Name: Quantificazione dei metalli pesanti e altri contaminanti inorganici sulla produttività delle microalghe (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-07-10T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 20 s
Description: Scopri come quantificare l'impatto dei metalli pesanti sulla produttività di Nannochloropsis salina utilizzando fotobioreattori e spettrometria ICP-MS. Questo metodo supporta la produzione sostenibile di biocarburanti.

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Gli autori desiderano ringraziare il finanziamento della National Science Foundation (premio # 1335550), dello Utah Water Research Laboratory, della professoressa Joan McLean e di Tessa Guy per il loro aiuto durante l'analisi dei metalli/metalloidi. Gli autori ringraziano anche Laura Birkhold per il suo supporto nella raccolta dei dati e Danna Olbright.

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Gli autori dichiarano di non avere interessi finanziari concorrenti.

Saline microalghe N. salina può essere coltivata con successo nel sistema di crescita progettato con risultati ripetibili e alti rendimenti biomassa. Airlift miscelazione permesso per una cultura sospesa ben miscelato con assestamento minimo o incrostazioni nei periodi di crescita di 7 giorni. La variabilità minima luce attraverso la banca luce fluorescente è anche mostrato di non produrre differenze notevoli in termini di crescita. Lo studio mostra metalli pesanti mezzi contaminata...

Rispetto alle colture tradizionali terrestri microalghe hanno dimostrato di ottenere biomassa e lipidi rendimenti più elevati a causa intrinseche elevate efficienze di conversione solare 1,2. La coltivazione di microalghe ad alti tassi di produttività richiede la fornitura di vari nutrienti, tra cui una fonte di carbonio esterna. Si prevede che le strutture di crescita grandi saranno integrati con flussi di rifiuti industriali quali fumi industriali per minimizzare i costi di produzione e allo stesso tempo fornire bonifica ambientale. Carbonio Rifiuti industriali è in genere sotto forma di anidride carbonica gassosa e può contenere contaminanti che hanno il potenziale per avere un impatto negativo la produzione di microalghe. Specificamente, fumi derivati ​​dal carbon avrà una varietà di contaminanti inclusi ma non limitati a prodotti di combustione di acqua e biossido di carbonio, nonché ossidi di zolfo e azoto, polveri sottili, contaminanti organici come diossine e furani, e con inorganicocontaminanti quali i metalli pesanti. L&#39;impatto della maggior parte di questi contaminanti inorganici compresi con alcuni di essi noto come metalli pesanti sulla produttività microalghe non sono stati esplorati. Alcuni di questi elementi possono essere nutrienti a concentrazioni appropriate, ma a concentrazioni più elevate si possono produrre disfunzione delle cellule e persino la morte 3. L&#39;integrazione di microalghe con fumi industriali ha il potenziale per introdurre direttamente contaminanti inorganici in terreni di coltura. Fumi base di carbone ha una varietà di elementi inorganici (ad esempio, As, Cd, Co, Cr, Cu, Hg, Mn, Ni, Pb, Sb, Se, Sn, V e Zn) a varie concentrazioni alcune delle quali, in basso concentrazione, rappresentano elementi nutritivi per la crescita di microalghe. Contaminanti inorganici hanno una alta affinità per legare di microalghe e in seguito essere sorbita internamente attraverso trasportatori di nutrienti. Alcuni contaminanti inorganici (cioè, Co, Cu, Zn e Mn) sono nutrienti che fanno parte di enzimi coinvolgonod nella fotosintesi, la respirazione e altre funzioni 3,4. Tuttavia, in eccesso metalli e metalloidi possono essere tossici. Altri elementi, come il Pb, Cd, Sn, Sb, Se, As e Hg, non sono noti per sostenere la funzione delle cellule in qualsiasi concentrazione e rappresentano metalli non-nutrienti che possono influire negativamente sulla crescita della cultura 3,5,6. La presenza di uno qualsiasi di questi contaminanti ha il potenziale per produrre effetti negativi sulla funzione cellulare microalghe. Inoltre, l&#39;interazione di metalli multipli con microalghe complica dinamiche di crescita e ha il potenziale di impatto di crescita. Economia su larga scala sono stati direttamente collegati alla produttività del sistema di coltivazione 7-19. Inoltre, ricicla medie del sistema di crescita di microalghe sia per vasche all&#39;aperto raceway (ORP) o fotobioreattori (PBR) è fondamentale in quanto rappresenta il 99,9 e il 99,4% della massa, rispettivamente, 20. La presenza di contaminanti inorganici in media potrebbe infine limitare mproduttività icroalgae e il riciclo dei media a causa di accumulo di contaminanti. Questo studio ha determinato sperimentalmente l&#39;impatto di 14 contaminanti inorganici (As, Cd, Co, Cr, Cu, Hg, Mn, Ni, Pb, Sb, Se, Sn, V e Zn), a concentrazioni attese dall&#39;integrazione dei sistemi di coltivazione di microalghe con carbone derivato fumi, sulla produttività di N. salina coltivate in PBRs trasporto aereo. I contaminanti utilizzati in questo studio hanno dimostrato di non essere presente solo in fumi a carbone ma basato rifiuti urbani fumi, biosolids basata fumi, acque reflue urbane, acqua prodotta, sotterranee compromessa e l&#39;acqua di mare 21-23. Le concentrazioni utilizzate in questo studio si basano su ciò che ci si aspetterebbe se sistemi di crescita delle microalghe sono stati integrati con una base di CO 2 di origine carbone con un&#39;efficienza assorbimento dimostrata in sistemi PBR commerciali 20. Calcoli dettagliati che supportano le concentrazioni dei metalli pesanti e contaminanti inorganici sono presentati in napanet al. sono stati usati 24 tecniche analitiche per comprendere la distribuzione della maggior parte dei metalli nelle biomasse, media e ambiente. I metodi presentati hanno consentito la valutazione del potenziale di produttività delle microalghe sotto inorganico sforzo contaminanti e la quantificazione del loro destino finale.

