Name: Un modello di ratto di fibrillazione ventricolare e Rianimazione dal convenzionale chiuso petto Tecnica (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-04-26T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 47 s
Description: Scopri un modello di ratto per fibrillazione ventricolare e rianimazione con compressione toracica chiusa. Questo metodo permette di studiare la fisiopatologia dell'arresto cardiaco e valutare nuove strategie terapeutiche.

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Gli autori desiderano ringraziare il Dr. Wanchun Tang MD, MCCM, FCCP, FAHA e Jena Cahoon del Weil Institute of Critical Care Medicine di Rancho Mirage, CA. per i loro contributi allo schema del protocollo di rianimazione e per aver contribuito a formare il chirurgo roditore (LL). La preparazione di questo articolo è stata in parte supportata da un dono in memoria del SKC in pensione della Marina degli Stati Uniti Robert W. Ply da parte della signora Monica Ply per la ricerca sulle malattie cardiache e sul morbo di Parkinson e da un fondo discrezionale del Dipartimento di Medicina della Rosalind Franklin University of Medicine and Science.

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Fasi critiche nel protocollo Ci sono passaggi critici nel protocollo. Quando padronanza, la preparazione e il protocollo, agire come succintamente descritte di seguito. La preparazione chirurgica è rapida, avanzando cateteri rapidamente attraverso piccole incisioni attivazione spasmo minimo o nullo nave e posizionando le punte del catetere come previsto, seguita da intubazione tracheale successo dopo una singola o pochi tentativo (s); pertanto, completando la preparazione in ≈ 90 mi...

Vicino a 360.000 persone negli Stati Uniti 1 e molti altri in tutto il mondo 2 soffrono di un episodio di arresto cardiaco improvviso ogni anno. I tentativi di ripristinare la vita non richiedono solo che l&#39;attività cardiaca essere ristabilita, ma che il danno agli organi vitali essere evitati, ridotti al minimo, o invertiti. Tecniche di rianimazione cardiopolmonare correnti producono un tasso di rianimazione iniziale di circa il 30%; tuttavia, la sopravvivenza alla dimissione ospedaliera è solo il 5% 1. Disfunzione miocardica, disfunzione neurologica, infiammazione sistemica, malattie intercorrenti, o una combinazione di questi si verificano conto post-rianimazione per la gran parte dei pazienti che muoiono a dispetto di cambio iniziale di circolazione. Pertanto, una maggiore comprensione degli approcci fisiopatologia e romanzo rianimazione sottostanti sono urgentemente necessari per aumentare il tasso di rianimazione iniziale e successiva di sopravvivenza con funzione di organo intatto. Modalità Animalls di arresto cardiaco hanno un ruolo fondamentale nello sviluppo di nuove terapie di rianimazione, fornendo approfondimenti sulla fisiopatologia di arresto cardiaco e rianimazione e offrendo mezzi pratici per concettualizzare e testare nuovi interventi prima che possano essere testati negli esseri umani 3. Il modello di ratto di petto chiuso rianimazione cardiopolmonare (CPR) descritto qui ha svolto un ruolo importante. Il modello è stato sviluppato nel 1988 da Irene von Planta - ricercatore al momento - ed i suoi collaboratori 4 nel laboratorio del professor Max Harry Weil MD, Ph.D. presso l&#39;Università degli Studi di Scienze della Salute (rinominato Rosalind Franklin University of Medicine and Science nel 2004) ed è stato ampiamente utilizzato nel campo della rianimazione prevalentemente dai compagni del professor Weil e dei loro allievi. Il modello simula un episodio di arresto cardiaco improvviso con rianimazione tentato con tecniche di RCP convenzionale e comprende quindi inductione di fibrillazione ventricolare (VF), fornendo una corrente elettrica al endocardio del ventricolo destro e prestazione di CPR petto chiusa da un dispositivo a pistone ad azionamento pneumatico mentre contemporaneamente fornire ventilazione a pressione positiva con gas arricchita di ossigeno. Cessazione di VF si ottiene consegna transtoracica di scosse elettriche. Il modello di ratto un equilibrio tra modelli sviluppati negli animali di grandi dimensioni (ad esempio, suini) e modelli sviluppati in animali più piccoli (ad esempio, i topi) che consente l&#39;esplorazione di nuovi concetti di ricerca in modo ben standardizzata, riproducibile ed efficiente con l&#39;accesso a un robusto inventario delle misure pertinenti. Il modello è particolarmente utile nelle fasi iniziali della ricerca per esplorare nuovi concetti e esaminare gli effetti confondenti prima realizzazione di studi in modelli animali più grandi che sono più costosi, ma di maggiore impatto traslazionale. Una ricerca su Medline per tutti gli articoli peer-reviewed la rendicontazione,modello di ratto analoghe sui avendo VF come meccanismo di arresto cardiaco e una qualche forma di rianimazione torace chiuso ha rivelato un totale di 69 ulteriori studi originali utilizzando il modello da quando è stato pubblicato nel 1988 4. Le aree di ricerca comprendono aspetti fisiopatologici della rianimazione 5-17, fattori che influenzano i risultati 18-30, il ruolo di interventi farmacologici esame vasopressori 31-43, agenti tampone 44, agenti inotropi 45, agenti volti a infarto o protezione cerebrale 46-70, e anche gli effetti delle cellule staminali mesenchimali 71-73. Il modello e il protocollo descritto in questo articolo non è al momento in uso presso l&#39;Istituto di rianimazione. Eppure, ci sono più possibilità di &quot;personalizzare&quot; il modello basato sulle funzionalità disponibili ai singoli ricercatori e gli obiettivi degli studi.

