Name: Topo Pneumonectomia Modello di crescita compensatoria Lung (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-12-17T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 22 s
Description: Impara il modello di pneumonectomia nel topo per studiare la crescita polmonare compensatoria. Questa tecnica chirurgica permette di indurre la rigenerazione alveolare e analizzare i meccanismi molecolari della crescita polmonare.

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Gli autori ringraziano la Divisione dei Servizi Veterinari del Cincinnati Children's Hospital per la loro assistenza. Questo manoscritto è stato supportato dal National Institutes of Health K12 HD028827. Anna Perl PhD ha insegnato agli autori questa procedura chirurgica.

Uso affermazione Animal:: NOTA Tutte le procedure di questo studio sono stati condotti con l&#39;approvazione e seguendo le linee guida del Istituzionale uso degli animali e del Comitato Care (IACUC) dell&#39;Ospedale dei bambini di Cincinnati. Otto settimane di età C57BL / 6J maschi sono stati ottenuti da Jackson Laboratories (Bar Harbor, ME) e permesso di ambientarsi per una settimana prima dell&#39;uso. Fino chirurgia, gli animali sono stati alloggiati in una struttura senza barriere-patogeno e fornito chow autoclavato e filtrata ad acqua libdium. Ogni gabbia mouse è stato alimentato con aria dedicato e acqua e sale sono stati mantenuti su una 12 hr ciclo giorno-notte. Dopo il recupero da un intervento chirurgico, i topi sono stati mantenuti in gabbie con cime filtrati, a condizione autoclavato chow ad libidum, e purché filtrata l&#39;acqua da una bottiglia d&#39;acqua. 1. Preparazione degli strumenti <ol><li> Rendere 6 divaricatori pelle utilizzando clip e perni di carta. Twist raddrizzò graffette sui gambi di perni di carta, lgronda un filo di acciaio diritto 5 cm da una estremità e fare un unico 0,5 centimetri gancio a forma di &quot;U&quot; alla fine del filo. </li><li> Fare circa 15 x 15 cm teli chirurgici quadrati con involucro di plastica. Preparare un condimento per ogni mouse. Mettere una torre di carta tra ogni involucro. </li><li> Sterilizzare tutti gli strumenti chirurgici con una pila di piastrelle 12 x 12 pollici sughero, garze e tamponi di cotone con punta. </li></ol> 2. Preparazione del mouse <ol><li> Indurre l&#39;anestesia con il 2% isoflurano. Pesare animale. </li><li> In un&#39;area dedicata, la preparazione chirurgica radersi torace sinistro e collo con il rasoio elettrico. </li><li> Applicare una goccia di lacrima artificiale unguento agli occhi del topo. </li><li> Decontaminare collo e torace sinistro con clorexidina e alcool isopropilico. Ripetere altre due volte. </li></ol> 3. mouse oro-tracheale intubazione e ventilazione meccanica <ol><li> Avere un luogo non sterile tecnico chirurgico la supina mouse nell&#39;area chirurgica pre-riscaldato.</li><li> Confermare profondità dell&#39;anestesia documentando la mancanza di una risposta a zampa pizzico. </li><li> Dopo aver lavato le mani e indossare abiti chirurgica, maschera e cappello, indossare guanti chirurgici sterili. </li><li> Dopo drappeggio e con tecnica asettica, fare una incisione verticale 1 centimetro sopra l&#39;anteriore a metà collo per esporre la laringe. Leggermente ritrarre i muscoli cinghia con curve dentata 10 centimetri pinze ed esporre la laringe e della trachea, diffondendo i muscoli cinghia con la punta di un paio di forbici diritte. </li><li> Via orale inserire un 22 G smussato punta angiocatheter nel mid-trachea (Figura 1A) e confermare visivamente il posizionamento (Figura 1B). Mantenere l&#39;anestesia e ventilare con 1-3% isoflurano attraverso roditori ventilatore (225 ml per ictus; 200 Stokes al minuto). Impiegare un limite pressione di 15 cm H 2 O. </li></ol> 4. mouse Pneumonectomia <ol><li> Posare il mouse in decubito laterale destro con la parte posteriore del topo di frontel&#39;operatore (lato sinistro in alto). Utilizzare un involucro di plastica autosigillante come un telino sterile. Taglio attraverso il drappo, utilizzare smussato forbici curve a punta per fare un taglio di due centimetri lungo parallelo alle costole al 4 ° e 5 ° spazio intercostale. Inserire la punta ricurva forbici spuntate e sezionare la pelle dalle costole sottostanti e muscoli intercostali. </li><li> Ritrarre la pelle con quattro divaricatori