Name: Visualizzazione Streptococcus pneumoniae Entro cardiache microlesioni e successive rimodellamento cardiaco (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-04-07T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 25 s
Description: Scopri un protocollo riproducibile per visualizzare microlesioni cardiache causate da Streptococcus pneumoniae in topi infetti. Questo metodo combina tecniche di colorazione convenzionale e immunofluorescenza per analizzare il rimodellamento cardiaco.

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Questo lavoro è stato supportato dalla sovvenzione 13IRG14560023 dell'American Heart Association e dalle sovvenzioni NIH AI078972 e HL108054 a CJO. Il supporto per AOB è stato fornito dal NIH National Center for Advancing Translational Sciences, dal NIH ULTR001120 e dall'F31 A110417701.

NOTA: Tutti gli esperimenti del mouse sono stati esaminati e approvati dalla cura degli animali e Istituzionale Usa Comitati presso l&#39;Università del Texas Health Science Center a San Antonio (protocollo # 13032-34-01C). La cura degli animali e protocolli sperimentali aderito Diritto Pubblico 89-544 (Animal Welfare Act) e successivi emendamenti, Servizi pubblici Salute linee guida, e la Guida per la cura e l&#39;uso di animali da laboratorio (US Department of Health &amp; Human Services). 1. Infezione <ol><li> Ottenere topi BALB / c di entrambi i sessi di età compresa tra 10-12 settimane di età tra. GLI APPUNTI. pneumoniae sierotipo 4 ceppo TIGR4 è un isolato clinico virulenta che è stato sequenziato 16. </li><li> Grow TIGR4 in Todd-Hewitt brodo a 37 ° C in 5% CO 2 fino a raggiungere una densità ottica (OD) 620 0,5 (corrispondente a 1,0 x 10 8 unità formanti colonie [CFU] / ml). Pellet cultura pneumococcica mediante centrifugazione per 10 min a 3, 500 xg e rimuovere il supernatante utilizzando una linea del vuoto. Sospendere e diluire batteri con PBS sterile (PBS) ad una concentrazione finale di 1,0 x 10 4 CFU / ml. </li><li> Usando una camera di induzione, anestetizzare topi con 2,5% isoflurano vaporizzato in ossigeno. Confermare stato anestetizzato dal pizzico punta dolce con le pinzette smussate. <ol><li> Tenendo il mouse anestetizzato dal suo nuca e verticale con una mano, iniettare ciascun topo per via intraperitoneale (ip) con 100 microlitri della S. sospensione pneumoniae usando una siringa con un ago calibro 27-30 (corrispondente ad una dose di 1,0 x 10 3 CFU). Posizionare la parte posteriore del mouse nella sua gabbia. I topi in genere risvegliano 30-40 secondi dopo l&#39;iniezione. </li></ol></li><li> Lasciare che l&#39;infezione di procedere per almeno 24 (presto) o 30 (avanzato) h. <ol><li> Euthanize i topi da CO 2 asfissia. Eseguire dislocazione cervicale per garantire il mouse è deceduto. L&#39;eutanasia è ulteriormente confermata dalla rimozionedel cuore nel passo 1.6. </li></ol></li><li> Disinfettare la coda con un batuffolo imbevuto di alcool e tagliare una sezione di 2-3 mm. Raccogliere 2 ml di sangue e serialmente diluire il sangue 10 volte in PBS contenente eparina sodica 1 U / ml cinque volte. Diluizioni seriali piastra su un piatto trittico di agar sangue soia e incubare una notte a 37 ° C in 5% CO 2. Il giorno successivo estrapolare dalla colonia conta il livello di batteriemia. </li><li> Immobilizzare il mouse in posizione supina su una piattaforma chirurgica. Spruzzare il petto con il 70% di etanolo e asciugare. Utilizzando forbici chirurgiche e pinze aprire la cavità toracica, rimuovere la gabbia toracica, e transetto il diaframma per esporre il cuore ei polmoni. Utilizzando forbici tagliare i vasi sanguigni collegati al cuore e alle accise delicatamente cuore con cura per evitare lividi con una pinza. </li><li> Sciacquare il cuore con PBS e poi mettere in campioni di tessuto cassette di raccolta di tali sezioni coronali che sarebbero stati ottenuti durante il sezionamento dei tessuti. Per embedding di paraffina, plaCe le cassette in soluzione al 10% di formalina tamponata-e il giorno successivo invio per paraffina. <ol><li> In alternativa freeze flash utilizzando ottobre Compound entro un cryomold che è stato immesso sul ghiaccio secco. </li></ol></li></ol> 2. Visualizzazione cardiache lesioni e pneumococchi all&#39;interno lesioni <ol><li> Ridurre le sezioni cardiache in paraffina tale che i 4 camere del cuore sono visibili in ogni sezione di tessuto. Tagliare vetrini a spessore di 5 micron. </li><li> Deparaffinare e macchia diapositive con ematossilina e eosina (H &amp; E) usando metodi standard 17. </li><li> Vista H &amp; E macchiato sezioni cardiache utilizzando un microscopio ottico a bassa (100X, 200X) e alta (immersione in olio: 400X, 1,000X) ingrandimenti. Caratterizzare cuori per la presenza di microlesioni nel miocardio. Qui, l&#39;acquisizione di H &amp; E le immagini utilizzando un microscopio Zeiss Axioskop 2 dotato di 100X 1.3 numerica obiettivo dell&#39;apertura Plan-Neofluar. NOTA: nelle fasi iniziali l cardiacoesions sono discriminati per il loro aspetto colorato differenziale e in alcuni casi la presenza di cellule immunitarie (monociti e granulociti) che sembrano essere monociti. In lesioni avanzate, in particolare quelli visti a 30 ore, le cellule immunitarie sono lesioni vacuolo come assenti e grandi sono stati osservati nel loro posto. È importante notare che, mentre afflusso cellule immunitarie durante le prime fasi di sviluppo lesione cardiaca può verificarsi non risulta essere un requisito. </li></ol> 3. immunofluorescente Microscopia per pneumococchi all&#39;interno microlesioni <ol><li> Cuore Sezione in cryomolds con microtomo ad uno spessore di 5 sezioni micron e posto su vetrino carica positiva. Consenti sezioni cardiache decongelamento e aria secca. Fissare sezioni per 10 min a 10% formalina tamponata neutra (pH 6.8-7.2 a 25 ° C). </li><li> Lavare slitte (3x) in PBS per 5 min, permeabilize per 15 min in 0,2% Triton X-100 in PBS, poi lavare di nuovo in PBS. </li><li> Secti tessuto Block<html> su su vetrini con siero di capra 10% in PBS per 1 ora. </li><li> Sciacquare i vetrini con PBS, coperchio e incubare sezioni cardiache con coniglio anti-pneumococco sierotipo 4 antisiero a 1: 1000 in PBS con siero di capra 10% per 2 ore a 37 ° C. NOTA: Per i controlli negativi investigatori dovrebbero utilizzare antisiero di coniglio ingenuo </li><li> Dopo lavaggio con PBS, coperchio e incubare sezioni con 10% di siero di capra-PBS con capra anti-coniglio FITC anticorpo coniugato a 1: 2.000 per 30 min a 37 ° C. </li><li> Seguendo le istruzioni del produttore, utilizzare DAPI (4 &#39;, 6 Diamidino-2-fenilindolo) a 5 mg / ml per la visualizzazione dei nuclei eucariotiche. Lavare e montare sezioni di tessuto con FluorSave. </li><li> Acquisire le immagini fluorescenti utilizzando un sistema di microscopio confocale sia a bassa che ad alta ingrandimento. Regolare l&#39;apertura numerica di conseguenza per ottenere risultati ottimali. Qui, acquisire immagini fluorescenti utilizzando un sistema confocale con un obiettivo 60X apertura numerica 1.42. </li></ol>&quot;&gt; 4. Antibiotica Salvataggio di Mice Septic <ol><li> Inizia con i topi infettati con ip 1.0 x 10 3 CFU di TIGR4 come precedentemente indicato al punto 1. </li><li> Con inizio alle 30 ore dopo l&#39;infezione, amministrare grado farmaceutico ampicillina ip (80 mg / kg di peso corporeo) in 100 ml di soluzione salina ogni 12 ore per 36 ore. Raccogliere i cuori al punto desiderato e di processo come descritto al punto 1.6 per paraffina e il tessuto, il sezionamento. </li></ol> 5. deposizione di collagene Detection <ol><li> Utilizzando xilene e lavaggi alcol classificati con acqua, Deparaffinare e idratare le sezioni di tessuto deionizzata utilizzando metodi standard 17. Trattare sezioni con acquosa 0,2% di acido fosfomolibdico per 5 minuti e risciacquare con acqua deionizzata per 5 min. </li><li> Sezioni Macchia con 0,1% di Sirius Red in acido picrico per 2 ore a temperatura ambiente. </li><li> Lavare le sezioni in 0,01 N acido cloridrico per 3 minuti e risciacquare con etanolo al 70% per 1 min. </li><li> DisidratazioneTE sezioni con l&#39;identico ma l&#39;ordine di lavaggi a quello delineato in 5.1 invertire, disidratare le sezioni cardiache in aumento e graduale delle concentrazioni di etanolo poi xilene. </li><li> Sezioni di Monte di tessuto con una soluzione di montaggio per la valutazione microscopica. </li><li> Per identificare le regioni di deposizione di collagene, esaminare sezioni di tessuto colorate per le zone di profonda colorazione lettura in condizioni di scarsa e alto ingrandimento con un microscopio ottico. Ogni area all&#39;interno dei ventricoli del cuore che è il rosso è un settore in cui il collagene è stato depositato. Aree senza questa macchia rosso sono siti di tessuto sano privi deposizione di collagene. Qui, acquisire Picro Sirius Red immagini colorate utilizzando un microscopio equipaggiato con un obiettivo apertura numerica 20X 0.5. NOTA: Le macchie rosse Atrium in tessuti sani. </li></ol>

