Name: Protocolli per Robust erbicidi Test della resistenza in diversi Weed Specie (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-07-02T11:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 52 s
Description: Scopri un protocollo robusto per testare la resistenza agli erbicidi in diverse specie di erbe infestanti. Questo metodo flessibile utilizza vernalizzazione dei semi e trapianto per valutare accuratamente i livelli di resistenza.

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La ricerca è stata sostenuta dal Consiglio Nazionale delle Ricerche (CNR) dell'Italia. Gli autori ringraziano i membri del GIRE per la raccolta di campioni di semi e sono grati ad Alison Garside per la revisione dell'inglese.

1. Seed Campionamento e conservazione <ol><li> Monitorare campi coltivati ​​per ingiustificato scarse prestazioni erbicida, cioè non a causa delle condizioni climatiche avverse o per trattamenti erbicidi di bassa qualità. </li><li> Raccogliere un campione di seme da una specie alla volta e assegnare un codice univoco. Semi maturi sono di solito raccolti prima coltivazione raccolta da piante che erano sopravvissute al trattamento erbicida (s). Monitor tempestiva per osservare se i semi sono capannone da pianta madre a maturità. </li><li> Compilare un modulo per ogni campione che indica il codice univoco assegnato, il nome della specie, la data di raccolta, coordinate GPS, comune, il nome del contadino, dimensioni del campo, il livello di infestazione, ritagliare, erbicidi (s), utilizzati durante la stagione e documenti storici del settore . </li><li> Raccogliere semi da almeno 30 piante selezionate casualmente rappresentativi di infestazione campo. Assicurarsi che il campione seme contiene almeno 5.000 semi maturi. Per un obbligati out-cross specie infestanti(Ad esempio, Lolium spp. O Amaranthus spp.), Ridurre il numero di piante per 10-15, mantenendo il numero totale di semi circa 5.000 11. </li><li> Sottocampione il campo se le patch di erbacce sono sparsi su aree di grandi dimensioni (più di un ettaro) sono selezionati come diversi biotipi resistenti agli erbicidi. </li><li> Conservare i semi in sacchetti di carta non sigillati etichettati con il codice univoco assegnato. </li><li> Lasciar evaporare l&#39;umidità, ma non esporre i semi ad alte temperature (ad esempio, evitare di lasciare in una macchina sotto il sole) o alle fluttuazioni di temperatura estreme per evitare l&#39;induzione di dormienza secondaria. </li><li> Clean (rimuovere chaff, semi de-scafo, etc.) e conservarli a temperatura ambiente in un luogo asciutto. Dopo aver condotto il primo test di resistenza, memorizzare i semi per lunghi periodi di tempo in una stanza buia a 4 ° C, preferibilmente in sacchetti di plastica sottovuoto. In questo modo i semi di preservare la loro vitalità per un tempo significativamente più lungo. </li></ol> NOTA: Seed dormienza fornisce un meccanismo flessibile ed efficiente che permette di adattare le erbacce e persistere in ecosistemi agricoli. Per rompere dormienza e consentire la germinazione dei semi, differenti protocolli devono essere utilizzati a seconda delle specie infestanti, cioè il tipo di dormienza 16. Ci sono tre modi principali per rimuovere dormienza: <ol><li> Vernalizzazione NOTA: Per ottenere la germinazione simultanea e l&#39;emergenza delle piantine, un periodo di vernalizzazione seme che vanno da pochi giorni a una settimana è necessario rimuovere la dormienza fisiologica di molte specie: ad esempio., Amaranthus retroflexus, Chenopodium album, Lolium spp, Avena fatua, persicaria Polygonum , Falaride paradoxa 17-19. È richiesto un periodo fino a 15 giorni in più per rhoeas, difformis Cyperus e Ammania coccinea e fino a 30 giorni per Schoenoplectus mucronatus <sup&gt; 20. <ol><li> Metti un po &#39;di acqua deionizzata in piatti di plastica. Tagliate due strati di carta da filtro e ammollo in acqua, rimuovere l&#39;eccesso. Mettere i semi essiccati sulla carta. Trasferire le piastre di plastica per un frigorifero a 4 ° C per il periodo di tempo richiesto. </li></ol></li><li> Scarificazione NOTA: Alcune specie infestanti sono più recalcitranti alla germinazione di altri a causa di dormienza meccaniche, vale a dire le caratteristiche tegumento, e richiedono l&#39;uso di una scarificazione chimica con acido solforico al 21 germinare. <ol><li> Preparare un bicchiere con acido solforico concentrato (95-98%). Preparare un bicchiere pieno d&#39;acqua. Mettete i semi in una busta di tessuto non tessuto. </li><li> Immergere esempio, Echinochloa spp. O sorgo semi halepense per 20 min o 5 min, rispettivamente in acido solforico concentrato. </li><li> Prendere la busta fuori del bicchiere con un paio di pinzette e metterlo nel bicchiere pieno d&#39;acqua. Apri ilbusta, mettere i semi in un piccolo colino e sciacquare abbondantemente con acqua corrente. </li></ol> Variante: A. plantago-aquatica ha bisogno di un diverso protocollo 22, 23 <ol><li> Mettere a bagno i semi per 2 minuti in cloroformio. Risciacquare con acqua deionizzata i semi e asciugarle con carta assorbente. Dunk la semi in 80% di acido solforico per 5 min. </li><li> Mettete