Name: Valutazione della proprietà immunomodulanti di cellule staminali mesenchimali umane (MSC) (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-12-24T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 20 s
Description: Scopri come valutare le proprietà immunomodulanti delle cellule staminali mesenchimali umane (MSC) utilizzando un sistema di co-coltura con leucociti del sangue periferico. Questo metodo permette di analizzare la proliferazione dei leucociti effettori e le sottopopolazioni specifiche, offrendo importanti applicazioni terapeutiche nel campo dell'immunologia e della medicina rigenerativa.

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Questo lavoro è stato sostenuto in parte da sovvenzioni da NHRI (CS-104-PP-06 a B.L.Y.).

Il consenso informato del paziente, come approvato dal comitato istituzionale di revisione deve essere ottenuto per l&#39;uso di cellule umane. 1. Densità Isolamento gradiente di cellule periferiche mononucleari Sangue umano (PBMC) <ol><li> Aggiungere 25 ml di sangue intero eparinizzati in un tubo da 50 ml con una pipetta 25 ml. <ol><li> Diluire le cellule con 25 ml di PBS (PBS). </li></ol></li><li> Aggiungere 15 ml di gradiente di densità Ficoll-Paque in un nuovo tubo 50 ml, e mentre inclinando il tubo, molto lentamente e con attenzione aggiungono in 25 ml di sospensione cellulare diluita su gradiente di densità in modo che non vi è alcuna miscelazione del sangue intero con gradiente di densità, cioè., nessun disturbo dell&#39;interfaccia gradiente di densità del sangue. </li><li> Centrifugare la sospensione dal punto 1.2 a 400 g per 30 e 40 minuti in un rotore oscillante secchiello temperatura controllata senza freno a 20 ° C. Nota: Tre strati distinti dovrebbero essere evidenti dopo la centrifugazione: °e l&#39;essere al plasma strato superiore; lo strato inferiore è chiaro gradiente di densità Ficoll-Paque; e uno strato cellulare sottile, centrale è il PBMCs </li><li> Aspirare e scartare lo strato superiore per aspirazione con una pipetta Pasteur, con attenzione a non disturbare lo strato interfase delle cellule mononucleate (cioè, linfociti, monociti e piastrine). </li><li> Raccogliere accuratamente questo strato di cellule mononucleate con una pipetta 10 ml in un tubo da centrifuga da 50 ml. </li><li> Riempire il tubo con 20 ml di PBS, mescolare bene e centrifugare a 300 xg per 10 min a 20 ° C. Rimuovere il surnatante completamente dopo la centrifugazione. </li><li> Risospendere il pellet cellulare in 20 ml di PBS e centrifugare a 200 xg per 10-15 minuti a 20 ° C. Rimuovere il surnatante completamente dopo la centrifugazione. Nota: Questo passaggio rimuove le piastrine-che sono indesiderate, all&#39;interno delle PBMC; questo passaggio può essere ripetuto per assicurare la rimozione completa delle piastrine. </li><li> Se nessuna selezione di popolazioni specifiche èdesiderato, pellet cellulare risospendere in leucociti terreno completo (10% di siero fetale bovino (FBS), 1% di L-glutammina, e 1% di penicillina / streptomicina in terreno RPMI-1640) per la coltura, dopo l&#39;esecuzione di un numero di cellule 16 di sospendere 1 ml di medio per 10 7 PBMC prima di procedere alla fase successiva. </li></ol> 2. magnetica Etichettatura dei leucociti popolazioni (passare alla Fase 4 se nessuna selezione di popolazioni specifiche è obbligatorio) <ol><li> Sospensione centrifugare PBMC a 300 × g per 10 minuti e aspirare il surnatante completamente. </li><li> Pellet cellulare Risospendere in 80 ml ​​di PBS per 10 7 cellule totali. </li><li> Aggiungere 20 ml di sfere magnetiche specifici (ad esempio, CD14 sfere magnetiche per l&#39;isolamento dei monociti, CD4 sfere magnetiche per l&#39;isolamento dei linfociti T) per 10 7 cellule totali. </li><li> Mescolare bene e incubare per 15 minuti a 2 e 8 ° C in frigorifero. </li><li> Aggiungere 1-2 ml di PBS per 10 7 cellule per lavare e centrifugarea 300 g per 10 