<ol><li>Corrales-Medina, V. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+complications+in+patients+with+community-acquired+pneumonia%3A+incidence%2C+timing%2C+risk+factors%2C+and+association+with+short-term+mortality%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Cardiac complications in patients with community-acquired pneumonia: incidence, timing, risk factors, and association with short-term mortality.</a> Circulation. 125, 773-781 (2012).</li>
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<li>Tettelin, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Complete+genome+sequence+of+a+virulent+isolate+of+Streptococcus+pneumoniae%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Complete genome sequence of a virulent isolate of Streptococcus pneumoniae.</a> Science. 293, 498-506 (2001).</li>
<li>Fischer, A. H., Jacobson, K. A., Rose, J., Zeller, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hematoxylin+and+eosin+staining+of+tissue+and+cell+sections%5BTitle%5D)+AND+%22CSH+Protoc%22%5BJournal%5D)">Hematoxylin and eosin staining of tissue and cell sections.</a> CSH Protoc. 2008, (2008).</li>
</ol>

Gli autori dichiarano di non avere conflitti di interesse in questo studio.

In questo rapporto, un metodo altamente riproducibile per indurre S. pneumoniae mediata microlesioni cardiaci nei topi durante IPD e le tecniche per la loro visualizzazione è dimostrata. I topi sono infettati con una dose di batteri che supera la soglia del sistema immunitario di attestazione, portando a batteriemia alta qualità, simile a quella che si verifica durante la sepsi umana, e conduce ad eventuali traslocazione batterica nel miocardio. Per ragioni ancora sconosciute, S. pneumoniae nel cuore è...