<table><tbody><tr><td>Prodotti chimici</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cloruro di sodio</td><td>Fisher Scientific</td><td>S271-3</td><td></td></tr><tr><td>Cloruro di calcio diidrato</td><td>Fisher Scientific</td><td>C79-500</td><td></td></tr><tr><td>Cloruro di potassio</td><td>Fisher Scientific</td><td>P217-500</td><td></td></tr><tr><td>Metasilicato di sodio nonaidrato</td><td>Fisher Scientific</td><td>S408-500</td><td></td></tr><tr><td>Solfato di magnesio eptaidrato&nbsp;</td><td>Fisher Scientific</td><td>M63-500</td><td></td></tr><tr><td>Nitrato di potassio</td><td>EMD Chimico</td><td>PX1520-5</td><td></td></tr><tr><td>Fosfato di potassio monobasico&nbsp;</td><td>Fisher Scientific</td><td>P285-500</td><td></td></tr><tr><td>Citrato ferrico di ammonio</td><td>Fisher Scientific</td><td>I72-500</td><td></td></tr><tr><td>Acido borico</td><td>Fisher Scientific</td><td>A73-500</td><td></td></tr><tr><td>Molibdato di sodio, diidrato</td><td>EMD Chemical</td><td>SX0650-2</td><td></td></tr><tr><td>Cloruro di manganese tetraidrato</td><td>Fisher Scientific</td><td>M87-500</td><td></td></tr><tr><td>Solfato di zinco eptaidrato</td><td>Fisher Scientific</td><td>Z68-500</td><td></td></tr><tr><td>Solfato rameico pentaidrato</td><td>Fisher Scientific</td><td>C489-500</td><td></td></tr><tr><td>Biotina&nbsp;</td><td>Acros Organics</td><td>230090010</td><td></td></tr><tr><td>tiamina&nbsp;</td><td>Acros Organics</td><td>148990100</td><td></td></tr><tr><td>Vitamina B12&nbsp;</td><td>Acros Organics</td><td>405920010</td><td></td></tr><tr><td>Cloruro di rame (II) diidrato&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>221783-100G</td><td>Irritante, pericoloso per l'ambiente</td></tr><tr><td>Piombo (II) cloruro&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>268690-250G</td><td>Tossico, pericoloso per l'ambiente</td></tr><tr><td>Bicromato di sodio diidrato&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>398063-100G</td><td>ossidante, altamente tossico, pericoloso per l'ambiente</td></tr><tr><td>Cloruro di cobalto (II) esaidrato&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>255599-100G</td><td>Tossico, pericoloso per l'ambiente</td></tr><tr><td>Cloruro di nichel (II) esaidrato&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>223387-500G</td><td>Tossico, pericoloso per l'ambiente</td></tr><tr><td>Arsenito di sodio (meta)&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>71287</td><td>Tossico, pericoloso per l'ambiente</td></tr><tr><td>Cloruro di cadmio&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>202908-10G</td><td>Altamente tossico, pericoloso per l'ambiente</td></tr><tr><td>Cloruro di mercurio (II)&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>215465-100G</td><td>Tossico, pericoloso per l'ambiente</td></tr><tr><td>Cloruro di stagno (II) diidrato</td><td>Fisher Scientific</td><td>T142-500</td><td>Corrosivo. Adatto per l'analisi del Hg. Molto pericoloso.