min. </li><li> Aspirare il surnatante e risospendere completamente fino a 10 8 cellule in 500 ml di PBS. </li></ol> 3. magnetica Selezione delle sottopopolazioni di leucociti Nota: Una varietà di separatori perline magnetiche e le colonne sono disponibili per l&#39;isolamento della specifica popolazione di leucociti da marcatore di superficie cellulare da un certo numero di produttori. L&#39;isolamento può essere da una selezione positiva sulla base di uno o pochi marcatori positivi o selezione negativa dopo l&#39;esaurimento delle popolazioni indesiderate. Un orientamento generale di eseguire selezione positiva utilizzando un marcatore (ad esempio, per i linfociti T CD4 helper, o CD14 per i monociti) è indicato di seguito. <ol><li> Preparare e separatore magnetico primo compresa colonna di separazione secondo le istruzioni del produttore. </li><li> Applicare provetta contenente il campione di PBMC etichettati. Fornire due 15 ml provette per la raccolta dell &#39;ed unlabel etichettata positivamentefrazioni cellulari ndr, seguendo le istruzioni del produttore. </li><li> Contare il numero di cellule 15 e sospendere nuovamente le leucociti selezionati positivamente (ad esempio, linfociti T CD4 + CD14 + o cellule) in leucociti terreno completo, utilizzando 1 ml di terreno per 10 7 cellule. </li></ol> 4. CFSE colorazione di leucociti per la valutazione di proliferazione Nota: CFSE è stato ampiamente utilizzato in indagini immunologiche, sia in vivo e in vitro. Il nostro protocollo è stato ottimizzato per lo studio in vitro di MSC / PBMC (o altri leucociti) interazioni. Mentre i passaggi generali coinvolti nella conduzione CFSE etichettatura in vitro sono simili, ci possono essere differenze di dosaggio specifica e la tempistica del protocollo 14. Ciò può essere dovuto a una serie di fattori, vale a dire, il tipo di cellula specifico utilizzato, il numero di cellule utilizzate-che possono probabilmente influenzare l&#39;intensità del segnale fluorescente CFSE. <ol&gt; <li> Diluire la soluzione CFSE magazzino (10 mm) in PBS alla concentrazione di lavoro desiderata di 10 micron (soluzione CFSE-lavoro). Preparare 10 7 cellule (ad esempio, PBMC o cellule T) per l&#39;etichettatura con la soluzione CFSE-lavoro. </li><li> Centrifugare a 300 g per 10 minuti per ottenere un pellet di cellule e aspirare il surnatante. </li><li> Risospendere delicatamente le cellule in 1 ml di soluzione di pre-riscaldato (37 ° C) CFSE-lavoro e incubare le cellule per 10 min a 37 ° C. </li><li> Per lavare eccesso CFSE, diluire la sospensione cellulare con 10x (in volume) di preraffreddato (4 ° C) RPMI mezzo contenente 10% FBS. Sedimentare le cellule per centrifugazione a 300 xg per 5 minuti e scartare il surnatante. Lavare il pellet di cellule in questo modo per altre due volte. </li><li> Re-agglomerare le cellule per centrifugazione e contare il numero di cellule 15. Risospendere 10 7 cellule (sia PBMC o cellule T) in 1 ml di fresco leucociti preriscaldata terreno completo. </li></ol> 5. Co-coltura di MSC con leucociti e attivazione dei leucociti <ol><li> Pre-caldo MSC terreno completo (10% FBS (pretestati per una crescita ottimale MSC), 1% L-glutammina, 1% di penicillina e / streptomicina in terreno di glucosio DMEM-basso) a 37 ° C per non più di 30 min. </li><li> MSC Seed a 50.000 cellule in 1 ml di MSC terreno completo in piastre da 24 pozzetti (densità MSC: 25.000 cellule / cm 2) per il fissaggio O / N in un incubatore a 37 °, consentendo alle cellule staminali di raggiungere l&#39;80% di confluenza. </li><li> Media Aspirare, e sulla base di numeri MSC teste di serie, aggiungere PBMC CFSE etichettati (precedentemente etichettata-consultare sopra protocollo punto 4) a MSC coltivati ​​(testa di serie il giorno precedente in piastre da 24 pozzetti) in 1 ml di leucociti terreno completo in un 01:10 (rapporto cellulare) Rapporto co-coltura delle cellule staminali mesenchimali