Un modello di ratto di fibrillazione ventricolare e Rianimazione dal convenzionale chiuso petto Tecnica

L'obiettivo generale di questa procedura è quello di ottenere informazioni sulla fisiopatologia dell'arresto cardiaco e di esplorare nuove strategie di rianimazione. Ciò si ottiene prima strumentando chirurgicamente l'animale per misurare vari parametri fisiologici che vengono raccolti in un sistema di acquisizione dati per la successiva analisi offline, l'arresto cardiaco viene prodotto inducendo elettricamente la fibrillazione ventricolare o vf. Per questa fase, un filo G precurvato viene inserito nella vena giugulare esterna destra e fatto avanzare nel ventricolo destro, consentendo l'erogazione di una corrente elettrica per l'induzione della vf.

Dopo otto minuti di FV non trattata, la compressione toracica viene avviata utilizzando un dispositivo a pistone, aumentando gradualmente la profondità di compressione mentre si sposta l'animale in una posizione a pistone che produce la massima pressione diastolica aortica. Dopo otto minuti di compressione toracica, si tenta la defibrillazione erogando scosse elettriche all'animale. Gli animali che vengono rianimati con successo vengono monitorati per valutare gli effetti degli interventi di rianimazione sulla post-rianimazione, sulla funzione emodinamica e metabolica e sulla sopravvivenza.

Sebbene questo metodo possa fornire informazioni su nuove strategie di rianimazione, può anche essere utile per esplorare i meccanismi sottostanti con cui le terapie funzionano a livello cellulare attraverso l'analisi dei tessuti e la valutazione dei marcatori circolanti. Il modello rosso dell'arresto cardiaco e della rianimazione che vedrete oggi è stato sviluppato nel 1988 da Irene Bonta e dal mio mentore, il professor Max Harry Wilde. Il modello è stato ampiamente utilizzato in tutto il mondo e crediamo che la rappresentazione visiva del modello sarà utile per gli scienziati.

Gli studenti interessati al campo della rianimazione cardiopolmonare, questo modello di ratto di rianimazione toracica chiusa con arresto cardiaco può essere utile per approfondire la nostra comprensione della fisiopatologia dell'arresto cardiaco e lo sviluppo di nuovi approcci di rianimazione Per facilitare l'avanzamento del catetere PE 25 nell'aorta toracica discendente, iniziare praticando un'incisione di due centimetri sull'area inguinale destra di un ratto adulto anestetizzato con un angolo di 90 gradi rispetto al suo solco. Successivamente, utilizzare un paio di emostatici per smussare, sezionare il tessuto connettivo circostante, esporre i vasi femorali e il nervo utilizzare una pinza di microdissezione curva per esporre la guaina vascolare attorno ai vasi. Quindi viaggiare con una pinza per microdissezione sotto la vena e il nervo dell'arteria femorale e sostenerli con un angolo di 90 gradi rispetto ai vasi quando sia i vasi che il nervo sono supportati.

Usa un altro paio di pinze per microdissezione curve per separare l'arteria dal nervo e dalla vena a una lunghezza di circa un centimetro. Una volta separati, inserire una legatura distale e una prossimale sotto i vasi. Usa un nodo da chirurgo per stringere saldamente la legatura distale, seguito da due nodi singoli.

Stringere la legatura prossimale con un nodo da chirurgo allentato. Successivamente, praticare una piccola incisione sul vaso vicino alla legatura distale con un angolo di 60 gradi rispetto al vaso con un paio di forbici da microdissezione che tagliano circa un quarto dell'area della sezione trasversale. Quindi inserire un ago calibro 22 con una punta smussata e piegata con un angolo di 70 gradi nell'apertura del vaso mentre si tira delicatamente la legatura distale con gli emostati per stabilizzare il vaso.

Ora solleva delicatamente l'ago introduttore per esporre il lume e guida il catetere PE 25 sotto l'introduttore, rimuovendo l'ago. Una volta inserita la punta del catetere, far avanzare il catetere fino al segno di otto centimetri per posizionare la punta nell'aorta toracica discendente, quindi stringere la legatura prossimale aggiungendo altri due nodi singoli che fissano il catetere al vaso. Questa ripresa del collo mostra una vena giugulare esterna destra precedentemente cannulata per esporre la trachea.