</td></tr><tr><td>Cloruro di manganese tetraidrato</td><td>Fisher Scientific</td><td>M87-500</td><td></td></tr><tr><td>Ossido di vanadio (V)</td><td>Acros Organics</td><td>206422500</td><td>Pericoloso per l'ambiente</td></tr><tr><td>Anidride carbonica&nbsp;</td><td>Air Liquide</td><td>I2301S-1</td><td>Perossido di idrogeno compresso</td></tr><tr><td></td><td>H325-500</td><td>Fisher Scientific</td><td>30% in acqua</td></tr><tr><td>Standard ICP-MS</td><td>ICP-MS-6020</td><td>Standard</td><td></td>di elevata purezza</tr><tr><td>Standard di mercurio</td><td>CGHG1-1</td><td>Inorganic Ventures</td><td>1000&plusmn; 6 &micro; g/mL in acido nitrico al 5%</td></tr><tr><td>Argon</td><td>Air Liquide</td><td></td><td>Elio compresso</td></tr><tr><td></td><td>Air Liquide</td><td></td><td>Compresso, ad altissima purezza</td></tr><tr><td>Idrogeno</td><td>Air Liquide</td><td></td><td>Compresso, ad altissima purezza</td></tr><tr><td>Acido nitrico</td><td>Fisher Scientific</td><td>A509-P212</td><td>67-70% acido nitrico, grado di metalli in tracce. Attenzione: manipolare sotto la cappa aspirante.</td></tr><tr><td>Acido cloridrico</td><td>Fisher Scientific</td><td>A508-P212</td><td>35% acido cloridrico, grado di metallo in tracce. Attenzione: manipolare sotto la cappa aspirante.</td></tr><tr><td>Attrezzatura</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sterilizzatore scientifico a prevuoto</td><td>Steris</td><td>31626A</td><td>SV-120</td></tr><tr><td>Centrifuga</td><td>Thermo Fisher</td><td>46910</td><td>Spettrofotometro RC-6 Plus</td></tr><tr><td></td><td>Shimadzu</td><td>1867</td><td>Regolatore di pH UV-1800</td></tr><tr><td></td><td>Hanna</td><td>BL981411</td><td></td></tr><tr><td>Rotometro, X5</td><td>Dwyer</td><td>RMA-151-SSV</td><td>T31Y</td></tr><tr><td>Rotometro, X5</td><td>Dwyer</td><td>RMA-26-SSV</td><td>T35Y</td></tr><tr><td>Circolatore a bagnomaria</td><td>Fisher Scientific</td><td>13-873-45A</td><td></td></tr><tr><td>Refrigeratore compatto</td><td>VWR</td><td>13270-120</td><td></td></tr><tr><td>Liofilizzatore</td><td>Labconco</td><td>7752020</td><td></td></tr><tr><td>Piastra di agitazione</td><td>Fisher Scientific</td><td>11-100-49S</td><td></td></tr><tr><td>Elettrodo da laboratorio pH</td><td>Phidgets Inc</td><td>3550</td><td></td></tr><tr><td>Spettrometro di massa al plasma accoppiato induttivamente</td><td>Agilent Technologies</td><td>Serie 7700 ICP-MS</td><td>Collegato all'autocampionatore CETAC ASX-520</td></tr><tr><td>FIAS 100</td><td>Perkin Elmer Instruments</td><td>B0506520</td><td></td></tr><tr><td>Spettrometro ad assorbimento atomico</td><td>Perkin Elmer Instruments</td><td>AAnalyst 800</td><td></td></tr><tr><td>Riscaldatore di celle (quarzo)</td><td>Perkin Elmer Instruments</td><td>B3120397</td><td></td></tr><tr><td>Microonde</td><td>Milestone</td><td></td><td>Programmabile, potenza massima 1.200 W</td></tr><tr><td>Rotore a microonde</td><td>Rotore Milestone</td><td></td><td>con recipienti in teflon da 24-75 ml per la digestione assistita da microonde a recipienti chiusi.</td></tr><tr><td>Materiali</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>0,2 &#956; m filtro per siringhe</td><td>Whatman</td><td>6713-0425</td><td></td></tr><tr><td>0.2 &#956; m filtro per siringhe</td><td>Whatman</td><td>6713-1650</td><td></td></tr><tr><td>0.45 &#956; m filtro per siringa</td><td>Thermo Fisher</td><td>F2500-3</td><td></td></tr><tr><td>Tubi in polistirene</td><td>Evergreen</td><td>222-2094-050</td><td>17 x 100 mm con tappo, 16 ml, polisterina</td></tr><tr><td>Magnetico ottagonale&nbsp; mescolare&nbsp; barre</td><td>Fisher scientific</td><td>14-513-60</td><td>Magneti racchiusi in fluoropolimero PTFE</td></tr></tbody></table>