per PBMC. </li><li> Aggiungere il mitogeno fitoemoagglutinina (PHA), un non-specifico attivatore leucociti, ad una concentrazione finale di 10 ug / ml in un volume totale di 1 ml leucociti terreno completo per pozzetto. <ol><li> Alternatively, per stimolare l&#39;attivazione dei linfociti T in particolare: utilizzare alfa-CD3 / 28 microsfere e aggiungere al due cellule co-coltura per ottenere un rapporto di linfociti da tallone a T di 1: 1. </li></ol></li><li> Per il controllo negativo, piatto 500.000 PBMC / bene (o di una specifica popolazione effettore leucocitaria; densità cellulare: 250.000 leucociti / cm 2) in un 24-pozzetti con 1 ml di leucociti solo terreno completo; per il controllo positivo, oltre alla placcatura lo stesso numero di PBMC / pozzetto, aggiungere PHA ad una concentrazione finale di 10 mg / ml. </li><li> Al 3 ° e 5 ° giorno dell&#39;esperimento co-coltura, valutare la proliferazione dei leucociti CFSE marcati (posto in tubi tondi-basso) mediante analisi di citometria di flusso 17 con 488 nm di eccitazione ed emissione di appositi filtri per fluoresceina. Nota: intracellulare colorazione citochine per citometria a flusso può essere eseguita anche a questi leucociti CFSE marcato a questo punto per valutare per i cambiamenti nel profilo di espressione dei leucociti citochine come modulated da MSC. Poiché CFSE viene valutata con un adeguato filtro per fluoresceina, gli anticorpi selezionati per valutare varie citochine devono essere coniugato con fluorocromi diversi fluoresceina o spettro simile (ad esempio, ficoeritrina, peridinina complesso proteico clorofilla (PerCP)). </li></ol> 6. Variazione: Effector Soppressione Assay magnetico Bead-selezionata, MSC-indotta immunomodulante leucociti attivati ​​su CFSE etichettati cellule effettrici CD4 + T <ol><li> MSC Seed a 250.000 cellule in 3 ml di MSC terreno completo a 6 pozzetti (densità MSC: 25.000 cellule / cm 2) per il fissaggio O / N in un incubatore a 37 °, consentendo alle cellule staminali di raggiungere l&#39;80% di confluenza. Almeno 3 6 pozzetti sono necessari per garantire sufficiente di PBMC MSC-messi in coltura per la selezione sottopopolazione. </li><li> Aspirare il terreno, e aggiungere PBMC separati secondo la Fase 1, ma in 6 pozzetti a 2,5 x 10 6 cellule / pozzetto (densità delle cellule: 250.000 leukocytes / cm 2) con 3 ml di terreno completo leucociti. Co-coltura per 48-72 ore in un incubatore a 37 °. </li><li> Magnetic bead-seleziona specifica popolazione di leucociti immunomodulatori MSC-indotta (ad esempio, CD14 + cellule) come da Sezioni 2-3. Note: colorazione intracellulare di citochine per l&#39;analisi citometrica possono essere eseguite a questo punto per valutare variazioni di leucociti citochine profilo di espressione, cioè, espressione di interleuchina-10 come modulati dal MSC. </li><li> Add CFSE marcato allogeniche cellule T CD4 + generati secondo le sezioni 2-4 in piastre da 24 pozzetti in 1 ml di leucociti completa (densità delle cellule T: 250.000 cellule / cm 2) a medio leucociti MSC-indotta tallone-selezionato a vari rapporti , cioè, 1:10, 1: 5, 1: 2 e 1: 1 (cella per cella) rapporti. </li><li> Per stimolare le cellule T CD4 +, aggiungere alfa-CD3 / 28 microsfere coniugati per ottenere un rapporto di tallone-cellula di 1: 1. </li><li> Per un controllo negativo, piatto 500.000 cellule T CD4 + / bene in un (densità cellulare T: 250.000 cellule / cm 2) 24-pozzetti con 1 ml di leucociti solo terreno completo; per il controllo positivo, oltre alla placcatura lo stesso numero di cellule CD4 + T / pozzetto, aggiungere alfa-CD3 / 28 microsfere coniugate ad ottenere un rapporto da tallone a cella di 1: 1. </li><li> Il giorno 3 ° di co-coltura, valutare la proliferazione di CFSE etichettati cellule T CD4 + (posti in tubi tondi fondo) per citometria a flusso di analisi 16 con 488 nm di eccitazione ed emissione di appositi filtri per fluoresceina. </li></ol>