<table><tbody><tr><td>Pentobarbital di sodio</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P3761</td><td>http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/p3761?lang=en&region=US</td></tr><tr><td>Termistore rettale</td><td>BIOPAC Systems, INC</td><td>TSD202A</td><td>http://www.biopac.com/fast-response-thermistor</td></tr><tr><td>Elettrodo ad ago biopolare concentrico 25 mm TP</td><td>BIOPAC Systems, INC</td><td>EL451</td><td>http://www.biopac.com/needle-electrode-concentric-25mm</td></tr><tr><td>Tubo in polietilene PE25</td><td>Solomon Scientific</td><td>BPE-T25</td><td>http://www.solsci.com/products/polyethylene-pe-tubing</td></tr><tr><td>26GA adattatore per tronchetto luer femmina</td><td>Access Technologies</td><td>LSA-26</td><td>http://www.norfolkaccess.com/needles.html</td></tr><tr><td>Rubinetti con connessioni luer; 3 vie; blocco maschio, non sterile</td><td>Cole-Parmer</td><td>UX-30600-02</td><td>http://www.coleparmer.com/Product/Large_bore_3_way _male_lock_stopcocks _ 10_pack_Non_sterile/EW-30600-23</td></tr><tr><td>Trasduttore di pressione monouso TruWave</td><td>Edwards Lifesciences</td><td>PX600I&nbsp;</td><td>http://www.edwards.com/products/pressuremonitoring/Pages/truwavemodels.aspx?truwave=1</td></tr><tr><td>Termocoppia di tipo T</td><td>Physitemp Instruments</td><td>IT-18</td><td>http://www.physitemp.com/products/probesandwire/flexprobes.html</td></tr><tr><td>Catetere pediatrico venoso centrale.</td><td>Cuoco Medico&nbsp;</td><td>C-PUM-301J</td><td>https://www.cookmedical.com/product/-/catalog/display?ds=cc_pum1lp_webds</td></tr><tr><td>Catetere succlavia per via endovenosa Abbocath-T (14 g x 5 1/2")</td><td>Hospira</td><td>453527</td><td>http://www.hospira.com/products_and_services/iv_sets/045350427</td></tr><tr><td>Novametrix Medical Systems, monitor CO2 a infrarossi</td><td>Soma Technology, Inc.</td><td>7100 CO2SMO&nbsp;</td><td>http://www.somatechnology.com/MedicalProducts/novametrix_respironics_co2smo_ 7100.asp</td></tr><tr><td>Ventilatore per piccoli animali Harvard modello 683</td><td>Harvard Apparatus</td><td>555282</td><td>http://www.harvardapparatus.com/webapp/wcs/stores/servlet/haisku2_10001_11051_44453_-1_ HAI_ProductDetail_N_37322_37323</td></tr><tr><td>Guidafilo a doppia punta flessibile</td><td>Cook Medical&nbsp;</td><td>C-DOC-15-40-0-2</td><td>https://www.cookmedical.com/product/-/catalog/display?ds=cc_doc_webds</td></tr><tr><td>Sensore di spostamento AC LVDT ad alta precisione</td><td>Omega Engineering</td><td>LD320-25</td><td></td></tr><tr><td>http://www.omega.com/pptst/LD320.html Defibrillatore/monitor HeartStart XL</td><td>Phillips Medical Systems</td><td>M4735A</td><td>http://www.healthcare.philips.com/main/products/resuscitation/products/xl/</td></tr> <tr><td>Graefe micro pinza per dissezione 4 