quantificazione dei metalli pesanti e altri contaminanti inorganici sulla produttività delle microalghe

Quantification of Heavy Metals and Other Inorganic Contaminants on the Productivity of Microalgae

La crescente domanda di carburanti rinnovabili ha ricercatori che studiano la fattibilità di materie prime alternative, come microalghe. Vantaggi intrinseci includono ad alto rendimento potenziale, l&#39;uso di terreni non coltivabili e l&#39;integrazione con i flussi di rifiuti. Le esigenze nutrizionali di un sistema di produzione di microalghe su larga scala richiederà l&#39;accoppiamento dei sistemi di coltivazione con le risorse dei rifiuti industriali, come l&#39;anidride carbonica dai gas di scarico e le sostanze nutrienti dalle acque reflue. Contaminanti inorganici presenti in tali rifiuti possono potenzialmente portare a bioaccumulo in biomassa microalgale impatto negativo dell&#39;uso finale produttività e limitante. Questo studio si concentra sulla valutazione sperimentale dell&#39;impatto e il destino di 14 contaminanti inorganici (As, Cd, Co, Cr, Cu, Hg, Mn, Ni, Pb, Sb, Se, Sn, V e Zn) sulla crescita salina Nannochloropsis . Le microalghe sono state coltivate in fotobioreattori illuminato di 984 mmol m-2 sec -1 e mantenuta a pH 7 in una crescita del media inquinata con contaminanti inorganici a livelli previsti basato sulla composizione si trovano in sistemi di gas di scarico del carbone commerciali. Contaminanti presenti nella biomassa e mezzo alla fine di un periodo di crescita del 7 giorno erano analiticamente quantificate mediante vapore freddo spettrometria ad assorbimento atomico per Hg e mediante spettrometria di massa ad accoppiamento induttivo plasma per As, Cd, Co, Cr, Cu, Mn, Ni, Pb, Sb, Se, Sn, V e Zn. I risultati mostrano N. salina è un ceppo sensibile all&#39;ambiente multi-metallo con una diminuzione statistica della biomassa yieldwith l&#39;introduzione di questi contaminanti. Le tecniche qui presentate sono adeguate per quantificare la crescita delle alghe e determinare il destino di contaminanti inorganici.