per esporre un quadrato di 1,5 x 1,5 centimetri finestra chirurgica (Figura 2A). Fissare i divaricatori alla scheda di sughero. </li><li> Sezionare fino a costine con pinze curve, e utilizzare una punta delle pinze curve di entrare nella cavità toracica. </li><li> Utilizzando la punta smussata micro-forbici, usare la lama inferiore per entrare nella cavità toracica. Eseguire un&#39;incisione 0,5 centimetri tra le costole e ripetere nella direzione opposta. </li><li> Utilizzando i due divaricatori rimanenti, aprire il torace nel asse anteriore-posteriore e la sicurezza dei divaricatori per la bacheca di sughero (Figura 2B). </li> &lt;li&gt; Uso curve pinze a punta smussata nella mano sinistra, afferrare il polmone sinistro e spostare la parte superiore del polmone sinistro lateralmente e inferiormente attraverso la toracotomia fino l&#39;arteria polmonare sinistra e dei bronchi sono esposti (Figura 3A, B). </li><li> Tenendo titanio applicatore microclip vascolare caricata nella mano destra con il corpo dell&#39;applicatore nel palmo e punta ricurva punta lontano dalla palma (Figura 3C), far scorrere la punta dell&#39;applicatore nel torace lungo la curvatura della faccia posteriore sinistra polmone e clip il bronco sinistro e l&#39;arteria polmonare (Figura 3D). </li><li> Rimuovere l&#39;applicatore ma mantenere il polmone sinistro retratto. Afferrare le smussati punta micro-forbici con la mano destra e tagliare il bronchi e polmonare distale al clip e rimuovere polmone sinistro (Figura 3E). </li><li> Rimuovere i divaricatori costali. </li><li> Utilizzare le pinze smussato curve a pizzicare 1 cm di pelle inferiori alla incisiacceso ma sopra del livello del diaframma e inserire un G angiocatheter 24 attraverso la pelle e nella cavità toracica sinistra (Figura 4A, B). </li><li> Utilizzare 5-0 prolene sutura di inserire due punti staccati in tutto il 4 ° e 5 ° costole per chiudere la cavità toracica. </li><li> Rimuovere i divaricatori pelle. Utilizzare due serie di pinze per approssimare la pelle lungo la lunghezza dell&#39;incisione e incollare la pelle chiusa. </li><li> Collegare una siringa luer-lock 3 ml al angiocatheter e rimuovere l&#39;aria residua applicando delicata aspirazione e il ritiro della angiocatheter. </li><li> Incollare l&#39;incisione collo chiuso con due set di pinze come prima. </li></ol> 5. mouse Sham Pneumonectomia <ol><li> Esporre il polmone sinistro, come indicato nel protocollo &quot;Mouse Pneumonectomia&quot;. Sollevare la gabbia toracica con una pinza smussato curve per consentire all&#39;aria nella cavità toracica sinistra (Figura 5A, B). </li><li> Posizionare un G angiocatheter 24 nel tho di sinistraRacic cavità come sopra facendo attenzione a non danneggiare il polmone sinistro. </li><li> Utilizzando 5-0 prolene sutura e facendo attenzione a non forare il polmone (figura 5C), posizionare due lunghezze di materiale di sutura nel 3 ° / 4 ° e 5 ° / 6 ° intercapedini costola (Figura 5D). Mettere entrambe le lunghezze di materiale di sutura prima di legare per ridurre i rischi di ernia del polmone sinistro. Legare il materiale di sutura per fare due punti interrotti (Figura 5E). </li><li> Incollare la pelle sopra l&#39;incisione toracica, rimuovere l&#39;aria residua con il angiocatheter, e incollare l&#39;incisione collo come sopra. </li></ol> 6. Rianimazione, Analgesia, e recupero <ol><li> Spegnere il isoflurano, e somministrare 0,1 mg / kg di buprenorfina e 0,5 ml di soluzione fisiologica normale per via sottocutanea. </li><li> Quando respirazioni spontanee riprendono, rimuovere il tubo endotracheale. </li><li> Osservare il mouse fino a quando non è di nuovo ambulatoriale. Walking tipicamente resumes diversi minuti dopo la rimozione del tubo endotracheale. </li><li> Posizionare il mouse in un 27 ° C incubatore (umidificato, 25% di ossigeno) per recuperare O / N. NOTA: Abbiamo posto diverse pellets di chow bagnato con acqua sul pavimento della gabbia per le prime 24 ore dopo l&#39;intervento chirurgico. </li><li> Somministrare 0,1 mg / kg di buprenorfina per via intraperitoneale due volte al giorno per tre giorni dopo l&#39;intervento. Fare attenzione a non aprire il sito chirurgico durante la manipolazione degli animali. </li></ol> 7. Monitoraggio mouse <ol><li> Pesare topi a 1, 3, 5, e 7 giorni dopo l&#39;intervento chirurgico. </li></ol>