Ricovero di adulti per polmonite acquisita in comunità (CAP) comporta un rischio documentato per eventi avversi cardiaci che contribuisce alla mortalità 1-4. In un recente studio condotto da Corrales-Medina et al. Sono risultati associati con e / o responsabile del 27% dei decessi polmonite associata 3 complicazioni cardiache. Streptococcus pneumoniae (pneumococco), la causa più comune di PAC e sepsi 5, è stata direttamente associata ad eventi avversi cardiaci a ben il 19% dei pazienti adulti ricoverati 6. Eventi cardiaci avversi associati con polmonite includono insufficienza nuovo o peggiorata cardiaco congestizio, aritmie, infarto del miocardio e in ordine decrescente di frequenza 6. In un recente articolo PLoS Pathogens da Brown et al., S. pneumoniae è risultata capace di traslocazione attraverso l&#39;endotelio vascolare cardiaca, l&#39;ingresso nel myocardium, e la formazione di discrete lesioni microscopiche non purulente (microlesioni) pieni di batteri nei ventricoli durante la malattia pneumococcica invasiva (IPD) 7. Prove di formazione microlesion cardiaca è stata osservata in campioni cardiaci dai primati non umani e gli individui che avevano ceduto alle infezioni da pneumococco. Allo stesso modo, i topi infettati sperimentalmente riproducibile sviluppato microlesioni cardiaci. Nei topi, le dimensioni e il numero microlesion stata positivamente correlata con la durata e la gravità di batteriemia, livelli di troponina cardiaca nel siero, e aberrante elettrofisiologia cardiaca. Traslocazione batterica nel cuore è stato trovato per avvenire attraverso gli stessi meccanismi responsabili traslocazione del pneumococco attraverso la barriera emato-encefalica e lo sviluppo della meningite pneumococcica, vale a dire, la proteina-Colina legame Un&#39;invasione mediata delle cellule endoteliali vascolari in un recettore laminina e piastrine modo dipendente recettore del fattore di -activating 8. Microlesformazione di ioni richiesto anche il pneumococco formano pori tossina pneumolysin che è stato trovato per uccidere cardiomiociti 7. Microlesioni cardiaci pneumococco sono distinti dal purulenta dei tessuti molli e ascessi cardiaci che sono causate da altri batteri Gram-positivi, tra cui Staphylococcus aureus. Questi sono caratterizzati da un unico foci di batteri circondato da neutrofili e deposizione di fibrina 9,10. Microlesioni formata da S. pneumoniae sono di dimensioni più piccole, distribuiti su tutto il cuore colpito, e la mancanza di infiltrati di cellule immunitarie. Durante le prime fasi dell&#39;infezione, microlesioni causate da S. pneumoniae appaiono come aree di tessuto danneggiato o infiammato ricorda i segni patologici di cardiomiopatia. Alcuni monociti possono essere osservati durante questo tempo, ma la loro presenza è di breve durata e lesioni rapidamente diventa necrotico nell&#39;aspetto e riempito con batteri contemporaneamente continuando a grow dimensioni fino alla morte dell&#39;animale o interventi antimicrobica. È importante sottolineare che, entro 3 giorni di intervento antibiotico, profusa infiltrazione di cellule immunitarie si osserva presso l&#39;ex sede della lesione e questo è accompagnato da una robusta deposizione di collagene. Simile rimodellamento cardiaco è stato riscontrato dopo infarto insieme con conseguenze permanenti sulla funzione cardiaca 11-15. Così, microlesioni sono una potenziale spiegazione per gli eventi avversi cardiaci che si verificano durante IPD e forse la maggiore incidenza di mortalità cardiaca correlata in individui di convalescenza che sono sopravvissuti l&#39;episodio di malattia. Qui, l&#39;istruzione è disponibile sul modello sperimentale murino di IPD e formazione della lesione cardiaca e la visualizzazione delle microlesioni cardiaci a precoci e tardive fasi dell&#39;infezione. Il protocollo per la rilevazione di deposizione di collagene in animali che sono stati salvati da un intervento antimicrobico è dimostrata. L&#39;obiettivo di questo articolo è quello di facilitate ricerca di altri investigatori su questo importante e nuova patologia pneumococcica.