i semi in un piccolo colino e sciacquare accuratamente sotto acqua corrente. </li></ol></li><li> Post-raccolta maturazione del seme NOTA: I semi di altre specie infestanti non germinano affatto per alcuni mesi dopo la maturità, a prescindere dal metodo utilizzato per rompere dormienza. <ol><li> Conservare i semi per un periodo di almeno 3-4 mesi a temperatura ambiente e bassa umidità e quindi seguire i protocolli di cui sopra per dormienza rottura (ad esempio, Oryza sativa var. Sylvatica o P. rhoeas). </li></ol></li></ol> 3. Seed Germinazione <ol><li> Semi posto per essere germinated in plaspiatti tic contenenti 0,6% (m / v) di agar con nitrato di potassio 0,1% (KNO 3) ha aggiunto: <ol><li> Preparare una soluzione di agar allo 0,6% + 0.1% KNO 3 con acqua deionizzata. Sciogliere l&#39;agar in un forno a microonde. </li><li> Versare la soluzione di agar in piatti di plastica. Raffreddare il substrato e poi mettere nei semi. </li></ol> Variante: suolo può anche essere usato come substrato in piatti di plastica. Questa pratica è particolarmente efficace per Echinochloa spp., S. halepense e Lolium spp. </li><li> Inserire piatti di plastica in un armadio di germinazione per circa una settimana con condizioni di luce e temperatura a seconda delle condizioni ottimali per ogni specie infestanti. Per la maggior parte delle specie d&#39;inverno, l&#39;escursione termica è 15/25 ° C la notte / giorno e 12 ore fotoperiodo con tubi al neon che forniscono una densità fotosintetica Photon Flux (PPFD) del 15-30 mmol m-2 sec -1. Per molte specie estive, l&#39;intervallo di temperatura è 15/30 ° C notte / giorno. Variante: Some specie, come S. halepense, hanno bisogno di un trattamento termico. Pertanto dopo la scarificazione, semi di S. halepense sono sottoposti alle seguenti condizioni: cicli di 4 ore a 45 ° C e 20 ore a 24 ° C per tre giorni nell&#39;armadietto germinazione, e successivamente tre giorni in condizioni normali. </li></ol> 4. piantina trapianto e crescita <ol><li> Trapianto quindici-venti piantine in vassoi di plastica (325 x 265 x 95 mm) riempito con una miscela standard di invasatura (60% del suolo argilloso limosa, il 15% di sabbia, il 15% e il 10% agriperlite di torba - in volume). NOTA: Trapianto, invece di semina diretta, permette un supporto uniforme piante nella stessa fase di crescita da ottenere, che è un importante prerequisito per ottimizzare le prestazioni del trattamento erbicida. </li><li> Identificare ogni vassoio con un codice a barre comprese tutte le informazioni per l&#39;identificazione univoca: codice popolazione, diserbanti in fase di test, replicare il numero e il numero progressivo del vassoio &lt;./ Li&gt; <li> Luogo vassoi in una serra e piante acquatiche riscaldate come necessario per mantenere il substrato in prossimità o capacità di campo. NOTA: la temperatura di crescita varia a seconda delle specie infestanti. Spesso i test vengono effettuati durante l&#39;autunno / inverno / primavera, quindi la luce è integrata con 400 W lampade a ioduri metallici, che forniscono una PPFD di circa 150 mmol m-2 sec -1 ed un fotoperiodo 12 ore 24, specie 19. Erbaccia estate con C 4 ciclo fotosintetico di solito richiedono maggiore intensità luminosa e, pertanto, le prove sono fatte in primavera-estate in ritardo o l&#39;intensità della luce integrata è di circa 400 mmol m-2 sec -1 con un fotoperiodo 14 hr. </li><li> Utilizzare un protocollo diverso per alcune specie infestanti infestanti risone, ad esempio, A. plantago-aquatica, S. mucronatus e C. difformis come descritto in 22. <ol><li> Trapianti le piantine in vassoi di polistirolo con 24 cellule rotonde (55 mm di diametro, 64 mm di profondità) Filled con 60% terreno argilloso limoso, 30% sabbia e 10% di torba (in volume). </li><li> Impostare i vassoi nei formati 12 cm contenitori di plastica profonde riempite con acqua e battened giù da tondini in acciaio inox avvitate per impedire loro galleggiante (Figura 1). </li><li> Mantenere il livello dell&#39;acqua in contenitori a 1-2 cm sotto il livello della superficie del suolo e aggiungere 1,5 g di solfato di rame per ogni contenitore (che contiene 10-12 L di acqua) per evitare il proliferare di alghe. </li></ol></li></ol> 5. trattamenti erbicidi <ol><li> I trattamenti con erbicidi pre-emergenza: <ol><li> Dopo circa tre giorni nel gabinetto di germinazione, come descritto nella sezione 3, trapiantare i semi germinano in vassoi di plastica contenenti il ​​substrato sopra descritto e coprire con uno strato di terreno (circa 1 cm). Questa è una fase critica per garantire che le piantine non emergeranno per effetto erbicida piuttosto che una profondità di seppellimento eccessivo. </li><li> Prendete il substrato campo capacittà collocando i vassoi, che hanno alcuni fori sul fondo, su piattini pieni d&#39;acqua. </li><li> Un giorno dopo il trapianto, trattare i vassoi con l&#39;erbicida di pre-emergenza 25. </li><li> Mantenere il substrato o la capacità campo vicino aggiungendo acqua se necessario sia dall&#39;alto e dal basso per capillarità dal piattino. Questa procedura favorisce la permanenza dell&#39;erbicida alla profondità