<ol><li>Friedenstein, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Precursor+cells+of+mechanocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Int+Rev+Cytol%22%5BJournal%5D)">Precursor cells of mechanocytes.</a> Int Rev Cytol. 47, 327-359 (1976).</li>
<li>Pittenger, M. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multilineage+potential+of+adult+human+mesenchymal+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Multilineage potential of adult human mesenchymal stem cells.</a> Science. 284, 143-147 (1999).</li>
<li>Prockop, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Marrow+stromal+cells+as+stem+cells+for+nonhematopoietic+tissues%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Marrow stromal cells as stem cells for nonhematopoietic tissues.</a> Science. 276, 71-74 (1997).</li>
<li>Dominici, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Minimal+criteria+for+defining+multipotent+mesenchymal+stromal+cells.+The+International+Society+for+Cellular+Therapy+position+statement%5BTitle%5D)+AND+%22Cytotherapy%22%5BJournal%5D)">Minimal criteria for defining multipotent mesenchymal stromal cells. The International Society for Cellular Therapy position statement.</a> Cytotherapy. 8, 315-317 (2006).</li>
<li>Engler, A. J., Sen, S., Sweeney, H. L., Discher, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Matrix+elasticity+directs+stem+cell+lineage+specification%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Matrix elasticity directs stem cell lineage specification.</a> Cell. 126, 677-689 (2006).</li>
<li>Zuk, P. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multilineage+cells+from+human+adipose+tissue%3A+implications+for+cell-based+therapies%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng%22%5BJournal%5D)">Multilineage cells from human adipose tissue: implications for cell-based therapies.</a> Tissue Eng. 7, 211-228 (2001).</li>
<li>Yen, B. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+multipotent+cells+from+human+term+placenta%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Isolation of multipotent cells from human term placenta.</a> Stem Cells. 23, 3-9 (2005).</li>
<li>Erices, A., Conget, P., Minguell, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mesenchymal+progenitor+cells+in+human+umbilical+cord+blood%5BTitle%5D)+AND+%22Br+J+Haematol%22%5BJournal%5D)">Mesenchymal progenitor cells in human umbilical cord blood.</a> Br J Haematol. 109, 235-242 (2000).</li>
<li>Bartholomew, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mesenchymal+stem+cells+suppress+lymphocyte+proliferation+in+vitro+and+prolong+skin+graft+survival+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Hematol%22%5BJournal%5D)">Mesenchymal stem cells suppress lymphocyte proliferation in vitro and prolong skin graft survival in vivo.</a> Exp Hematol. 30, 42-48 (2002).</li>
<li>Chang, C. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Placenta-derived+multipotent+cells+exhibit+immunosuppressive+properties+that+are+enhanced+in+the+presence+of+interferon-gamma%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Placenta-derived multipotent cells exhibit immunosuppressive properties that are enhanced in the presence of interferon-gamma.</a> Stem Cells. 24, 2466-2477 (2006).</li>
<li>Uccelli, A., Moretta, L., Pistoia, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mesenchymal+stem+cells+in+health+and+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Immunol%22%5BJournal%5D)">Mesenchymal stem cells in health and disease.</a> Nat Rev Immunol. 8, 726-736 (2008).</li>
<li>Chen, P. M., Yen, M. L., Liu, K. J., Sytwu, H. K., Yen, B. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunomodulatory+properties+of+human+adult+and+fetal+multipotent+mesenchymal+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biomed+Sci%22%5BJournal%5D)">Immunomodulatory properties of human adult and fetal multipotent mesenchymal stem cells.</a> J Biomed Sci. 18, 49-59 (2011).</li>
<li>Muul, L. M., et al. Measurement of proliferative responses of cultured lymphocytes. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aMuul%2C+LM+%22Curr+Protoc+Immunol%22">Curr Protoc Immunol</a>. , Wiley & Sons, Inc. (2011).</li>