<table><tbody><tr><td>Brodo Todd-Hewitt&nbsp;</td><td>Composto Neogen</td><td>7161A</td><td></td></tr><tr><td>OCT</td><td>Tissue-Tek (Sakura Finetek)&nbsp;</td><td>4583</td><td></td></tr><tr><td>Triton X-100&nbsp;</td><td>Fisher Scientific (Acros)</td><td>9002-93-1</td><td></td></tr><tr><td>Siero di capra normale</td><td>Abcam</td><td>ab7481</td><td></td></tr><tr><td>anti-sierotipo 4 antisiero pneumococco&nbsp;</td><td>Statens Serum Institut</td><td>16747</td><td></td></tr><tr><td>capra anti-coniglio FITC coniugato anticorpo&nbsp;</td><td>Jackson ImmunoResearch</td><td>111-096-144</td><td></td></tr><tr><td>DAPI</td><td>Invitrogen</td><td>D1306</td><td></td></tr><tr><td>Fluorsave</td><td>Millipore</td><td>345789</td><td></td></tr><tr><td>Permount</td><td>Fisher Scientific</td><td>S70104</td><td></td></tr><tr><td>Ampicillina</td><td>Sigma</td><td>A9393</td><td></td></tr><tr><td>acido fosfomolibdico 0,2%&nbsp;</td><td>Scienze della microscopia elettronica</td><td>26357-01</td><td></td></tr><tr><td>0,1% Rosso Sirio in acido picrico</td><td>Scienze della microscopia elettronica</td><td>26357-02</td><td></td></tr><tr><td>Acido cloridrico 0,01 N&nbsp;</td><td>Scienze della microscopia elettronica</td><td>26357-03</td><td></td></tr><tr><td>Vetrini per microscopio Tissue Tack</td><td>Polysciences, Inc</td><td>24216</td><td></td></tr><tr><td>Unguento veterinario Paralube</td><td>Dechra</td><td>12920060</td><td></td></tr><tr><td>Kit di colorazione ematossilina ed eosina</td><td>non specificato&nbsp;</td><td></td><td>standard</td></tr></tbody></table>

visualizzazione<em&gt; streptococcus pneumoniae</em&gt; entro cardiache microlesioni e successive rimodellamento cardiaco

Visualization of Streptococcus pneumoniae within Cardiac Microlesions and Subsequent Cardiac Remodeling

Durante batteriemia Streptococcus pneumoniae può traslocare attraverso l&#39;endotelio vascolare nel miocardio e formare batteri-riempite discrete lesioni microscopiche (microlesioni) che sono notevoli per l&#39;assenza di infiltrarsi cellule immunitarie. Grazie alla loro rilascio di prodotti cardiotossici, S. pneumoniae entro microlesioni si pensa di contribuire allo scompenso cardiaco che è spesso osservato durante fulminato malattia pneumococcica invasiva negli adulti. Qui è dimostrato un protocollo per infezione sperimentale del mouse che porta alla formazione di riproducibili microlesion cardiaco entro 30 ore. L&#39;istruzione è fornita sull&#39;identificazione microlesion in ematossilina e eosina sezioni cuore colorato e le distinzioni morfologiche tra inizio e fine microlesioni sono evidenziati. L&#39;istruzione è fornita su un protocollo per la verifica di S. pneumoniae entro microlesioni utilizzando anticorpi contro pneumococco polisaccaride della capsula emicroscopia a immunofluorescenza. Infine, è previsto un protocollo di intervento antibiotico che salva i topi infetti e per l&#39;individuazione e la valutazione di formazione della cicatrice nel cuore dei topi convalescente. Insieme, questi protocolli faciliteranno lo studio dei meccanismi molecolari alla base dell&#39;invasione cardiaco pneumococco, la morte dei cardiomiociti, rimodellamento cardiaco a seguito di esposizione a S. pneumoniae, e la risposta immunitaria al pneumococchi nel cuore.

Visualizzazione di microlesioni da H &amp; E Microlesioni cardiaci sono stati osservati nei ventricoli di H &amp; E macchiato sezioni cardiache di topo con IPD seguenti la loro sfida ip con TIGR4. Figura 1 dimostra l&#39;aumento delle dimensioni di queste lesioni tra 24 e 30 ore dopo l&#39;infezione (HPI), con maggior numero di ematossilina -stained (cioè, viola-blu) pneumococchi visibile all&#39;interno della lesione. Microlesioni sono stati caratterizzati...

Lo Streptococcus pneumoniae forma lesioni microscopiche discrete non purulente nel cuore. Viene delineato il protocollo per un modello murino di formazione di microlesioni cardiache. Vengono fornite istruzioni sulla visualizzazione delle microlesioni mediante microscopia, sulla discriminazione tra microlesioni precoci e tardive e sui metodi per rilevare il rimodellamento cardiaco nei cuori degli animali convalescenti.

