.Calcolare i dati ottenuti come media più o meno deviazione standard. Utilizzare il test statistico appropriato per stimare la significatività, come mostrato qui. Dopo un'ora di perfusione dei preparati retinici con soluzione standard satura di ossigeno, l'ampiezza del potenziale evocato retinico (ERG) si è stabilizzata e ha mostrato una minore variabilità tra le singole misurazioni.Il pH, la pressione osmotica, la temperatura e la PO2 sono stati mantenuti costanti in tutti i test. Per isolare il segnale dei fotoricettori dal segnale della retina interna, è stato aggiunto un millimolare di aspartato alla soluzione standard per sopprimere l'onda B. In condizioni ipossiche, è stato osservato un decremento dell'ampiezza dell'onda A dell'87,0%.Dopo un tempo di esposizione di 45 minuti al termine del lavaggio, è stato osservato un calo del 36,5%. Tale riduzione è risultata statisticamente significativa. Inoltre, in queste condizioni è stata registrata una riduzione iniziale statisticamente significativa delle ampiezze dell'onda B pari all'87,23%.È stata osservata una riduzione statisticamente significativa del 25,5%. Dopo l'esposizione a 250 micromolar di glutammato, è stata rilevata, al termine dell'intervallo di tempo definito, una riduzione non significativa dell'ampiezza delle onde del 7,8%. A questa è seguita una riduzione non significativa del 1,9%. Infine, sono state registrate riduzioni delle ampiezze dell'ERG dell'83,7% e, al termine del lavaggio, è stata osservata una ripresa della BWA, con una riduzione non significativa del 2,3% dopo 75 minuti di perfusione con soluzione standard.Nel tentativo di eseguire questa procedura, è importante ricordare di monitorare costantemente la baseline del tuo ERG. Dopo aver seguito questa procedura, è possibile testare agenti neuroprotettivi o tossici per rispondere a ulteriori domande, come ad esempio la tossicità dopo il suo sviluppo. Questa tecnica ha aperto la strada ai ricercatori nel campo della XV con l'elettrofisiologia per esplorare le variazioni dell'ERG in un modello standardizzato.

glutamate-hypoxia-as-stress-model-for-isolated-perfused-vertebrate

Research

Ricerca

JoVE Journal

Medicine

Medicina

La retina roditore è da tempo riconosciuta come finestra accessibile al cervello. In questa nota tecnica fornendo un protocollo che utilizza il modello murino di retinopatia indotta da ossigeno per studiare i meccanismi che portano al fallimento di rigenerazione vascolare nel sistema nervoso centrale dopo lesione ischemica. Il sistema descritto può anche essere sfruttata per esplorare le strategie per promuovere la ricrescita dei vasi sanguigni funzionali all'interno della retina e del SNC.

Assessment of Vascular rigenerazione nel SNC Utilizzo del Retina mouse

Un protocollo per culture fetta organotipica entorhino-ippocampale, che permette di riprodurre molti aspetti della lesione cerebrale ischemico, è presentato. Studiando cambiamenti del neurovasculature in aggiunta ai cambiamenti nei neuroni, questo protocollo è uno strumento versatile per studiare i cambiamenti plastici in tessuto neurale dopo l'infortunio.

L&#39;analisi di neurovascolare ritocca in Entorhino-ippocampali Culture Organotipica Slice

'Il danno da ischemia-riperfusione (IR) è associato a un alto tasso di morbilità e mortalità. L'obiettivo del modello in vitro di deprivazione e riossigenazione di ossigeno-glucosio (OGD-R) qui descritto è valutare gli effetti del danno da riperfusione ischemica su una varietà di cellule, in particolare nelle cellule endoteliali della barriera emato-encefalica (BBB).