corretta (cioè dove i semi germinano sono) per una buona efficacia del trattamento. </li></ol></li><li> I trattamenti con erbicidi post-emergenza: <ol><li> Spruzzi le piante quando raggiungono lo stadio di 2-3 foglie (cioè, la fase di crescita del 12-13 Extended scala crescita BBCH 26). </li><li> A partire dal giorno dopo il trattamento, impostare il sistema di irrigazione secondo le esigenze idriche di specie infestanti e la stagione (ad esempio, per Echinochloa spp. Eroga acqua per 3 min 4 volte al giorno, ad intervalli regolari dalle 9 alle 9 pm). L&#39;acqua è discontribuito con un sistema automatico di irrigazione a pioggia. Variante: glifosato è applicato nello stabilimento fase BBCH 14-21. </li></ol></li><li> Preparazione erbicidi e la distribuzione. NOTA: Tutte le erbicidi (pre e post-emergenza) sono quelle in vigore formulazioni commerciali con tensioattivi raccomandate a due dosi, la dose raccomandata di campo (1x) e tre volte quella (3x). <ol><li> Se necessario, preparare la soluzione tensioattivo di rinfuse secondo le istruzioni riportate sull&#39;etichetta; la concentrazione finale è generalmente espresso come percentuale del volume finale (ad esempio, 0,3%) o il volume da distribuire per unità di superficie (ad esempio, 1 L ha -1). </li><li> Utilizzare la soluzione tensioattivo come solvente per la soluzione erbicidi (soluto) al fine di mantenere la corretta concentrazione del principio attivo. Preparare la soluzione erbicida più concentrata prima (3x). Calcolare la quantità di prodotto commerciale da disciogliere nella soluzione tensioattivo (o in acqua deionizzata se untensioattivo non è necessario) mediante la seguente equazione: Dose erba = [(Dose campo x Dose max) x V def] / V del Dove: Dose erba = dose di erbicida (ml), Dose Dose campo = campo erbicida (ml ha -1), Dose max = massima dose erogata, V fin = volume finale della soluzione (L), V = del volume erogato dalla panchina spruzzatore (L ha -1). </li><li> Diluire (2: 1, v / v) l&#39;erbicida soluzione 3x preparare quella meno concentrata (1x). Questa procedura riduce la possibilità di commettere errori nel valutare o pipettaggio erbicidi. Concentrazione della soluzione Erbicida è espressa come il volume da distribuire per unità di superficie (L ha -1). </li><li> Avviare la sequenza di trattamento con la dose più bassa erbicidi (1x). In questo modo non è necessario lavare l&#39;armadietto di spruzzatura tra due trattamenti con lo stesso erbicida. </li><li> Distribuire il solutio erbicidin utilizzando uno spruzzatore panchina precisione erogare 300 L ha -1 (± 1%), ad una pressione di 215 kPa, e una velocità di 0,75 m sec -1, con un braccio dotato di tre piatti-ventilatore (range esteso) ugelli idraulici . </li><li> Lavare due volte il mobile a spruzzo quando l&#39;erbicida viene modificato con candeggina 1% (v / v) e poi risciacquare. Variante: glifosato è applicata con un volume di spruzzo di 200 L ha -1 27. NOTA: Una particolare attenzione deve essere pagato quando diserbanti altamente biologico, tale il sulfometuron sulfaniluree o flazasulfuron, vengono utilizzati. In quest&#39;ultimo caso effettuare una lavaggio con una soluzione di candeggina e un altro con ammoniaca (2,5% v / v), seguita da un risciacquo accurato con acqua. </li></ol></li></ol> 6. Raccolta e analisi dei dati <ol><li> Attraverso un lettore di codice a barre, che identifica automaticamente ogni vassoio, registrare il numero di piante che sono sopravvissuti al trattamento, nonché la biomassa stimato Visuale (VEB). Le piante sono culonon elaborato come essere morto se non mostrano crescita attiva a prescindere dal colore o l&#39;altro aspetto. <ol><li> Effettuare la valutazione di tre o quattro settimane dopo il trattamento (WAT) a seconda delle erbicidi provati (per es, tre WAT inibitori ACCase e quattro WAT per SLA inibitori o glifosato). </li><li> Valutare l&#39;efficacia generale trattamento includendo una popolazione suscettibile (check S) in tutti gli esperimenti, cioè, una popolazione raccolti in un sito che è stato mai o raramente trattati con erbicidi. </li><li> La sopravvivenza delle piante espresso come percentuale del numero di piante trattate, contato poco prima del trattamento erbicida, e calcolare l&#39;errore standard (SE) per il valore medio (valore delle due repliche media). </li><li> Il VEB è ottenuta attraverso un confronto visivo di biomassa vegetale tra trattato e controllo della stessa popolazione 25, 28 non trattati. Un punteggio, che vanno da 10 a piante non interessati dalla erbicidi (rispetto al controllo non trattato) a 0 quandole piante sono chiaramente morti, è dato a ciascun vassoio trattata. </li></ol></li><li> Popolazioni attribuiscono a quattro categorie sulla base dei risultati ottenuti dai trattamenti con due dosi di erbicidi: S quando meno del 5% delle piante sono sopravvissuti i 1x dosi di erbicidi, SR quando i sopravvissuti variava dal 5% al ​​20% a 1x dosi di erbicidi, R quando più di il 20% delle piante è sopravvissuto alle 1x dosi di erbicidi e RR quando i sopravvissuti sono più del 20% alla dose di erbicida 1x e oltre il 10% alla dose di erbicida 3x 17. </li></ol>

