La transgenesi, o l’uso dell’ingegneria genetica per alterare l’espressione genica, è ampiamente utilizzata nel campo della biologia dello sviluppo. Gli scienziati utilizzano una serie di approcci per alterare la funzione dei geni per comprendere i loro ruoli nei processi di sviluppo. Ciò include la sostituzione di un gene con una copia non funzionale o l’aggiunta di un tag visualizzabile a un gene che consente di tracciare la proteina di fusione risultante durante lo sviluppo.
In questo video, gli spettatori impareranno a conoscere i principi alla base della transgenesi, nonché i passaggi di base per introdurre costrutti genetici in un animale e mirare ai geni di interesse. Questo è seguito dalla discussione di un protocollo per creare topi knockout. Infine, saranno esaminate alcune applicazioni specifiche delle tecnologie transgeniche nel campo della biologia dello sviluppo.
L’ingegneria genetica è uno strumento prezioso utilizzato per modificare i genomi degli organismi modello in un processo noto come transgenesi. Nella biologia dello sviluppo, questo approccio è spesso usato per esprimere geni modificati che possono essere visualizzati nei tessuti viventi. In alternativa, l’ingegneria genetica può essere utilizzata per prevenire o interrompere l’espressione proteica per studiare la funzione di sviluppo di geni specifici.
Questo video riassumerà i principi alla base di questa tecnologia, esaminerà alcune procedure di ingegneria genetica ed evidenzierà i modi in cui queste tecniche vengono utilizzate in laboratorio.
Per iniziare, esploriamo alcuni concetti importanti alla base della transgenesi. Ciò comporta l’inserimento di DNA nel genoma di un organismo modello. Ci sono un certo numero di approcci a seconda dell’obiettivo dello studio.
In primo luogo, l’aggiunta di un gene alterato potrebbe rivelare cambiamenti funzionali o morfologici dovuti a una mutazione. Un altro metodo consiste nell’inserire copie aggiuntive del gene wild-type inalterato per studiare gli effetti della sovraespressione, che spesso può essere dannosa quanto una mutazione. Un approccio diverso consiste nell’inserire una proteina di fusione che contiene un tag visualizzabile, come la proteina fluorescente verde, per tracciare la posizione e i tempi dell’espressione genica negli animali vivi.
Il segmento di DNA che verrà inserito nel genoma deve essere attentamente progettato per produrre i modelli di espressione e i risultati desiderati. Il promotore, che è un elemento di sequenza che determina quando e dove un gene è espresso, è una componente cruciale. Alcuni promotori sono espressi ubiquitariamente in quasi tutti i tessuti, mentre altri sono attivi solo in tessuti specifici. I promotori inducibili, che vengono attivati dalla somministrazione chimica o dall’esposizione a temperature elevate, possono anche essere utilizzati per controllare i tempi di espressione genica.
Per essere espresso stabilmente nei tessuti, un transgene deve prima integrarsi nel genoma. Per raggiungere questo obiettivo, i transgeni possono includere sequenze di DNA fiancheggianti che corrispondono ad aree del genoma dell’organismo. Ciò consente al transgene di integrarsi con il DNA ospite attraverso un processo noto come ricombinazione omologa. In alternativa, in alcune specie elementi speciali chiamati trasposoni possono rendere la transgenesi più efficiente includendo siti di riconoscimento per la trasposasi enzimatica, che catalizza l’inserimento casuale del transgene nel genoma.
Ora che conosci alcune delle basi del design transgenico, esaminiamo come creare un animale transgenico. Per realizzare il costrutto transgenico, inizia amplificando il gene di interesse usando la PCR. Questa regione amplificata viene quindi clonata in un vettore, che è un pezzo di DNA che può trasportare il transgene nelle cellule. I vettori contengono tipicamente elementi che consentono un’efficiente amplificazione transgene utilizzando batteri, come E. coli. Dopo questa fase di amplificazione, il vettore viene purificato dalla coltura batterica.
Gli animali transgenici sono fatti iniettando DNA purificato negli embrioni. Nei pesci e nelle rane, i costrutti vengono solitamente iniettati direttamente nel tuorlo o nel citoplasma degli embrioni a una cellula. Per la transgenesi trasposona-mediata, un trascritto che codifica l’enzima transposasi viene aggiunto alla miscela di iniezione.
Nei topi, la transgenesi può essere realizzata mediante la manipolazione di uova appena fecondate in cui lo sperma e i pronuclei dell’uovo non si sono ancora fusi. Il costrutto viene iniettato direttamente nel pronucleo più grande, dove può integrarsi nel genoma mentre la cellula si divide. Le uova devono quindi essere trapiantate nell’utero di una femmina pseudogravia per lo sviluppo.
L’efficienza della transgenesi varia, quindi gli animali devono essere sottoposti a screening per identificare la progenie in cui il costrutto si è integrato con successo nel genoma. Questo può essere fatto cercando un tag fluorescente che è stato inserito per una facile identificazione, o attraverso analisi molecolari come la PCR del DNA genomico isolato da piccoli pezzi di tessuto.
