24 dicembre 2015
Le proprietà immunomodulanti di cellule umane staminali mesenchimali (MSC) appaiono sempre più rilevante per l'applicazione clinica. Utilizzando un sistema di co-coltura di cellule staminali mesenchimali e leucociti del sangue periferico pre-colorati con il colorante fluorescente carbossifluoresceina succinimidil estere (CFSE), si descrive la valutazione in vitro di MSC immunomodulazione sulla proliferazione dei leucociti effettrici e sottopopolazioni specifiche.
L'obiettivo generale di questo esperimento è valutare le proprietà immunomodulatrici delle cellule staminali mesenchimali umane o msc. Questo metodo può contribuire a chiarire i meccanismi coinvolti nell'immunomodulazione mediata dalle cellule staminali mesenchimali umane, un processo che potrebbe avere rilevanza terapeutica. Il vantaggio principale di questa tecnica è che sia l'insorgenza della proliferazione dei leucociti effettrici sia il numero di divisioni cellulari possono essere valutati, dimostrando che la procedura sarà eseguita per scarpa.
Un tecnico del mio laboratorio per isolare i PBMC inizia diluendo 25 millilitri di un campione di sangue intero eparinizzato con 25 millilitri di PBS in un tubo conico da 50 millilitri. Successivamente, aggiungere 15 millilitri di Ficoll-Paque™ in un nuovo tubo da 50 millilitri. Poi, tenendo il tubo inclinato, stratificare lentamente la sospensione cellulare diluita sopra il gradiente di densità.
Ciò garantisce che non avvenga alcun mescolamento tra gli strati. Uno dei passaggi più critici di questo esperimento consiste nel sovrapporre il sangue senza perturbare il gradiente di densità. Questo passaggio è essenziale per garantire un'elevata purezza e una bassa contaminazione da globuli rossi dei pbmc isolati.
Ora, separare le cellule mediante centrifugazione. Dovrebbero essere evidenti tre strati distinti: lo strato plasmatico superiore, lo strato inferiore del gradiente di densità del fial pack e uno strato intermedio sottile di PBMC.
Utilizzando una pipetta PE, rimuovere lo strato superiore avendo cura di non aspirare lo strato di interfase. Successivamente, utilizzare una pipetta da 10 millilitri per trasferire con attenzione i PBMC in un tubo conico da 50 millilitri. Mescolare le cellule con 20 millilitri di PBS e quindi centrifugarle per rimuovere eventuali tracce del gradiente di densità.
Quindi lavare il pellet con altri 20 millilitri di PBS per rimuovere le piastrine. Risospendere il secondo pellet in mezzo completo per leucociti a una concentrazione di uno per 10 alla settima cellule per millilitro. Per preparare una co-coltura di MSC e leucociti, preriscaldare il mezzo completo per MSC a 37 gradi Celsius per non più di 30 minuti.
Quindi seminare cinque volte 10 alla quarta MSC per un millilitro di mezzo completo per MSC per pozzetto in piastre a 24 pozzetti per l'adesione notturna a 37 gradi Celsius, consentendo alle cellule di raggiungere una confluenza dell'80%. La mattina seguente, aspirare il mezzo e aggiungere il numero appropriato di PBMC marcati con CFSE alle MSC in un millilitro di mezzo completo per leucociti. In un rapporto di una MSC ogni 10 PBMC, attivare le cellule con 10 microgrammi di PHA per millilitro di mezzo completo per leucociti.
Quindi, nei giorni tre e cinque della co-coltura, trasferire il numero appropriato di co-coltura in provette con fondo rotondo e valutare la proliferazione dei leucociti marcati con CFSE mediante analisi citofluorimetrica per eseguire un saggio di soppressione degli effettori. Iniziare preparando una co-coltura di M-S-C-P-B-M-C come appena dimostrato, con 2,5 × 10⁶ pBMC co-coltivati con 250.000 MSC. Per garantire un numero sufficiente di pBMC in co-coltura con le MSC per la selezione delle sottopopolazioni.
Dopo 48-72 ore a 37 gradi Celsius, selezionare i leucociti immunomodulatori indotti da MSC di interesse mediante le appropriate microsfere magnetiche. Quindi aggiungere cellule T allogeniche CD4 positive marcate con CFSE in un millilitro di mezzo completo per leucociti per pozzetto, utilizzando diversi rapporti sperimentali. Successivamente, aggiungere microsfere coniugate con anti-CD3/28 in un rapporto di uno a uno (beads:cellula) per stimolare le cellule T CD4 positive.
Nel terzo giorno di coltura condivisa, valutare la proliferazione delle cellule T CD4 positive marcate con CFSE mediante citometria a flusso. Le MSC sono cellule aderenti con morfologia fibroblastica a forma di fuso, mentre i PBMC e i leucociti sono cellule piccole, rotonde e non aderenti, il che permette una chiara distinzione tra queste due popolazioni cellulari. In una coltura condivisa, in assenza di proliferazione, le cellule marcate con CFSE vengono osservate come un singolo picco fortemente positivo e intensamente fluorescente quando le cellule sono state attivate.
La proliferazione si manifesta come multipli picchi più piccoli con una perdita e uno spostamento verso sinistra dell'intensità di fluorescenza quando si è verificata una soppressione della proliferazione. Ad esempio, in una coltura co-coltivata con MSC, il numero di picchi più piccoli diminuisce con un concomitante aumento dell'intensità di fluorescenza, come evidenziato dallo spostamento dei picchi verso destra e dall'aumento della nitidezza del picco più a destra, che rappresenta le cellule non dividenti in un saggio di soppressione effettore. L'effetto soppressivo dei MSC sulla proliferazione delle cellule T CD4 positive può essere ulteriormente valutato in maniera dose-dipendente.
Dopo aver visto questo video, dovresti avere una buona conoscenza di come valutare l'immunomodulazione delle cellule staminali mesenchimali umane. Non dimenticare che lavorare con cellule umane può essere pericoloso e che si devono sempre adottare precauzioni adeguate.
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Questo studio analizza le proprietà immunomodulatrici delle cellule staminali mesenchimali umane (MSCs) mediante un sistema di co-coltura con leucociti del sangue periferico. La valutazione si concentra sulla proliferazione dei leucociti effettrori e su specifiche sottopopolazioni, evidenziando il potenziale rilevante terapeutico delle MSCs.
La valutazione della funzione immunomodulatrice delle MSC mediante saggi di proliferazione dei leucociti basati sul CFSE fornisce un metodo quantitativo e riproducibile per valutare il potenziale terapeutico nelle malattie immuno-mediate. Questo approccio supporta la validazione del bersaglio consentendo una riduzione del rischio meccanicistica dell'immunosoppressione mediata dalle MSC prima di investimenti preclinici. L'adattabilità del saggio a specifiche sottopopolazioni di leucociti aumenta la fiducia predittiva nella selezione dei candidati principali per i percorsi immunomodulatori.
Il saggio di proliferazione dei leucociti basato sul CFSE si integra nei flussi di lavoro della fase iniziale di scoperta come strumento funzionale per lo screening immunomodulante, collegando la validazione del bersaglio e la fase di ottimizzazione dei composti promettenti per terapie a base di cellule staminali mesenchimali.