<li>Quah, B. J., Warren, H. S., Parish, C. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Monitoring+lymphocyte+proliferation+in+vitro+and+in+vivo+with+the+intracellular+fluorescent+dye+carboxyfluorescein+diacetate+succinimidyl+ester%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Monitoring lymphocyte proliferation in vitro and in vivo with the intracellular fluorescent dye carboxyfluorescein diacetate succinimidyl ester.</a> Nat Protoc. 2, 2049-2056 (2007).</li>
<li>Chen, P. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+immunomodulatory+monocytes+by+human+mesenchymal+stem+cell-derived+hepatocyte+growth+factor+through+ERK1%2F2%5BTitle%5D)+AND+%22J+Leukoc+Biol%22%5BJournal%5D)">Induction of immunomodulatory monocytes by human mesenchymal stem cell-derived hepatocyte growth factor through ERK1/2.</a> J Leukoc Biol. 96, 295-303 (2014).</li>
<li>Oughton, J. A., Kerkvliet, N. I. UNIT 18.8 Immune cell phenotyping using flow cytometry. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aOughton%2C+JA+%22Curr+Protoc+Toxicol%22">Curr Protoc Toxicol</a>. Costa, L. G., Davila, J. C., Lawrence, D. A., Reed, D. J., Will, Y. , Wiley & Sons, Inc. 18.8.1-18.8.24 (2005).</li>
<li>Phelan, M. C., Lawler, G. APPENDIX 3A Cell counting. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aPhelan%2C+MC+%22Curr+Protoc+Cytom%22">Curr Protoc Cytom</a>. Robinson, J. P., et al. , Wiley & Sons, Inc. A.3A.1-A.3A.4 (2001).</li>
<li>Gebler, A., Zabel, O., Seliger, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+immunomodulatory+capacity+of+mesenchymal+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Mol+Med%22%5BJournal%5D)">The immunomodulatory capacity of mesenchymal stem cells.</a> Trends Mol Med. 18, 128-134 (2012).</li>
<li>Le Blanc, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mesenchymal+stem+cells+for+treatment+of+steroid-resistant%2C+severe%2C+acute+graft-versus-host+disease%3A+a+phase+II+study%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet%22%5BJournal%5D)">Mesenchymal stem cells for treatment of steroid-resistant, severe, acute graft-versus-host disease: a phase II study.</a> Lancet. 371, 1579-1586 (2008).</li>
<li>Tan, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+therapy+with+autologous+mesenchymal+stem+cells+in+living-related+kidney+transplants%3A+a+randomized+controlled+trial%5BTitle%5D)+AND+%22JAMA%22%5BJournal%5D)">Induction therapy with autologous mesenchymal stem cells in living-related kidney transplants: a randomized controlled trial.</a> JAMA. 307, 1169-1177 (2012).</li>
<li>Le Blanc, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mesenchymal+stem+cells+inhibit+and+stimulate+mixed+lymphocyte+cultures+and+mitogenic+responses+independently+of+the+major+histocompatibility+complex%5BTitle%5D)+AND+%22Scand+J+Immunol%22%5BJournal%5D)">Mesenchymal stem cells inhibit and stimulate mixed lymphocyte cultures and mitogenic responses independently of the major histocompatibility complex.</a> Scand J Immunol. 57, 11-20 (2003).</li>
<li>Li, X. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-term+culture+in+vitro+impairs+the+immunosuppressive+activity+of+mesenchymal+stem+cells+on+T+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Med+Rep%22%5BJournal%5D)">Long-term culture in vitro impairs the immunosuppressive activity of mesenchymal stem cells on T cells.</a> Mol Med Rep. 6, 1183-1189 (2012).</li>
<li>Moll, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Do+cryopreserved+mesenchymal+stromal+cells+display+impaired+immunomodulatory+and+therapeutic+properties%3F%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Do cryopreserved mesenchymal stromal cells display impaired immunomodulatory and therapeutic properties?</a> Stem Cells. 32, 2430-2442 (2012).</li>
<li>Ho, P. J., Yen, M. L., Tang, B. C., Chen, C. T., Yen, B. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((H2O2+accumulation+mediates+differentiation+capacity+alteration%2C+but+not+proliferative+decline%2C+in+senescent+human+fetal+mesenchymal+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Antioxid+Redox+Signal%22%5BJournal%5D)">H2O2 accumulation mediates differentiation capacity alteration, but not proliferative decline, in senescent human fetal mesenchymal stem cells.</a> Antioxid Redox Signal. 18, 1895-1905 (2013).</li>
</ol>