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<li>Collavo, A., Sattin, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((First+glyphosate-resistant+Lolium.+spp.+biotypes+found+in+a+European+annual+arable+cropping+system+also+affected+by+ACCase+and+ALS+resistance%5BTitle%5D)+AND+%22Weed+Res%22%5BJournal%5D)">First glyphosate-resistant Lolium. spp. biotypes found in a European annual arable cropping system also affected by ACCase and ALS resistance.</a> Weed Res. 54 (4), 325-334 (2014).</li>
<li>Scarabel, L., Cenghialta, C., Manuello, D., Sattin, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Monitoring+and+management+of+imidazolinone-resistant+red+rice+%28Oryza+sativa.+L.%2C+var.+sylvatica.%29+in+Clearfield%C2%AE+Italian+paddy+rice%5BTitle%5D)+AND+%22Agronomy%22%5BJournal%5D)">Monitoring and management of imidazolinone-resistant red rice (Oryza sativa. L., var. sylvatica.) in Clearfield® Italian paddy rice.</a> Agronomy. 2 (4), 371-383 (2012).</li>
<li>Zelaya, I. A., Anderson, J. A. H., Owen, M. D. K., Landes, R. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+spectrophotometric+and+HPLC+methods+for+shikimic+acid+determination+in+plants%3A+Models+in+glyphosate-resistant+and-susceptible+crops%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Agric.+Food+Chem%22%5BJournal%5D)">Evaluation of spectrophotometric and HPLC methods for shikimic acid determination in plants: Models in glyphosate-resistant and-susceptible crops.</a> J. Agric. Food Chem. 59 (6), 2202-2212 (2011).</li>
</ol>

