Name: Instillazione e fissaggio Metodi utili in mouse Lung Cancer Research (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-08-31T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 57 s
Description: Scopri metodi di instillazione e fissaggio polmonare nei topi per la ricerca sul cancro al polmone. Queste tecniche permettono la consegna diretta di trattamenti e misurazioni accurate del volume polmonare.

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Il protocollo che segue descrive un sistema che funziona bene in 20-35 g topi. Il metodo può essere facilmente adattabile a topi grandi o più piccoli semplicemente modificando la dimensione del catetere. Tutti i protocolli di animali sono stati approvati dalla Università cura e l&#39;uso degli animali Comitato Johns Hopkins. 1. Lung instillazione <ol><li> Selezionare un lungo 20 g cannula commerciale un pollice endovenosa da utilizzare per l&#39;intubazione. </li><li> Modificare il catetere punta piegatura manualmente per generare una leggera curvatura all&#39;estremità come illustrato in figura 1. </li><li> Anestetizzare il mouse con una miscela di ketamina (100 mg / kg) e xilazina (15 mg / kg) iniettata IP, e confermare anestesia dall&#39;assenza di movimento riflesso. Applicare una pomata veterinaria sugli occhi subito dopo l&#39;anestesia. Subito dopo l&#39;anestesia applicano unguento veterinario per gli occhi e dare carprofen (5-10 mg / kg SQ) per l&#39;analgesia post-chirurgico e instillazione. </li><li> Posizionare il mouse in posizione supina su una piattaforma inclinata. Come mostrato in figura 2, un grande raccoglitore ufficio con anse sutura registrato on funziona perfettamente. </li><li> Radere la parte ventrale del collo e pulire e disinfettare la zona del collo con il 70% di alcol. Con i nuovi guanti senza senza lattice e a polvere, utilizzare strumenti chirurgici disinfettati con il 70% di alcol. </li><li> Utilizzo di forbici affilate fare una piccola incisione chirurgica nel collo circa 12 mm sotto l&#39;incisivo inferiore. </li><li> Con una pinza tirare delicatamente la pelle del collo caudale fino a quando la parete ventrale della trachea può essere visto. </li><li> Ritrarre delicatamente la lingua e inserire la cannula con la punta piegata inclinato verso la superficie ventrale del mouse. Come in 1.4, tirare delicatamente sulla pelle del collo, e inserire la cannula nella trachea. NOTA: Con una poca pratica, il catetere sarà visibile muoversi lungo la trachea. Se va nell&#39;esofago, allora non vi sarà alcuna segnalazione visiva del movimento del catetere. Nessun incisionisono realizzati nella trachea. </li><li> Una volta che il catetere è visto nella trachea del collo, avanzato è circa 5 mm di essere affidabile superato le corde vocali ma ancora ben al di sopra della carena. </li><li> Preparati a infondere fino a 50 ml di liquido iniettando attraverso il catetere con un puntale caricamento del gel. Posizionare la punta nel mozzo luer, ma prima di iniettare look particolarmente per osservare il movimento del fluido in sincrono con punta respirazione del mouse. Poi iniettare il instillate. </li><li> Con una siringa da 1 ml, immediatamente fare una relativamente rapida inflazione di 0,6 ml di aria nei polmoni attraverso il catetere per distribuire il liquido profondità nei polmoni. Rimuovere la cannula. </li><li> Rimuovere la cannula. </li><li> Utilizzare una piccola quantità di cianoacrilato per chiudere la piccola ferita chirurgica secondo le istruzioni foglietto illustrativo Vetbond. Mettere i topi in gabbie individuali e monitorare visivamente fino a quando si svegliano e si comportano normalmente, senza alcuna indicazione di discomfort. </li></ol> 2. Lung Fissazione NOTA: Una volta che tutte le procedure sperimentali sono fatte in un mouse, i polmoni per essere pronto per l&#39;elaborazione istologica da fissazione con formaldeide (o qualsiasi altro fissativo desiderato). <ol><li> Sacrifica il mouse