12 luglio 2015
Qui descriviamo un metodo semplice per l'isolamento di cellule di superficie epiteliali murine del colon spazialmente distinte dalle cellule cripto-base sottostanti.
L'obiettivo generale di questa procedura è dissezionare microscopicamente due regioni distinte dello spazio del colon: la zona criptica proliferativa K e le cellule epiteliali superficiali differenziate. Questo viene ottenuto innanzitutto rimuovendo il colon del topo. Il secondo passaggio consiste nel congelare il tessuto tra due piastre di metallo.
Successivamente, il tessuto viene montato su un blocco di OCT precedentemente livellato. L'ultimo passaggio consiste nel sezionare il tessuto con un criostato a intervalli di 10 micron. Infine, la PCR in tempo reale o il Western blot vengono utilizzati per mostrare i cambiamenti nell'espressione genica e proteica.
Il vantaggio della nostra tecnica è che è rapida, economica e dimostra un'elevata resa. Il nostro procedimento è Christian Garner Schmidt, un tecnico del nostro gruppo. Tutte le procedure che prevedono l'uso di animali sono state esaminate e approvate dal Comitato per la Cura e l'Utilizzo degli Animali dell'Università di Emory e sono state eseguite secondo i criteri dei National Institutes of Health.
Dopo aver configurato il criostato, come di consueto, portare le lame e i portacampioni del criostato all'equilibrio a meno 20 gradi Celsius. Quindi riempire uno stampo criogenico vuoto con il composto ottimale per il taglio in temperatura (OCT) e portarlo all'equilibrio a meno 20 gradi Celsius. Questo richiederà circa 30 minuti.
Rimuovere l'OCT congelato dallo stampo e fissarlo al mandrino con OCT liquido. Posizionare il mandrino sul braccio del microtomo e lasciare solidificare l'OCT per 10 minuti. Impostare il criostato a 10 micron per sezione e affettare il blocco di OCT fino a quando non diventa piano, quindi spostare il braccio del microtomo lontano dalla lama di alcuni centimetri.
Successivamente, preparare due lamette per campione utilizzando una lima metallica, arrotondando il bordo tagliente delle lamette. Quindi rimuovere la flangia in alluminio con pinzette. Preparare una piastra per colture di 10 centimetri, riempita al 50% con silicone e dotata di 10-15 spilli da dissezione.
Aggiungere cinque millilitri di soluzione tampone di Hank a temperatura ambiente alla piastra dopo aver eutanasizzato il topo secondo metodi approvati ed escisso un segmento del colon distale compreso tra zero e sei centimetri dall'ano. Usare le forbici per tagliare. Aprire longitudinalmente il colon ed eliminare il contenuto fecale.
Fissare il tessuto alla piastra di dissezione in silicone contenente la soluzione tampone di Hank con la superficie mucosa rivolta verso l'alto. Stendere il tessuto utilizzando i perni da dissezione. Lasciarlo quindi riposare per 10 minuti a temperatura ambiente per eliminare le pieghe dal tessuto e permettere il rilassamento degli strati muscolari.
Dopo che il tessuto ha riposato, rimuovere tutti i perni tranne quelli alle estremità. Far scivolare una lama di rasoio sotto la sezione di tessuto desiderata, quindi versare via il buffer di Hanks. Aggiungere un'altra lama di rasoio sulla parte superiore, formando un sandwich.
Tagliare il segmento di tessuto e rimuovere i perni terminali. Trasferire il "sandwich" di tessuto e lametta su anidride carbonica solida. Lasciare congelare il tessuto per cinque-dieci minuti.
Prendere il sandwich di tessuto con il rasoio e lasciarlo scaldare leggermente appoggiando un dito sulla lama superiore. Separare il sandwich e tagliare lungo i bordi del segmento di tessuto. Tagliare un segmento di tessuto di circa 0,5 centimetri per un centimetro.
Lasciare che il tessuto si riscaldi fino a quando il ghiaccio sulla sua superficie inizia a sciogliersi. A questo punto, premere rapidamente e con attenzione il tessuto nel blocco di OCT. Nel criostato, posizionare un dito sopra il campione.
Il trasferimento di calore permetterà di rimuovere la lama senza alterare il tessuto. Rivestire il tessuto con OCT e lasciarlo equilibrare per cinque minuti. Successivamente, tagliare sezioni di 10 micron.
Posizionare le sezioni su un vetrino e ispezionarle visivamente finché non si vedono i cripti. Collocare le sezioni in provette da 1,5 millilitri o su vetrini. Questa immagine mostra un tessuto colico colorato con ematossilina ed eosina in una sezione trasversale tradizionale con il muscolare circolare indicato come cm.
La muscolaris mucosa, indicata con MM, evidenzia chiaramente le cellule della base delle cripte, le cellule transizionali e le cellule della superficie. Questa immagine mostra la muscolaris circolare dopo sezionamento seriale. Procedendo verso le cellule della superficie, si osserva la muscolaris mucosa.
Questa immagine mostra a maggior ingrandimento le cellule della base della cripta colorate con ematossilina ed eosina. Si noti l'assenza di un lume centrale. In questo caso sono visibili cellule transizionali e l'immagine mostra le cellule della superficie.
Le seguenti immagini mostrano la colorazione immunofluorescente di cripte coliche isolate, con rilievo della proteina delle giunzioni intercellulari. Soula occludina uno o ZO uno appare verde e i nuclei, che appaiono blu, sono osservati in sezione trasversale. Le cellule transizionali e superficiali sono mostrate qui dopo sezioni seriali.
Diversi fattori di differenziamento sono espressi in modo spaziotemporale lungo l'asse della superficie criptica. Questo include il fattore di trascrizione cripple like factor four mostrato in verde, che è arricchito nelle popolazioni cellulari della superficie quando osservato in sezione trasversale; la sezione seriale consente la valutazione mediante PCR in tempo reale dei livelli di mRNA di KLF four tra i tre compartimenti. Infine, questo immunoblotting mostra i livelli della proteina KLA four in queste popolazioni cellulari.
Non dimenticare che lavorare con lame microtomiche può essere estremamente pericoloso, quindi presta la massima attenzione ogni volta che esegui questa procedura.
Questo articolo descrive un metodo per isolare cellule epiteliali superficiali del colon murino spazialmente distinte dalle cellule della base delle cripte sottostanti. La tecnica consente di suddividere il colon in due regioni: la zona criptica proliferativa K e le cellule epiteliali superficiali differenziate.
La microdissezione spazialmente risolta della mucosa colonica murina consente l'isolamento preciso di popolazioni cellulari delle cripte proliferative e dell'epitelio superficiale differenziato per l'analisi molecolare. Questa capacità supporta la riduzione del rischio meccanicistica e la validazione degli obiettivi nei modelli di malattie gastrointestinali, migliorando la fiducia predittiva nella scoperta precoce e nella ricerca traslazionale. L'efficienza e il rendimento del metodo facilitano una selezione robusta del portafoglio e decisioni di avanzamento corrette in base al rischio nella ricerca e sviluppo biofarmaceutica&D.
Questo metodo di criosezionamento e microdissezione si integra nel percorso dalla scoperta alla fase preclinica, consentendo analisi molecolari specifiche per compartimento, dalla verifica iniziale delle ipotesi fino alla validazione traslazionale.