Name: Induzione e valutazione di ischemia-riperfusione Injury in Langendorff-perfusi Hearts Rat (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-07-27T15:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 58 s
Description: Scopri come modellare l'ischemia-riperfusione ex vivo su cuori di ratto isolati con l'apparato di Langendorff. Questo metodo permette di studiare gli eventi molecolari e la funzione miocardica in tempo reale.

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Questa pubblicazione è stata sostenuta dalla Carolina del Sud Clinical &amp; Translational Research (SCTR) Institute, con una casa accademico presso la Medical University of South Carolina, NIH / NCATS Concessione Numero UL1 TR000062. Ulteriore supporto è stato fornito da premio di merito VA BX002327-01 a DRM. DJH è stato sostenuto da NIH / NCATS Concessione Numero TL1 TR000061 e dal NIH di Grant Numero T32 GM008716. SEA è stato sostenuto da NIH di Grant Numero T32 HL07260.

Tutte le procedure qui elencati sono stati approvati dalla cura e l&#39;uso degli animali Comitato Istituzionale presso la Medical University of South Carolina. Gli esperimenti qui descritti sono acute, esperimenti non di sopravvivenza. Come tale, non c&#39;è uso di unguento occhio e una suite operatoria sterile non è necessaria. L&#39;eutanasia si ottiene dissanguamento durante la raccolta del cuore. Preparazione 1. sperimentale <ol><li> Impostare sia una pressione costante o costante flusso Langendorff Perfusion Apparatus 4. </li><li> Preparare 4 L di Krebs modificato Henseleit Buffer (in mM: 112 NaCl, KCl 5, 1.2 MgSO4, 1 K 2 HPO 4, 1.25 CaCl 2, 25 NaHCO3, 11 D-glucosio, 0.2 acido ottanoico, pH = 7,4). <ol><li> Fai 10x azionari buffer. <ol><li> Sciogliere NaCl, KCl, MgSO 4, e K 2 HPO 4 a 3 litri di acqua ultrapura. </li><li> Sciogliere CaCl 2 in 500 ml di acqua ultrapura with 40 ml di 1 N HCl. </li><li> Aggiungere lentamente CaCl 2 soluzione al buffer realizzato in 1.2.1.1. Aggiungere acqua ultrapura abbastanza per un totale di 4 L. Consenti a mescolare per 1 ora prima di filtrare attraverso un filtro di 0,8 micron. Conservare a 4 ° C. </li><li> Sciogliere NaHCO 3 a 4 litri di acqua ultrapura. Lasciare a mescolare per 1 ora prima di filtrare attraverso a 0.8 micron filtro. Conservare a 4 ° C </li></ol></li><li> Unire 400 ml 10x tampone Krebs Henseleit con 400 ml 10x NaHCO 3 buffer. Aggiungere acqua ultrapura abbastanza per un totale di 4 L. Sciogliere glucosio e acido ottanoico mescolando. Filtrare 0,8 micron filtro. </li></ol></li><li> Sistema di Preparazione per il cuore. <ol><li> Aggiungere 2 L di tampone filtrata in una bottiglia 4 L 38 disposto sopra il rubinetto attaccato alla cannula aortica. Ciò fornirà una pressione di perfusione di 70-80 mmHg al cuore, che è la pressione di perfusione raccomandata 4. </li><li> Inserire gas dispersione gorgogliatore nel buffer nella bottiglia. </li><li> Eseguire il buffer attraverso il sistema, avendo cura di eliminare eventuali bolle dall&#39;interno del tubo. </li><li> Accendere gas (95% O 2/5% CO 2) almeno 30 minuti prima cuore è da collocare sul sistema. Utilizzare una sonda flusso di gas e analizzatore di gas del sangue per verificare la saturazione di ossigeno. </li></ol></li><li> Preparare scorte chirurgiche e pallone. <ol><li> Per la raccolta di cuore, preparare un paio di forbici chirurgiche 6,75 &quot;, un paio di forbici 4.5&quot;, due paia di hemostats, due set di pinze CaraMalto, due siringhe con 27 aghi G, 2 pezzi di 0-misuratore sutura di seta (su 15 cm di lunghezza), una cannula spinato 1/16 di pollice, e una cannula tracheale. </li><li> Per assemblare cannula tracheale, incollare un breve pezzo di tubo del diametro di plastica 1/16 di pollice a un connettore a Y. </li><li> Per assemblare apparato palloncino: inserire un ago sonda gastrica per un pezzo di tubo 1/16 di pollice, quindi collegare il tubo di alloggiamento trasduttore di pressione. Una piccola siringa collegata all&#39;altro lato della tr pressioneansducer alloggiamento consentirà l&#39;inflazione