27 dicembre 2015
Qui, presentiamo il protocollo di neovascolarizzazione coroideale indotta da laser (CNV) di topo, un modello sperimentale che ricrea i segni distintivi vascolari della degenerazione maculare neovascolare legata all'età (AMD). Una volta padroneggiato, può indurre in modo affidabile ed efficace la CNV come sistema modello per testare varie misure sperimentali.
L'obiettivo generale di questa procedura è quello di ricreare i segni distintivi della degenerazione maculare neovascolare legata all'età o di una MD in un modello animale facile da studiare. Questo metodo può essere utilizzato per studiare diversi aspetti della ricerca neovascolare sulla A MD, incluso il modo in cui le alterazioni genetiche o i trattamenti farmaceutici possono influenzare la malattia o come la malattia può manifestarsi con diverse modalità di imaging. Il vantaggio principale di questa tecnica è che, una volta padroneggiata, è facile da riprodurre, consentendo di eseguire esperimenti in modo rapido ed efficiente.
In generale, le persone che non conoscono questo metodo avranno difficoltà perché mancano della destrezza e della coordinazione per avere successo, entrambe le quali migliorano con la pratica. Per preparare la posizione della stazione laser, il laser e la lampada a fessura dove è facilmente accessibile, accendere il laser e impostarlo sui parametri predeterminati. Qui vengono utilizzati l'impostazione 75 micrometri, la dimensione dello spot, la potenza di 100 milliwatt e la durata di 100 millisecondi.
Quindi, posizionare l'anestesia, lo scaldaanimali, le salviette in tessuto e il collirio con una facile portata dell'operatore laser. Dopo aver anestetizzato il primo topo, posizionalo sullo scaldavivande per circa tre-cinque minuti. Eseguire un pizzicamento delle dita dei piedi per garantire un'anestesia completa.
Quindi utilizzare una salvietta in tessuto arrotolato per prevenire l'aspirazione nasale del rotolamento del liquido. Metti una goccia da 30 microlitri di tetracaina cloridrato in ciascun occhio. Attendi due minuti affinché la soluzione abbia effetto.
Successivamente, applicare una goccia di coadiuvante tropico topico su ciascun occhio per dilatare le pupille. E attendi due minuti affinché la soluzione faccia effetto. Ora posiziona rapidamente il mouse sul tavolino del mouse, quindi posiziona il tavolino sul mentoniera della lampada a fessura.
Accendere la lampada a fessura e regolarla alla luminosità più bassa. Valuta la dilatazione della pupilla del topo. Se la pupilla non ha raggiunto da 2,5 a tre millimetri di dilatazione.
Rimetti il mouse nello scaldavivande o somministra un'ulteriore goccia di aiuto tropicale dopo la dilatazione della pupilla. Orientare il mouse sulla piattaforma in modo che si trovi orizzontalmente perpendicolarmente alla trave a fessura. Ruota leggermente il mouse in modo che non si trovi a un angolo di circa 170 gradi.
Con la testa orientata più vicino all'operatore laser, posizionare il mouse il più vicino possibile alla lampada a fessura mantenendo la stabilità della piattaforma e lasciando spazio sufficiente per consentire all'operatore di eseguire manipolazioni motorie di precisione. Una volta posizionato correttamente il mouse, applicare una goccia di soluzione lacrimale artificiale su un vetrino coprioggetti di vetro da 25 millimetri per 25 millimetri. Inoltre, metti una goccia di questa soluzione sull'occhio non mirato del topo per prevenire la disidratazione.
Afferrare un angolo del vetrino coprioggetto tra il pollice e l'indice e avvolgere le restanti tre dita attorno al mouse per sostenere e stabilizzare sia l'animale che la mano dell'operatore. Quindi premere con cautela il coperchio. Infilalo sull'occhio del topo per appiattire la cornea.
Posizionare il vetrino coprioggetti perpendicolarmente al percorso del raggio laser per evitare la dispersione o la riflessione del raggio. Guardando attraverso la lampada a fessura, usa la mano libera per regolare la messa a fuoco fino a quando la retina non è visibile. La retina dovrebbe apparire dal giallo chiaro al rosso Con vasi sanguigni rossi distinti presenti, muovi lentamente e con attenzione la testa del topo o il vetrino coprioggetti fino a quando non si osserva il nervo ottico.