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<li>Dane, D. M., Yilmaz, C., Estrera, A. S., Hsia, C. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Separating+in+vivo+mechanical+stimuli+for+postpneumonectomy+compensation%3A+physiological+assessment%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+applied+physiology%22%5BJournal%5D)">Separating in vivo mechanical stimuli for postpneumonectomy compensation: physiological assessment.</a> Journal of applied physiology. 114, 99-106 (2013).</li>
<li>Mortola, J. P., Magnante, D., Saetta, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expiratory+pattern+of+newborn+mammals%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+applied+physiology%22%5BJournal%5D)">Expiratory pattern of newborn mammals.</a> Journal of applied physiology. 58, 528-533 (1985).</li>
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</ol>

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Abbiamo fornito la descrizione più dettagliata delle procedure PNX del mouse PNX e mouse farsa segnalati fino ad oggi. Abbiamo fatto il lettore a conoscenza di alcuni dei problemi comuni che gli investigatori di apprendimento la procedura comunemente incontrano, e abbiamo delineato diverse tecniche sviluppate dal nostro laboratorio per mitigare queste trappole. Altri laboratori che utilizzano questo modello possono sviluppare altre modifiche tecnica o utilizzare strumenti diversi. Nel valutare le differenze nelle tecnic...

La funzione principale del polmone è di fornire ossigeno e anidride carbonica scambio tra un organismo e l&#39;atmosfera. Negli esseri umani, una serie di condizioni congenite ed acquisite portano a ridurre la superficie del polmone che si traduce in deficit della funzionalità respiratoria. Anche se una serie di terapie come corticosteroidi inalatori, broncodilatatori, ossigeno supplementare, e la ventilazione meccanica cronica sono utilizzati per attenuare le conseguenze di funzionalità polmonare ridotta 1-3, la terapia ideale per queste condizioni dovrebbe promuovere la ricrescita del tessuto polmonare funzionale - cioè, polmone rigenerazione. Rigenerazione dei tessuti dei mammiferi è stata ben documentata. L&#39;africano Mouse spinosi può rigenerare ampie aree di pelle senza formazione di cicatrici 4. La falange distale nell&#39;uomo può rigenerarsi dopo una lesione o amputazione 5-7. Dopo pneumonectomia (PNX), la crescita del polmone di compensazione avviene nei topi 8, ratti 9, dogs 10, e gli esseri umani 11. Per definizione, la crescita del polmone di compensazione coinvolge non solo l&#39;espansione di spazi aerei esistenti, ma ri-septation di questi spazi aerei allargata con l&#39;espansione del microcircolo associato 12. Analisi di espressione genica ha dimostrato che questo modello ricapitola molti degli eventi di segnalazione dello sviluppo polmonare 13. Quattro settimane dopo il mouse PNX, superficie alveolare è equivalente a quella di fittizie animali operati 14. In questo manoscritto, descriviamo la PNX mouse e procedure PNX fittizi.