con una procedura accettabile IACUC. Per il mouse rappresentante mostrato nel video, viene utilizzato dislocazione cervicale di un mouse anestetizzato. </li><li> Eseguire una tracheostomia (se non già fatto) chirurgicamente esponendo il lato ventrale della trachea, facendo un piccolo taglio, e l&#39;inserimento di uno stub punta dell&#39;ago 18 G nella trachea, e legandola con filo. </li><li> Aprire con cautela il torace con una incisione mediana, tagliare via il diaframma, e rimuovere le pareti laterali del torace per esporre i polmoni. </li><li> Collegare l&#39;estremità luer dell&#39;ago ad un serbatoio su un supporto ad anello contenente formaldeide. Vedere la Figura 3. </li><li> Impostare la superficie superiore della formaldeide 25 cm sopra il livello del mouse. Vedere Figura 3. Successiva assicurarsi che non vi sia aria nel tubo di fissazione eseguendo liquido verso la fine di un rubinetto. Collegare l&#39;estremità luer della cannula tracheale al tubo serbatoio. Aprire il rubinetto per gonfiare i polmoni con la formaldeide. Lasciare i polmoni sotto pressione per almeno 20 min. </li><li> Aprire il rubinetto per gonfiare i polmoni con la formaldeide. Lasciare i polmoni sotto pressione per almeno 20 min. </li><li> Avanti, legare la trachea oltre la fine dell&#39;ago stub. Essa può contribuire a tirare indietro lentamente sul ferro per esporre più della trachea uncannulated. Quando legato in modo sicuro, togliere il rubinetto. </li><li> Sezionare con cautela i polmoni. </li><li> Posizionare i polmoni di formaldeide durante la notte. Tempi più lunghi vanno bene, e alcune macchie o procedure possono specificare orari specifici. Anche altri fissativi liquidi, come z-correzione può essere utilizzato per l&#39;instillazione e l&#39;immersione. </li><li> Prima di ulteriori elaborazioni istologico, misurareil volume polmonare fissa come descritto in seguito. </li></ol> 3. Misurazione del volume polmonare fisso <ol><li> Misurare il volume polmonare utilizzando il principio di Archimede, come illustrato nella figura 4. Rimuovere il polmone fissato dalla formaldeide e sezionare il cuore e qualsiasi altro tessuto non-polmonare. </li><li> Utilizzare un semplice dispositivo di supporto filo casalingo costruito in precedenza che viene utilizzato per mantenere i polmoni completamente sott&#39;acqua. NOTA: Questo dispositivo deve essere reso compatibile con qualunque equilibrio viene utilizzato. Un tipico dispositivo di figura 5 è costituito da una pipetta in plastica e sottile (20 G) fili. Questo sistema funziona bene con la bilancia utilizzata nel video, ma potrebbe essere facilmente adattato alla maggior bilance da laboratorio. </li><li> Posizionare un becher con ≈200 ml di acqua sulla bilancia e tarare con la gabbia di supporto in posto in acqua. Vedere Figura 6 Rimuovere la gabbia metallica.; collocare il polmone sulla superficie dell&#39;acqua e premere sott&#39;acquacon la gabbia. </li><li> Registrare il peso sulla bilancia. Questo numero riflette il volume di acqua spostata ed è quindi una misura diretta del volume polmonare. Prestare attenzione per assicurarsi che il polmone o di sutura o di qualsiasi parte del gabbietta non toccare i lati o fondo del bicchiere. </li><li> Per la precisione, ripetere questa misura. Rimuovere il polmone dall&#39;acqua, e secco su un tessuto. Tarare di nuovo il bicchiere con gabbia in posizione e ripetere la misurazione del volume polmonare. Le due misure di volume devono quindi essere mediate. NOTA: Se i polmoni vengono lasciati in formalina per più di una settimana, l&#39;aria nei polmoni sarà dissolto nel liquido. Quando questo accade, il polmone affonderà, quindi non è più necessario utilizzare un qualsiasi dispositivo come in figura 5 per mantenere il polmone sommerso. In tal caso, il volume può essere misurata semplicemente tenendo il polmone da una delle stringhe sutura finché non è completamente sommerso come illustrato nella figura 4. </li></ol>