Il nervo ottico sarà giallo con più vasi sanguigni che si irradiano da esso. Quindi accendere il raggio di messa a fuoco del laser e manovrarlo per mettere a fuoco l'epitelio pigmentato retinico o RPE del fondo oculare. Se il fascio di messa a fuoco sembra essere ovale o sfocato, regolare la lampada a fessura, la messa a fuoco o il vetrino coprioggetti.
Quando il raggio di messa a fuoco è regolato in modo appropriato, utilizzare il grilletto a pedale per avviare la somministrazione del laser. Immediatamente dopo la somministrazione del laser dovrebbe formarsi una bolla Le lesioni con bordi nebulosi o gli occhi con lesioni emorragiche devono essere esclusi dall'analisi. Assicurati di osservare la formazione di bolle e un'area circolare chiara e nitida che indica un'ustione laser focalizzata.
Le lesioni che non producono una bolla possono non indurre in modo appropriato la CNV. Creare lesioni aggiuntive in tutte le posizioni desiderate di neovascolarizzazione coroideale o CNV. Portare il laser in modalità standby quando non è in uso, registrare in un quaderno da laboratorio la posizione e il risultato di ogni somministrazione laser.
Ripetere la somministrazione laser per il secondo occhio del topo utilizzando un vetrino coprioggetti fresco e la mano opposta per stabilizzare il topo. Dopo aver completato tutte le somministrazioni, spegnere il laser e la lampada a fessura, scartare il vetrino coprioggetti e posizionare il mouse sull'animale. Più caldo macroscopicamente.
Ispezionare l'occhio per verificare la presenza di lesioni da superficie corneale o cataratta. Dopo il recupero, rimetti il topo nella sua gabbia. CNV quantificate tramite analisi di coroidi piatte montate dopo colorazione immunofluorescente qui.
L'etichettatura del destrano Fit c è stata effettuata tramite perfusione immediatamente prima del sacrificio animale. Questo è stato seguito dalla quantificazione dell'area tramite soglia nell'immagine J.Qui colorazione immunologica post mortem con il marcatore delle cellule endoteliali. È stata eseguita la selettina ISO GS IB quattro, seguita da imaging tramite microscopia confocale.
Sono state generate ricostruzioni 3D della lesione CNV su FOSS e vista laterale. La tomografia a coerenza ottica è stata utilizzata anche per visualizzare le lesioni della CNV in vivo. Qui, viene mostrata un'immagine in sezione trasversale della retina con una lesione CNV cerchiata in giallo.
Viene mostrata anche un'immagine en FOSS della lesione, cerchiata in giallo. Una volta padroneggiata, questa tecnica può essere eseguita in 10 minuti se eseguita correttamente. Durante il tentativo di questa procedura, è importante assicurarsi che l'animale sia adeguatamente anestetizzato e posizionare le mani in modo che sia sostenuto e stabile.
Dopo aver visto questo video, dovresti avere una buona comprensione di come fornire la concentrazione. Il laser brucia per indurre la CNV, che può essere successivamente studiata in vari modi.
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Questo articolo presenta un protocollo per indurre la neovascolarizzazione coroideale (CNV) nei topi, riproducendo le caratteristiche vascolari della degenerazione maculare legata all'età di tipo neovascolare (AMD). Il metodo è stato progettato per essere riproducibile ed efficiente per svariati studi sperimentali.
Il modello murino di neovascolarizzazione coroideale (CNV) indotta da laser fornisce un sistema riproducibile ed economico per lo studio della degenerazione maculare legata all'età di tipo neovascolare (AMD), consentendo una rapida valutazione di interventi di natura genetica e farmacologica. La sua utilità risiede nella modellizzazione di vie angiogeniche rilevanti per la validazione di bersagli e la riduzione del rischio preclinico nella scoperta di farmaci in oftalmologia. Il modello supporta studi meccanicistici e lo screening terapeutico, offrendo una continuità traslazionale dalla fase di scoperta all'ottimizzazione dei composti promettenti.
Il modello si inserisce nel percorso di scoperta che va dall'identificazione del bersaglio all'ottimizzazione del composto leader, fornendo letture fenotipiche che informano le decisioni relative all'avanzamento preclinico.