Un secondo approccio all’ingegneria genetica si concentra sul targeting genetico specifico per interrompere la funzione genica. Esistono diversi approcci per raggiungere questo obiettivo. Un metodo relativamente nuovo, noto come genome editing, sfrutta enzimi specifici della sequenza chiamati nucleasi, che tagliano la spina dorsale del DNA e causano mutazioni nei geni mentre il DNA viene riparato.
Un altro metodo di targeting prevede l’uso della ricombinazione omologa per sostituire un gene con DNA estraneo o una copia del gene affiancata da sequenze di riconoscimento per enzimi noti come ricombinasi. Quando le ricombinasi sono presenti, la sequenza affiancata verrà asportata dal genoma. Questo è noto come knockout condizionale e il controllo dell’escissione genica può essere ottenuto esprimendo l’enzima in tessuti specifici o in determinati punti temporali.
Esaminiamo una procedura generale per generare topi knockout mediante ricombinazione omologa. Qui, deve essere preparato un costrutto in cui parte della sequenza di DNA genomico viene sostituita con DNA estraneo. Questo DNA spesso codifica per un altro gene, ad esempio per la resistenza agli antibiotici, che fornisce un modo per selezionare con successo le cellule modificate nelle fasi successive.
Per iniziare la procedura, le cellule staminali embrionali vengono raccolte dalla massa cellulare interna di un embrione di topo precoce noto come blastocisti. Il costrutto linearizzato viene quindi consegnato nelle cellule staminali tramite elettroporazione, in cui gli impulsi elettrici generano pori transitori nella membrana cellulare. Le cellule sono quindi autorizzate a incubare in presenza di un antibiotico per eliminare le cellule senza il transgene.
Dopo questa fase di selezione, le cellule staminali possono essere iniettate in un altro embrione di topo allo stadio di blastocisti. Gli embrioni vengono quindi trasferiti nell’utero di un topo femmina per continuare lo sviluppo. I cuccioli risultanti saranno chimere, che sono composte sia da cellule wild-type che knockout. Alcune chimere avranno cellule knockout all’interno della loro linea germinale, che trasmetteranno il gene interrotto quando vengono allevate, che stabiliranno quindi una nuova linea di knockout.
Hai imparato le basi dell’ingegneria genetica dei modelli di sviluppo, quindi ora diamo un’occhiata ad alcune applicazioni pratiche.
Gli studi sullo sviluppo spesso utilizzano proteine marcate fluorescentemente per identificare le cellule e studiarne lo sviluppo. Utilizzando promotori tessuto-specifici, gli organismi transgenici possono essere progettati per esprimere proteine fluorescenti in cellule specifiche, come la cresta neurale. Utilizzando tecniche di imaging avanzate, le cellule fluorescenti possono essere visualizzate in tempo reale, consentendo ai ricercatori di visualizzare direttamente eventi di sviluppo complessi.
Un altro uso importante dell’ingegneria genetica è quello di studiare geni specifici e il loro ruolo nei fenotipi delle malattie. Qui, le mutazioni mirate vengono introdotte in uno specifico gene di topo usando nucleasi, come i TALEN. La PCR mostra se il topo ha zero, una o due copie del gene mutato. Gli embrioni che trasportano due copie mutanti possono ora essere studiati in dettaglio per determinare la funzione di sviluppo del gene.
Usando knockout condizionali, gli scienziati possono determinare la funzione di un gene all’interno di un insieme ristretto di cellule. Qui, un gene loxP-flanked è stato espresso in tutto l’embrione, ma Cre è stato espresso solo nelle cellule endoteliali, causando una delezione genica nel cuore e nei vasi sanguigni. Questo knockout tessuto-specifico ha provocato un cambiamento misurabile nella frequenza cardiaca embrionale e illustra come testare il ruolo localizzato di un gene senza cambiare l’intero organismo.
Hai appena visto l’introduzione di JoVE alla tecnologia transgenica. Queste tecniche ti aiutano a capire le basi dell’ingegneria genetica, alcuni dei metodi coinvolti e come viene applicata nella scienza di tutti i giorni. L’ingegneria genetica può essere ampiamente applicata in molti organismi e continuerà ad essere uno strumento importante per studiare e comprendere il ruolo della genetica nelle malattie dello sviluppo, così come quelle che compaiono durante l’età adulta. Grazie per l’attenzione!
Genetic engineering is a valuable tool used to modify genomes of model organisms in a process known as transgenesis. In developmental biology, this approach is often used to express modified genes that can be visualized in living tissues. Alternatively, genetic engineering can be used to prevent or disrupt protein expression to study the developmental function of specific genes.
This video will summarize the principles behind this technology, review some genetic engineering procedures, and highlight ways that these techniques are used in the lab.
To begin, let’s explore some important concepts underlying transgenesis. This involves insertion of DNA into the genome of a model organism. There are a number of approaches depending on the study goal.
First, addition of an altered gene might reveal functional or morphological changes due to a mutation. Another method is to put in additional copies of the unaltered wild-type gene to study the effects of overexpression, which can often be just as damaging as a mutation. A different approach is to insert a fusion protein that contains a visualizable tag, such as green fluorescent protein, to track the location and timing of gene expression in live animals.