<table><tbody><tr><td>Applicatore di clip vascolari da 6 pollici</td><td>Teleflex Medical (WECK)</td><td>137062</td><td></td></tr><tr><td>Horizon piccola clip rossa in titanio</td><td>Teleflex Medical (WECK)</td><td>1201</td><td></td></tr><tr><td>Pinza curva da 12 cm</td><td>Fine Science Tools</td><td>11003-12</td><td></td></tr><tr><td>Pinza Graefe seghettata curva da 10 cm</td><td>Fine Science Tools</td><td>11052-10</td><td></td></tr><tr><td>Porta</td> <td>aghi CastroviejoFine Science Tools</td><td>12565-14</td><td></td></tr><tr><td>Forbici per strabismo dritte da 9 cm (punta smussata)</td><td>Fine Science Tools</td><td>14075-09</td><td></td></tr><tr><td>Forbici fini dritte da 8,5 cm temprate</td><td>Fine Science Tools</td><td>14090-09</td><td></td></tr><tr><td>Forbici a molla dritte e smussate Cohan-Vannas</td><td>Fine Science Tools</td><td>15000-12</td><td></td></tr><tr><td>Colla per pelle</td><td>Gluture</td><td>32046</td><td></td></tr><tr><td>22 G Angiocatheter</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>24 G Angiocatheter</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>3 ml Siringa</td><td></td><td></td><td></td>Luer lock</tr><tr><td>4 Divaricatori</td><td></td><td></td><td></td>corti</tr><tr><td>2 Divaricatori</td><td></td><td></td><td></td>lunghi</tr><tr><td>5-0 Prolene su ago da taglio curvo</td><td>Ethicon</td><td>8698G</td><td></td></tr><tr><td>Siringa da 0,5 ml su ago</td><td></td><td></td><td></td> da 27 G</tr><tr><td>Soluzione salina</td><td></td><td></td><td></td>normale</tr><tr><td>Buprenorfina</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Press-n-Seal wrap</td><td>Glad Products Company</td><td></td><td></td></tr><tr><td>12 x 12 pollici Sughero bordo pila</td><td>Ufficio Deposito</td><td></td><td></td></tr><tr><td>70% etanolo</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Betadine</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ventilatore per topi</td><td>Hugo Sachs Elektronnik</td><td>Minivent Tipo 845</td><td></td></tr><tr><td>Vaporizzatore isoflurano</td><td>OHMEDA</td><td>Excel 210 SE</td><td></td></tr><tr><td>Unguento lacrimale artificiale</td><td>Puralube</td><td>NDC: 17033-211-38</td><td></td></tr></tbody></table>

topo pneumonectomia modello di crescita compensatoria lung

Mouse Pneumonectomy Model of Compensatory Lung Growth

Negli esseri umani, la riparazione e il rimodellamento interrotti del polmone danneggiato contribuiscono a una serie di disturbi polmonari acuti e cronici che possono portare alla disabilità o alla morte. I modelli animali di riparazione e rigenerazione polmonare basati sulla lesione sono limitati da risposte specifiche della lesione, rendendo difficile differenziare i cambiamenti relativi alla risposta e alla risoluzione della lesione dai cambiamenti relativi alla riparazione e alla rigenerazione polmonare. Tuttavia, l'uso di modelli animali per identificare queste vie di segnalazione di riparazione e rigenerazione è fondamentale per lo sviluppo di nuove terapie volte a migliorare la funzione polmonare a seguito di lesioni polmonari. Il modello di pneumonectomia murina utilizza la crescita polmonare compensatoria per isolare quei segnali di riparazione e rigenerazione al fine di definire più chiaramente i meccanismi di resettazione alveolare. Qui, descriviamo la nostra tecnica per eseguire la pneumonectomia di topo e la pneumonectomia fittizia. Questa tecnica può essere utilizzata in combinazione con il tracciamento del lignaggio o altri modelli murini transgenici per definire il meccanismo molecolare e cellulare della riparazione e rigenerazione polmonare.

. Una trama di PNX e sham gestito pesi del mouse viene fornito in figura 6 Nelle nostre mani, la sopravvivenza è costantemente 95-100% per entrambi PNX e sham pneumonectomia. Per una descrizione di come il polmone destro re-cresce in questo modello e il decorso previsto, rimandiamo il lettore di manoscritti di Gibney et al. 15 e Wang et al. 14 Diversi problemi comuni devono essere evitati per eseguire con successo le procedure sham pne...

La pneumonectomia di topo è un modello comunemente impiegato di crescita polmonare compensatoria. Questa procedura può essere utilizzata in combinazione con il tracciamento del lignaggio o con modelli murini transgenici per chiarire i meccanismi sottostanti.

Topo Pneumonectomia Modello di crescita compensatoria Lung

In humans, disrupted repair and remodeling of injured lung contributes to a host of acute and chronic lung disorders which may ultimately lead to ...