Gli autori dichiarano di non avere interessi finanziari concorrenti.

Diversi passaggi all&#39;interno dei protocolli sono critici per una valutazione di successo di resistenza agli erbicidi in una popolazione: 1) semi devono essere raccolti quando sono maturi da piante sopravvissute trattamento erbicida (s). Maturazione dei semi sulla pianta madre è fondamentale per evitare difficoltà nella germinazione del seme più tardi; 2) la corretta conservazione dei semi si consiglia di evitare la proliferazione di muffe che potrebbero impedire la germinazione; 3) piantine devono essere trattati al...

<html> Gli erbicidi sono la misura diserbo più ampiamente utilizzato, che rappresentano fino al 50% del mercato globale fitosanitari 1. Si tratta di strumenti relativamente a buon mercato, di evitare di suolo pratiche di coltivazione e di tempo ad alta intensità di manodopera, e concludersi con la produzione di costo-efficace, sicuro e redditizio cibo 2. Tuttavia, la grande variabilità genetica fenologica e presente in molte specie infestanti, insieme con un eccessivo affidamento sulla erbicidi, spesso si traduce nella selezione delle popolazioni infestanti resistenti agli erbicidi. L&#39;introduzione di erbicidi selettivi con una specifica destinazione metabolica 3-5 è notevolmente aumentato il numero di casi di resistenza nel tempo. Ad oggi, 240 specie di piante infestanti dicotiledoni (140 e 100) in tutto il mondo monocotiledoni sono evoluti resistenza a diversi siti erbicidi di Azione (SOA) 4. Questa è una grande preoccupazione per la gestione delle infestanti e più in generale per la produzione agricola sostenibile. e_content &quot;&gt; La diagnosi precoce della resistenza, basata su prove attendibili, spesso eseguiti in una serra, è un passo fondamentale per gestire le erbe infestanti resistenti agli erbicidi. Diversi approcci sono stati sviluppati secondo le finalità, richiesto livello di precisione, il tempo e le risorse disponibili, come nonché le specie infestanti considerate 6-12. Tuttavia, quando è richiesta la conferma dello stato di resistenza di un nuovo biotipo infestanti (cioè, un gruppo di individui che condividono alcune caratteristiche fisiologiche, inclusa la capacità di sopravvivere uno o più erbicidi appartenenti ad un particolare gruppo utilizzato in una dose che normalmente li controllo), un robusto tutta saggio biologico impianto deve essere eseguita in un ambiente controllato 4, 11. Un biotipo è raramente resistente a un solo erbicida. Ogni biotipo è quindi caratterizzato da un certo profilo di resistenza, cioè, il numero e il tipo di SoA degli erbicidi è resistente, e da una determinata resistenzalivello per ogni erbicidi 13. La determinazione precoce e affidabile del modello di croce o resistenza multipla 5, 14 è importante per la gestione della resistenza di campo. Vale la pena ricordare che la resistenza agli erbicidi non ha nulla a che fare con la tolleranza naturale che alcuni presentano erbaccia specie nei confronti di alcuni erbicidi, per esempio, dicot specie contro erbicidi ACCase-inibitori, specie monocot vs 2,4-D, equiseto arvense vs. glifosato. Questo articolo presenta un approccio robusto per testare biotipi resistenti agli erbicidi putativo campionati in campi in cui era stato segnalato uno scarso controllo da erbicidi (s). Varianti rilevanti ai protocolli standard in relazione alle specie infestanti coinvolti sono presentati. I vantaggi rispetto alternativi tecniche / protocolli basati su entrambi interi biosaggi vegetali utilizzando soltanto una dose erbicida 15, o semi trattamento in piastre Petri 8 sono legati alla maggiore reliability e la possibilità di ricavare il livello di resistenza a causa dell&#39;inclusione di due dosi erbicidi negli esperimenti. Tuttavia, per la prova di resistenza di routine, gli stessi metodi possono essere applicati a una sola dose erbicida, così riducendo i costi. Oltre a permettere conferma dello status di resistenza, le informazioni ottenute possono essere utilizzate sia per ottimizzare le seguenti operazioni di ricerca e / o elaborare strategie di gestione della resistenza sonori.