Visualizzazione<em&gt; Streptococcus pneumoniae</em&gt; Entro cardiache microlesioni e successive rimodellamento cardiaco

During bacteremia Streptococcus pneumoniae can translocate across the vascular endothelium into the myocardium and form discrete bacteria-filled ...

L'obiettivo generale del seguente esperimento è dimostrare un protocollo riproducibile per la formazione di microlesioni cardiache da ESMO all'interno del cuore di topi infettati. Questo risultato si ottiene infettando i topi con ESMO e permettendo lo sviluppo di una batteriemia, consentendo così ai batteri l'accesso alla vascolarizzazione cardiaca, dove possono invadere il miocardio e formare lesioni microscopiche. Successivamente, i cuori vengono inclusi in paraffina e colorati con metodiche convenzionali oppure fissati in composto OCT per la colorazione immunofluorescente.La valutazione delle sezioni colorate può mostrare microlesioni cardiache distribuite in modo casuale nel miocardio, depositi di collagene e sezioni di miocardio in fase di convalescenza, nonché capsule pneumococciche all'interno delle microlesioni cardiache. Questo dimostra la procedura. Armand Brown è uno studente laureando nel mio laboratorio? Sebbene questo metodo possa fornire informazioni sugli effetti dannosi a livello cardiaco di S. pneumoniae durante la malattia pneumococcica invasiva nei topi.Si può applicare anche a campioni cardiaci provenienti da altri sistemi, come primati non umani o esseri umani. Iniziare coltivando il ceppo di Sierotipo quattro ESMO Tiger quattro in brodo Todd Hewitt fino a una densità ottica di 0,5 a 620 nanometri. Quando si raggiunge la densità corretta, centrifugare la coltura a 3.500 G per 10 minuti.Quindi rimuovere il soprannatante utilizzando una linea a vuoto e risospendere i batteri in PBS sterile a 10.000 unità formanti colonie per millilitro. Anestetizzare ora i topi valve C di 10-12 settimane e confermare lo stato di anestesia con una leggera pressione sul dito del piede esercitata con una pinzetta ottusa, riempire una siringa con la sospensione batterica e applicare un ago da 27 a 30 gauge. Successivamente, afferrare un topo anestetizzato per la nuca con una mano e somministrare per via intraperitoneale 100 microlitri di sospensione con l'altra mano, quindi rimettere ogni topo nella propria gabbia.I topi si risvegliano tipicamente da 30 a 40 secondi dopo l'iniezione. È fondamentale calibrare correttamente la dose di S pneumoniae, altrimenti i topi potrebbero riprendersi dall'infezione o sviluppare una malattia pneumococcica invasiva troppo rapidamente, impedendo la formazione di lesioni. Poiché ogni ceppo batterico presenta diversi livelli di virulenza otica, potrebbe essere necessario procedere per tentativi ed errori per identificare la dose corretta.Lasciare procedere l'infezione per almeno 24 ore fino a uno stadio iniziale o per 30 ore per uno stadio avanzato. Successivamente, eutanasia ogni topo infetto. Prelevare prima un campione di sangue, disinfettare la coda con un batuffolo di alcol e asportare una sezione lunga due o tre millimetri.Prelevare due microlitri di sangue dal sito dell'incisione. Diluire in modo seriale il sangue di dieci volte in PBS contenente eparina sodica a un'unità per millilitro. Seminare cinque livelli di diluizione su piastre di agar sangue soia triptica e incubare durante la notte.Il giorno successivo effettuare il conteggio delle colonie. Procedere con il prelievo del cuore come descritto nella sezione successiva. In alternativa, 30 ore dopo l'infezione.Cercare di salvare il topo somministrando ampicillina per via intraperitoneale in 100 microlitri di soluzione salina. Continuare a somministrare ampicillina ogni 12 ore per un totale di 36 ore e raccogliere i cuori nei diversi tempi desiderati. Per prima cosa, isolare il cuore.Fissare il topo eutanasizzato in posizione supina su un piano chirurgico e spruzzare la zona toracica con etanolo al 70%, quindi asciugare tamponando. Utilizzando forbici e pinze chirurgiche, aprire la cavità toracica. Rimuovere