7 marzo 2015
Gli adipociti maturi possono rappresentare un'abbondante fonte di cellule staminali attraverso la dedifferenziazione, che porta a una popolazione omogenea di cellule simili a fibroblasti. La digestione della collagenasi viene utilizzata per isolare gli adipociti maturi dal grasso umano. L'obiettivo del nostro protocollo è quello di ottenere cellule adipose multipotenti e dedifferenziate da adipociti maturi umani.
I depos maturi hanno la capacità di differenziarsi in cellule precursori in vitro. Ciò si ottiene attraverso la coltura delle foche, una tecnica in cui le cellule mature vengono coltivate in un pallone completamente riempito di terreno e coltivate a testa in giù. Le cellule galleggianti aderiscono al pallone e cambiano la loro morfologia passando da una cellula rotonda piena di lipidi a una cellula allungata simile a un fibroblasto. Omogeneo.
Popolazioni di cellule allungate possono essere ottenute e curate Al ricevimento di campioni di tessuto in laboratorio. Pesare i tessuti adiposi, a seconda del numero di adipociti necessari, posizionare un volume adeguato di campione in una confezione da 50 ml. Due per la digestione, ci si può aspettare di ottenere circa 1 milione di cellule per grammo di tessuto.
Le colture a soffitto vengono eseguite con 500.000 cellule per pallone da 25 centimetri e 50.000 cellule per ogni pozzetto di una piastra a sei pozzetti, aggiungere il tampone di lavoro KRH integrato con collagenasi, tritare il tessuto con le forbici e incubare la preparazione a 37 gradi Celsius per 45 minuti. Durante l'incubazione, preparare il tubo e la siringa. Versare la soluzione traslucida attraverso una rete di nylon in un bicchiere di plastica con una pinzetta.
Strofinare delicatamente la preparazione cellulare attraverso la rete e lavare delicatamente con cinque ml di KRH Working Buffer. Trasferire la sospensione cellulare filtrata in una serie da 50 ml con provetta e siringa. Facciamo riposare gli adipociti maturi per circa 10 minuti.
Le cellule raggiungeranno la parte superiore del tampone per flottazione. Aspirare lentamente il tampone dal basso. Utilizzando una siringa e un tubo, aggiungere 20 ml di tampone di lavoro KRH per il lavaggio.
Ripetere due volte le fasi di lavaggio. Raccogliere il tampone per portare la sospensione adipocitaria a un volume finale di cinque ml e procedere al conteggio delle cellule utilizzando un emocitometro, riempire un pallone T 25 a tre quarti del suo volume con D-M-E-M-F 12 integrato con il 20% di siero di vitello trasferire 500.000 adipociti maturi nel pallone. Rabboccare il pallone con il fluido e rimuovere le bolle d'aria dalla superficie superiore.
Avvitare un tappo inventato sul pallone. Incubare il pallone capovolto per una settimana in un incubatore per colture cellulari con il 5% di anidride carbonica. Evitare il movimento del pallone poiché le bolle rimanenti potrebbero interrompere l'aderenza della cellula.
Posizionare un vetrino coprioggetti sul fondo dei pozzetti. Aggiungere la boccola di plastica nel pozzetto e riempire il pozzetto con otto ml di terreno. Assicurati che non ci siano bolle.
Posizionare un vetrino coprinte sulla boccola, lasciando uno spazio per inserire il puntale della pipetta. Campionare 50.000 cellule e iniettarle posizionando la punta tra il vetrino coprioggetti e la boccola. Incubare la piastra in un incubatore per colture cellulari con il 5% di anidride carbonica per una settimana o meno.
A seconda del disegno dell'esperimento, sono necessari almeno tre giorni affinché le cellule aderiscano al vetrino coprioggetto in una piastra diversa. Vetrini coprioggetto inversi in due ml di supporto. In continuazione, i vetrini di copertura della coltura possono quindi essere fissati in formalina per esperimenti di immunofluorescenza o per estrazioni di D-N-A-R-N-A e proteine.
La dedifferenziazione degli adipociti maturi provoca importanti cambiamenti nella morfologia cellulare. Durante questo processo, gli adipociti perdono il loro fenotipo e diminuiscono l'espressione dei trascritti solitamente associati alla loro funzione di accumulo dei lipidi. Questa immagine in immunofluorescenza rappresenta le cellule adipose in vari stati di de-differenziazione.
Le cellule con la morfologia rotonda esprimono ancora FABP quattro, un marcatore adipocitario maturo, mentre le cellule allungate non lo esprimono più In base alla letteratura. Le cellule adipose differenziate D, spesso chiamate cellule adipose D, possono essere ottenute da pazienti giovani, anziani, magri o di base ostetrica. La loro capacità di coltura a lungo termine e la loro multipotenza dimostrata.
Mi piace anche il loro potenziale per l'ingegneria tissutale e la terapia cellulare. Potrebbero rappresentare un nuovo modello per l'indagine post-specifica della fisiologia degli adipociti.
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Questo studio analizza la dedifferenziazione di adipociti maturi in cellule staminali multipotenti. Mediante l'utilizzo della digestione con collaghenasi e delle tecniche di coltura in ambiente sigillato, i ricercatori possono isolare e coltivare queste cellule per ottenere una popolazione omogenea di cellule di tipo fibroblastico.
La dedifferenziazione di adipociti maturi in cellule staminali multipotenti offre una nuova fonte per applicazioni di medicina rigenerativa e ingegneria tissutale. Questo approccio consente la caratterizzazione specifica per deposito della funzione adipocitaria e delle proprietà metaboliche, supportando la validazione degli obiettivi nella ricerca sulle malattie metaboliche. Il metodo fornisce una piattaforma scalabile per la generazione di cellule di tipo fibroblastico con dimostrata multipotenza, facilitando lo sviluppo di modelli preclinici e la riduzione del rischio meccanicistico nella scoperta di terapie mirate agli adipociti.
Il metodo si integra nel percorso di scoperta, dalla validazione iniziale del bersaglio fino all'identificazione del capostazione e agli studi preclinici, in particolare per programmi relativi a malattie metaboliche e medicina rigenerativa.