<table><tbody><tr><td>Sacchetti di carta</td><td>Celcar SAS</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Piatti in plastica</td><td>ISI plast S.p.A.</td><td>SO600</td><td>Plastica trasparente</td></tr><tr><td>Acido solforico 95-98%</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>320501</td><td></td></tr><tr><td>Tessuto non tessuto</td><td>Carretta Tessitura</td><td>Art.TNT17</td><td>Peso 17 g m-2</td></tr><tr><td>Cloroformio >99,5%</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C2432</td><td></td></tr><tr><td>Agar</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A1296</td><td></td></tr><tr><td>Nitrato di potassio >99,0%</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P8394</td><td></td></tr><tr><td>Contenitori in plastica</td><td>Giganplast</td><td>1875/M</td><td>600 x 400 x 110 mm</td></tr><tr><td>Vassoi in plastica</td><td>Piber plast</td><td>G1210A</td><td>325 x 265 x 95 mm</td></tr><tr><td>Vassoi in polistirene</td><td>Plastisavio</td><td>S24</td><td>537 x 328 x 72 mm, 24 celle rotonde (6x4)</td></tr><tr><td>Solfato di rame</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>451657</td><td></td></tr><tr><td>Agriperlite</td><td>Blu Agroingross sas</td><td></td><td></td>AGRI100</tr><tr><td>Torba</td><td>Blu Agroingross sas</td><td>TORBA250</td><td></td></tr><tr><td>Cabina di germinazione</td><td>KW</td><td>W87R</td><td></td></tr><tr><td>Ugelli</td><td>Teejet</td><td>XR11002-VK, TP11001-VH</td><td>Il secondo tipo di ugelli viene utilizzato solo per il generatore di</td></tr><tr><td>codici a barre</td><td>glifosato Toshiba TEC</td><td>SX4</td><td></td></tr><tr><td>Etichette con codice a barre</td><td>Felga</td><td>TT20200</td><td>Stick-in etichette con angoli arrotondati</td></tr><tr><td>Lettore di codici a barre</td><td>Cipherlab</td><td>8300-L</td><td>Terminale dati portatile</td></tr><tr><td>Irroratrice</td><td></td><td></td> da banco <td>Costruito in casa</td></tr><tr><td colspan="4">Erbicidi inclusi nei risultati:</td></tr><tr><td>Prodotto commerciale</td><td>Principio attivo</td><td>Company</td><td>Comments</td></tr><tr><td>Altorex</td><td>imazamox</td><td>BASF</td><td></td></tr><tr><td>Azimut</td><td>florasulam</td><td>Dow AgroSciences</td><td></td></tr><tr><td>Biopower</td><td></td><td>Bayer Crop Science</td><td>Surfact da utilizzare con Hussar WG</td></tr><tr><td>Dash</td><td></td><td>BASF</td><td>Surfact da utilizzare con Altorex</td></tr><tr><td>Granstar</td><td>tribenuron-methyl</td><td>Dupont</td><td></td></tr><tr><td>Gulliver</td><td>azimsulfuron</td><td>Dupont</td><td></td></tr><tr><td>Hussar WG</td><td>iodosulfuron</td><td>Bayer Crop Science</td><td></td></tr><tr><td>Nominee</td><td>bispyribac-Na</td><td>Bayer Crop Science</td><td></td></tr><tr><td>Roundup</td><td>glifosato</td><td>Monsanto</td><td></td></tr><tr><td>Trend</td><td></td><td>Dupont</td><td>Surfact da utilizzare con Granstar e Gulliver</td></tr><tr><td>Viper</td><td>penoxsulam</td><td>Dow AgroSciences</td><td></td></tr><tr><td>Weedone LV4</td><td>2,4-D</td><td>Isagro</td><td></td></tr></tbody></table>

