Name: Mappatura Genome-wide di Drug-DNA interazioni nelle celle con COSMIC (reticolazione di piccole molecole per isolare cromatina) (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-01-20T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 5 s
Description: Scopri il metodo COSMIC per mappare le interazioni genome-wide tra farmaci e DNA nelle cellule. Questa tecnica misura direttamente i legami ligando-DNA per guidare la progettazione di nuovi agenti terapeutici.

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Ringraziamo i membri del laboratorio Ansari e il Prof. Parameswaran Ramanathan per le utili discussioni. Questo lavoro è stato supportato da sovvenzioni NIH CA133508 e HL099773, dalla borsa di studio della facoltà H. I. Romnes e dal W. M. Keck Medical Research Award ad A.Z.A. G.S.E. è stato supportato da una borsa di studio Peterson del Dipartimento di Biochimica e Molecular Biosciences Training Grant NIH T32 GM07215. A.E. è stato supportato dalla Morgridge Graduate Fellowship e dalla Stem Cell and Regenerative Medicine Center Fellowship, e D.B. è stato supportato dalla sovvenzione NSEC della NSF.

1. La reticolazione in cellule vive <ol><li> Inizia con ~ 2.5x10 7 celle H1, o altre cellule in coltura. NOTA: Il numero di celle H1 corrisponde a cinque piatti da 10 cm (circa il 40% di confluenza). </li><li> Crescere cellule in E8 media su piatti ricoperti su una superficie in grado di supportare le cellule staminali pluripotenti (vedi Materiali List), e incubare a 37 ° C in atmosfera umidificata al 5% di CO 2. Celle di raccolta enzimatica (vedi Materiali List). Nota: Non lasciare le celle H1 di superare il 90% di confluenza; confluenza induce la differenziazione spontanea delle cellule H1. Per contare le cellule, crescere un 10 cm piatto extra di cellule, sollevare le cellule enzimaticamente come descritti nelle sezioni 1.8-1.10, e le considero con un emocitometro. <ol><li> Preparare E8 coltura come descritto in Chen et al. 54 </li></ol></li><li> Prima di aggiungere poliammide, rimuovere il mezzo di coltura trascorso con una pipetta Pasteur collegato a una trappola di vuoto. Aggiungere mezzi freschi con comepipetta erological e distributore pipetta (8 ml per 10 cm piatto). NOTA: Aggiungere il supporto al lato del piatto per evitare di perturbare le cellule. Da questo punto in poi proteggere le cellule dalla luce per evitare premature foto-reticolazione. </li><li> Aggiungere poliammide con una pipetta (8 ml di 400 mM in DMSO, poliammide 400 nM concentrazione finale) direttamente al mezzo di coltura di ogni piatto. Agitare il piatto per disperdere la poliammide in modo uniforme nei media. NOTA: La concentrazione può essere variata, ma assicura che nessuna tossicità cellulare si osserva per il trattamento selezionato. </li><li> Incubare le cellule 24 ore 37 ° C in atmosfera umidificata al 5% di CO 2, e garantire che siano protetti dalla luce. NOTA: Il tempo di incubazione può essere variata per misurare il legame attraverso il tempo in poliammide. </li><li> Lavare ogni piatto 10 cm con 4 ml di PBS (1.05 mM fosfato monobasico di potassio, 155,17 mM cloruro di sodio, 2.97 mM sodio fosfato bibasico) utilizzando una pipetta e pipette sierologiche dispenser. Aspirare PBS e aggiungere 3 ml di E8 coltura. </li><li> Con le luci abbassate, rimuovere il coperchio 5 piastre di coltura e posizionare le celle su una superficie piana esterna della cappa. Mettere un filtro di vetro sopra i 5 piatti della cultura per filtrare la luce con λ &lt;300 nm. Posizionare la sorgente UV in cima filtro. Campioni Crosslink 30 min con 365 irradiazione UV nm (2,4 mW / cm 2). NOTA: tempo di reticolazione deve essere determinato empiricamente. </li><li> Trasferimento piatti della cultura torna alla cappa. Aspirare i media con una pipetta Pasteur collegato a una trappola a vuoto. Lavare ogni piatto 10 cm con 4 ml di PBS. Aspirare il PBS. Aggiungere 3 ml di enzima per la dissociazione delle cellule (vedi Materiali List) per 10 cm piatto dissociare