Non abbiamo nulla da rivelare.

Sempre più spesso, le proprietà immunomodulatorie delle MSC vengono tradotte in uso clinico più rapidamente rispetto alla capacità multilineage di queste cellule staminali18-20. Pertanto, le tecniche di co-coltura di MSC con leucociti e i saggi per valutare la funzione immunitaria sono importanti per delineare ulteriormente i meccanismi specifici coinvolti in queste proprietà per ottimizzare un'efficace applicazione terapeutica. 
Uno degli aspetti tecnici più critici per il successo...

Le cellule staminali mesenchimali umane (MSC) sono progenitrici somatiche che possono differenziarsi in lignaggi mesodermiche parassiali di ossa, cartilagine e tessuto adiposo 1-4, così come ad alcuni lignaggi extramesodermal 5. In primo luogo isolato dal midollo osseo adulto, questi progenitori multilineage ora sono state trovate in numerosi tessuti 6-8 e, inaspettatamente, dimostrato di avere forti proprietà immunomodulanti che sembrano altamente suscettibili di applicazione clinica 9-12. Meccanismi dettagliati coinvolti negli effetti immunomodulatori sono attivamente indagati dell&#39;effettiva applicazione in entità patologiche specifiche. Uno dei modi più semplici per valutare immunomodulazione è valutando per la soppressione di effettori leucociti proliferazione 13. La maggior parte dei leucociti effettrici quali T linfociti e monociti proliferano prodigiosamente quando stimolato o attivato. Funzione immunomodulante può essere valutata quando la soppressione diproliferazione è evidenziato. Tradizionalmente, effettore leucociti proliferazione è stata valutata mediante rilevamento di [3 H] timidina nel DNA. Tuttavia, questo metodo ha svantaggi significativi a causa delle preoccupazioni di radiazioni e smaltimento post-utilizzo, così come il complesso attrezzature necessarie. Mentre ci sono saggi non radioattivi per valutare la proliferazione cellulare, l&#39;estere carboxyfluorescein succinimidil (CFSE) test ha anche altri vantaggi come ad esempio consentendo l&#39;identificazione delle popolazioni cellulari specifiche, il che è particolarmente utile in esperimenti di co-coltura di cellule che coinvolgono molteplici tipi. CFSE è un colorante cellulare fluorescente che può essere valutata mediante l&#39;analisi di citometria di flusso. Come le cellule si dividono, l&#39;intensità di questa etichetta cellulare diminuisce proporzionalmente; questo permette non solo la determinazione della proliferazione cellulare complessiva ma anche permette di valutare il numero di divisioni cellulari fino a 8 divisioni prima fluorescenza diventa difficile detect contro segnale di fondo. Inoltre, la stabilità della fluorescenza CFSE permette il monitoraggio in vivo di cellule marcate tali che le cellule possono essere visualizzati fino a molti mesi 14. Questo test può anche essere variata per valutare specifici tipi di leucociti effettrici o la funzione immunomodulante di specifiche popolazioni di MSC indotta leucociti-come immunomodulatori l&#39;interleuchina-10 (IL-10), la produzione di monociti CD14 + 15 eseguendo magnetico tallone selezione marcatore superficie popolazioni di cellule di interesse prima o dopo co-coltura a seconda dei casi. Il nostro protocollo descrive il saggio base di valutare gli effetti immunomodulatorie delle MSC sui leucociti effettrici (diagramma di flusso mostrato nella Figura 1) e una variazione su questo test base per la valutazione di MSC indotta immunomodulazione leucociti su allogeniche CD4 + effettrici linfociti T (diagramma di flusso mostrato in figura 4).

<table><tbody><tr><td>Ficoll-Paque PLUS</td><td>GE Healthcare</td><td>71-7167-00 AG</td><td>Densità grandient per l'isolamento di cellule mononucleate del sangue periferico (PBMC)</td></tr><tr><td>Vibrant CFDA-SE Cell Tracer Kit (CFSE)</td><td>Life Technologies</td><td>V12883</td><td>Etichetta cellulare per il rilevamento della divisione cellulare</td></tr><tr><td>Fitoagglutinina (PHA)</td><td>Sigma</td><td>L8902</td><td>Attivazione di PBMC</td></tr><tr><td>umane Dynabeads Human T-Activator CD3/28</td><td>Life Technologies</td><td>111.32D</td><td>Attivazione di linfociti T umani, ad es. CD4+ cellule T, CD8+ cellule T, ecc.</td></tr><tr><td>autoMACS&commercio; Separatore</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>autoMACS&trade; Separatore</td><td>Separatore di celle a base magnetica</td></tr><tr><td>autoMACS&reg; Colonne</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-021-101</td><td>colonne di separazione</td></tr><tr><td>CD14 microsfere, umano&nbsp;</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-050-201</td><td>Per la selezione positiva di CD14+ monociti e macrofagi da</td></tr><tr><td>microsfere CD4 PBMC, umano&nbsp;</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-045-101</td><td>Per la selezione positiva di linfociti T umani CD4+ da PBMC</td></tr><tr><td>RPMI 1640 Medium</td><td>Life Technologies</td><td>11875</td><td>Terreno di coltura di PBMC/leucociti umani</td></tr><tr><td>DMEM, basso glucosio, piruvato</td><td>Life Technologies</td><td>11885</td><td>Terreno di coltura di cellule staminali mesenchimali umane (MSC)</td></tr><tr><td>L-glutammina</td><td>Life Technologies</td><td>25030-081</td><td>Integrazione per MSC medio completo</td></tr><tr><td>Penicillina/streptomicina</td><td>Life Technologies</td><td>15070-063</td><td>Integrazione per PBMC/leucociti e MSC medio completo</td></tr><tr><td>Siero fetale bovino (FBS)</td><td>1) Hyclone, per coltura di MSC&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; 2) Life Technologies, per tutte le altre cellule (ad es. PBMC, popolazioni specifiche di leucociti)</td><td>1) SH30070.03M 2) 10091-148</td><td>Lotti pre-test per il supporto di MSC in vitro Piastra per</td></tr><tr><td>coltura cellulare a 24 pozzetti</td><td>Corning</td><td>COR3524</td><td>Piastra di co-coltura</td></tr><tr><td>Provetta da centrifuga da 50 ml</td><td>Corning</td><td>430291</td><td>Isolamento PBMC da sangue intero mediante Ficoll-Paque PLUS</td></tr><tr><td>Provetta da centrifuga da 15 ml...</td><td>Corning</td><td>430766</td><td>Raccolta delle frazioni cellulari marcate e non marcate</td></tr><tr><td>Provette a fondo tondo</td><td>BD Falcon</td><td>352008</td><td>Raccolta di cellule per analisi citofluorimetriche</td></tr></tbody></table>

valutazione della proprietà immunomodulanti di cellule staminali mesenchimali umane (msc)