protocolli per robust erbicidi test della resistenza in diversi weed specie

Protocols for Robust Herbicide Resistance Testing in Different Weed Species

Protocolli robusti per testare popolazioni di infestanti resistenti agli erbicidi putativi a livello di intera pianta sono essenziali per confermare lo stato di resistenza. I protocolli presentati, basati su biotest su piante intere eseguite in serra, possono essere facilmente adattati a un'ampia gamma di specie di erbe infestanti ed erbicidi attraverso opportune varianti. I campioni di semi di piante sopravvissute a un trattamento con erbicidi sul campo vengono raccolti e conservati all'asciutto a bassa temperatura fino al momento dell'utilizzo. I metodi di germinazione differiscono a seconda delle specie infestanti e del tipo di dormienza dei semi. Le piantine in una fase di crescita simile vengono trapiantate e mantenute in serra in condizioni adeguate fino a quando le piante non hanno raggiunto la giusta fase di crescita per il trattamento con erbicidi. È necessaria l'accuratezza per preparare la soluzione erbicida per evitare errori non verificabili. Vengono valutati anche altri passaggi critici come il volume di applicazione e la velocità di spruzzatura. I vantaggi di questo protocollo, rispetto ad altri basati su biotest di intere piante che utilizzano una dose di erbicida, sono legati alla maggiore affidabilità e alla possibilità di dedurre il livello di resistenza. Sono stati proposti test di screening diagnostico in vivo o in vitro più rapidi e meno costosi (biosaggi su piastra di Petri, test spettrofotometrici), ma forniscono solo informazioni qualitative e il loro uso diffuso è ostacolato dal laborioso set-up che alcune specie possono richiedere. Per i test di resistenza di routine, il biodosaggio dell'intera pianta proposto può essere applicato con una sola dose di erbicida, riducendo così i costi.

Per valutare lo stato di resistenza di una popolazione resistente putativo, è fondamentale comprendere un controllo suscettibile nel test per verificare l&#39;efficacia erbicida. I risultati di un test di screening condotto su P. popolazioni rhoeas, un&#39;erba infestante campi di grano, sono riportati in Figura 2, in cui l&#39;efficacia di quattro erbicidi post-emergenza su un assegno suscettibile (09-36) e sul sospetta una resistenza (10-91) sono rappresentati. Popolazione 09-36 è st...

Viene presentato un approccio robusto e flessibile per confermare la resistenza agli erbicidi nelle popolazioni di erbe infestanti. Questo protocollo consente di dedurre i livelli di resistenza agli erbicidi e di applicarli a un'ampia gamma di specie di erbe infestanti ed erbicidi con adattamenti minori.

