Name: Luso di ad alta risoluzione termografia a infrarossi (HRIT) per lo studio di ghiaccio nucleazione del ghiaccio e propagazione nelle piante (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-05-08T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 36 s
Description: Scopri come visualizzare la formazione del ghiaccio nelle piante usando la termografia infrarossa ad alta risoluzione. Questo metodo mostra il ruolo dei batteri INA nel processo di congelamento.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Questa ricerca è stata finanziata dal Fondo di Scienze austriaca (FWF): P23681-B16.

1. Preparazione di materiali vegetali <ol><li> Utilizzare sia foglie o piante intere di materiale vegetale soggetto (Hosta spp. O Phaseolus vulgaris). </li></ol> 2. Preparazione di Water Solutions contenenti ghiaccio nucleazione attivi (INA) Batteri <ol><li> Culture batterio INA, Pseudomonas syringae (Strain Cit-7) in capsule di Petri a 25 ° C su Pseudomonas Agar F preparato con 10 g / L di 100% glicerolo per la direzione del produttore. </li><li> Dopo culture sono cresciuti sufficientemente, posto a 4 ° C fino al momento dell&#39;uso, ma mantenere a 4 ° C per due giorni prima di garantire un elevato livello di attività nucleazione del ghiaccio. </li><li> Raschiare batteri da una singola placca dalla superficie del agar con una plastica, monouso o riutilizzabile spatola metallica al momento dell&#39;uso e posto in 10-15 ml di acqua deionizzata in un 25 ml cuvetta monouso. La concentrazione deve essere nel range di 1 x 07-01 Ottobre x 10 9 · </sup&gt; Ml -1. La soluzione apparirà nuvoloso. Non è necessario per confermare la concentrazione utilizzando un emocitometro o spettrofotometro, la concentrazione deve essere solo approssimativa. </li><li> Agitare la cuvetta per un minimo di 10 secondi per distribuire i batteri. Nota: la concentrazione specifica della miscela INA risultante non è importante e il protocollo descritto fornirà più di un adeguato livello di attività di nucleazione del ghiaccio. Questa miscela di batteri INA e acqua sarà utilizzato in seguito negli esperimenti di nucleazione. </li></ol> 3. Impostazione di un esperimento di congelamento <ol><li> Posizionare la telecamera a infrarossi alta risoluzione (SC-660) all&#39;interno della scatola acrilica di protezione in modo che i progetti lente attraverso l&#39;apertura nella parte anteriore della scatola e sui cavi la fotocamera a un dispositivo di uscita laptop o la registrazione attraverso l&#39;apertura posteriore della scatola . Fissare il coperchio della scatola e posizionare la scatola dentro la camera ambientale o congelatore in una posizione che saranno tuttiow il materiale vegetale soggetto di essere visto. <ol><li> Fornire un fondo scuro intorno al materiale vegetale da lungo le pareti della camera con cartoncino nero per evitare interferenze da energia infrarossa riflessa. </li><li> Montare la camera con illuminazione a LED per ridurre al minimo il riscaldamento dalla fonte di luce quando è richiesta la registrazione di immagini in lunghezze d&#39;onda visibili. Solo un minimo di illuminazione, ad esempio una luce di armadio a batteria o altro piccolo dispositivo LED, è necessaria per gli impianti siano visibili dalla telecamera. <ol><li> Una volta prese le immagini visibili del materiale vegetale soggetto, spegnere l&#39;illuminazione a LED. Distribuire tutte le connessioni esterne cablate (collegamento firewire al calcolatore, cavo di alimentazione, ecc) alla fotocamera tramite un porto o altra apertura nella camera. </li></ol></li><li> Riempite ogni spazio nel porto o apertura con materiale isolante in schiuma per evitare o ridurre i gradienti di temperatura all&#39;interno della camera. Impostare la temperatura iniziale della camera a 1 ° C. </li></ol></li><li> Allineate piante o parti di piante in modo che il materiale vegetale è nel campo di vista-della telecamera e il materiale vegetale è visibile sulla schermata di visualizzazione remota o all&#39;interno del software scelto. </li><li> Consentire piante equilibrare a 1 ° C per 30 minuti a 1 ora, a seconda delle dimensioni del materiale vegetale, prima di iniziare un esperimento di congelamento controllato. Questo assicura che la temperatura della pianta non ritardo temperatura dell&#39;aria da molti gradi dopo l&#39;inizio dell&#39;esperimento di congelamento. Equilibrazione viene raggiunta quando la temperatura del materiale vegetale è entro 0,5 ° C di temperatura dell&#39;aria. <ol><li> Posizionare uno strato di isolamento Styrofoam sulla parte superiore del terreno di piante in vaso se vengono utilizzate piante in vaso. Una volta che le piante sono equilibrati, iniziare il raffreddamento della camera. Nota: Lo strato di isolante sulla superficie del terreno della pentola riduce la quantità di continua perdita di calore dal piatto per l&#39;aria circostante l&#39;impianto, e previene le radici da freezing, in quanto ciò non si verificano in genere durante un evento gelo in natura a causa della massiccia serbatoio di calore residuo presente nel terreno. </li></ol></li><li> Impostare i parametri della telecamera desiderati (tavolozza dei colori, range di temperatura, specifiche aree di interesse, ecc), come discusso in 3.4.1-3.4.4. <ol><li> Selezionare la tavolozza arcobaleno per visualizzare le variazioni di temperatura durante la visualizzazione dell&#39;immagine live. </li><li> Impostare l&#39;intervallo di temperatura di 5 ° C regolando la barra di temperatura posta appena sotto l&#39;immagine nel software. </li><li> Scegliere la scala lineare (algoritmo) per convertire i dati infrarossi nell&#39;immagine a falsi colori come definito dalla palette selezionata (arcobaleno) e impostare l&#39;intervallo