<ol><li>Brown, R. H., Walters, D. M., Greenberg, R. S., Mitzner, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+method+of+endotracheal+intubation+and+pulmonary+functional+assessment+for+repeated+studies+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Appl+Physiol%22%5BJournal%5D)">A method of endotracheal intubation and pulmonary functional assessment for repeated studies in mice.</a> J Appl Physiol. 87, 2362-2365 (1999).</li>
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</ol>

Le procedure qui descritte hanno diversi vantaggi. Innanzitutto l&#39;attrezzatura necessaria è semplice e poco costoso. In secondo luogo, l&#39;intubazione può essere rapidamente fatto con pochi errori. In terzo luogo, la possibilità di fissare i polmoni a pressione costante, e quindi misurare il volume polmonare numeri consente un&#39;adeguata quantificazione delle strutture o cellule nel polmone 10. Un possibile inconveniente: l&#39;intubazione è la chirurgia minore. Ciò può li...

Per una serie di ragioni, cancro polmonare non è stata ampiamente studiata nel topo. Una ragione di ciò è che l&#39;accesso al polmone in vivo è molto difficile, e l&#39;analisi quantitativa dei polmoni fissi non viene comunemente fatto. I metodi descritti in questo documento sono stati progettati per porre rimedio a questa situazione. Gli obiettivi sono qui per descrivere i metodi semplici che sarà di grande aiuto nella messa a punto e l&#39;analisi dei polmoni del mouse con cancro ai polmoni o altre patologie. Anche se nessuno di questi approcci sono del tutto nuova, che non sono state presentate insieme come metodi autonomi in maniera semplificata come descritto qui. Ci sono stati una serie di manoscritti che sono descritti i metodi per l&#39;intubazione del polmone del mouse principalmente al fine di fare della funzione polmonare di ripetizione o lavaggio broncoalveolare nei singoli topi in studi longitudinali. Dato che la carta originale, ci sono stati diversi altri giornali che hanno descritto i diversi approcci per protocolli d&#39;intesae intubazione 1 -9. Mentre tutti questi metodi possono essere usati con successo, di solito richiedono un notevole addestramento, e non sono spesso senza un tasso di fallimento non banale. Inoltre, al fine di effettuare misure di funzionalità polmonare, la cannula deve misura trachea abbastanza saldamente in modo che non ci siano perdite di aria. Tuttavia, un altro uso pratico per intubazione è quello di fornire agenti specifici (le cellule del cancro o altri insulti) o di farmaci terapeutici direttamente al polmone. Tale procedura non richiede una cannula aderente né sofisticate apparecchiature di funzionalità polmonare. La caratteristica innovativa di questo metodo qui illustrato prevede una procedura chirurgica minore che consente intubazione senza possibilità di cannula entrare nell&#39;esofago. Questo semplice approccio consente intubazione di successo con relativamente poca formazione o esperienza. Fino a 30 topi / ora possono essere trattati con questo approccio con un tasso di fallimento si avvicina allo zero. Una volta che tegli topi sono pronti per essere sacrificato, i polmoni feriti o cancerose possono poi essere rimossi per istologico e l&#39;analisi patologica. Tuttavia, al fine di quantificare correttamente eventuali variabili istologiche per il confronto con altre polmoni, è essenziale standardizzare le procedure di fissaggio e quantificare correttamente il volume polmonare fisso 10. Questo documento descrive in dettaglio le semplici procedure che consentano procedure di fissaggio standardizzati, nonché un metodo per misurare il volume polmonare fisso. Il volume è una metrica essenziale nella quantificazione della istologia, poiché altrimenti la determinazione del volume, solo densità relative possono essere misurati 10. Una volta che il volume polmonare è noto, tuttavia, le misurazioni assolute di cellule e di altre misure strutturali nel polmone possono essere quantificati.

<table><tbody><tr><td>Bilancia da laboratorio</td><td>Ohaus</td><td>Adventurer Pro Modello AV 313&nbsp;</td><td>È possibile utilizzare altre bilance se hanno un intervallo da 1 a 300 g</td></tr><tr><td>Catetere endovenoso Luer da 20 g</td><td>Insylte</td><td></td><td>Diversi altri possibili fornitori, ad es, Jelco Optiva</td></tr><tr><td>Flacone da laboratorio da 500 ml</td><td>Vari</td><td></td><td>Diversi altri possibili fornitori</td></tr></tbody></table>