e la deflazione del palloncino. <ol><li> Tagliare un quadrato di plastica dell&#39;involucro e luogo punta di un ago sonda gastrica al centro. Avvolgere l&#39;involucro di plastica intorno all&#39;ago sonda gastrica. </li><li> Riempire palloncino con soluzione salina e legare con due punti di sutura. Gonfiare palloncino per assicurarsi che non ci siano perdite. Il volume di soluzione salina all&#39;interno del palloncino gonfiato dovrebbe essere circa 200 ml, ma può variare a seconda delle dimensioni del ratto. </li><li> In alternativa, utilizzare un lettino dito lattice al posto della pellicola trasparente. Posizionare gavage ago all&#39;interno dito culla, riempire con soluzione salina e legare. </li></ol></li></ol></li></ol> 2. Raccolta cuore <ol><li> Trattenere un ratto Sprague Dawley utilizzando un decapicone o altro sistema di vincolo manuale. Pesare topo. </li><li> Somministrare ketamina / miscela xylazina (0,85 mg / kg di ketamina e 0,15 mg / kg xilazina) tramite iniezione intraperitoneale per anestetizzare ratto. Questa dose di anestetico fornirà anestesia sufficienti per20-40 min, ma la procedura dovrebbe essere completata il più rapidamente possibile dopo anestesia è confermato. </li><li> Verificare il corretto livello di anestesia da test punta pizzico reflex. </li><li> Tracheotomia <ol><li> Rimuovere pelle da metà zampa a base di mascella, utilizzando hemostats per elevare Pelt e forbici per fare incisione. Mantenere la trippa elevata per separarlo dal muscolo sottostante, permettendo di tagliare lungo la trippa e rimuoverlo. </li><li> Utilizzando hemostats, sollevare il tessuto ghiandolare e fare una incisione orizzontale a fascia inferiore al tessuto ghiandolare. Utilizzare hemostats per diffondere incisione aperta, facendo attenzione a non intaccare le vene giugulari. </li><li> Utilizzando hemostats, pizzico muscolo sovrastanti la trachea, e con le forbici fare una incisione trasversale nel muscolo appena sotto la punta delle hemostats. Utilizzando hemostats, si sviluppa il tessuto oltre a rivelare trachea. </li><li> Inserire con cautela hemostats sotto la trachea, la compensazione fascia mentre procedendo delicatamente avanzamento e riavvolgimento emostatici. </li><li>Una volta hemostats sono collocati con successo dietro la trachea, un pizzico 0-0 sutura di seta con hemostats e hemisect la trachea con un piccolo paio di forbici affilate. </li><li> Inserire cannula tracheale nella trachea hemisected, tirare di sutura dietro la trachea, e legare la sutura intorno alla trachea cannulato, ancorando la sutura alla Y-inguine della cannula con un nodo chirurghi. </li><li> Utilizzando un ago 27 G, iniettare 1.000 U / kg di eparina nella vena giugulare e consentire a circolare per 30 sec. </li></ol></li><li> Toracotomia <ol><li> Rimuovere pelle da metà addome per regione medio-zampe anteriori da pizzicare con hemostats e il taglio con le forbici. </li><li> Fare un ¾ di pollice trasversale un&#39;incisione nella parete muscolare addominale, appena sotto il diaframma. </li><li> Effettuare una incisione verticale sul muro della parete toracica e addominale, taglio lungo lo sterno. </li><li> Tagliare il diaframma posteriore bilateralmente, poi diffuso gabbia toracica per rivelare il cuore, morsetto gabbia toracica con hemostats per assicurare rimane diffusione. </li&gt; <li> Utilizzando hemostats, rimuovere delicatamente il timo, esponendo l&#39;aorta ascendente. </li><li> Tease hemostats attraverso cappio aortica, avanzamento e riavvolgimento hemostats e delicatamente diffusione fascia per consentire punta di hemostats attraverso. </li><li> Utilizzare hemostats per tirare 0-0 sutura di seta dietro dell&#39;aorta ascendente, cravatta di sutura in una mezza piazza nodo allentato. </li><li> Girare rubinetto per avviare il flusso di tampone di perfusione, hemisect aorta e inserire la cannula nel lume aortico immediatamente. Rapidamente cinch un nodo mezzo quadrato e completare il nodo, stringendo a fondo. </li><li> Usare le forbici per sezionare cuore lontano dai