di temperature di 5 ° C e per monitorare automaticamente in base all&#39;immagine. In alternativa, regolare la gamma insieme manualmente durante la conduzione dell&#39;esperimento. <ol><li> Utilizzare la temperatura di un punto specifico o la temperatura media all&#39;interno dell&#39;area definita di interesse fornito dalla softwsono. Recuperare i dati di temperatura di tutti i pixel dalla sequenza video registrato o da informazioni incorporate nel file di immagine. La figura 3 mostra una tipica schermata dal software ResearchIR. </li></ol></li><li> Posizionare un cursore su una posizione sul tessuto vegetale che rappresenta un punto di interesse specifico. Definire l&#39;area di interesse come punti (1 -3 pixel), scatole, linee, ellissi o cerchi. Molteplici combinazioni di punti e forme possono essere posizionati sopra l&#39;immagine. </li></ol></li><li> Registrazione di una sequenza video <ol><li> Impostare la fotocamera per registrare a 60 Hz e per la registrazione di essere fermato manualmente. </li><li> Indicare la posizione del computer o disco esterno dove verrà posizionato il file video registrato. </li><li> Iniziare la registrazione. Nota: La registrazione di un disco rigido esterno altamente è raccomandata in quanto verranno generati file video di grandi dimensioni. I file video registrati possono essere successivamente modificati per includere solo la parte contenente il neinformazioni sario. Questo ridurrà di molto la dimensione del file. </li><li> Abbassare la temperatura della camera incrementale di 0,5 -1.0 ° C. Attendere che la temperatura dell&#39;impianto equilibra con la temperatura dell&#39;aria e abbassare di nuovo la temperatura di 0,5-1,0 ° C. A seconda della massa del tessuto vegetale viene osservato e la sua morfologia, equilibramento può richiedere da 10 a 15 min. Così, dando una velocità di raffreddamento di circa 4 ° C / hr. </li><li> Continuare in questo modo fino a quando l&#39;impianto si blocca e le osservazioni sono stati completati. Terminare la registrazione quando il processo di congelamento è stato completato. Nota: Il tessuto vegetale è equilibrata con temperatura dell&#39;aria quando il materiale vegetale e sfondo sono dello stesso colore poiché sono alla stessa temperatura. Poiché la temperatura del fondo e la temperatura del tessuto vegetale sono gli stessi, può essere difficile visualizzare il materiale vegetale fino a nuovo abbassare la temperatura e c&#39;è differenza di temperatura tra il tessuto vegetale etemperatura ir. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Taschler, D., Beikircher, B., Neuner, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Frost+resistance+and+ice+nucleation+in+leaves+of+five+woody+timberline+species+measured+in+situ+during+shoot+expansion%5BTitle%5D)+AND+%22Tree+Physiol%22%5BJournal%5D)">Frost resistance and ice nucleation in leaves of five woody timberline species measured in situ during shoot expansion.</a> Tree Physiol. 24, 331-337 (2004).</li>
<li>Neuner, G., Hacker, J. Ice formation and propagation in alpine plants. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aNeuner%2C+G+%22Plants+in+alpine+regions%3A+Cell+Physiology+of+adaptation+and+survival+strategies%22">Plants in alpine regions: Cell Physiology of adaptation and survival strategies</a>. Lütz, C. , Springer. 163-174 (2012).</li>
<li>Ladinig, U., Hacker, J., Neuner, G., Wagner, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((How+endangered+is+sexual+reproduction+of+high-mountain+plants+by+summer+frosts%3F+-+Frost+resistance%2C+frequency+of+frost+events+and+risk+assessment%5BTitle%5D)+AND+%22Oecologia%22%5BJournal%5D)">How endangered is sexual reproduction of high-mountain plants by summer frosts? - Frost resistance, frequency of frost events and risk assessment.</a> Oecologia. 171, 743-760 (2013).</li>
<li>Wisniewski, M. E., Gusta, L. V., Fuller, M. P., Karlson, D. Ice nucleation, propagation and deep supercooling: the lost tribes of freezing studies. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aWisniewski%2C+ME+%22Plant+Cold+Hardiness%3A+from+the+laboratory+to+the+field%22">Plant Cold Hardiness: from the laboratory to the field</a>. Gusta, L. V., Wisniewski, M. E., Tanino, K. K. , CAB International. 1-11 (2009).</li>
<li>Bokhurst, S., Bjerke, J. W., Davey, M. P., Taulavuori, K., Taulavuori, E., Laine, K., Callaghan, T. V., Phoenix, G. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impacts+of+extreme+winter+warming+events+on+plant+physiology+in+a+sub-Arctic+heath+community%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol.+Plant%22%5BJournal%5D)">Impacts of extreme winter warming events on plant physiology in a sub-Arctic heath community.</a> Physiol. Plant. 140, 128-140 (2010).</li>
<li>Taulavuori, K., Laine, K., Taulavuori, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Experimental+studies+on+Vaccinium+myrtillus.and+Vaccinium+vits-idea.in+relation+to+air+pollution+and+global+change+at+northern+high+latitudes%3A+A+review%5BTitle%5D)+AND+%22Env.+Exp.+Bot%22%5BJournal%5D)">Experimental studies on Vaccinium myrtillus.and Vaccinium vits-idea.in relation to air pollution and global change at northern high latitudes: A review.</a> Env. Exp. Bot. 87, 191-196 (2013).</li>
<li>Wisniewski, M., Glenn, D. M., Gusta, L., Fuller, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Using+infrared+thermography+to+study+freezing+in+plants%5BTitle%5D)+AND+%22HortScience%22%5BJournal%5D)">Using infrared thermography to study freezing in plants.</a> HortScience. 43, 1648-1651 (2008).</li>
<li>Gu, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+2007+eastern+US+spring+freeze%3A+increased+cold+damage+in+a+warming+world%5BTitle%5D)+AND+%22BioScience%22%5BJournal%5D)">The 2007 eastern US spring freeze: increased cold damage in a warming world.</a> BioScience. 58, 253-262 (2008).</li>