instillazione e fissaggio metodi utili in mouse lung cancer research

Instillation and Fixation Methods Useful in Mouse Lung Cancer Research

La capacità di infondere agenti dal vivo, cellule o sostanze chimiche direttamente nel polmone senza ferire o uccidere i topi è uno strumento importante per la ricerca sul cancro al polmone. Anche se ci sono una serie di metodi che sono stati pubblicati che mostra come intubare topi per le misure di funzionalità polmonare, nessuno è senza i potenziali problemi per una rapida instillazione tracheale in grandi coorti di topi. Nel presente lavoro, un metodo semplice e rapido è descritto che consente un investigatore effettuare tali instillazioni in modo efficiente. Il metodo non richiede utensili speciali o illuminazione e può essere appreso con molto poca pratica. Si tratta anestetizzante un mouse, una piccola incisione nel collo di visualizzare la trachea, e quindi inserendo direttamente un catetere endovenoso. La piccola incisione viene rapidamente chiuso con tessuto adesivo, ei topi sono autorizzati a recuperare. Uno studente qualificato o tecnico può fare instillazioni ad un tasso medio di 2 min / mouse. Una volta che tegli cancro è stabilito, vi è spesso una necessità di un&#39;analisi istologica quantitativa dei polmoni. Tradizionalmente patologi di solito non si preoccupano di standardizzare inflazione polmone durante la fissazione, e le analisi si basano spesso su un sistema di punteggio che può essere molto soggettiva. Mentre questo può talvolta essere sufficientemente adeguata stime grossolane delle dimensioni di un tumore del polmone, qualsiasi corretta quantificazione stereologica struttura polmone o cellule richiede una procedura di fissazione riproducibile e la successiva volume polmonare. Qui si descrive semplici procedure affidabili per entrambi, che fissa i polmoni sotto pressione e poi misurare con precisione il volume polmonare fisso. L&#39;unico requisito è una bilancia da laboratorio che è accurato in un range di 1 mg-300 g. Le procedure qui presentate quindi potrebbero migliorare notevolmente la capacità di creare, trattare e analizzare tumori polmonari nei topi.

Il procedimento descritto nel primo protocollo non di per sé portare ad alcun risultato generalizzati. Esso descrive solo un mezzo molto affidabili per infondere sostanze direttamente nella trachea. Figura 7 mostra un esempio di un polmone in cui è stato instillato trypan blu con il metodo qui descritto. Vi è un&#39;ampia distribuzione del colorante, simile a quanto già visto con altri coloranti o traccianti forniti direttamente in trachea o topi 11,12. Abbiamo usato questo metodo per fornire...

L&#39;obiettivo di questo lavoro è quello di descrivere i metodi semplici che sarà di grande aiuto nella messa a punto e l&#39;analisi dei polmoni del mouse con cancro ai polmoni o altre patologie. Vi presentiamo 3 protocolli modo semplice e affidabile per effettuare instillazioni polmone, la fissazione, e misurazioni del volume polmonare.

Instillazione e fissaggio Metodi utili in mouse Lung Cancer Research

The ability to instill live agents, cells, or chemicals directly into the lung without injuring or killing the mice is an important tool in lung cancer ...