grandi vasi, togliere il cuore dal petto e allegare alla colonna di perfusione. </li><li> Troncare tessuto polmonare in eccesso e permette cuore equilibrare su colonna per circa 15 minuti prima dell&#39;inserimento del palloncino. Utilizzare una portata normale di tampone attraverso il cuore di 10-20 ml / min. </li></ol></li></ol> 3. Langendorff perfusione e ischemia riperfusione <ol><li> Posizionamento di LV pressure balloon <ol><li> Sgonfiare pallone durante il rotolamento a forma di cono e girare rubinetto per assicurare pallone rimane sgonfio. </li><li> Excise lasciato atrio con un piccolo paio di forbici per esporre l&#39;accesso alla valvola mitrale. </li><li> Inserire palloncino attraverso atrio sinistro e la valvola mitrale in ventricolo sinistro. </li><li> Avviare il software di controllo della pressione (LabChart Pro). </li><li> Gonfiare pallone aprendo rubinetto e delicatamente crescente quantità di soluzione salina in mongolfiera fino diastolica lettura da micromanometro supera zero. </li><li> Per controllare la risposta lunghezza-tensione, gonfiare palloncino lentamente ad una pressione diastolica di 75 mmHg, sgonfiare lentamente, ripetere una volta. </li><li> Impostare la pressione diastolica di 10 mmHg modulando la quantità di soluzione salina nel pallone. Girare rubinetto per sigillare palloncino a questo livello di inflazione, e di mantenere il sistema di pressione chiuso tra LV palloncino e trasduttore di pressione. </li><li> Lower cuore in riscaldato da camera e coperchio della camera con la plastica. </li></ol></li><li> Annuncioministero della Ischemia riperfusione <ol><li> Inserire il fondo della camera riscaldata e lasciare da camera di riempire con tampone Effused. </li><li> Quando il buffer è sommerso cuore, girare rubinetto per arrestare il flusso di tampone nel cuore, inducendo ischemia globale. Ischemia tempo può variare a seconda degli obiettivi dell&#39;esperimento. </li><li> Dopo 30 min di ischemia, girate rubinetto per ripristinare il flusso di tampone in cuore, iniziando riperfusione. </li><li> Consentire riperfusione del cuore per 1 ora prima di terminare l&#39;esperimento. Utilizzare tempi riperfusione variabili, a seconda degli obiettivi dell&#39;esperimento. </li></ol></li><li> Cessazione Esperimento e raccolta di tessuto <ol><li> Utilizzando babordo di rubinetto, somministrare 10 ml di tampone fosfato salino a 4 ° C nel cuore ad una velocità di 10 ml / min per arrestare cuore. </li><li> Rimuovere cuore dalla colonna perfusione, tagliare via rimanente tessuto atriale. </li><li> Mettere il cuore in acciaio inox per affettare matrice di tessuto, coprire con Parafilm, e posto a -80 ° C per 8 minuti, o fino a quando il cuore ha una consistenza marshmallow-like. </li><li> Rimuovere blocco dal congelatore e inserire lamette in affettare matrice per tagliare cuore in 2 fette mm. Blocchi tessuto possono essere acquistati anche con i formati fetta altri di 2 mm. </li><li> Rimuovere fette uno alla volta e rilasciare in azoto liquido a lampeggiare congelare per studi biochimici. Conservare la fetta terzo ventricolo dall&#39;apice per infarto colorazione. </li><li> Rimuovere il tessuto da azoto liquido e conservare a -80 ° C fino al momento dell&#39;uso in esperimenti biochimici. </li></ol></li><li> Infarto colorazione <ol><li> Incubare la terza porzione ventricolare in 10 ml di 1% w / v di cloruro trifeniltetrazolio (TTC) a 37 ° C per 15 min. Nota: L&#39;incubazione in TTC può essere eseguita per 15 o 30 minuti con nessun cambiamento nell&#39;efficacia 15. </li><li> Trasferire fetta tessuto dalla TTC al 10% formalina tamponata e lasciar incubare a temperatura ambiente per una notte. Per ottenere risultati ottimali, sentirets devono essere tolti di formalina e ripreso entro 24 ore 4. </li><li> Fotografia macchiato fetta e l&#39;utilizzo di software come ImageJ per stimare le dimensioni dell&#39;infarto secondo il protocollo del produttore. Fotografare il più presto possibile dopo la fissazione, il colorante sbiadiscono nel tempo. </li></ol></li></ol>