<li>Augspurger, C. K. Spring warmth and frost: phenology, damage, and refoliation in a temperate deciduous forest. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aAugspurger%2C+CK+%22Func.+Ecol%22">Func. Ecol</a>. 23, Spring. 1031-1039 (2007).</li>
<li>Neuner, G., Erler, A., Hacker, J., Ladinig, U., Wagner, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Frost+resistance+of+reproductive+tissues+in+various+reproductive+stages+of+high+alpine+plant+species%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol.+Plant%22%5BJournal%5D)">Frost resistance of reproductive tissues in various reproductive stages of high alpine plant species.</a> Physiol. Plant. 147, 88-100 (2013).</li>
<li>Skre, O., Taulavuori, K., Taulavuori, E., Nilsne, J., Igeland, B., Laine, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+importance+of+hardening+and+winter+temperature+for+growth+in+mountain+birch+populations%5BTitle%5D)+AND+%22Env.+Exp.+Bot%22%5BJournal%5D)">The importance of hardening and winter temperature for growth in mountain birch populations.</a> Env. Exp. Bot. 62, 254-266 (2008).</li>
<li>Hänninen, H., Tanino, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tree+seasonality+in+a+warming+climate%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+in+Plant+Science%22%5BJournal%5D)">Tree seasonality in a warming climate.</a> Trends in Plant Science. 16, 412-416 (2011).</li>
<li>Katz, R. W., Brown, B. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extreme+events+in+a+changing+climate%3A+variability+is+more+important+than+averages%5BTitle%5D)+AND+%22Climate+Change%22%5BJournal%5D)">Extreme events in a changing climate: variability is more important than averages.</a> Climate Change. 21, 289-302 (1992).</li>
<li>Wisniewski, M., Gusta, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Understanding+plant+cold+hardiness%3A+an+opinion%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol.+Plant%22%5BJournal%5D)">Understanding plant cold hardiness: an opinion.</a> Physiol. Plant. 147, 4-14 (2013).</li>
<li>Wisniewski, M., Gusta, L., Neuner, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adaptive+mechanisms+of+freeze+avoidance+in+plants.+A+brief+update%5BTitle%5D)+AND+%22Env.+Exp.+Bot%22%5BJournal%5D)">Adaptive mechanisms of freeze avoidance in plants. A brief update.</a> Env. Exp. Bot. 99, 133-140 (2014).</li>
<li>Burke, M. J., Gusta, L. V., Quamme, H. A., Weiser, C. J., Li, P. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Freezing+and+injury+in+plants%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Plant+Physiol%22%5BJournal%5D)">Freezing and injury in plants.</a> Annu. Rev. Plant Physiol. 27, 507-528 (1976).</li>
<li>Ishikawa, M., Price, W. S., Ide, H., Arata, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visualization+of+freezing+behaviors+in+leaf+and+flower+buds+of+full-moon+maple+by+nuclear+magnetic+resonance+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Physiol%22%5BJournal%5D)">Visualization of freezing behaviors in leaf and flower buds of full-moon maple by nuclear magnetic resonance microscopy.</a> Plant Physiol. 115 (4), 1515-1524 (1997).</li>
<li>Ishikawa, M., Sakai, A. Characteristics of freezing avoidance in comparison with freezing tolerance: a demonstration of extra-organ freezing. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aIshikawa%2C+M+%22Plant+cold+hardiness+and+freezing+stress%22">Plant cold hardiness and freezing stress</a>. Li, P. H., Sakai, A. , Academic Press. 325-340 (1982).</li>
<li>Buchner, O., Neuner, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Freezing+cytorrhysis+and+critical+temperature+thresholds+for+photosystem+II+in+the+peat+moss+Sphagnum+capillifolium%5BTitle%5D)+AND+%22Protoplasma%22%5BJournal%5D)">Freezing cytorrhysis and critical temperature thresholds for photosystem II in the peat moss Sphagnum capillifolium.</a> Protoplasma. 243 (1), 63-71 (2010).</li>
<li>Pearce, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extracellular+ice+and+cell+shape+in+frost-stressed+cereal+leaves%3A+A+low+temperature+scanning+electron+microscopy+study%5BTitle%5D)+AND+%22Planta%22%5BJournal%5D)">Extracellular ice and cell shape in frost-stressed cereal leaves: A low temperature scanning electron microscopy study.</a> Planta. 175, 313-324 (1988).</li>
<li>Ashworth, E. N., Anderson, J. A., Davis, G. A., Lightner, G. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ice+formation+in+Prunus+persica.+under+field+conditions%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Am.+Soc.+Hort.+Sci%22%5BJournal%5D)">Ice formation in Prunus persica. under field conditions.</a> J. Am. Soc. Hort. Sci. 110 (3), 322-324 (1985).</li>
<li>Ashworth, E. N., Davis, G. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ice+formation+in+woody+plants+under+field+conditions%5BTitle%5D)+AND+%22HortSci%22%5BJournal%5D)">Ice formation in woody plants under field conditions.</a> HortSci. 21, 1233-1234 (1986).</li>
<li>Pramsohler, M., Hacker, J., Neuner, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Freezing+pattern+and+frost+killing+temperature+of+apple+%28Malus+domestica.%29+wood+under+controlled+conditions+and+in+nature%5BTitle%5D)+AND+%22Tree+Physiol%22%5BJournal%5D)">Freezing pattern and frost killing temperature of apple (Malus domestica.) wood under controlled conditions and in nature.</a> Tree Physiol. 32 (7), 819-828 (2012).</li>
<li>Wisniewski, M., Lindow, S. E., Ashworth, E. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Observations+of+ice+nucleation+and+propagation+in+plants+using+infrared+video+thermography%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Physiol%22%5BJournal%5D)">Observations of ice nucleation and propagation in plants using infrared video thermography.</a> Plant Physiol. 113 (2), 327-334 (1997).</li>