Assessment of the Immunomodulatory Properties of Human Mesenchymal Stem Cells (MSCs)

Le proprietà immunomodulatorie delle cellule staminali mesenchimali umane (MSC) multilineage sembrano essere molto rilevanti per l'uso clinico verso un'ampia gamma di malattie immuno-correlate. I meccanismi coinvolti sono sempre più chiariti e in questo articolo, descriviamo l'esperimento di base per valutare l'immunomodulazione delle MSC attraverso la soppressione della proliferazione leucocitaria effettrice. Rappresentando l'attivazione, la proliferazione leucocitaria può essere valutata con una serie di tecniche e in questo protocollo descriviamo l'uso del colorante cellulare fluorescente carbossifluoresceina succinimidil estere (CFSE) per marcare i leucociti con successive analisi citofluorimetriche. Questa tecnica può non solo valutare la proliferazione senza radioattività, ma anche il numero di divisioni cellulari che si sono verificate, oltre a consentire l'identificazione della popolazione specifica di cellule proliferanti e l'espressione intracellulare di citochine/fattori. Inoltre, il test può essere personalizzato per valutare popolazioni specifiche di leucociti effettori mediante la selezione di marcatori di superficie di perline magnetiche di singole popolazioni di cellule mononucleate del sangue periferico prima della co-coltura con MSC. La flessibilità di questo test di co-coltura è utile per studiare le interazioni cellulari tra MSC e leucociti.

Figura 1 denota lo schema generale dell&#39;esperimento, e la figura 2 mostra l&#39;aspetto delle diverse condizioni di coltura cellulare come visualizzato in contrasto di fase invertita microscopia. Le MSC sono cellule aderenti con fibroblastica, morfologia a forma di fuso, mentre PBMC e leucociti sono piccole cellule non aderenti rotonde. Questi due tipi di cellule morfologicamente differenti può essere visto chiaramente nella co-coltura. Al termine del test, quando le PBMC (o leuckotyes) vengono aspirati...

Le proprietà immunomodulanti di cellule umane staminali mesenchimali (MSC) appaiono sempre più rilevante per l&#39;applicazione clinica. Utilizzando un sistema di co-coltura di cellule staminali mesenchimali e leucociti del sangue periferico pre-colorati con il colorante fluorescente carbossifluoresceina succinimidil estere (CFSE), si descrive la valutazione in vitro di MSC immunomodulazione sulla proliferazione dei leucociti effettrici e sottopopolazioni specifiche.

Valutazione della proprietà immunomodulanti di cellule staminali mesenchimali umane (MSC)

The immunomodulatory properties of multilineage human mesenchymal stem cells (MSCs) appear to be highly relevant for clinical use towards a wide-range of ...

L'obiettivo generale di questo esperimento è valutare le proprietà immunomodulatrici delle cellule staminali mesenchimali umane o msc. Questo metodo può contribuire a chiarire i meccanismi coinvolti nell'immunomodulazione mediata dalle cellule staminali mesenchimali umane, un processo che potrebbe avere rilevanza terapeutica. Il vantaggio principale di questa tecnica è che sia l'insorgenza della proliferazione dei leucociti effettrici sia il numero di divisioni cellulari possono essere valutati, dimostrando che la procedura sarà eseguita per scarpa.Un tecnico del mio laboratorio per isolare i PBMC inizia diluendo 25 millilitri di un campione di sangue intero eparinizzato con 25 millilitri di PBS in un tubo conico da 50 millilitri. Successivamente, aggiungere 15 millilitri di Ficoll-Paque™ in un nuovo tubo da 50 millilitri. Poi, tenendo il tubo inclinato, stratificare lentamente la sospensione cellulare diluita sopra il gradiente di densità.Ciò garantisce che non avvenga alcun mescolamento tra gli strati. Uno dei passaggi più critici di questo esperimento consiste nel sovrapporre il sangue senza perturbare il gradiente di densità. Questo passaggio è essenziale per garantire un'eleva

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Immunologia e Infezioni

Questo video mostra un test in vitro per esplorare l'influenza immunomodulatoria delle cellule staminali mesenchimali (MSC) sulla proliferazione delle cellule T effettrici. Il test include la co-coltura di MSC con PBMC per indurre la popolazione di monociti ad acquisire un fenotipo immunomodulatore, portando alla secrezione di interleuchina-10 (IL-10). Dopo l'incubazione con cellule T CD4+ attivate, i monociti indotti sopprimono efficacemente la proliferazione delle cellule T.