L'obiettivo generale della procedura qui mostrata è dimostrare metodi semplici che agevoleranno notevolmente l'allestimento e l'analisi di topi con cancro ai polmoni o altre patologie polmonari. Il primo è un metodo per instillare direttamente cellule tumorali o trattamenti chimici nei polmoni. Successivamente vengono descritti la fissazione post mortem e le misurazioni del volume polmonare.Questo viene effettuato intubando innanzitutto il topo con una cannula endovenosa leggermente modificata. Successivamente, il liquido di interesse viene instillato attraverso la cannula nei polmoni. Quindi, al termine di tutti gli esperimenti in vivo e dopo la morte del topo.I polmoni vengono collegati a un serbatoio per la fissazione. Nell'ultima fase, i polmoni vengono dissecati e il volume polmonare viene misurato. Infine, la morfologia quantitativa del tessuto polmonare fissato può essere confrontata tra campioni polmonari sperimentali.Il principale vantaggio di questa nuova tecnica di installazione rispetto ai metodi esistenti è che con il nostro metodo, c'è quasi zero probabilità di posizionare erroneamente la cannula nella trachea. La procedura per fissare i polmoni sotto pressione costante è semplice e porta a una fissazione uniforme in polmoni diversi. Infine, il metodo per misurare il volume del polmone fissato del topo consente una corretta normalizzazione per la quantificazione delle cellule polmonari e degli elementi strutturali.Utilizzare questo metodo. Assicurarsi sia un somministrazione diretta del farmaco o di un altro agente di interesse ai polmoni, sia una misurazione accurata e precisa dei polmoni. Prima di iniziare la procedura, piegare manualmente la punta di un cannula intravenosa commerciale lunga un pollice e di calibro 20 in una leggera curva.Quindi, dopo aver confermato l'anestesia verificando l'assenza di risposta alla compressione delle dita dei piedi, applicare un unguento sugli occhi di un topo adulto e fissare l'animale in posizione supina su una piattaforma inclinata utilizzando un raccoglitore da ufficio grande e dei lacci di sutura. Rasare la parte ventrale del collo e disinfettare la cute con alcol al 70%. Successivamente, utilizzando forbici affilate, praticare una piccola incisione chirurgica nel collo approssimativamente a 12 millimetri al di sotto dell'incisivo inferiore.Successivamente, utilizzare una pinzetta per tirare delicatamente la pelle del collo fino a rendere visibile la parete ventrale della trachea. Quindi ritrarre delicatamente la lingua e inserire la cannula con la punta piegata orientata verso la superficie ventrale del topo. Tirare nuovamente con delicatezza sulla pelle del collo, come appena dimostrato.Inserire la cannula nella trachea quando il catetere è visibile all'interno della trachea, quindi avanzare il catetere di circa cinque millimetri oltre le corde vocali. A questo punto, posizionare la punta di una pipetta per carico gel caricata con 50 microlitri dell'installato nell'attacco del catetere. Verificare il movimento del liquido nella punta sincronizzato con la respirazione del topo.Quindi iniettare l'installato utilizzando una siringa da un millilitro. Subito dopo, gonfiare i polmoni con 0,6 millilitri di aria attraverso il catetere per favorire la distribuzione del liquido e distendere i polmoni. Successivamente, rimuovere la cannula.Chiudere la ferita chirurgica con una piccola quantità di adesivo a base di cianoacrilato e posizionare il topo in una gabbia individuale con monitoraggio fino al completo recupero. Dopo l'ultimo punto temporale sperimentale, praticare un piccolo taglio nel collo dell'animale per esporre la faccia ventrale della trachea. Inserire quindi la punta di un ago da 18 gauge nella trachea.Utilizzando del filo, fissare l'ago nella trachea ed aprire con attenzione il torace mediante un'incisione mediana. Successivamente, asportare il diaframma e rimuovere le pareti laterali del torace per esporre i polmoni. In seguito, verificare che non vi sia aria nel tubo di fissazione facendo fuoriuscire il formaldeide dall'estremità del rubinetto a tre vie.Quindi collegare il contenitore del fissativo e il tubo riempito direttamente all'estremità del lume dell'ago per tracheostomia. Posizionare la superficie superiore del formaldeide a 25 centimetri sopra il livello della bocca e aprire il rubinetto per insufflare i polmoni con il fissativo. Dopo aver mantenuto i polmoni sotto pressione per almeno 20 minuti, estrarre lentamente l'ago per esporre una porzione maggiore della trachea non cannulata, legando contemporaneamente la trachea oltre l'estremità dell'ago rimasto.Quando la trachea è stata legata in modo sicuro, rimuovere il rubinetto e dissezionare con cura i polmoni. Successivamente, collocare i polmoni in formaldeide per tutta la notte. Qui viene mostrato un dispositivo tipico per mantenere i polmoni in posizione durante la misurazione del volume polmonare fissato, realizzato con pipette di plastica e un sottile filo di calibro 20, per misurare prima il volume polmonare fissato, quindi dissezionare il cuore e qualsiasi altro tessuto non polmonare dai polmoni.Successivamente, posizionare un becher contenente circa 200 millilitri di acqua, dotato del dispositivo di supporto in filo metallico, su una bilancia e tarare l'apparecchiatura. Quindi rimuovere il dispositivo. Posizionare il polmone sulla superficie dell'acqua e utilizzare il dispositivo per premere il tessuto sotto l'acqua.Assicurandosi che il punto di sutura del polmone o qualsiasi parte del dispositivo non tocchi i lati o il fondo del becher, registrare il peso sul bilancino. Questo valore riflette il volume d'acqua spostato ed è quindi una misura diretta del volume polmonare. Successivamente asciugare il polmone con un panno, immergere nuovamente il polmone nel dispositivo e ripetere la misurazione del volume polmonare.Le due misurazioni del volume devono quindi essere mediate in questo punto. Viene mostrato un esempio di polmone in cui è stato instillato il trian blue, come appena dimostrato. Si noti la distribuzione diffusa del colorante, simile a quanto osservato per altri traccianti colorati somministrati direttamente nella trachea del topo. Durante il tentativo di questa procedura, è importante ricordare di essere cauti durante l'inserimento della cannula e di mantenere la punta con il lato ventrale rivolto verso l'alto.Le tecniche che abbiamo descritto qui sono utili negli studi sul cancro del polmone, ma sono applicabili anche alla maggior parte degli altri modelli di malattie polmonari nel topo.