<li>Lutze, J. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Elevated+atmospheric+%5BCO2%5D+promotes+frost+damage+in+evergreen+tree+seedlings%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Cell+Environ%22%5BJournal%5D)">Elevated atmospheric [CO2] promotes frost damage in evergreen tree seedlings.</a> Plant Cell Environ. (6), 631-635 (1998).</li>
<li>Ball, M. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Space+and+time+dependence+of+temperature+and+freezing+in+evergreen+leaves%29%5BTitle%5D)+AND+%22Func.+Plant+Biol%22%5BJournal%5D)">Space and time dependence of temperature and freezing in evergreen leaves).</a> Func. Plant Biol. 29 (11), 1259-1272 (2002).</li>
<li>Sekozawa, Y., Sugaya, S., Gemma, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Observations+of+ice+nucleation+and+propagation+in+flowers+of+Japanese+Pear+%28Pyrus+Pyrifolia%29%5BTitle%5D)+AND+%22Nakai%29+using+infrared+video%22%5BJournal%5D)">Observations of ice nucleation and propagation in flowers of Japanese Pear (Pyrus Pyrifolia).</a> Nakai) using infrared video. 73 (1), 1-6 (2004).</li>
<li>Hacker, J., Neuner, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ice+propagation+in+plants+visualized+at+the+tissue+level+by+IDTA+%28infrared+differential+thermal+analysis%29%5BTitle%5D)+AND+%22Tree+Physiol%22%5BJournal%5D)">Ice propagation in plants visualized at the tissue level by IDTA (infrared differential thermal analysis).</a> Tree Physiol. 27, 1661-1670 (2007).</li>
<li>Hacker, J., Neuner, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ice+propagation+in+dehardened+alpine+plant+species+studied+by+infrared+differential+thermal+analysis+%28IDTA%29%5BTitle%5D)+AND+%22Arc.+Antarc.+Alp.+Res%22%5BJournal%5D)">Ice propagation in dehardened alpine plant species studied by infrared differential thermal analysis (IDTA).</a> Arc. Antarc. Alp. Res. 40 (4), 660-670 (2008).</li>
<li>Hacker, J., Spindelböck, J., Neuner, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mesophyll+freezing+and+effects+of+freeze+dehydration+visualized+by+simultaneous+measurement+of+IDTA+and+differential+imaging+chlorophyll+fluorescence%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Cell+Environ%22%5BJournal%5D)">Mesophyll freezing and effects of freeze dehydration visualized by simultaneous measurement of IDTA and differential imaging chlorophyll fluorescence.</a> Plant Cell Environ. 31, 1725-1733 (2008).</li>
<li>Neuner, G., XU, B., Hacker, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Velocity+and+pattern+of+ice+propagation+and+deep+supercooling+in+woody+stems+of+Castanea+sativa.%2C+Morus+nigra.+and+Quercus+robur.+measured+by+IDTA%5BTitle%5D)+AND+%22Tree+Physiol%22%5BJournal%5D)">Velocity and pattern of ice propagation and deep supercooling in woody stems of Castanea sativa., Morus nigra. and Quercus robur. measured by IDTA.</a> Tree Physiol. 30, 1037-1045 (2010).</li>
<li>Hacker, J., Ladinig, U., Wagner, J., Neuner, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inflorescences+of+alpine+cushion+plants+freeze+autonomously+and+may+survive+subzero+temperatures+by+supercooling%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Sci%22%5BJournal%5D)">Inflorescences of alpine cushion plants freeze autonomously and may survive subzero temperatures by supercooling.</a> Plant Sci. 180, 149-156 (2011).</li>
<li>Kuprian, E., Briceno, V., Wagner, J., Neuner, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ice+barriers+promote+supercooling+and+prevent+frost+injury+in+reproductive+buds%2C+flowers+and+fruits+of+alpine+dwarf+shrubs+throughout+the+summer%5BTitle%5D)+AND+%22Env.+Exp.+Bot%22%5BJournal%5D)">Ice barriers promote supercooling and prevent frost injury in reproductive buds, flowers and fruits of alpine dwarf shrubs throughout the summer.</a> Env. Exp. Bot. 106, 4-12 (2014).</li>
<li>Wisniewski, M., Glenn, D. M., Fuller, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+a+hydrophobic+particle+film+as+a+barrier+to+extrinsic+ice+nucleation+in+tomato+plants%5BTitle%5D)+AND+%22HortScience%22%5BJournal%5D)">Use of a hydrophobic particle film as a barrier to extrinsic ice nucleation in tomato plants.</a> HortScience. 127, 358-364 (2002).</li>
<li>Aryal, B., &Neuner, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Leaf+wettability+decreases+along+an+extreme+altitudinal+gradient%5BTitle%5D)+AND+%22Oecologia%22%5BJournal%5D)">Leaf wettability decreases along an extreme altitudinal gradient.</a> Oecologia. 162, 1-9 (2010).</li>
<li>Wisniewski, M., Fuller, M. P. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aWisniewski%2C+M+%22Ice+nucleation+and+deep+supercooling+in+plants%3A+new+insights+using+infrared+thermography.+In%3A+Cold+adapted+organisms.+Ecology%2C+physiology%2C+enzymologyandmolecularbiology%22">Ice nucleation and deep supercooling in plants: new insights using infrared thermography. In: Cold adapted organisms. Ecology, physiology, enzymologyandmolecularbiology</a>. Margesin, R., Schinner, F. , Springer. 105-118 (1999).</li>
<li>Franks, F. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aFranks%2C+F+%22Biophysics+and+biochemistry+at+low+temperatures%22">Biophysics and biochemistry at low temperatures</a>. , Cambridge University Press. (1985).</li>
<li>Neuner, G., Kuprian, E. Infrared thermal analysis of plant freezing processes. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aNeuner%2C+G+%22Methods+in+Molecular+Biology%3A+Plant+Cold+Acclimation%22">Methods in Molecular Biology: Plant Cold Acclimation</a>. Hincha, D., Zuther, E. , Springer. 91-98 (2014).</li>
</ol>