la gabbia toracica e sezionare il diaframma per esporre cuore e polmoni.Quindi recidere i vasi sanguigni collegati al cuore e utilizzare pinze per escindere delicatamente il cuore senza provocare contusioni. Sciacquare il cuore con PBS e collocarlo in una cassetta per campioni di tessuto destinata a sezioni coronali. Trasferire quindi le cassette in una soluzione di formalina tamponata al 10%; il giorno successivo, inviare per inclusione in paraffina.In stadi precoci, le lesioni cardiache possono essere identificate per il cambiamento nell'aspetto del colore e, in alcuni casi, per la presenza di cellule immunitarie. In lesioni avanzate, le cellule immunitarie saranno assenti e saranno presenti ampie lesioni di tipo VA.Utilizzando una sezione cardiaca di cinque micron su vetrini in vetro con carica positiva, congelare prima le sezioni, quindi scongelarle e lasciarle asciugare all'aria. Fissare i vetrini in formalina al 10% tampone neutro per 10 minuti a 25 gradi Celsius. Successivamente, rimuovere il fissativo con tre lavaggi in PBS per cinque minuti ciascuno.Permeabilizzare il tessuto con Triton X-100 al 0,2% in PBS per 15 minuti. Rimuovere il detergente con altri tre lavaggi in PBS. Quindi bloccare il tessuto con siero di bovino al 10% in PBS per un'ora, dopo un risciacquo in PBS, quindi coprire la sezione con antisiero per due ore a 37 gradi Celsius.Trattare i controlli negativi con siero antirabbia naïve. Poiché il tessuto cardiaco assorbe facilmente la colorazione immunofluorescente XI, determinando livelli di fondo elevati, sarà probabilmente necessario ottimizzare la concentrazione e il tempo di incubazione per diversi tipi di anticorpi. Due ore dopo, lavare via il siero antiserico con PBS. Quindi sostituire la soluzione con un anticorpo secondario e lasciare incubare i vetrini a 37 gradi Celsius per 30 minuti. Applicare ora il DPI a cinque milligrammi per millilitro e lavare i vetrini con PBS.Infine, montare i vetrini in balsamo, conservarli e acquisirne le immagini mediante microscopia confocale. Iniziare rimuovendo la paraffina e idratando le sezioni di tessuto. Utilizzare lavaggi con xilene seguiti da una serie progressiva di lavaggi con alcol.Quindi immergere le sezioni in acido fosfomolibdico allo 0,2% per cinque minuti, seguito da un risciacquo in acqua per cinque minuti; successivamente colorare con rosso serio allo 0,1% in acido ricinoico per due ore. Lavare quindi le sezioni in acido cloridrico 0,01 N per tre minuti e risciacquare in etanolo al 70% per un minuto. A questo punto disidratare le sezioni invertendo la serie di bagni alcolici a gradazione decrescente, seguita da lavaggi in xilene, montare per microscopia ottica e valutare le preparazioni.I topi hanno sviluppato una malattia pneumococcica invasiva in seguito a una sfida con il tiger. Sono state osservate lesioni microcardiache del quattro ceppi nei ventricoli, e un aumento della dimensione e del numero delle lesioni è stato rilevato tra le 24 e le 30 ore dal contagio, per verificare che effettivamente gli S. pneumoniae fossero presenti all'interno delle lesioni. Le sezioni sono state colorate per individuare il polisaccaride capsulare del sierotipo quattro prodotto dal Tiger quattro.Ciò ha confermato la presenza di aggregati densi e strettamente compatti all'interno dei siti di microlesione. È stata eseguita una colorazione con rosso pirogallolo sulle sezioni cardiache di topi trattati con ampicillina e su controlli non infetti. Nei trattamenti di salvataggio.Si è verificato un aumento significativo della presenza e dell'intensità della colorazione, con bande che si irradiano da quelle che sembrano essere sedi di lesioni pregresse nei ventricoli. Nel tentativo di eseguire questa procedura, è importante ricordare di infettare i topi con un'adeguata quantità di S. pneumoniae, in modo che l'infezione possa proseguire per almeno 28-30 ore, consentendo sufficiente tempo per la formazione di batteriemia e microlesioni cardiache.

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