le cellule. Incubare 5 minuti a 37 ° C. NOTA: Non pre-riscaldare l&#39;enzima. </li><li> Placare l&#39;enzima con 3 ml E8 supporti per ogni piatto. Trasferimento dissociato cellule in un tubo da 15 ml. NOTA: Cellule posto su ghiaccio da questo punto in avanti. </li><li> Centrifuge dissociato cellule 5 min, 500 xg a 4 ° C. Aspirare il surnatante per rimuovere enzima e dei media. NOTA: il punto di pausa. Le cellule possono essere congelati rapidamente in azoto liquido, conservati a -80 ° C per la successiva elaborazione in un secondo momento. </li></ol> 2. Isolamento di cromatina <ol><li> Aggiungere 1,2 ml di tampone COSMIC (20 mM Tris-HCl [pH 8,1], 2 mM EDTA, NaCl 150 mm, 1% Triton-X100, 0,1% SDS) e pipetta su e giù più volte per risospendere il pellet cellulare per ogni campione 1,2 ml di tampone COSMIC. <ol><li> Aggiungere 133 microlitri ciascuno di 100 mM phenylmethylsulfonyl fluoruro (PMSF), benzamidine 100 mM e 150 mM, pepstatina inibitori della proteasi freschi ad una concentrazione finale di 1 mM PMSF e per benzamidine e 1,5 mM per pepstatina. Soluzione scissione di lisato cellulare in due ambra 1,7 ml microprovette. </li></ol></li><li> Sonicare con sonicatore 35 min (10 sec a 10 sec spento, il potere il 60%) per frammentare il genoma di 100 tra unND 500 bp. <ol><li> Mantenere il livello della soluzione cromatina nella provetta parallelo al livello dell&#39;acqua nel serbatoio. Confermare questo livello mediante ispezione visiva. NOTA:. Verificare che il DNA è stato tranciato con un gel di agarosio 1,5% 55 </li><li> Ottimizzare il tempo di sonicazione empiricamente. Utilizzare una quantità minima di ghiaccio nel serbatoio per refrigerare i campioni, e garantire il ghiaccio non interferisca tra i campioni e il corno tazza. </li></ol></li><li> Centrifugare il campione di 12.000 xg 10 min. Salvare la soluzione acquosa che contiene cromatina solubile trasferendola in una nuova provetta per microcentrifuga ambra con una pipetta. Eliminare il pellet. </li><li> Trasferire 110 microlitri (10%) di campione in una nuova provetta ed etichettarlo DNA di ingresso. Conservare a -80 ° C. Salvare il resto del campione cromatina in ghiaccio per uso nel passo 3.3. </li></ol> 3. Acquisizione di ligando-DNA legami crociati <ol><li> Utilizzare una pipetta per erogare 60 microlitri streptavidin-rivestito sfere magnetiche in una provetta. Aggiungere 1 ml di tampone COSMIC e mescolare in una nutator 5 minuti a temperatura ambiente. Inserite sfere magnetiche sulla separazione magnetica cremagliera 2 minuti per catturare perline. Rimuovere tampone COSMIC con una pipetta. NOTA: Non lasciare che le perline si asciughino. Procedere immediatamente alla fase successiva. </li><li> Aggiungi campione cromatina (~ 1 ml) di perline (60 mL) e risospendere le sfere. Incubare cromatina con streptavidina rivestite sfere magnetiche almeno 4 ore su una rotazione, mixer a dondolo a 4 ° C. Incubare i campioni O / N se lo si desidera. </li></ol> 4. Isolamento del DNA purificato per affinità <ol><li> Lavare perline con 7 min intervallo con RT con le seguenti tamponi di lavaggio per rimuovere le interazioni non specifiche. Utilizzare un rack di separazione magnetica per catturare perline dopo ogni lavaggio. Risospendere le sfere dopo ogni cambio di tampone di lavaggio. </li><li> Preparare tamponi di lavaggio in acqua deionizzata distillata e filtro (0,2 micron) prima dell&#39;uso. Tamponi di lavaggio Conservare 1 e 2 a 4 ° C per several mesi. Preparare tampone di lavaggio 3 fresco ogni giorno. Aggiungere e rimuovere tamponi di lavaggio dal campione con una pipetta. Per 2 e 4, aggiungere 1 e 3 (5 mM), rispettivamente, nei lavaggi. I campioni possono inoltre essere lavate due volte con tampone COSMIC (una volta 12 ore, una volta 4 ore) prima dei lavaggi elencati di seguito. <ol><li> Lavare una volta con tampone di lavaggio 1 (10 mM Tris-Cl [pH 8.0], 1 mM EDTA, 3% SDS). Risciacquare una volta con tampone di lavaggio 2 (10 mM Tris-Cl [pH 8,0], 250 mM LiCl, 1 mM EDTA, 0,5% NP40, 1% sodio desossicolato). Lavare due volte con tampone di lavaggio 3 (4 M urea, 10 mM Tris-Cl [pH 7,5], 1 mM EDTA, 0,1% NP-40). Lavare due volte con Tris EDTA (TE) di buffer (10 mM Tris-Cl [pH 8,0], 1 mM EDTA). </li></ol></li><li> Risospendere le sfere in 200 microlitri di buffer TE con una pipetta. Questo campione di DNA catturato è indicato come purificato per affinità (AP) DNA. </li><li> Supplemento Input e AP DNA con 10x Crosslink Reversal Buffer (100 mM Tris-Cl [pH 8.0], 1 M KOH, 4 mMEDTA) per 1x concentrazione finale. 