Successivamente, utilizzare gli emostatici per espandere l'incisione verso la linea mediana e quindi utilizzare gli emostatici per smussare ulteriormente, sezionare le sezioni ioide sternale, tiroide sternale e mastoidea dei muscoli cefalici CTO. Utilizzare uno spanditessuto per mantenere l'esposizione della trachea. Quindi estrarre la linguetta per allungare le vie aeree con un avanzamento di presa deciso.

Una cannula tracheale a cinque F montata su uno stiletto con una punta rivolta verso l'alto, che cerca di entrare nelle vie aeree superiori, nelle corde vocali e nella trachea. Il successo dell'intubazione tracheale può quindi essere confermato dal riconoscimento della caratteristica forma d'onda capnografica. Prima di iniziare il protocollo di arresto cardiaco e rianimazione, misurare la gittata cardiaca e le varie pressioni per verificare la stabilità emodinamica.

Una volta registrati i valori basali, rimuovere il rubinetto di arresto a tre vie dal catetere in poliuretano a tre F inserito nella vena giugulare esterna destra dell'animale e far avanzare la punta più morbida del filo G, di circa sette centimetri. Cercare di entrare nel ventricolo destro monitorando l'ECG e la pressione aortica. Quindi, accendi il generatore CA a 60 hertz e aumenta gradualmente la corrente monitorando la pressione aortica.

Mantenere la corrente per tre minuti e l'intensità dopo due minuti. Spegnere la corrente dopo tre minuti, quindi rimuovere il cavo guida. Richiudere il catetere giugulare con un rubinetto di arresto a tre vie e rimuovere l'ago di messa a terra.

Dopo aver lasciato che la FV continui spontaneamente per la durata desiderata, accendere il ventilatore e aumentare gradualmente la profondità di compressione da zero a 10 millimetri. Durante il primo minuto di compressione toracica, muovere leggermente l'animale lateralmente e sroc. Cercando di trovare una posizione che produca la massima pressione diastolica aortica per una data profondità di compressione.

Quindi continuare ad aumentare la profondità di compressione durante il secondo minuto fino a raggiungere una pressione diastolica aortica target. Mantenere le compressioni toraciche per la durata desiderata prima di tentare la defibrillazione. Immediatamente prima di completare le compressioni toraciche, applicare il gel conduttivo su una paletta di defibrillazione personalizzata per ratti di un defibrillatore a forma d'onda bifasica disponibile in commercio e caricare il defibrillatore.

Quindi interrompere la compressione toracica e dopo aver verificato che il cuore rimanga in FV con la lettura dell'ECG, erogare una scossa elettrica di cinque joule attraverso la parete toracica. Osservare il ritorno di un ECG organizzato elettricamente con impulsi aortici e una pressione aortica media maggiore o uguale a 25 millimetri. Mercurio. Se la pressione aortica media è inferiore a 25 millimetri, il mercurio riprende le compressioni toraciche per altri 30-60 secondi indipendentemente dal ritmo elettrico.

Determinare l'esito della rianimazione al termine dei cicli di compressione della defibrillazione in base al diagramma di flusso. Aumentare quindi la velocità di ventilazione da 25 a 60 al minuto dopo il ritorno della circolazione spontanea, abbassando la frazione di ossigeno inspirato da 1,0 a 0,5 Dopo 15 minuti di circolazione spontanea, monitorare infine l'animale fino al suo completo recupero. Utilizzando questo protocollo, è stato dimostrato che gli inibitori IDE e a V 4 4 5 4 B dello scambiatore di idrogeno di sodio hanno consentito lo sviluppo di una pressione diastolica aortica predefinita con una minore profondità di compressione toracica, producendo un rapporto tra pressione di perfusione coronarica e profondità più elevato dopo la rianimazione.

Entrambi i composti hanno migliorato la disfunzione miocardica, ma la sopravvivenza è stata maggiore con Carri Ride, come illustrato nella figura, suggerendo che l'IDE è un inibitore dell'isoforma uno dello scambiatore di idrogeno di sodio più efficace rispetto a un VE per la rianimazione da arresto cardiaco. In questo modello di ratto, una volta padroneggiata, la strumentazione chirurgica può essere completata in 90 minuti. Seguendo questa procedura, il sangue può essere raccolto per la misurazione dei marcatori di organi e organi Le lesioni cardiache possono essere raccolte per l'analisi molecolare.

Dopo aver visto questo video, avrai una buona comprensione di come indurre quando innescare la fibrillazione in rosso, come eseguire efficacemente la rianimazione toracica ravvicinata, come ristabilire l'attività cardiaca e identificare le variabili da monitorare per garantire il successo dell'esperimento.