pollici</td><td>Roboz&nbsp;</td><td>RS-5135</td><td>http://shopping.roboz.com/Surgical-Instrument-Online-Shopping?search=RS-5135</td></tr><tr><td>pinza per micro dissezione Graefe 4 pollici con denti</td><td>Roboz&nbsp;</td><td>RS-5157</td><td>http://shopping.roboz.com/Surgical-Instrument-Online-Shopping?search=RS-5157</td></tr><tr><td>Forbici per microdissezione extra fini 4 pollici</td><td>Roboz&nbsp;</td><td>RS-5882</td><td></td></tr><tr><td>Divaricatore tissutale Heiss</td> http://shopping.roboz.com/micro-scissors-micro-forceps-groups/micro-dissecting-scissors/Micro-Dissecting-Scissors-4-Straight-Sharp-Sharp <td>Fine Science Tools&nbsp;</td><td>17011-10</td><td>http://www.finescience.com/Special-Pages/Products.aspx?ProductId=321&CategoryId=134&amp; lang=it-IT</td></tr><tr><td>Emostatici a punta di curva Crile</td><td>Strumenti di Fine Science&nbsp;</td><td>13005-14</td><td>http://www.finescience.com/Special-Pages/Products.aspx?ProductId=372</td></tr><tr><td>Cucitrice cutanea Visistat&nbsp;</td><td>Teleflex Incorporated</td><td>528135</td><td>http://www.teleflexsurgicalcatalog.com/weck/products/9936</td></tr><tr><td>Sutura di seta intrecciata, 3-0</td><td>Harvard Apparatus</td><td>517706</td><td>http://www.harvardapparatus.com/webapp/wcs/stores/servlet/haisku2_10001_11051_43051_-1_ HAI_ProductDetail_N_37916_37936</td></tr><tr><td>Soluzione di betadina</td><td>Butler Schein</td><td>3660</td><td>https://www.henryscheinvet.com/</td></tr> <tr><td>Soluzione salina sterile, sacchetti da 250 ml</td><td>Fisher</td><td>50-700-069</td><td>http://www.fishersci.com/ecomm/servlet/itemdetail?catnum=50700069&storeId=10652</td></tr><tr><td>Iniezione di eparina sodica, USP</td><td>Fresenius Kabi</td><td>504201</td><td>http://fkusa-products-catalog.com/files/assets/basic-html/page25.html</td></tr><tr><td>Loxicom (meloxicam)</td><td>Butler Schein</td><td>045-321</td><td>https://www.henryscheinvet.com/</td></tr> <tr><td>Computer per gittata cardiaca a termodiluizione per piccoli animali</td><td>N/A</td><td>N/A Sviluppato</td><td>su misura presso il Resuscitation Institute utilizzando l'hardware National Instruments e il software LabVIEW</td></tr><tr><td>Sistema di acquisizione e analisi dati analogico-digitale</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>Sviluppato su misura presso il Resuscitation Institute utilizzando l'hardware e il software LabVIEW di National Instruments</td></tr><tr><td>Dispositivo a pistone ad azionamento pneumatico e controllato elettronicamente per la compressione toracica in piccoli animali</td><td>N/A</td><td>N/A Sviluppato</td><td>su misura presso il Weil Institute of Critical Care</td></tr><tr><td>Medicine Generatore di corrente alternata a 60 Hz</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>Sviluppato su misura presso il Weil Institute of Critical Care Medicina</td></tr></tbody></table>