56,57 Incubare 30 minuti a 90 ° C. NOTA: 254 nm irradiazione UV può anche essere utilizzato per invertire la reticolazione psoralen, 58 ma dimeri di pirimidina ciclobutile possono essere formati da irradiazione a questa lunghezza d&#39;onda e interferire con l&#39;elaborazione a valle del DNA. </li><li> Per il DNA AP, mettere la provetta contenente il campione sulla separazione magnetica cremagliera 2 minuti a temperatura ambiente e liquido di (DNA) con una pipetta. Trasferire il DNA AP (che è stato rilasciato dalle perline) in una nuova provetta per microcentrifuga ambra. NOTA: Il DNA AP desiderato è nel liquido, non è più attaccato ai talloni. </li><li> Neutralizzare ingresso e il DNA di AP con HCl concentrato a pH 7 con l&#39;aggiunta di circa 1 ml 6 N HCl per 100 microlitri del campione con una pipetta. Confermare i campioni vengono neutralizzati con l&#39;aggiunta di ~ 0,5 microlitri su carta pH con una pipetta. ATTENZIONE: concentrato HCl è un forte acido corrosivo. Maneggiare secondo il vostro istituto217; s linee guida per l&#39;equipaggiamento di protezione personale appropriato. </li><li> Aggiungere RNasi A (100 mg / ml) e 0,2 mg / mL concentrazione finale sia all&#39;ingresso e DNA AP. Incubare 1 ora a 37 ° C. Aggiungere proteinasi K (20 mg / ml) e 0,2 mg / mL concentrazione finale sia all&#39;ingresso e DNA AP, aggiungere. Incubare 1 ora a 55 ° C. </li><li> Purificare il DNA con un kit di colonna DNA cancellazione (vedi Lista dei materiali). 55 Elute DNA in 58 microlitri DNA-grade H 2 O. Conservare i campioni di ingresso e di AP a -20 o -80 ° C </li><li> Analizzare il DNA AP mediante la reazione a catena della polimerasi quantitativa (qPCR) con primer specifici per locus, e / o di sequenziamento di prossima generazione. Per qPCR, utilizzare 2 microlitri DNA AP per locus con i seguenti parametri: 1 ciclo di 95 ° C 10 min e 40 cicli di 95 ° C 20 sec, 54 ° C o 56 ° C 20 sec, 72 ° C 40 sec. NOTA: La temperatura di ricottura dovrebbe essere modificata in funzione della temperatura di fusione delle coppie di primer utilizzati. Selezionare una tempera di ricotturare che riduce al minimo il ciclo di quantizzazione con nessuna amplificazione non specifica. NOTA: Per l&#39;analisi da sequenziamento di prossima generazione, obiettivo per almeno 10 milioni mappato legge. Il numero di letture mappato può essere aumentata aumentando la quantità di DNA AP e combinando il numero di campioni in una corsa per il sequenziamento. Ulteriori letture migliorare la sensibilità. Pacchetti standard per l&#39;analisi ChIP-seq (ad esempio, Omero, 59 MACS, 60 e 61), SPP lavorano con dati COSMIC-ss. Come nel caso di altri metodi che si basano su sequenziamento di prossima generazione, tra cui il sequenziamento del genoma e Chip-Seq, regioni ripetitivi creano ambiguità in allineamento e il montaggio, e quindi rimangono una sfida tecnica. </li></ol>

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Una delle sfide principali con la ChIP convenzionale è l'identificazione di anticorpi adatti. La ChIP dipende fortemente dalla qualità dell'anticorpo e la maggior parte degli anticorpi commerciali non sono accettabili per la ChIP. Infatti, il consorzio ENCODE (Encyclopedia of DNA Elements) ha riscontrato che solo il 20% degli anticorpi commerciali è adatto per i saggi ChIP. 50 Con COSMIC, gli anticorpi sono sostituiti dalla streptavidina. Poiché le poliammidi sono funzionalizzate con biotina, la streptavidina ...