L&#39;ossigeno-glucosio Deprivazione e riossigenazione come<em&gt; In Vitro</em&gt; Ischemia-riperfusione Injury modello per lo studio barriera sanguigna del cervello Erettile

Questo articolo descrive una procedura per l'induzione della retina danno da ischemia-riperfusione da elevata pressione intraoculare nei topi. Retina danno da ischemia-riperfusione da elevata pressione intraoculare serve per modellare patologie umane caratterizzate da ossigeno compromessa e consegna dei nutrienti nella retina, consentendo ai ricercatori di esaminare i potenziali meccanismi cellulari e trattamenti per le malattie umane dell'unità neurovascolare della retina.

Un modello murino di retina ischemia-riperfusione lesioni a causa di aumento della pressione intraoculare

A basso costo, il sistema facile da usare e potente è stabilito per valutare i potenziali trattamenti che potrebbero migliorare barriera emato-retinica violazione indotta da istamina. perdita dei vasi sanguigni, l'attivazione delle cellule Müller e la continuità dei processi neuronali sono utilizzati per valutare la risposta al danno e la sua inversione con un potenziale farmaco, Lipoxin A4.

Un modello acuta della retina per la valutazione sanguigni della retina barriera breccia e potenziali farmaci per il trattamento

Ictus ischemico è un evento complesso in cui il contributo specifico degli astrociti nella regione colpite del cervello esposto alla privazione di ossigeno glucosio (OGD) è difficile da studiare. Questo articolo introduce una metodologia per ottenere gli astrociti isolati e studiare la loro reattività e la proliferazione in condizioni OGD.

Monitoraggio del Astrocyte reattività e proliferazione in Vitro in condizioni ischemiche-come

Questo protocollo descrive un nuovo metodo per lo studio di una forma di neurostimolazione chimica del wholemount ratto retine in vitro con il glutammato, un neurotrasmettitore. Neurostimolazione chimica è un'alternativa promettente per la neurostimolazione elettrica convenzionale dei neuroni retinici per il trattamento di cecità irreversibile causata da malattie degenerative dei fotorecettori.

Metodologia per la neuromodulazione Biomimetic chimico di retine del ratto con il neurotrasmettitore glutammato In Vitro

Qui, descriviamo un modello di topo di ischemia retinica mediante occlusione bilaterale transitoria comune dell'arteria carotide usando suture semplici e un morsetto. Questo modello può essere utile per comprendere i meccanismi patologici dell'ischemia retinica causati da anomalie cardiovascolari.

Un modello murino di lesione retinica ischemica indotta dall'occlusione dell'arteria carotide comune transiente

Questo protocollo presenta e descrive i passaggi per l'isolamento, la dissezione, la coltivazione e la colorazione degli espianti retinici ottenuti da un topo adulto. Questo metodo è utile come modello ex vivo per lo studio di diverse malattie neurovascolari retiniche come la retinopatia diabetica.

Espianto retinico della retina del topo adulto come modello ex vivo per lo studio delle malattie neurovascolari retiniche

Questo protocollo modella il danno da ischemia-riperfusione retinica in un occhio di topo inducendo l'ischemia retinica tramite incannulamento della camera anteriore e aumento della pressione intraoculare, seguito dalla normalizzazione della pressione intraoculare per avviare la riperfusione.

Induzione di lesioni da ischemia-riperfusione retinica in un modello di occhio murino

Qui, forniamo una metodologia dettagliata per isolare la retina dall'occhio del topo per una sperimentazione ex vivo estesa. Questo protocollo sottolinea l'importanza di rendere accessibile questo approccio tecnicamente impegnativo per i ricercatori che desiderano sfruttare le vie di ricerca offerte dal mantenimento della glia retinica in situ nel tessuto vivo.

Un modello di espianto ex vivo per lo studio delle interazioni gliali nella retina del topo

Scopri un modello di stress retinico con glutammato e ipossia per testare agenti neuroprotettivi usando la retina bovina isolata. Questo metodo standardizzato misura le risposte elettroretinografiche.

Glutammato e ipossia come modello di stress per l'isolato perfuso vertebrati Retina

Esplora altri video