un modello di ratto di fibrillazione ventricolare e rianimazione dal convenzionale chiuso petto tecnica

A Rat Model of Ventricular Fibrillation and Resuscitation by Conventional Closed-chest Technique

Qui viene descritto un modello di ratto di fibrillazione ventricolare indotta elettricamente seguita da rianimazione cardiaca utilizzando una tecnica a torace chiuso che incorpora i componenti di base della rianimazione cardiopolmonare nell'uomo. Il modello è stato sviluppato nel 1988 ed è stato utilizzato in circa 70 pubblicazioni peer-reviewed che esaminano una miriade di aspetti della rianimazione, tra cui la sua fisiologia e fisiopatologia, i determinanti della risuscettibilità, gli interventi farmacologici e persino gli effetti delle terapie cellulari. Il modello presentato in questa presentazione include: (1) cateterismo vascolare per misurare la pressione aortica e atriale destra, per misurare la gittata cardiaca mediante termodiluizione e per indurre elettricamente la fibrillazione ventricolare; e (2) intubazione tracheale per ventilazione a pressione positiva con gas arricchito di ossigeno e valutazione della CO2 di fine espirazione. Una tipica sequenza di intervento comprende: (1) induzione elettrica della fibrillazione ventricolare, (2) compressione toracica utilizzando un dispositivo meccanico a pistone in concomitanza con la ventilazione a pressione positiva che eroga gas arricchito di ossigeno, (3) scosse elettriche per terminare la fibrillazione ventricolare e ristabilire l'attività cardiaca, (4) valutazione della funzione emodinamica e metabolica post-rianimazione e (5) valutazione della sopravvivenza e del recupero della funzione d'organo. È disponibile un robusto inventario di misurazioni che include, a titolo esemplificativo ma non esaustivo, misurazioni emodinamiche, metaboliche e tissutali. Il modello si è rivelato molto efficace nello sviluppo di nuovi concetti di rianimazione e nell'esame di nuovi interventi terapeutici prima della loro sperimentazione in modelli animali di arresto cardiaco e rianimazione più grandi e più rilevanti dal punto di vista traslazionale.

Il modello di ratto descritto qui è stato recentemente utilizzato per confrontare gli effetti di due inibitori della sarcolemmal sodio-idrogeno scambiatore isoforma 1 (NHE-1) sulla funzione miocardica e emodinamica durante la compressione del torace e post-rianimazione 61. In precedenza era stato riferito che NHE-1-inibitori riducono la riperfusione miocardica limitando citosolico sodio-indotta e sovraccarico di calcio mitocondriale, e in tal modo contribuire a preservare sinistra distensibilità ventricolare ...

Questo articolo descrive un modello di ratto di fibrillazione ventricolare indotta elettricamente e rianimazione mediante compressione toracica, ventilazione e somministrazione di scosse elettriche che simula un episodio di arresto cardiaco improvviso e rianimazione cardiopolmonare convenzionale. Il modello consente di raccogliere informazioni sulla fisiopatologia dell'arresto cardiaco e di esplorare nuove strategie di rianimazione.