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Gli autori dichiarano di non avere interessi finanziari concorrenti.

Isolato Il cuore perfuso di ratto può essere utilizzato con successo per studiare l&#39;effetto di un intervento farmacologico in precondizionamento cardiaco in ischemia riperfusione 9. Tuttavia, ci sono alcuni passaggi essenziali alla procedura che deve essere standardizzato per garantire risultati riproducibili. Il mantenimento di una temperatura di 37,4 ° C all&#39;interno del sistema è critico, in quanto anche lieve ipotermia e ipertermia può causare precondizionamento cardiaco 10,11. Il tempo ...

Delucidazione degli eventi di riferimento la risposta cardiaca sia ischemia e riperfusione sono essenziali per migliorare il trattamento di infarto 1 e cardiache procedure chirurgiche che richiedono miocardio clampaggio aortico 2. Mentre i modelli in vivo di ischemia riperfusione consentono analisi endpoint molto utili, essi non sono efficaci per studiare gli effetti funzionali di ischemia riperfusione acutamente in tempo reale. Inoltre, in modelli di ischemia riperfusione vivo producono generalmente significativa variabilità nelle dimensioni dell&#39;infarto e consegna diretta di farmaco al cuore al momento della riperfusione è impegnativo. L&#39;utilizzo di un sistema Langendorff cuore isolato per studiare il danno da ischemia riperfusione permette valutazione funzionale in tempo reale di trattamenti farmacologici, superficie uniforme tessuto infartuato e consegna istantanea di farmaco direttamente al miocardio. Prima descritto by Oscar Langendorff nel 1895 3, il cuore Langendorff isolato è un modello affidabile per lo studio di ischemia riperfusione, essendo stato utilizzato nella ricerca ischemia riperfusione per gli ultimi 40 anni di 4,5. Qui, alcune modifiche sono fatte per ottimizzare il cuore isolato per l&#39;analisi funzionale. In situ incannulamento dell&#39;aorta mentre il cuore batte assicura che il cuore non sperimenta precondizionamento ischemico, tali da modificare i risultati di studi ischemia riperfusione 6. Per facilitare ciò, viene eseguita una tracheotomia, consentendo la ventilazione e garantire la stabilità fisiologica del ratto durante l&#39;intervento chirurgico. Il cuore è poi collegato a un camicia d&#39;acqua colonna tortile vetro attraverso il quale tampone Krebs Henseleit avviene tramite perfusione retrograda direttamente nell&#39;aorta. Un palloncino soluzione salina viene inserita nel ventricolo sinistro e collegato ad un trasduttore di pressione, che consente la misurazione in tempo reale delle pressioni dall&#39;interno un ventricolod calcolo dei molteplici parametri funzionali. Al termine dell&#39;esperimento, cuore viene lavata con soluzione salina fredda per arrestare la contrazione e flash congelati in azoto liquido per consentire l&#39;analisi valle dei livelli di DNA, RNA e proteine. Così modificato, cuore perfuso Langendorff serve come un sistema efficace per il monitoraggio diretto degli effetti fisiologici degli interventi farmacologici in qualsiasi momento acutamente durante il danno da ischemia riperfusione.