Gli autori non hanno interessi finanziari in competizione o conflitti di interesse.

L&#39;acqua ha la capacità di Supercool a temperature inferiori a 0 ° C e la temperatura alla quale l&#39;acqua si congela può essere molto variabile. 36 Il limite di temperatura per sottoraffreddamento di acqua pura è di circa -40 ° C ed è definito come il punto di nucleazione omogenea. Quando l&#39;acqua gela A temperature superiori a -40 ° C si è portato dalla presenza di eterogeneo nucleatori che consentono piccoli embrioni di ghiaccio di forma che poi servire come catalizzatore per la formazione di ghiac...

Temperature di congelamento che si verificano quando le piante sono in attiva crescita può essere letale, in particolare se la pianta ha poca o nessuna tolleranza congelamento. Tali eventi gelo spesso hanno effetti devastanti sulla produzione agricola e possono svolgere un ruolo importante nel plasmare la struttura della comunità in popolazioni naturali di piante, in particolare in montagna, gli ecosistemi sub-artiche e artiche 1-6. Gli episodi di gravi gelate primaverili hanno avuto maggiori impatti sulla produzione di frutta negli Stati Uniti e in Sud America, negli ultimi anni 7-9 e sono stati esacerbati dalla precoce inizio della stagione calda seguita da più tipici basse temperature medie. Il clima caldo precoce induce i germogli di rompere, attivando la crescita di nuovi germogli, foglie e fiori che hanno tutti molto poco o nessun tolleranza al freddo 1,3,10-12. Tali condizioni meteorologiche imprevedibili sono stati segnalati per essere un riflesso diretto del cambiamento climatico in corso e si prevede che essere un modello di tempo comune per Foresfuturo eeable 13. Gli sforzi per fornire tecniche di gestione economiche, efficaci e rispettosi dell&#39;ambiente o prodotti agrochimici in grado di fornire una maggiore tolleranza al freddo hanno avuto un successo limitato per una serie di motivi, ma questo può essere in parte attribuito alla natura complessa di congelare la tolleranza e il congelamento dei meccanismi di evitamento nelle piante. 14 I meccanismi di adattamento associata a sopravvivenza gelo nelle piante sono stati tradizionalmente divisi in due categorie, il congelamento la tolleranza e il congelamento di evitamento. La prima categoria è associata con meccanismi biochimici regolati da uno specifico set di geni che permettono alle piante di tollerare tensioni associate con la presenza e l&#39;effetto dehydrative di ghiaccio nei suoi tessuti. Mentre quest&#39;ultima categoria è tipicamente, ma non esclusivamente, associato ad aspetti strutturali di una pianta che determinano se, quando, e dove si forma il ghiaccio in un impianto di 14. Nonostante la prevalenza di evasione freeze come un annuncioMeccanismo aptive, poca ricerca è stata dedicata negli ultimi tempi per la comprensione dei meccanismi e regolazione di evasione freeze sottostanti. Il lettore si riferisce a una recente revisione 15 per maggiori dettagli in merito. Mentre la formazione di ghiaccio a basse temperature può sembrare un processo semplice, molti fattori contribuiscono a determinare la temperatura alla quale il ghiaccio nucleates in tessuti vegetali e come si diffonde all&#39;interno della pianta. Parametri come la presenza di ghiaccio estrinseca e intrinseca nucleatori, eterogenei vs eventi nucleazione omogenea, termico-isteresi (antigelo) proteine, la presenza di zuccheri specifici e altri osmoliti, e una serie di aspetti strutturali della pianta possono tutti giocare un significativo ruolo nel processo di congelamento in impianti. Collettivamente, questi parametri influenzano la temperatura alla quale una pianta gela, in cui viene iniziata ghiaccio e come cresce. Essi possono anche influenzare la morfologia dei cristalli di ghiaccio risultanti.Vari metodi sono stati utilizzati per studiare il processo di congelamento in impianti in condizioni di laboratorio, compresa la spettroscopia di risonanza magnetica nucleare (NMR) 16, la risonanza magnetica (MRI) 17, crio-microscopia 18-19, e bassa temperatura di microscopia elettronica a scansione (LTSEM ). 20 Congelamento di piante intere in laboratorio e sul campo, però, è soprattutto stata monitorata con termocoppie. L&#39;uso di termocoppie per studiare congelamento si basa sulla liberazione di calore (entalpia di fusione) quando l&#39;acqua subisce una transizione di fase da liquido a solido. Congelamento viene quindi registrato come un evento esotermica. 21-23 Sebbene termocoppie sono il tipico metodo di scelta nello studio congelamento nelle piante, il loro uso ha molte limitazioni che limitano la quantità di informazioni ottenute durante un evento di congelamento. Ad esempio, con termocoppie è difficile quasi impossibile determinare dove viene iniziata ghiaccio in piante, come si propaga,se si propaga ad una frequenza costante, e se alcuni tessuti rimangono liberi di ghiaccio. I progressi in alta risoluzione termografia a infrarossi (HRIT) 24-27, però, hanno aumentato significativamente la capacità di ottenere informazioni sul processo di congelamento di piante intere, specialmente se usata in modalità di imaging differenziale. 28-33 Nella presente relazione, abbiamo descrivere l&#39;uso di questa tecnologia per studiare vari aspetti del processo di congelamento e vari parametri che influiscono dove e ghiaccio ea quale temperatura è iniziata nelle piante. Un protocollo sarà presentato che dimostrare la capacità del batterio di ghiaccio-nucleazione-attiva (INA), Pseudomonas syringae (Cit-7) per agire come un nucleator estrinseca avvio congelamento in una pianta erbacea ad una temperatura elevata sotto zero. Ad alta risoluzione telecamera a infrarossi Il protocollo e gli esempi documentati in questo rapporto utilizzano una alta risoluzione infrarossiVideo radiometro. Il radiometro (figura 1) fornisce un insieme di immagini spettro all&#39;infrarosso e nel visibile e dati di temperatura. La risposta spettrale della fotocamera è nel range di 7,5-13,5 pm e fornisce 640 x 480 pixel. Immagini spettro visibile generati dalla fotocamera incorporata può essere fuso con IR-immagini in tempo reale, che facilita l&#39;interpretazione dei complessi, immagini termiche. Una gamma di lenti per la macchina fotografica può essere usato per fare close-up e osservazioni microscopiche. La telecamera può essere utilizzata in una modalità autonoma, o interfacciato e controllato con un computer portatile utilizzando il software propietari. Il software può essere utilizzato per ottenere una varietà di dati termici incorporati nei video registrati. E &#39;importante notare che una grande varietà di radiometri infrarossi sono disponibili in commercio. Pertanto, è essenziale che il ricercatore discutere l&#39;applicazione prevista con un tecnico esperto del prodotto e che il ricercatore testare la capacità di qualsiasi specific radiometro a fornire le informazioni necessarie. Il radiometro di imaging utilizzata nel protocollo descritto è posto in una scatola di acrilico (Figura 2) isolato con Styrofoam i n fine di dissuadere l&#39;esposizione alla condensa durante i protocolli di riscaldamento e raffreddamento. Questa protezione non è necessaria per tutte le telecamere o le applicazioni.