Lo scopo di questa procedura è eseguire una pneumonectomia sinistra per indurre la crescita compensatoria del polmone destro. Questo viene ottenuto innanzitutto praticando una toracotomia sinistra ed esponendo l'ilo sinistro. Il secondo passaggio della procedura consiste nella legatura del collo dell'ilo sinistro e dell'arteria polmonare sinistra.Il terzo passaggio consiste nel rimuovere il polmone sinistro. L'ultimo passaggio è chiudere la toracotomia. Il modello di pneumonectomia nel topo per lo studio della crescita compensatoria del polmone può essere utilizzato in combinazione con altre tecniche biometriche o biochimiche per chiarire i meccanismi della crescita e rigenerazione alveolare.Questo metodo può rispondere ad alcune domande fondamentali nel campo dello sviluppo e della rigenerazione polmonare, ad esempio quali sono i principali processi cellulari coinvolti nella settazione e quali sono i processi molecolari cellulari essenziali per riavviare la settazione? In generale, i ricercatori alle prime armi con questa tecnica incontreranno difficoltà in una delle diverse fasi chiave. Potrebbero avere problemi con la canulazione della trachea.Potrebbero avere difficoltà a creare un’adeguata finestra chirurgica. Potrebbero avere difficoltà nell'identificare l'ilo e nel clamparlo, e potrebbero anche avere difficoltà nell'evitare lesioni al polmone sinistro durante la toracotomia fittizia. La procedura sarà dimostrata da Shang Lu, assistente di laboratorio senior del mio laboratorio. Per iniziare, dopo aver indotto l'anestesia nel topo con il 2% di isoflurano, rasare l'area del torace sinistro e del collo con un rasoio elettrico, applicare un unguento oftalmico artificiale agli occhi del topo e decontaminare l'area passando un batuffolo con clorhexidina per tre volte, seguito da alcol isopropilico per tre volte, seguito nuovamente da clorhexidina.Tre volte. Confermare la profondità dell'anestesia documentando l'assenza di risposta a una leggera pinzatura dopo aver effettuato un'incisione verticale di un centimetro sulla regione anteriore centrale del collo per esporre la laringe; utilizzare pinze seghettate da 10 centimetri per ritrarre leggermente i muscoli sternoioidei. Successivamente, utilizzare le punte di un paio di forbici dritte per separare i muscoli sternoioidei.Successivamente, inserire per via orale un catetere angio a punta ottusa da 22 gauge nella trachea mediale e confermare visivamente il posizionamento attraverso l'incisione. Posizionare il topo su un ventilatore per roditori e mantenere l'anestesia con il 2% di isoflurano e un limite di pressione di 15 centimetri d'acqua. Posizionare il topo ancora anestetizzato in posizione laterale di decubito destro, con il lato dorsale sinistro rivolto verso l'operatore.Posizionare una pellicola di plastica autoadesiva sul corpo del mouse come campo sterile. Utilizzare forbici curve con punta smussata per effettuare un taglio lungo due centimetri parallelo alle costole nello spazio intercostale tra la quarta e la quinta costa. Inserire quindi le punte delle forbici ed eseguire la dissezione del tessuto cutaneo separandolo dalle costole sottostanti e dai muscoli intercostali.Posizionare quattro retrattori sulla cute per creare una finestra chirurgica di 1,5 per 1,5 centimetri. Fissare ciascun retrattor al supporto di sughero. Utilizzare pinze curve per dissezionare fino alle costole e quindi effettuare una dissezione ottusa degli spazi intercostali.Per esporre la quarta e la quinta costola, utilizzare una punta di una pinza curva per praticare un foro ed entrare nella cavità toracica. Ora usare la lama inferiore di un paio di forbici microchirurgiche con punta smussata per premere lungo l'incisione finché la lama inferiore non entra nella cavità toracica. Praticare un'incisione di 0,5 centimetri tra le costole e quindi ripetere nella direzione opposta.Quindi aprire il torace lungo l'asse anteriore-posteriore inserendo due retrattori e fissandoli al sughero. Ora caricare l'applicatore di microclip. Successivamente, utilizzando pinze curve con punta ottusa tenute nella mano non dominante, afferrare il polmone sinistro e spostarne la porzione superiore in direzione laterale e inferiore attraverso la toracotomia fino a esporre l'arteria polmonare sinistra