<table><tbody><tr><td>Cloruro di sodio</td><td>Sigma Aldrich</td><td>S3014</td><td></td></tr><tr><td>Cloruro di potassio</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P9541</td><td></td></tr><tr><td>Solfato di magnesio</td><td>Sigma Aldrich</td><td>203726</td><td></td></tr><tr><td>Fosfato di potassio bibasico</td><td>Sigma Aldrich</td><td>RES20765-A7</td><td></td></tr><tr><td>Cloruro di calcio diidrato</td><td>Sigma Aldrich</td><td>C8106</td><td></td></tr><tr><td>Sodio Bicarbonato</td><td>Sigma Aldrich</td><td>S5761</td><td></td></tr><tr><td>D-glucosio</td><td>Sigma Aldrich</td><td>G8270</td><td></td></tr><tr><td>Acido ottanoico</td><td>Sigma</td><td>Aldrich C2875</td><td></td></tr><tr><td>2,3,5-trifeniltetrazolio cloruro</td><td>Sigma Aldrich</td><td>T8877</td><td></td></tr><tr><td>Trasduttore di pressione medico</td><td>MEMSCAP</td><td>SP844</td><td></td></tr><tr><td>Pompa peristaltica Masterflex</td><td>Cole Parmer</td><td>EW-07521-40</td><td></td></tr><tr><td>Testa della pompa Masterflex Easy Load</td><td>Cole Parmer</td><td>EW-07518-10</td><td></td></tr><tr><td>Bagno d'acqua a circolazione riscaldato</td> Modulo di flusso per tubi <td>Lauda</td><td>M3</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Transonic</td><td>TS410</td><td></td></tr><tr><td>Console di ricerca modulare</td><td>Transonic</td><td>T402</td><td></td></tr><tr><td>Sensore di flusso in linea</td><td>Transonic</td><td>ME2PXN</td><td></td></tr><tr><td>PowerLab Dispositivo di acquisizione dati</td><td>AD Instruments</td><td>PL3508</td><td></td></tr><tr><td>Software di acquisizione dati LabChart</td><td>AD Instruments</td><td>MLU60/8</td><td></td></tr></tbody></table>

induzione e valutazione di ischemia-riperfusione injury in langendorff-perfusi hearts rat

Induction and Assessment of Ischemia-reperfusion Injury in Langendorff-perfused Rat Hearts

Gli eventi biochimici che circondano il danno da riperfusione ischemica in ambito acuto sono di grande importanza per promuovere nuove opzioni di trattamento per l'infarto del miocardio e le complicanze cardiache della chirurgia toracica. La capacità di alcuni farmaci di precondizionare il miocardio contro il danno da ischemia e riperfusione ha portato a molteplici studi clinici, con scarso successo. Il modello cardiaco isolato consente l'osservazione acuta degli effetti funzionali del danno da ischemia e riperfusione in tempo reale, inclusi gli effetti di vari interventi farmacologici somministrati in qualsiasi momento prima o all'interno della finestra del danno da ischemia-riperfusione. Poiché brevi periodi di ischemia possono precondizionare il cuore contro il danno ischemico, viene eseguita l'incannulamento aortico in situ per consentire la valutazione funzionale del miocardio non precondizionato. Un palloncino riempito di soluzione salina viene posizionato nel ventricolo sinistro per consentire la misurazione in tempo reale della generazione di pressione. Il danno ischemico è simulato dalla cessazione del flusso del tampone di perfusione, seguita dalla riperfusione. La durata sia dell'ischemia che della riperfusione può essere modulata per esaminare gli eventi biochimici in un dato momento. Sebbene il modello di cuore isolato di Langendorff non consenta di prendere in considerazione gli eventi sistemici che influenzano l'ischemia e la riperfusione, è un modello eccellente per l'esame di eventi funzionali e biochimici acuti all'interno della finestra del danno da riperfusione ischemica, nonché dell'effetto dell'intervento farmacologico sul pre e post condizionamento cardiaco. L'obiettivo di questo protocollo è dimostrare come eseguire l'incannulamento aortico in situ e l'escissione cardiaca seguite da danno da ischemia/riperfusione nel modello di Langendorff.

L&#39;apparato ventricolo sinistro balloon permette il monitoraggio in tempo reale della pressione sviluppata dalle amministrazioni ventricolo sinistro (figura 1). Come descritto in precedenza 7, questa traccia di pressione può essere utilizzata per calcolare molti dei parametri della funzione ventricolare. Questi calcoli possono essere effettuati in fase iniziale nonché la fase di riperfusione, mediati su tracce multiple all&#39;interno di ciascun gruppo, e confrontati per determinare se l&#...