<table><tbody><tr><td>Termocamera</td><td>FLIR</td><td>SC-660</td><td>Molti modelli disponibili a seconda dell'applicazione</td></tr><tr><td>Software analitico a infrarossi</td><td>FLIR</td><td>ResearchIR 4.10.2.5$</td><td>3.500</td></tr><tr><td>Pseudomonas syringae (ceppo Cit-7)</td><td></td><td></td><td><a href="mailto:icelab@berkeley.edu">Gentilmente fornito dal Dr. Steven Lindow, Università della California&nbsp; Berkeley icelab@berkeley.edu</a></td></tr><tr><td>Pseudomonas Agar F</td><td>Fisher Scientific</td><td>DF0448-17-1</td><td></td></tr></tbody></table>

l&#39;uso di ad alta risoluzione termografia a infrarossi (hrit) per lo studio di ghiaccio nucleazione del ghiaccio e propagazione nelle piante

The Use of High-resolution Infrared Thermography (HRIT) for the Study of Ice Nucleation and Ice Propagation in Plants

Gli eventi di congelamento che si verificano quando le piante crescono attivamente possono essere un evento letale, in particolare se la pianta non ha tolleranza al congelamento. Tali eventi di gelo hanno spesso effetti devastanti sulla produzione agricola e possono anche svolgere un ruolo importante nel plasmare la struttura della comunità nelle popolazioni naturali di piante, in particolare negli ecosistemi alpini, sub-artici e artici. Pertanto, una migliore comprensione del processo di congelamento nelle piante può svolgere un ruolo importante nello sviluppo di metodi di protezione dal gelo e nella comprensione dei meccanismi di prevenzione del gelo. Qui, descriviamo un protocollo per visualizzare il processo di congelamento negli impianti utilizzando la termografia a infrarossi ad alta risoluzione (HRIT). L'uso di questa tecnologia consente di determinare i siti primari di formazione del ghiaccio nelle piante, come si propaga il ghiaccio e la presenza di barriere di ghiaccio. Inoltre, consente di esaminare il ruolo dei nucleatori estrinseci e intrinseci nel determinare la temperatura alla quale le piante si congelano e di valutare la capacità di vari composti di influenzare il processo di congelamento o di aumentare la tolleranza al congelamento. L'uso di HRIT consente di visualizzare i numerosi adattamenti che si sono evoluti nelle piante, che hanno un impatto diretto o indiretto sul processo di congelamento e, in ultima analisi, consentono alle piante di sopravvivere agli eventi di gelo.

Attività di Ice-nucleazione del ghiaccio + batterio, Pseudomonas syringae (ceppo Cit-7) Una goccia 10 ml di acqua e 10 ml di acqua contenente P. syringae (Cit-7) sono stati collocati sulla superficie di una foglia abassiale Hosta (Hosta spp.) (Figura 4). Come illustrato, la goccia d&#39;acqua contenente batteri INA congelato prima ed era responsabile per indurre la foglia di congelare mentre la goccia d&#39;acqua sulla superficie del foglio è rimas...

Qui presentiamo un protocollo che permette di visualizzare i siti di formazione del ghiaccio e le vie di propagazione del ghiaccio nelle piante utilizzando la termografia a infrarossi ad alta risoluzione (HRIT).

L&#39;uso di ad alta risoluzione termografia a infrarossi (HRIT) per lo studio di ghiaccio nucleazione del ghiaccio e propagazione nelle piante

Freezing events that occur when plants are actively growing can be a lethal event, particularly if the plant has no freezing tolerance. Such frost events ...