Protocolli per Robust erbicidi Test della resistenza in diversi Weed Specie

Robust protocols to test putative herbicide resistant weed populations at whole plant level are essential to confirm the resistance status. The presented ...

L'obiettivo generale di questa procedura è testare e confermare la resistenza agli erbicidi in un'ampia gamma di specie infestanti e di erbicidi, nonché dedurre i livelli di resistenza agli erbicidi. Ciò si ottiene innanzitutto rompendo la dormienza dei semi raccolti da piante sopravvissute a un trattamento erbicida, al fine di ottenere una germinazione e un'emergenza delle piantine simultanee. È richiesto un periodo di vernalizzazione dei semi che va da alcuni giorni a oltre una settimana.Il secondo passaggio consiste nel versare un mezzo agarizzato contenente nitrato di potassio in piastre di plastica. I semi di Vern vengono quindi posizionati sull'agar solidificato e le piastre sono trasferite in un armadio di germinazione con le condizioni ottimali per ciascuna specie infestante. Successivamente, da 15 a 20 piantine vengono trapiantate in vassoi di plastica riempiti con un substrato standard per vasi.A ogni vassoio viene assegnato un codice a barre, contenente tutte le informazioni necessarie per la sua identificazione univoca, e i vassoi vengono posizionati in una serra riscaldata fino a quando le piantine raggiungono lo stadio di due-tre foglie. L'ultimo passaggio consiste ne

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Questo manoscritto mostra e discute le tecniche utilizzate per esaminare la suscettibilità di pesticidi e di rilevare la resistenza a contatto e pesticidi sistemici in artropodi infestanti.

Saggi biologici per la resistenza di monitoraggio Insetticida

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Caratterizzano Erbivoro meccanismi di resistenza: Spittlebugs su Brachiaria Spp. come esempio

Forniamo un protocollo conveniente e rapido genotipizzazione molecolare che impiega varietà-specifici primer PCR che bersaglio differenze di sequenza del DNA all'interno della regione cloroplasto trnL-F distanziatore per differenziare varietà...

A PCR-based metodo di genotipizzazione di distinguere tra le varietà selvatiche di tipo ornamentale e di Imperata cylindrica</em

La resistenza ai farmaci per terapie mirate è molto diffusa e la necessità di individuare meccanismi di resistenza - prima o dopo l'insorgenza clinica - è fondamentale per guidare le strategie alternative di gestione clinica. Qui, presentiamo un protocollo per accoppiare derivazione di linee farmaco-resistenti in vitro con sequenziamento per accelerare scoperta di questi meccanismi.

Implementazione di<em&gt; In Vitro</em&gt; Drug Resistance saggi: massimizzare il potenziale per scoprire clinicamente rilevanti Resistenza Meccanismi

Questo manoscritto descrive come i tassi di metabolismo degli erbicidi possano essere efficacemente quantificati con foglie asportate da un'erbaccia dicotiledone, riducendo così la variabilità e rimuovendo qualsiasi possibile effetto confondente dell'assorbimento o della traslocazione dell'erbicida tipicamente osservato nei saggi su piante intere.

Misurare Tassi di erbicida Metabolismo in Dicot Erbacce con un saggio asportati Foglia

esperimenti trasferibili di residui di antiparassitari nei sistemi di tappeti erbosi sono parte integrante delle valutazioni di esposizione al rischio umane. approcci sperimentali per misurare i residui trasferibili dovrebbero essere adattati per l'interazione umana di interesse e di sistema tappeti erbosi dinamiche. Tre protocolli trasferibili di residui di antiparassitari sono presentati e l'idoneità attraverso tre sistemi di tappeto erboso è discusso.

Protocolli per la quantificazione residui di antiparassitari Valori in Turfgrass Sistemi

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Screening dei genotipi del cotone per la Resistenza ai Nematode Reniforme

L'allelopatia ha mostrato la promessa come un'utile strategia supplementare di controllo delle erbaccia nei sistemi di ritaglio. Per determinare il potenziale allelopatico di un campione di pianta desiderato, viene fornito un metodo di screening delle scale.

Analisi in fase di stadi ripetibile per accedere al potenziale allelopatico del riso erbaceo (Oryza sativa ssp.)

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