The segment of DNA that will be inserted into the genome must be carefully designed to produce the desired expression patterns and outcomes. The promoter, which is a sequence element that dictates when and where a gene is expressed, is a crucial component. Certain promoters are ubiquitously expressed throughout almost all tissues, while others are only active in specific tissues. Inducible promoters, which are activated by chemical administration or exposure to high temperatures, can also be used to control timing of gene expression.
To be stably expressed in tissues, a transgene must first integrate into the genome. To accomplish this, transgenes can include flanking DNA sequences that match areas of the organism’s genome. This allows the transgene to integrate with the host DNA through a process known as homologous recombination. Alternatively, in some species special elements called transposons can make transgenesis more efficient by including recognition sites for the enzyme transposase, which catalyzes random insertion of the transgene into the genome.
Now that you know some of the basics of transgene design, let’s review how to make a transgenic animal. To make the transgene construct, start by amplifying the gene of interest using PCR. This amplified region is then cloned into a vector, which is a piece of DNA that can carry the transgene into cells. Vectors typically contain elements that allow efficient transgene amplification using bacteria, such as E. coli. After this amplification step, the vector is purified from the bacterial culture.
Transgenic animals are made by injecting purified DNA into embryos. In fish and frogs, constructs are usually injected directly into the yolk or cytoplasm of one-cell stage embryos. For transposon-mediated transgenesis, a transcript encoding the transposase enzyme is added to the injection mix.
In mice, transgenesis can be accomplished by manipulation of newly fertilized eggs in which the sperm and egg pronuclei have not yet fused. The construct is injected directly into the larger pronucleus, where it may integrate into the genome as the cell divides. The eggs must then be transplanted into the uterus of a pseudopregnant female for development.
Transgenesis efficiency varies, so animals must be screened to identify progeny in which the construct has successfully integrated into the genome. This can be done by looking for a fluorescent tag that was inserted for easy identification, or through molecular analyses such as PCR of genomic DNA isolated from small tissue pieces.
A second approach to genetic engineering focuses on specific gene targeting to disrupt gene function. There are multiple approaches to achieve this goal. One relatively new method, known as genome editing, takes advantage of sequence-specific enzymes called nucleases, which cut the DNA backbone and cause mutations in genes as the DNA is repaired.
Another targeting method involves the use of homologous recombination to replace a gene with either foreign DNA or a copy of the gene flanked by recognition sequences for enzymes known as recombinases. When the recombinases are present, the flanked sequence will be excised from the genome. This is known as a conditional knockout, and control of gene excision can be achieved by expressing the enzyme in specific tissues or at certain time points.
Let’s review a general procedure for generating knockout mice by homologous recombination. Here, a construct must be prepared in which part of the genomic DNA sequence is replaced with foreign DNA. This DNA often encodes another gene, such as for antibiotic resistance, which provides a way to select successfully modified cells in later steps.
To begin the procedure, embryonic stem cells are collected from the inner cell mass of an early mouse embryo known as a blastocyst. The linearized construct is then delivered into the stem cells via electroporation, in which electrical pulses generate transient pores in the cell membrane. The cells are then allowed to incubate in the presence of an antibiotic to eliminate cells without the transgene.
After this selection step, the stem cells can be injected into another mouse embryo at the blastocyst stage. The embryos are then transferred to the uterus of a female mouse to continue development. The resulting pups will be chimeras, which are composed of both wild-type and knockout cells. Some chimeras will have knockout cells within their germline, which will transmit the disrupted gene when they are bred, which will then establish a new knockout line.
You have learned the basics of genetic engineering of developmental models, so now let’s look at some practical applications.
Developmental studies often use fluorescently tagged proteins to identify cells and study their development. Using tissue-specific promoters, transgenic organisms can be engineered to express fluorescent proteins in specific cells, like the neural crest. Using advanced imaging techniques, the fluorescent cells can be imaged in real time, allowing researchers to directly visualize complex developmental events.
Another important use of genetic engineering is to study specific genes and their role in disease phenotypes. Here, targeted mutations are introduced into a specific mouse gene using nucleases, such as TALENs. PCR shows whether the mouse has zero, one, or two copies of the gene mutated. The embryos carrying two mutant copies can now be studied in detail to determine the developmental function of the gene.
Using conditional knockouts, scientists can determine the function of a gene within a restricted set of cells. Here, a loxP-flanked gene was expressed throughout the entire embryo, but Cre was expressed in endothelial cells only, causing a gene deletion in the heart and blood vessels. This tissue-specific knockout resulted in a measureable change in embryonic heart rate, and illustrates how to test the localized role of a gene without changing the entire organism.
You’ve just watched JoVE’s introduction to transgenic technology. These techniques help you understand the basics of genetic engineering, some of the methods that are involved, and how it is applied in everyday science. Genetic engineering can be widely applied across many organisms, and will continue to be an important tool for studying and understanding the role of genetics in developmental diseases, as well as those that appear during adulthood. Thanks for watching!
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