Il cuore isolato del ratto è un modello duraturo per il danno da ischemia e riperfusione. Qui, descriviamo il processo di prelievo del cuore battente da un ratto tramite incannulamento aortico in situ, perfusione di Langendorff del cuore, danno da ischemia-riperfusione simulata e colorazione dell'infarto per confermare l'entità dell'insulto ischemico.

Induzione e valutazione di ischemia-riperfusione Injury in Langendorff-perfusi Hearts Rat

The biochemical events surrounding ischemia reperfusion injury in the acute setting are of great importance to furthering novel treatment options for ...

L'obiettivo generale di questa procedura è modellare l'ischemia e il danno da riperfusione ex vivo. Questo viene ottenuto anestetizzando innanzitutto un ratto ed eseguendo un'apertura toracica per canulare l'aorta in C due, impedendo così la condizionamento ischemico del miocardio. Successivamente, il cuore viene asportato e collegato a un apparato di perfusione di Langendorff.L'ultimo passaggio consiste nell'indurre un danno da ischemia-riperfusione interrompendo il flusso del buffer per un certo periodo e successivamente ripristinandolo. Infine, la generazione della pressione ventricolare viene utilizzata per mostrare l'effetto del danno da ischemia-riperfusione sulla funzione miocardica. Questo metodo può essere impiegato per contribuire a rispondere a domande fondamentali nel campo dell'ischemia-riperfusione cardiaca, ad esempio quali eventi molecolari si verificano nelle prime dinamiche ore di danno da ischemia-riperfusione.Per iniziare, calcolare l'anestetico necessario dopo aver verificato che il ratto sia stato anestetizzato. Iniziare la tracheotomia aprendo prima la cute dalla regione mediale delle quattro zampe fino alla base della mandibola. Utilizzare pinze emostatiche per spostarla lateralmente, esponendo la muscolatura.Quindi, con pinze emostatiche, sollevare il tessuto ghiandolare e utilizzare forbici per praticare un'incisione inferiore nella fascia. Allargare il tessuto esposto con un'altra coppia di pinze emostatiche. Fare attenzione a non danneggiare la giugulare.Ora effettuare un'incisione trasversale nel muscolo sovrastante la trachea con le forbici e l'aiuto dei forceps emostatici. Quindi utilizzare i forceps emostatici per esporre con attenzione la trachea, posizionando i forceps al di sotto della trachea e rimuovendo nel contempo la fascia. Successivamente, afferrare con i forceps emostatici un filo di seta 0-0 dietro la trachea.Successivamente, utilizzare le forbici per emostasare. Dissezionare la trachea fino a raggiungere la trachea. Inserire la cannula tracheale e fissarla con il punto di sutura, assicurandosi che il punto non vada al ramo a Y della cannula.Ora, con una siringa dotata di un ago da 27 gauge, iniettare 1000 unità di eparina per chilogrammo nella vena giugulare. Attendere 30 secondi prima di procedere con la toracotomia. Iniziare la toracotomia rimuovendo la cute tra la metà dell'addome e la metà del quarto paio di arti utilizzando pinze emostatiche e forbici.Praticare quindi un'incisione di tre quarti di pollice nella parete addominale appena sotto il diaframma. Continuare l'incisione verticalmente lungo lo sterno. Quindi tagliare bilateralmente il diaframma per esporre la gabbia toracica.Ora, allargare la gabbia toracica e fissarla lateralmente con pinze emostatiche, in modo da esporre il cuore. Il posizionamento della cannula nell'aorta è il passaggio più critico della procedura. La cannula deve essere inserita con precisione e legata rapidamente per evitare che il cuore subisca un breve periodo di ischemia, il quale altererebbe i risultati del successivo ripristino del flusso sanguigno dopo ischemia.Eseguire l'intervento con pinze emostatiche. Rimuovere con attenzione il timo per accedere all'aorta ascendente. Manovrare le pinze emostatiche attraverso l'ansa aortica e attraverso la fascia.Quindi far passare un filo di seta 0-0 attraverso l'apertura e annodarlo con un nodo semplice allentato. Ora avviare il flusso del buffer di perfusione attraverso la cannula. Successivamente, emostatare, dissezionare l'aorta e inserire immediatamente la cannula nel lume