Un test in vitro per valutare l'impatto immunomodulatorio dei monociti sulla proliferazione leucocitaria

Qui descriviamo un protocollo ottimizzato e altamente riproducibile per isolare le cellule progenitrici mesodermiche (MPC) dal midollo osseo umano (hBM). Le MPC sono state caratterizzate mediante citometria a flusso ed espressione di nestina. Hanno dimostrato la capacità di dare origine a colture cellulari simili alle MSC in crescita esponenziale, pur mantenendo il loro potenziale angiogenico.

Isolare le cellule progenitrici Mesangiogenic (PPM) da midollo osseo umano

Il potenziale terapeutico delle cellule staminali/stromali mesenchimali (MSC) è ben documentato, tuttavia il metodo migliore per preparare le cellule per i pazienti rimane controverso. In questo articolo, comunichiamo i protocolli per generare e somministrare in modo efficiente aggregati sferici terapeutici o "sferoidi" di MSC innescati in condizioni prive di xeno per applicazioni sperimentali e cliniche.

Produzione e somministrazione di Therapeutic staminali mesenchimali / stromali cellulare (MSC) Spheroids innescato in Culture 3-D, in condizioni Xeno-free

Murino in modelli di infiammazione colica hanno dimostrato che una piccola percentuale (1-5%) di cellule staminali mesenchimali (MSC) iniettato per via endovenosa o intraperitonealmente ospita il colon infiammato1,2. Questo studio indica che le iniezioni intracardiache ultrasuono-guida di MSCs provocare maggiore localizzazione all'intestino.

Ultrasuono-guida di iniezione intracardiaca di cellule staminali mesenchimali umane per aumentare Homing all'intestino per l'utilizzo in modelli murini di malattie intestinali infiammatorie sperimentali

Qui, presentiamo un metodo per sfruttare in modo efficiente il potenziale di differenziazione cardiache di giovane fonti di cellule staminali mesenchimali umane al fine di generare cellule funzionali, contraenti, del cardiomyocyte-come in vitro.

In Vitro Differenziazione delle cellule staminali mesenchimali umane in funzionale del Cardiomyocyte-come le cellule

Qui viene presentato un protocollo per quantificare e produrre immagini dinamiche della regolazione mediata da cellule staminali mesenchimali (MSC) della fagocitosi macrofagica (MΦ) di particelle di lievito non opsonizzato (zymosan) coniugate a una molecola fluorescente sensibile al pH.

Regolazione mesenchimale delle cellule staminali della fagocitosi dei macrofagi; Quantificazione e imaging

Il tessuto adiposo è un'ottima fonte di cellule staminali mesenchimali. Qui, portiamo l'estrazione, la coltivazione e la caratterizzazione passo dopo passo di cellule staminali derivate dal tessuto adiposo (ADSC) da topi svizzeri tessuto adiposo epididimale.

Isolamento, espansione in vitro e caratterizzazione di cellule staminali mesenchimali da tessuto adiposo epididimo di topo

Questo protocollo descrive e confronta due metodi rappresentativi per differenziare le hiPSC in cellule stromali mesenchimali (MSC). Il metodo monostrato è caratterizzato da un costo inferiore, da un funzionamento più semplice e da una più facile differenziazione osteogenica. Il metodo dei corpi embrioidi (EBs) è caratterizzato da un minor consumo di tempo.

Confronto di due metodi rappresentativi per la differenziazione di cellule staminali pluripotenti indotte umane in cellule stromali mesenchimali

L'isolamento delle MSCalteMFGE8 di BAMBI, uno dei tre principali sottogruppi che costituiscono UC-MSC umane eterogenee, è utile per comprendere appieno le caratteristiche e le funzioni di questo sottotipo per la sua futura applicazione per migliorare l'efficacia clinica in malattie specifiche. Qui, presentiamo un metodo per lo smistamento di BAMBIhighMFGE8high UC-MSC.

Isolamento di cellule stromali mesenchimali umane derivate dal cordone ombelicalead altoMFGE8

Qui si descrive un metodo per estendere in modo efficiente e purificare un gran numero di cellule NK e valutare la loro funzione.

Espansione, di purificazione, e la valutazione funzionale delle cellule del sangue umano periferico NK

Scopri come valutare le proprietà immunomodulanti delle cellule staminali mesenchimali umane (MSC) utilizzando un sistema di co-coltura con leucociti del sangue periferico. Questo metodo permette di analizzare la proliferazione dei leucociti effettori e le sottopopolazioni specifiche, offrendo importanti applicazioni terapeutiche nel campo dell'immunologia e della medicina rigenerativa.

Valutazione della proprietà immunomodulanti di cellule staminali mesenchimali umane (MSC)

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