Un modello di ratto di fibrillazione ventricolare e Rianimazione dal convenzionale chiuso petto Tecnica

A rat model of electrically-induced ventricular fibrillation followed by cardiac resuscitation using a closed chest technique that incorporates the basic ...

L'obiettivo generale di questa procedura è quello di ottenere informazioni sulla fisiopatologia dell'arresto cardiaco e di esplorare nuove strategie di rianimazione. Ciò si ottiene prima strumentando chirurgicamente l'animale per misurare vari parametri fisiologici che vengono raccolti in un sistema di acquisizione dati per la successiva analisi offline, l'arresto cardiaco viene prodotto inducendo elettricamente la fibrillazione ventricolare o vf. Per questa fase, un filo G precurvato viene inserito nella vena giugulare esterna destra e fatto avanzare nel ventricolo destro, consentendo l'erogazione di una corrente elettrica per l'induzione della vf.Dopo otto minuti di FV non trattata, la compressione toracica viene avviata utilizzando un dispositivo a pistone, aumentando gradualmente la profondità di compressione mentre si sposta l'animale in una posizione a pistone che produce la massima pressione diastolica aortica. Dopo otto minuti di compressione toracica, si tenta la defibrillazione erogando scosse elettriche all'animale. Gli animali che vengono rianimati con successo vengono monitorati per valutare gli effetti degli interventi di rianimazione sulla post-rianimazione, sulla funzione emodinamica e metabolica e sulla sopravvivenza.Sebbene questo metodo possa fornire informazioni su nuove strategie di rianimazione, può anche essere utile per esplorare i meccanismi sottostanti con cui le terapie funzionano a livello cellulare attraverso l'analisi dei tessuti e la valutazione dei marcatori circolanti. Il modello rosso dell'arresto cardiaco e della rianimazione che vedrete oggi è stato sviluppato nel 1988 da Irene Bonta e dal mio mentore, il professor Max Harry Wilde. Il modello è stato ampiamente utilizzato in tutto il mondo e crediamo che la rappresentazione visiva del modello sarà utile per gli scienziati.Gli studenti interessati al campo della rianimazione cardiopolmonare, questo modello di ratto di rianimazione toracica chiusa con arresto cardiaco può essere utile per approfondire la nostra comprensione della fisiopatologia dell'arresto cardiaco e lo sviluppo di nuovi approcci di rianimazione Per facilitare l'avanzamento del catetere PE 25 nell'aorta toracica discendente, iniziare praticando un'incisione di due centimetri sull'area inguinale destra di un ratto adulto anestetizzato con un angolo di 90 gradi rispetto al suo solco. Successivamente, utilizzare un paio di emostatici per smussare, sezionare il tessuto connettivo circostante, esporre i vasi femorali e il nervo utilizzare una pinza di microdissezione curva per esporre la guaina vascolare attorno ai vasi. Quindi viaggiare con una pinza per microdissezione sotto la vena e il nervo dell'arteria femorale e sostenerli con un angolo di 90 gradi rispetto ai vasi quando sia i vasi che il nervo sono supportati.Usa un altro paio di pinze per microdissezione curve per separare l'arteria dal nervo e dalla vena a una lunghezza di circa un centimetro. Una volta separati, inserire una legatura distale e una prossimale sotto i vasi. Usa un nodo da chirurgo per stringere saldamente la legatura distale, seguito da due nodi singoli.Stringere la legatura prossimale con un nodo da chirurgo allentato. Successivamente, praticare una piccola incisione sul vaso vicino alla legatura distale con un angolo di 60 gradi rispetto al vaso con un paio di forbici da microdissezione che tagliano circa un quarto dell'area della sezione trasversale. Quindi inserire un ago calibro 22 con una punta smussata e piegata con un angolo di 70 gradi nell'apertura del vaso mentre si tira delicatamente la legatura distale con gli emostati per stabilizzare il vaso.Ora solleva delicatamente l'ago introduttore per esporre il lume e guida il catetere PE 25 sotto l'introduttore, rimuovendo l'ago. Una volta inserita la punta del catetere, far avanzare il catetere fino al segno di otto centimetri per posizionare la punta nell'aorta toracica discendente, quindi stringere la legatura prossimale aggiungendo altri due nodi singoli che fissano il catetere al vaso. Questa ripresa del collo mostra una vena giugulare esterna destra precedentemente cannulata per esporre la trachea.Successivamente, utilizzare gli emostatici per espandere l'incisione verso la linea mediana e quindi utilizzare gli emostatici