e il bronco.Quindi tenere il replicatore di clip microvascolari in titanio caricato nella mano dominante, con il corpo dell'applicatore nel palmo e la punta curva rivolta lontano dal palmo. Far scivolare la punta dell'applicatore nel torace lungo la curvatura della faccia posteriore del polmone sinistro e applicare una clip alla bronchio sinistro e all'arteria polmonare. Rimuovere l'applicatore ma mantenere il polmone sinistro retratto.Con la mano destra, afferrare le forbici microchirurgiche a punta ottusa e recidere la bronchio e l'arteria polmonare a valle del clip, quindi rimuovere il polmone sinistro. Dopo aver rimosso il polmone, estrarre i retrattori delle costole. Successivamente, utilizzare la pinza curva a punta ottusa per sollevare un centimetro di cute inferiore all'incisione ma al di sopra del diaframma, e inserire un catetere angio da 24 gauge attraverso la cute e nella cavità toracica sinistra.Successivamente, posizionare due suture interrotte in polipropilene 5-0 intorno alla quarta e quinta costola. Per chiudere la cavità toracica, rimuovere i retrattori cutanei e utilizzare due paia di pinze per avvicinare i lembi cutanei lungo tutta l'estensione dell'incisione, quindi applicare un collante tissutale per sigillare la pelle. Infine, collegare una siringa Luer-lock da tre millilitri al catetere angio e rimuovere l'aria residua esercitando una leggera aspirazione mentre si estrae il catetere angio.Terminare incollando il collo, chiudendo l'incisione con due paia di pinze come nella chiusura dell'incisione toracica. Dopo aver esposto il polmone sinistro del topo anestetizzato come mostrato in precedenza, utilizzare pinze curve smussate per sollevare la gabbia toracica e permettere l'ingresso di aria nella cavità toracica sinistra; inserire un catetere angio da 24 gauge nel torace sinistro come mostrato in precedenza, avendo cura di non danneggiare il polmone sinistro. Utilizzare una sutura in proleno 5-0 avendo cura di non perforare il polmone.Posizionare due tratti di materiale di sutura nello spazio tra la terza e la quarta costola e tra la quinta e la sesta costola. Posizionare entrambi i tratti di materiale di sutura prima di annodarli per ridurre il rischio di erniazione del polmone sinistro. Annodare il materiale di sutura per eseguire due punti separati.Incollare la pelle sopra l'incisione toracica. Rimuovere l'aria residua con il catetere angiografico e incollare l'incisione al collo come mostrato in precedenza. Spegnere l'isoflurano e somministrare 0,1 milligrammi per chilogrammo di buprenorfina e 0,5 millilitri di soluzione salina fisiologica per via sottocutanea.Quando la respirazione spontanea riprende, rimuovere il tubo endotracheale. Osservare il topo fino a quando non riesce a camminare. La capacità di camminare di solito riprende alcuni minuti dopo la rimozione del tubo endotracheale.Somministrare 0,1 milligrammi per chilogrammo di buprenorfina mediante iniezione intraperitoneale due volte al giorno per tre giorni dopo l'intervento chirurgico. Monitorare attentamente l'animale durante questi tre giorni e fare attenzione a non aprire la sede chirurgica durante la manipolazione degli animali. Questa immagine mostra la perdita di peso dopo l'intervento chirurgico.24 ore dopo l'intervento chirurgico, i topi sottoposti a pneumectomia perderanno in media 1,5 grammi e i topi del gruppo sham perderanno in media 1,1 grammi. Entrambi i gruppi recuperano il peso preoperatorio entro il terzo giorno postoperatorio. Questa immagine fluorescente mostra la colorazione immunofluorescente della tropoelastina nel lobo accessorio in condizioni di controllo.Qui viene mostrata l'immunofluorescenza della tropoelastina del lobo accessorio 72 ore dopo la pneumotomia: gli spazi aerei esistenti sono aumentati. Questa immagine finale di immunofluorescenza della TRO Elastina mostra il lobo accessorio quattro settimane dopo la pneumotomia. Si noti la crescita del lobo e la reazione.Dopo aver visionato questo video, si dovrebbe avere una buona comprensione di come eseguire il modello di pneumonectomia nel topo per lo studio della crescita compensativa del polmone e di come eseguire la toracotomia fittizia, utilizzata come controllo per questa procedura.

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