Le informazioni da rendere ogni cellula del corpo umano è codificato nel DNA. L&#39;uso selettivo di tali informazioni governa il destino di una cellula. I fattori di trascrizione (TFS) sono proteine ​​che si legano a specifiche sequenze di DNA di esprimere un particolare sottoinsieme dei geni nel genoma, e il malfunzionamento del TF è legata alla comparsa di una vasta gamma di malattie, tra cui difetti di sviluppo, il cancro e il diabete . 1,2 Siamo stati interessati a sviluppare molecole in grado di legare selettivamente al genoma e modulare reti di regolazione genica. Poliammidi composto da N e N -methylimidazole -methylpyrrole sono molecole in grado di indirizzare il DNA con specificità e affinità che rivali fattori di trascrizione naturali. 3-6 Queste molecole si legano a sequenze specifiche nella solco minore del DNA razionalmente progettati. 4,5,7 -11 Poliammidi sono stati impiegati sia repress e attivare l&#39;espressione di specifici gEnes. 4,12-19 Essi hanno anche interessanti antivirali e antitumorali 20-24 12,13,25-30 proprietà. Una caratteristica interessante di poliammidi è la loro capacità di accedere a sequenze di DNA che sono metilati 31,32 e avvolti intorno proteine ​​istoniche 9,10,33. Per misurare le specificità completi vincolanti di molecole che legano il DNA, il nostro laboratorio ha creato il metodo di identificatore del sito affine (CSI). 34-39 La presenza prevista di siti di legame sulla base di specificità in vitro (genomescapes) possono essere visualizzati sul genoma, perché la in vitro intensità vincolanti sono direttamente proporzionali alla costanti di associazione (K a). 34,35,37 Queste genomescapes permettono di percepire occupazione poliammide in tutto il genoma, ma misurare poliammide legame in cellule vive è stata una sfida. DNA è strettamente impaccato nel nucleo, che potrebbe influenzare l&#39;accessibilità dei siti di legame. L&#39;accessibility di queste sequenze di DNA chromatinized a poliammidi rimane un mistero. Recentemente, molti metodi per studiare le interazioni tra piccole molecole e acidi nucleici sono emersi. 40-48 La cattura affinità chimica e sequenziamento del DNA massicciamente paralleli (chem-SEQ) è una tale tecnica. Chem-ss utilizza formaldeide per reticolare piccole molecole ad un target genomica di interesse e di un derivato biotinilato di una piccola molecola di interesse per catturare l&#39;interazione ligando-bersaglio. 48,49 Formaldeide reticolazione porta a interazioni indirette che possono produrre dei falsi positivi. 50 Abbiamo sviluppato un nuovo metodo, la reticolazione di piccole molecole per isolare cromatina (COSMIC), 51 con un photocrosslinker per eliminare questi cosiddetti picchi &quot;fantasma&quot;. 50 Per iniziare, abbiamo progettato e sintetizzato derivati ​​trifunzionali di poliammidi. Queste molecole contenevano una pol-legame al DNAyamide, un photocrosslinker (psoralen), e una maniglia di affinità (biotina, Figura 1). Con poliammidi trifunzionali, possiamo covalente di catturare le interazioni in poliammide-DNA con irradiazione UV 365 nm, una lunghezza d&#39;onda che non danneggia il DNA o indurre non psoraleni a base di reticolazione. 51 Successivamente, frammentare il genoma e purificare il DNA catturato sotto severe, semi condizioni -denaturing per diminuire DNA che non è legato covalentemente. Quindi noi consideriamo COSMIC come metodo correlate a chem-seq, ma con una lettura più diretta di DNA targeting. È importante sottolineare che i deboli (K 10 3 -10 4 M -1) affinità di psoraleni per il DNA non rilevabile poliammide impatto specificità. 51,52 I frammenti di DNA arricchito possono essere analizzati da una delle polimerasi quantitativa reazione a catena 51 (COSMIC-qPCR) o per sequenziamento di prossima generazione 53 (COSMIC-ss). Questi dati consentono un design imparziale genoma-guidata di ligandi che l&#39;Interagire con loro loci genomici desiderato e minimizzare gli effetti fuori bersaglio. <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/53510/53510fig1.jpg"/> Figura 1. poliammidi bioattivi e schema cosmico. (A) Hairpin poliammidi 1-2 bersaglio la sequenza del DNA 5&#39;-WACGTW-3 &#39;. Poliammidi lineari 3-4 bersaglio 5&#39;-AAGAAGAAG-3 &#39;. Anelli di N-metilimidazolo sono in grassetto per chiarezza. Cerchi aperti e pieni rappresentano N -methylpyrrole e N -methylimidazole rispettivamente. Square rappresenta 3 clorotiofene, e diamanti rappresentano β-alanina. Psoraleni e biotina sono indicati con P e B, rispettivamente. (B) schema cosmico. Le cellule vengono trattate con derivati ​​trifunzionali di poliammidi. Dopo la reticolazione con irradiazione UV 365 nm, le cellule sono lDNA genomico ysed e viene tagliata. Sfere magnetiche rivestite di streptavidina vengono aggiunti per catturare addotti poliammide-DNA. Il DNA viene rilasciato e può essere analizzato mediante PCR quantitativa (qPCR) o sequenziamento di prossima generazione (NGS). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53510/53510fig1highres.jpg" target="_blank">Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a>