L'obiettivo generale del seguente esperimento è dimostrare il ruolo degli agenti nucleanti esterni nell'indurre il congelamento del materiale vegetale e visualizzare il processo mediante termografia a infrarossi. Questo viene ottenuto applicando, sulla superficie di una foglia della pianta in studio, una goccia di acqua e una goccia di batteri attivi nella nucleazione del ghiaccio (INA). Come secondo passaggio, la pianta viene posta in condizioni di temperatura sotto zero e posizionata in modo da poter essere osservata con una telecamera a infrarossi ad alta risoluzione.I parametri della telecamera vengono quindi impostati, consentendo al ricercatore di osservare l'inizio e la propagazione del ghiaccio. Successivamente, la temperatura della camera viene lentamente ridotta a valori sotto lo zero per indurre il congelamento dei batteri INA sulla superficie, che a loro volta indurranno il congelamento della pianta. I risultati mostrano l'effetto di agenti nucleanti del ghiaccio estrinseci nel provocare il congelamento delle piante anziché il loro raffreddamento sotto la temperatura di congelamento, evitando il congelamento, sulla base della capacità della termografia a infrarossi di determinare con precisione la posizione iniziale della formazione del ghiaccio e di visualizzare come il ghiaccio si propaghi attraverso la pianta.Questa tecnica può essere utilizzata non solo per visualizzare le piante in condizioni di controllo, ma anche sul campo in condizioni naturali. Comprendere come le piante si congelano in condizioni naturali e ottenere informazioni sul processo di congelamento può fornire nuovi dati che potrebbero portare a nuove tecniche di protezione dal gelo per le piante agricole, ma ci rivela anche molto sull'ecologia vegetale. Inoltre, questa tecnica si è rivelata particolarmente utile per comprendere l'ecologia alpina.Insieme a me, Eric Burchard, un tecnico del mio laboratorio dimostrerà questo procedimento nel video seguente. Per avviare la coltura, il batterio INA Psdo Srini viene coltivato in piastre di Petri a 25 gradi Celsius su agar pseudos F preparato con 10 grammi per litro di glicerolo al 100%, seguendo le istruzioni del produttore. Una volta che le colture sono cresciute sufficientemente, conservarle a quattro gradi Celsius per almeno due giorni per garantire un elevato livello di attività di nucleazione del ghiaccio. Successivamente, raschiare i batteri presenti in una singola piastra dalla superficie dell'agar con una spatola di plastica monouso o in metallo riutilizzabile.Collocare i batteri in 10-15 millilitri di acqua deionizzata. In un vetrino monouso da 25 millilitri, la soluzione apparirà torbida. Non è necessario confermare la concentrazione mediante emocitometro, citometro o spettrofotometro, poiché la concentrazione deve essere solo approssimativa.Vortexare il Q Vet per un minimo di 10 secondi per distribuire i batteri. Per impostare l'esperimento di congelamento, posizionare la telecamera a infrarossi ad alta risoluzione all'interno della scatola protettiva in acrilico in modo che l'obiettivo sporga attraverso l'apertura nella parte anteriore della scatola e i cavi che collegano la telecamera a un laptop o dispositivo di registrazione escano attraverso l'apertura posteriore della scatola.Distribuire tutti i collegamenti esterni cablati alla telecamera attraverso questa porta. Riempire qualsiasi spazio aggiuntivo nella porta o nell'apertura con materiale isolante in schiuma per evitare o ridurre i gradienti di temperatura all'interno della camera. Fornire uno sfondo scuro attorno al materiale vegetale rivestendo le pareti della camera con carta da disegno nera per prevenire interferenze dovute all'energia infrarossa riflessa.Equipaggiare la camera con un'illuminazione a LED per ridurre al minimo il riscaldamento derivante dalla sorgente luminosa durante la registrazione di immagini in lunghezze d'onda invisibili. È richiesta una quantità minima di illuminazione, come una luce per armadio a batteria o un altro piccolo dispositivo LED, affinché le piante siano visibili dalla telecamera; questa illuminazione deve essere spenta dopo aver acquisito le immagini in luce visibile. Fissare il coperchio della scatola e posizionare la scatola all'interno della camera ambientale in un punto che permetta di visualizzare il materiale vegetale in esame.Impostare quindi la temperatura iniziale della camera a un grado Celsius. Successivamente, allineare le piante o le parti di pianta in modo che il materiale vegetale sia nel campo visivo della telecamera e risulti visibile sullo schermo di visualizzazione remota o all'interno del software scelto. Poco prima di chiudere la porta della camera ambientale, applicare 10 microlitri di acqua sulla superficie AAL di una foglia utilizzando una micropipetta.Quindi, utilizzare una punta monouso separata per applicare 10 microlitri di una soluzione di batteri INA sul lato opposto della stessa superficie AAL. Prima di iniziare un esperimento di congelamento, è necessario abbassare la temperatura della camera a circa un grado centigrado e lasciare che la temperatura delle piante si equilibri a questo valore per circa mezz'ora o un'ora, a seconda delle dimensioni del materiale vegetale. Questo garantisce che, quando si avvia l'esperimento di congelamento e si comincia ad abbassare la temperatura, la temperatura del materiale vegetale non rimanga molto indietro rispetto alla temperatura dell'aria all'interno della camera stessa.Dopo che le piante si sono equilibrate, iniziare il raffreddamento della camera e impostare i parametri della telecamera desiderati nel software di ricerca per immagini a infrarossi. Per prima cosa, selezionare la tavolozza colorata a arcobaleno per visualizzare le variazioni di temperatura durante la visione dell'immagine in tempo reale. Successivamente, impostare l'intervallo di temperatura a cinque gradi Celsius regolando la barra della temperatura situata appena sotto l'immagine nel software.Scegliere la scala lineare per convertire i dati infrarossi in un'immagine a falsi colori, come definito dalla tavolozza selezionata. Impostare l'intervallo di temperatura su cinque gradi Celsius e attivare il rilevamento automatico in base all'immagine. Utilizzare la temperatura di un punto specifico o la temperatura media all'interno dell'area di interesse definita fornita dal software.Quindi posizionare un cursore su una posizione del tessuto vegetale che rappresenta un punto specifico di interesse. Definire l'area di interesse come punti, rettangoli, linee, ellissi o cerchi. Sull'immagine possono essere posizionate molteplici combinazioni di punti o forme.Inoltre, eventuali aree di interesse possono essere definite anche dopo il completamento dell'esperimento. Mentre il ricercatore analizza il file video o immagine salvato, per registrare una sequenza video impostare la fotocamera in modo da registrare a 60 hertz e interrompere manualmente la registrazione indicando sul computer o su un'unità esterna la posizione in cui verrà salvato il file video registrato. Si raccomanda vivamente di registrare su un'unità disco esterna poiché verranno generati file video di grandi dimensioni.Per registrare una sequenza video, impostare la fotocamera su 60 hertz e interrompere manualmente la registrazione, quindi avviare la registrazione. I file video registrati possono essere successivamente modificati per includere solo la parte contenente le informazioni necessarie. Ridurre gradualmente la temperatura della camera di 0,5 a 1,0 gradi Celsius.Attendere finché la temperatura della pianta non si equilibra con quella dell'aria, prima di abbassare nuovamente la temperatura nello stesso modo, a seconda della massa del tessuto vegetale osservato e della sua morfologia. L'equilibrazione può richiedere da 10 a 15 minuti, determinando così una velocità di raffreddamento di circa due-quattro gradi Celsius all'ora. Proseguire in questo modo fino al congelamento della pianta e al completamento delle osservazioni.Terminare la registrazione quando il processo di congelamento è completato. Qui sono mostrate immagini in luce visibile del fusto dell'azalea alpina che evidenziano le foglie attaccate al fusto centrale e le gemme terminali. Il congelamento inizia nel fusto e il ghiaccio si propaga verso l'esterno nelle foglie.I gemmi terminali rimangono non congelati e si congelano autonomamente da 126 a 164 minuti dopo il congelamento iniziale del fusto e delle foglie. Durante questo periodo, il calore di entalpia prodotto dal congelamento del fusto e delle foglie si è dissipato. Quando viene applicata una barriera idrofobica su piante di pomodoro, si impedisce il congelamento indotto da batteri INA della pianta.È possibile osservare qui l'ampia superficie di contatto tra la goccia INA e la superficie della foglia su una pianta non rivestita. Al contrario, su una pianta rivestita il contatto tra la goccia INA e la superficie della foglia è ridotto. La pianta non rivestita a destra mostra una risposta esotermica associata al congelamento della pianta.Mentre la pianta rivestita a sinistra rimane super raffreddata e non congelata a circa meno sei gradi Celsius. Durante l'utilizzo di questa tecnologia, è importante adottare velocità di raffreddamento adeguate e osservare il processo di congelamento numerose volte per comprendere meglio come interpretare le immagini e i video ottenuti. La procedura può inoltre essere utilizzata in combinazione con termocoppie per ottenere una stima più precisa della temperatura dell'aria e delle temperature effettive alle quali si verificano gli eventi di congelamento.