I rendimenti biomassa Produzione di N. salina nel sistema PBR usato in questo studio è passato da 1 g / L -1 a 8,5 ± 0,19 g / L -1 (N = 12) per i reattori di controllo e 4,0 ± 0,3 g / L -1 (N = 12) per la multi-metal contaminato in 7 giorni. Gli esperimenti hanno prodotto dati ripetibili attraverso reattori in triplo e più batch. Figura 2A mostra la densità media cultura con molto piccolo errore standard sulla base di campionamento d...

L'integrazione della coltivazione di microalghe con i gas di combustione industriali introdurrà infine metalli pesanti e altri composti inorganici nei mezzi di crescita. Questo studio presenta una procedura utilizzata per determinare il destino finale e l'impatto dei metalli pesanti e dei contaminanti inorganici sulla crescita di Nannochloropsis salina coltivata in fotobioreattori.

Quantificazione dei metalli pesanti e altri contaminanti inorganici sulla produttività delle microalghe

Increasing demand for renewable fuels has researchers investigating the feasibility of alternative feedstocks, such as microalgae. Inherent advantages ...

L'obiettivo generale di questa procedura è quantificare l'impatto e il destino finale dei metalli pesanti introdotti nei sistemi di crescita delle microalghe a seguito dell'utilizzo della anidride carbonica proveniente da centrali a carbone come fonte di carbonio per la crescita. Questo viene raggiunto innanzitutto comprendendo i potenziali livelli di contaminazione basati sull'integrazione di carbone e gas di scarico. Nella coltivazione delle microalghe, questi livelli vengono utilizzati come contaminazione di base e vengono preparate le relative scorte.Successivamente, viene coltivato l'inoculo richiesto e viene allestita la piattaforma per la crescita su larga scala. Quindi, il sistema viene inoculato e vengono prelevati periodicamente campioni da sottoporre a elaborazione. Infine, la biomassa viene isolata e viene quantificato l'esito finale dei contaminanti.Infine, la spettrometria di massa con plasma accoppiato induttivamente, o I-C-P-M-S, viene utilizzata per determinare i metalli assorbiti dalla biomassa e, unitamente alle misurazioni della densità ottica, consente di comprendere l'impatto dei contaminanti sul sistema. Il principale vantaggio di questa tecnica rispetto ai metodi esistenti è la capacità di quantificare direttamente il destino finale di un sistema multifase. Questo metodo può fornire informazioni sull'impatto dei metalli pesanti derivanti dai fumi.È possibile applicarlo anche ad altri sistemi. Questo metodo può contribuire a rispondere a domande fondamentali nel campo delle microalghe, come l'impatto dei metalli pesanti sulla produttività e la capacità delle microalghe di essere utilizzate per la biorisanamento. Generalmente, le persone nuove rispetto a questo metodo incontreranno difficoltà a causa del rischio di contaminazione e della precisione richiesta.Nella preparazione dei campioni e nell'analisi mediante IC-PMS, abbiamo avuto per la prima volta l'idea di questo metodo. Stavamo cercando di comprendere gli impatti potenziali dei metalli e delle alghe derivanti dall'integrazione dei gas di scarico. L'idea emerse durante discussioni con altri ricercatori presso il laboratorio di ricerca sulle acque.Ci siamo resi conto di questo metodo dopo aver costruito il sistema sperimentale per la crescita di microalghe e preparato il LabWare secondo il protocollo descritto nel testo, riempiendo parzialmente un contenitore autoclavabile da 20 litri con acqua deionizzata e inserendo una bacchetta magnetica. Posizionare il contenitore su un agitatore magnetico e aggiungere, uno alla volta, i composti mostrati qui, lasciando che ciascuno si sciolga completamente prima di aggiungere il successivo. Autoclavare il mezzo a 120 gradi Celsius per 30 minuti e lasciarlo raffreddare a temperatura ambiente prima di aggiungere le vitamine.Per preparare le soluzioni madri di contaminanti inorganici con acqua distillata, riempire parzialmente le pipette graduate e aggiungere il singolo sale elencato qui. Successivamente, portare a volume con acqua distillata e mescolare accuratamente. Sterilizzare le soluzioni madri di contaminanti inorganici facendo passare le soluzioni attraverso un filtro sterile da 0,2 micron per siringa e raccogliere i filtrati in provette sterili. Dopo aver fatto crescere le colonie in piastre di Petri sterili, secondo il protocollo descritto nel testo, inoculare 200 millilitri di mezzo ricco di nutrienti precedentemente preparato in flaconi Erlenmeyer con camere di agitazione con colonie di Salina e incubarli su un agitatore illuminato.Lasciare crescere la coltura fino a quando il mezzo diventa verde. Trasferire le microalghe in un fotobioreattore sterile da 1,1 litri o PBR. Posizionare il PBR in un bagno d'acqua per inoculo. Illuminare a 200 micromoli per metro quadrato al secondo con luci fluorescenti T8 