aortico.Fissare la cannula stringendo il nodo e completandolo con un nodo quadro. Utilizzando le forbici, dissezionare il cuore dai vasi principali. Dopo averlo liberato, rimuoverlo e collegarlo alla colonna di perfusione.Rimuovere il tessuto polmonare in eccesso. Dopo circa 15 minuti, il cuore sarà equilibrato con il flusso normale di tampone compreso tra 10 e 20 millilitri al minuto. Una volta che il cuore è stato collegato alla colonna, si può inserire il palloncino.Per prima cosa, sgonfiare il palloncino, arrotolandolo in una forma conica. Bloccare il flusso verso il palloncino una volta che è sgonfio. In secondo luogo, accedere alla valvola mitrale escindendo l'atrio sinistro del cuore.In terzo luogo, inserire il palloncino attraverso la valvola mitrale nel ventricolo sinistro. Ora iniziare a monitorare la pressione sistolica e diastolica con il software Lab Chart Pro, gonfiare il palloncino fino a quando la pressione supera zero. Quindi verificare la risposta lunghezza-tensione.Spingere lentamente il palloncino finché la pressione non raggiunge i 75 millimetri di mercurio. Quindi sgonfiarlo lentamente e ripetere. Ridurre nuovamente la pressione fino a 10 millimetri di mercurio modificando la soluzione salina nel palloncino.Quindi bloccare il palloncino a questa pressione e mantenere un sistema chiuso sotto pressione tra il palloncino e il trasduttore. Infine, abbassare il cuore in una camera riscaldata e avvolgerlo con pellicola di plastica. La camera deve essere tappata in modo che si riempia con un buffer fuso.Una volta che il cuore è immerso, interrompere il flusso del buffer. Questo induce un'ischemia globale per il tempo necessario. In questo caso, 30 minuti.Dopo 30 minuti, interrompere l'ischemia ripristinando il flusso del buffer nel cuore e scollegando la camera. Permettere alla riperfusione di proseguire per il tempo desiderato, quindi terminare l'esperimento, che in questo caso avverrà dopo un'ora di riperfusione dal rubinetto laterale. Somministrare 10 millilitri di PBS freddo su ghiaccio nell'arco di un minuto.Questo fermerà il cuore. Successivamente, rimuovere il cuore dalla colonna ed eliminare eventuali tessuti atriali residui. Asciugare delicatamente il cuore, trasferirlo in una matrice per tagli e ricoprirlo con perfil.Congelare il cuore a meno 80 gradi Celsius per otto minuti o fino a quando non raggiunge la consistenza di un marshmallow. Utilizzando lame da rasoio, sezionare il cuore in sezioni di due millimetri oppure, se preferito, rimuovere ogni singola fetta e congelarla in azoto liquido. Per studi biochimici, le fette congelate devono quindi essere conservate a meno 80 gradi Celsius.Per la colorazione dell'infarto, mantenere una sezione non congelata in azoto liquido. Con il protocollo descritto. L'apparato del palloncino del ventricolo sinistro consente il monitoraggio in tempo reale della pressione sviluppata dal ventricolo sinistro in contrazione.In un cuore normale, la pressione sviluppata varia da 70 a 130 millimetri di mercurio. Dopo un danno ischemico, la pressione sviluppata si riduce e la pressione di fine diastole aumenta quando gli animali vengono trattati. Se viene somministrato un agente di precondizionamento come l'inibitore delle HDAC di classe uno e due, saha, prima dell'escissione, la pressione basale può variare e gli effetti del danno da ischemia-riperfusione risultano attenuati.Altri parametri della funzione del ventricolo sinistro possono essere direttamente ottenuti o calcolati a partire dall'output del software. Analizzando il cuore lesionato con il TTC, che colora di rosso il tessuto metabolicamente attivo, è risultato evidente che il cuore sottoposto a danno da ischemia-riperfusione presentava un'attività metabolica notevolmente ridotta, indicando la presenza di tessuto infartuato dopo questa procedura. Tecniche come la PCR quantitativa in tempo reale, il Western blotting e la spettrometria di massa possono essere utilizzate per rispondere a domande quali: quali sono gli effetti biochimici e genetici dell'ischemia, del danno da riperfusione e del trattamento farmacologico sul cuore?

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