the-use-high-resolution-infrared-thermography-hrit-for-study-ice

Research

Ricerca

JoVE Journal

Environment

Ambiente

Descriviamo un protocollo mediante diapositive da camera e media per immobilizzare cotiledoni di impianto per l'imaging confocale dell'epidermide più giorni di sviluppo, documentazione differenziazione stomatica. Proteine ​​fluoroforo-tag possono essere monitorati in modo dinamico attraverso l'espressione e la localizzazione subcellulare, aumentare la comprensione dei ruoli possibili durante la divisione cellulare e la differenziazione delle cellule-tipo.

A lungo termine, ad alta risoluzione confocale Lapse Imaging Tempo di<em&gt; Cotyledon Arabidopsis</emEpidermide&gt; durante la germinazione

Questo protocollo descrive un procedimento per la rapida raccolta di immagini di piantine di Arabidopsis rispondono ad uno stimolo gravità utilizzando commercialmente disponibili scanner piani. Il metodo consente di poco costoso, ad alto volume cattura di immagini ad alta risoluzione possono essere sindacate per algoritmi di analisi a valle.

Utilizzo di Scanner Flatbed per la raccolta ad alta risoluzione e ritardi Immagini della Arabidopsis Root gravitropica risposta

È stato sviluppato un metodo per determinare la capacità termica specifica e la conduttività termica del tessuto fogliare mediante sonda laser nel vicino infrarosso non invasiva e senza contatto, che richiede meno di 1 minuto per campione.

Un laser Rapid Probing Metodo Facilita la determinazione non invasiva e senza contatto di Leaf Proprietà termiche

Questo documento delinea l'identificazione di proteine ​​di ghiaccio-binding da piante freeze-tolleranti attraverso la valutazione di attività di inibizione ghiaccio ricristallizzazione e successivo isolamento di IBPS native che utilizzano la purificazione ghiaccio affinità.

Identificazione di Plant proteine ​​Ice vincolante attraverso la valutazione di Ice-ricristallizzazione inibizione e isolanti Utilizzando Ice-affinità Purificazione

Un protocollo sperimentale è presentato per la valutazione del terreno coltivato pianta radice sistemi con RGB e l'imaging iperspettrale. Combinazione di tempo di immagine RGB serie con chemiometrica informazioni da iperspettrale scansioni ottimizza intuizioni nelle dinamiche di radice di pianta.

RGB e Imaging spettrale radice per pianta Phenotyping e ricerca fisiologica: messa a punto sperimentale e protocolli di Imaging

Qui, presentiamo un protocollo per una pianta di fragola congelamento in 3 dimensioni di immagine. Due telecamere ad infrarossi posizionate ad angolature leggermente differenti sono utilizzati per produrre un video anaglifi rosso-blu per osservare il congelamento dell'impianto in 3 dimensioni.

Protocollo per la produzione di Video tridimensionale a raggi infrarossi di congelamento in piante

Forniamo un metodo per identificare i modulatori della traspirazione fogliare mediante lo screening su larga scala di una libreria composta.

Identificazione di nuovi regolatori della traspirazione vegetale mediante screening termico su larga scala in Helianthus Annuus

In questo articolo, descriviamo uno strumento avanzato progettato per il monitoraggio della biosintesi della clorofilla durante le prime fasi di de-eziolamento delle piantine di Arabidopsis . La nuova metodologia fornisce immagini non invasive in tempo reale della fluorescenza della clorofilla ad alta risoluzione spaziale e temporale.

Test non invasivo per la determinazione della cinetica della biosintesi della clorofilla durante le prime fasi della deeziolazione dell'Arabidopsis

Abbiamo progettato un protocollo di fenotipizzazione basato su immagini per determinare le risposte morfologiche e fisiologiche a trattamenti singoli e combinati di calore, siccità e ristagno idrico. Questo approccio ha permesso di identificare le risposte precoci, tardive e di recupero a livello di intero impianto, in particolare le parti fuori terra, e ha evidenziato la necessità di utilizzare più sensori di imaging.

Fenotipizzazione basata su immagini ad alta produttività per determinare le risposte morfologiche e fisiologiche a stress singoli e combinati nella patata

Piante di tabacco sono stati usati per produrre una cellulasi fungine, TrCel5A, tramite un sistema di espressione transiente. L'espressione potrebbe essere monitorato utilizzando una proteina di fusione fluorescente, e l'attività della proteina è stata caratterizzata post-espressione.

Espressione ricombinante Cellulase Cel5A da<em&gt; Trichoderma reesei</em&gt; In piante di tabacco

Scopri come visualizzare la formazione del ghiaccio nelle piante usando la termografia infrarossa ad alta risoluzione. Questo metodo mostra il ruolo dei batteri INA nel processo di congelamento.

Luso di ad alta risoluzione termografia a infrarossi (HRIT) per lo studio di ghiaccio nucleazione del ghiaccio e propagazione nelle piante (Video) | JoVE Journal

L'uso di ad alta risoluzione termografia a infrarossi (HRIT) per lo studio di ghiaccio nucleazione del ghiaccio e propagazione nelle piante

Esplora altri video