e utilizzare un refrigeratore a ricircolo e un bagno d'acqua riscaldante a ricircolo controllato automaticamente per mantenere la temperatura a 23 gradi Celsius.Regolare i flussimetri dell'aria e della anidride carbonica rispettivamente a 2,5 litri al minuto e 25 centimetri cubi al minuto. Coltivare e raccogliere le microalghe seguendo il protocollo descritto nel testo. Calibrare il pHmetro e il controllore del pH utilizzando etanolo al 70%.Sterilizzare il misuratore di pH calibrato per ciascun PBR precedentemente preparato. Aggiungere un millilitro di ciascuna delle scorte sterili di contaminanti inorganici per raggiungere una concentrazione finale indicata in questa tabella. Successivamente, aggiungere l'inoculo concentrato di microalghe ai PBR sperimentali a una densità iniziale della coltura di un grammo per litro.Quindi accendere le luci ad alta intensità e i regolatori di pH e regolare la quantità di anidride carbonica a 30 centimetri cubi al minuto. Dopo aver coltivato le culture per sette giorni, seguendo il protocollo indicato nel testo, raccogliere la biomassa mediante centrifugazione a 9.936 ×g. Raccogliere sia la biomassa che il mezzo sovranatante e conservarli a meno 80 gradi Celsius. Successivamente, liofilizzare la biomassa a 0,1 millibar e meno 50 gradi Celsius per tutta la notte.Utilizzare una spatola all'interno del tubo della centrifuga per polverizzare la biomassa al fine di preparare i campioni per la spettrometria di massa con plasma accoppiato inductivamente. Per iniziare la I-C-P-M-S, lavare i vasi di digestione in teflon con sapone e acqua e lasciarli asciugare all'aria. Dopo aver rimosso i metalli in tracce, secondo il protocollo descritto, aggiungere 50 milligrammi di biomassa liofilizzata ai vasi di digestione per microonde per digerire la biomassa.Per il controllo di qualità. Preparare due provette con aggiunta di standard di laboratorio (LFB) contenenti ciascuna cinque millilitri di standard ICP-MS di livello sette, oppure cinque millilitri di standard per spettrometria di assorbimento atomico con vapore freddo di mercurio (CVAS) di livello sette. Lasciare un'altra provetta vuota da utilizzare come bianco del reagente di laboratorio (LRB).Accanto a ogni provetta, aggiungere sette millilitri di acido nitrico concentrato di grado metallo traccia e tre millilitri di perossido di idrogeno. Quindi agitare delicatamente la soluzione per renderla omogenea, prima di digerire il contenuto di ciascuna provetta ed analizzarlo secondo il protocollo descritto nel testo. Questa figura mostra le densità medie di coltura di Lina dopo sette giorni per i reattori di controllo e per i reattori contaminati con multi-metalli, con un errore standard molto ridotto, basato su campionamenti provenienti da tre PBR indipendenti.Per assicurarsi che questo non fosse un risultato isolato, sono stati coltivati altri tre lotti, e i risultati combinati di tutti e quattro i lotti sono illustrati qui. Questo studio mostra che esiste un impatto statisticamente diverso e negativo dei contaminanti inorganici sulla produzione di Lina a partire dal secondo giorno rispetto ai controlli. 12 dei 14 elementi analizzati sono stati completamente recuperati dopo la digestione, come indicato dalla percentuale di LFB, R, con la percentuale di R vicina al 100%, a indicare assenza di perdite, guadagni o contaminazioni incrociate degli analiti durante la digestione.Le concentrazioni di contaminanti pesanti e inorganici riscontrati nella biomassa per i 12 elementi analizzati sono mostrate qui. La combinazione dei dati provenienti da tre PBR ripetuti per quattro lotti mostra in modo costante la presenza di contaminanti inorganici nella biomassa. I risultati ottenuti dai PBR triplicati per il primo lotto indicano che la maggior parte dei contaminanti era localizzata nella biomassa piuttosto che nel sopranatante.Con diverse concentrazioni di campione vicine al limite di rilevabilità dello strumento. I risultati per tutti e quattro i lotti sono presentati qui. Durante l'esecuzione di questa procedura, è importante ricordare di essere meticolosi nel mantenere un sistema pulito, poiché le contaminazioni possono compromettere i risultati. Risultati ottenuti seguendo questa procedura. Possono essere condotti altri esperimenti sulla crescita per rispondere a ulteriori domande, come l'impatto dei nutrienti a scala sulla crescita di sistemi contaminati da metalli pesanti, oppure il potenziale uso delle microalghe per la biorisanamento.Dopo aver visionato questo video, dovresti avere una buona comprensione di come coltivare le alghe e preparare i campioni per la I-C-P-M-S. Ricorda che lavorare con metalli pesanti può essere estremamente pericoloso e che precauzioni come l'uso di guanti, protezione oculare e la manipolazione all'interno di una cappa a flusso laminare devono essere adottate durante l'esecuzione di questa procedura.