per smussare ulteriormente, sezionare le sezioni ioide sternale, tiroide sternale e mastoidea dei muscoli cefalici CTO. Utilizzare uno spanditessuto per mantenere l'esposizione della trachea. Quindi estrarre la linguetta per allungare le vie aeree con un avanzamento di presa deciso.Una cannula tracheale a cinque F montata su uno stiletto con una punta rivolta verso l'alto, che cerca di entrare nelle vie aeree superiori, nelle corde vocali e nella trachea. Il successo dell'intubazione tracheale può quindi essere confermato dal riconoscimento della caratteristica forma d'onda capnografica. Prima di iniziare il protocollo di arresto cardiaco e rianimazione, misurare la gittata cardiaca e le varie pressioni per verificare la stabilità emodinamica.Una volta registrati i valori basali, rimuovere il rubinetto di arresto a tre vie dal catetere in poliuretano a tre F inserito nella vena giugulare esterna destra dell'animale e far avanzare la punta più morbida del filo G, di circa sette centimetri. Cercare di entrare nel ventricolo destro monitorando l'ECG e la pressione aortica. Quindi, accendi il generatore CA a 60 hertz e aumenta gradualmente la corrente monitorando la pressione aortica.Mantenere la corrente per tre minuti e l'intensità dopo due minuti. Spegnere la corrente dopo tre minuti, quindi rimuovere il cavo guida. Richiudere il catetere giugulare con un rubinetto di arresto a tre vie e rimuovere l'ago di messa a terra.Dopo aver lasciato che la FV continui spontaneamente per la durata desiderata, accendere il ventilatore e aumentare gradualmente la profondità di compressione da zero a 10 millimetri. Durante il primo minuto di compressione toracica, muovere leggermente l'animale lateralmente e sroc. Cercando di trovare una posizione che produca la massima pressione diastolica aortica per una data profondità di compressione.Quindi continuare ad aumentare la profondità di compressione durante il secondo minuto fino a raggiungere una pressione diastolica aortica target. Mantenere le compressioni toraciche per la durata desiderata prima di tentare la defibrillazione. Immediatamente prima di completare le compressioni toraciche, applicare il gel conduttivo su una paletta di defibrillazione personalizzata per ratti di un defibrillatore a forma d'onda bifasica disponibile in commercio e caricare il defibrillatore.Quindi interrompere la compressione toracica e dopo aver verificato che il cuore rimanga in FV con la lettura dell'ECG, erogare una scossa elettrica di cinque joule attraverso la parete toracica. Osservare il ritorno di un ECG organizzato elettricamente con impulsi aortici e una pressione aortica media maggiore o uguale a 25 millimetri. Mercurio. Se la pressione aortica media è inferiore a 25 millimetri, il mercurio riprende le compressioni toraciche per altri 30-60 secondi indipendentemente dal ritmo elettrico.Determinare l'esito della rianimazione al termine dei cicli di compressione della defibrillazione in base al diagramma di flusso. Aumentare quindi la velocità di ventilazione da 25 a 60 al minuto dopo il ritorno della circolazione spontanea, abbassando la frazione di ossigeno inspirato da 1,0 a 0,5 Dopo 15 minuti di circolazione spontanea, monitorare infine l'animale fino al suo completo recupero. Utilizzando questo protocollo, è stato dimostrato che gli inibitori IDE e a V 4 4 5 4 B dello scambiatore di idrogeno di sodio hanno consentito lo sviluppo di una pressione diastolica aortica predefinita con una minore profondità di compressione toracica, producendo un rapporto tra pressione di perfusione coronarica e profondità più elevato dopo la rianimazione.Entrambi i composti hanno migliorato la disfunzione miocardica, ma la sopravvivenza è stata maggiore con Carri Ride, come illustrato nella figura, suggerendo che l'IDE è un inibitore dell'isoforma uno dello scambiatore di idrogeno di sodio più efficace rispetto a un VE per la rianimazione da arresto cardiaco. In questo modello di ratto, una volta padroneggiata, la strumentazione chirurgica può essere completata in 90 minuti. Seguendo questa procedura, il sangue può essere raccolto per la misurazione dei marcatori di organi e organi Le lesioni cardiache possono essere raccolte per l'analisi molecolare.Dopo aver visto questo video, avrai una buona comprensione di come indurre quando innescare la fibrillazione in rosso, come eseguire efficacemente la rianimazione toracica ravvicinata, come ristabilire l'attività cardiaca e identificare le variabili da monitorare per garantire il successo dell'esperimento.