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Questo video descrive un metodo semplice e affidabile per introdurre il liquido nella trachea per l'instillazione polmonare, la fissazione e la misurazione del volume polmonare.

Instillazione e fissazione polmonare: introduzione di liquido nella trachea e fissaggio dei polmoni per misurare il volume polmonare fisso

Il presente documento descrive un metodo striaghforward ed efficiente intubazione topi per le misure di funzionalità polmonare o instillazione polmonare, che consente ai topi di recuperare e da studiare in tempi successivi. La procedura prevede una fonte economica di luce a fibre ottiche che illumina direttamente la trachea.

Un metodo semplice di intubazione mouse polmone

Descriviamo un metodo per migliorare in modo significativo orthotopic engraftment delle cellule di cancro del polmone nei polmoni murini di pre-condizionamento delle vie aeree con la ferita. Questo approccio può essere applicato anche per studiare le interazioni stroma all'interno del microambiente polmonare, la disseminazione metastatica, la co-morbidità, cancro del polmone, e per generare in modo più efficiente paziente derivato xenotrapianti.

Pre-condizionamento delle vie aeree dei topi con bleomicina aumenta l'efficienza di Orthotopic del polmone cancro Engraftment delle cellule

Presentato qui è un protocollo utile per la fissazione polmonare che crea una condizione stabile per la valutazione istologica di campioni polmonari da un modello murino di enfisema. Il vantaggio principale di questo modello è che può fissare molti polmoni con la stessa pressione costante senza collasso polmonare o deflazione.

Fissazione polmonare sotto pressione costante per la valutazione dell'enfisema nei topi

La somministrazione intratracheale (IT) di agenti sperimentali nei topi spesso si traduce in consegna asimmetrica ai polmoni distali.  In questa relazione, descriviamo un approccio intrabronchiale diretto (IB) per cannulare ogni polmone in topi viventi non chirurgici.  Questo approccio può essere utilizzato per somministrare selettivamente gli agenti a un polmone o può essere adattato per migliorare la somministrazione simmetrica dell'agente a entrambi i polmoni.

Amministrazione intrabronchiale diretta per migliorare la deposizione selettiva dell'agente all'interno del polmone del mouse

Lo scopo di questo metodo è quello di presentare un metodo semplice ed efficiente per la perfusione, l'inflazione e la fissazione dei polmoni del topo per l'esame della patologia tumorale polmonare e la valutazione delle metastasi al polmone.

Perfusione e inflazione del polmone del topo per l'istologia tumorale

Presentiamo un metodo per un modello di patogenesi fungina che preserva il posizionamento naturale delle spore fungine nelle vie aeree polmonari per l'analisi tramite microscopia a fluorescenza.

Metodo efficiente per l'imaging dei polmoni murini che preserva la dinamica spaziale delle spore fungine nelle vie aeree

Una delle principali sfide nello sviluppo di nuove terapie per il cancro del polmone include la modellazione del microambiente tumorale man mano che la malattia regionale progredisce verso la malattia metastatica. Qui, descriviamo un metodo semplice per stabilire un modello singenico ortotopico del cancro del polmone che consente il monitoraggio in vivo della malattia nel tempo.

Un metodo minimamente invasivo per la generazione di un modello murino ortotopico singenico di carcinoma polmonare

Scopri metodi di instillazione e fissaggio polmonare nei topi per la ricerca sul cancro al polmone. Queste tecniche permettono la consegna diretta di trattamenti e misurazioni accurate del volume polmonare.

Instillazione e fissaggio Metodi utili in mouse Lung Cancer Research

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