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Procedimento per la determinazione del contenuto di acidi grassi e la composizione in microalghe basato su rottura meccanica delle cellule, estrazione dei lipidi solvente, transesterificazione, e quantificazione e identificazione di acidi grassi mediante gascromatografia è descritto. Uno standard interno tripentadecanoin viene utilizzato per compensare le eventuali perdite durante l'estrazione e transesterificazione incompleta.

Analisi di acido grasso contenuto e la composizione in microalghe

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Confronto di scala in un reattore sistema fotosintetico per Algal Bonifica delle acque reflue

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Coltivazione di microalghe e quantificazione della biomassa in un fotoreattore in scala di panca con gas di scarico corrosivo

Dimostriamo test di tossicità delle alghe per sostanze difficili (ad esempio, sostanze colorate o nanomateriali) utilizzando un setup illuminato verticalmente con un LED.

Un'installazione su piccola scala per il test della tossicità delle alghe di nanomateriali e altre sostanze difficili

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Funzionamento di fotobioreattori da laboratorio con misurazioni di crescita online e regimi di luce personalizzabili

L'inquinamento atmosferico ha un impatto sulla qualità della vita di tutti gli organismi. In questo articolo descriviamo l'utilizzo della biotecnologia delle microalghe per il trattamento del biogas (rimozione simultanea di anidride carbonica e idrogeno solforato) e la produzione di biometano attraverso stagni algali aperti semi-industriali ad alto tasso e successiva analisi dell'efficienza del trattamento, del pH, dell'ossigeno disciolto e della crescita delle microalghe.

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Scopri come quantificare l'impatto dei metalli pesanti sulla produttività di Nannochloropsis salina utilizzando fotobioreattori e spettrometria ICP-MS. Questo metodo supporta la produzione sostenibile di biocarburanti.

Quantificazione dei metalli pesanti e altri contaminanti inorganici sulla produttività delle microalghe

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