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Descriviamo la creazione di un modello di ratto di sovraccarico di pressione indotto moderato rimodellamento e disfunzione sistolica precoce in cui vengono attivati i percorsi di trasduzione del segnale coinvolti nell'avvio del processo di rimodellamento. Questo modello animale aiuterà a identificare gli obiettivi molecolari per l'applicazione di strategie terapeutiche anti-rimodellamento precoce per l'insufficienza cardiaca.

Un modello di pressione indotto moderate rimodellamenti e disfunzione stolica rispetto al sovraccarico di insufficienza cardiaca systolica

Questo articolo presenta un metodo efficiente per eseguire l'ischemia miocardiale e la successiva riperfusione cronica nei ratti utilizzando un approccio minimamente invasivo. Inoltre, la funzione emodinamica ventricolare sinistra dei ratti è valutata con ecocardiografia e metodi isolati del cuore di lavoro.

Metodo semi-minimo invasivo per indurre l'infarto miocardico nei ratti e la valutazione della funzione cardiaca da parte di un sistema cardiaco funzionante isolato

Il modello di ischemia-riperfusione miocardica del cuore di ratto viene migliorato utilizzando un riavvolgitore autoprodotto, un tubo di cloruro di polivinile e un metodo di annodatura unico. L'elettrocardiogramma, il cloruro di trifeniltetrazolio e la colorazione istologica e i risultati dell'analisi percentuale di sopravvivenza hanno mostrato che il gruppo modello migliorato ha tassi di successo e sopravvivenza più elevati rispetto al gruppo modello già esistente.

Modello di roditore migliorato di ischemia miocardica e danno da riperfusione

Questo protocollo presenta un modello di fibrillazione ventricolare a lungo termine nei cuori di ratto indotta dalla stimolazione continua con corrente alternata a bassa tensione. Questo modello ha un alto tasso di successo, è stabile, affidabile e riproducibile, ha un basso impatto sulla funzione cardiaca e causa solo lievi lesioni miocardiche.

Un modello di fibrillazione ventricolare a lungo termine in cuori di ratto isolati

Questo protocollo dimostra l'uso di un cardioverter-defibrillatore (ICD) impiantabile per indurre in modo affidabile aritmie ventricolari, eseguire cardioversione interna e ottenere registrazioni ECG intracardiache in un modello suino.

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Scopri un modello di ratto per fibrillazione ventricolare e rianimazione con compressione toracica chiusa. Questo metodo permette di studiare la fisiopatologia dell'arresto cardiaco e valutare nuove strategie terapeutiche.

Un modello di ratto di fibrillazione ventricolare e Rianimazione dal convenzionale chiuso petto Tecnica

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