<table><tbody><tr><td>Fenilmetilsulfonilfluoruro (PMSF)</td> <td>qualsiasi fonte</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Benzamidina</td><td>qualsiasi fonte</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pepstatina</td><td>qualsiasi fonte</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Proteinasi K</td><td>qualsiasi fonte</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Dynabeads MyOne Streptavidina C1</td><td>Life Technologies</td><td>65001</td><td></td></tr><tr><td>PBS, pH 7.4</td><td>Life Technologies</td><td>10010-023</td><td>È possibile utilizzare altre fonti</td></tr>: <tr><td>StemPro Accutase, reagente per dissociazione cellulare</td>, <td>Life Technologies</td>, <td>A1110501</td><td></td></tr><tr><td>Kit di purificazione QIAquick PCR</td>, <td>Qiagen</td><td>28104</td><td>Abbiamo provato con successo altri produttori di colonne per DNA.</td></tr><tr><td>Kit di preparazione dei campioni TruSeq ChIP</td><td>Illumina</td><td>IP-202-1012</td><td>Questo kit può essere utilizzato per preparare il DNA cosmico per il sequenziamento di nuova generazione</td></tr><tr><td>Matrigel Basement Membrane Matrix</td><td>BD Biosciences</td><td>356231</td><td>Utilizzato per rivestire le piastre per la crescita di H1 ESC pH</td></tr><tr><td>carta</td><td>qualsiasi fonte</td><td></td><td></td></tr> di <tr><td>provette per microcentrifuga ambrata</td><td>qualsiasi fonte</td><td></td><td></td></tr> di <tr><td>provette per microcentrifuga</td><td>qualsiasi fonte</td><td></td><td></td></tr><tr><td>filtro in pyrex</td><td>qualsiasi fonte</td><td></td><td>Le piastre da forno in Pyrex sono adatte</td></tr><tr><td>qPCR master mix</td><td>qualsiasi fonte</td><td></td><td></td></tr><tr><td>RNasi</td><td>qualsiasi fonte</td><td></td><td></td></tr><tr><td>HCl (6 N)</td><td>qualsiasi fonte</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Piastre per coltura tissutale da 10 cm</td><td>qualsiasi fonte</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pipette sierologiche</td><td>qualsiasi fonte</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pipette Pasteur</td><td>qualsiasi fonte</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Puntali per pipette</td><td>qualsiasi sorgente</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Provette coniche da 15 ml</td><td>qualsiasi fonte</td> centrifuga qualsiasi fonte <td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>microcentrifuga</td><td>qualsiasi fonte</td> nutator qualsiasi fonte <td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Magnetico rack di separazione</td><td>qualsiasi sorgente</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sorgente UV</td><td>CalSun</td><td>B001BH0A1A</td><td>È possibile utilizzare altre sorgenti UV, ma il tempo di reticolazione deve essere ottimizzato empiricamente</td></tr><tr><td>Sonicatore Misonix</td><td>Qsonica</td><td>S4000 con corno a tazza 431C1</td> È <td>possibile utilizzare altri sonicatori, ma le condizioni di sonicazione devono essere ottimizzate empiricamente</td></tr><tr><td>Incubatore CO2 umidificato</td><td>qualsiasi fonte</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cabina di sicurezza biologica con uscita a vuoto</td><td>qualsiasi fonte</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

mappatura genome-wide di drug-dna interazioni nelle celle con cosmic (reticolazione di piccole molecole per isolare cromatina)

Genome-wide Mapping of Drug-DNA Interactions in Cells with COSMIC (Crosslinking of Small Molecules to Isolate Chromatin)

Il genoma è il bersaglio di alcuni dei chemioterapici più efficaci, ma la maggior parte di questi farmaci mancano DNA specificità di sequenza, che porta a dose-limitante tossicità e molti effetti collaterali negativi. Targeting il genoma con piccole molecole sequenza-specifiche può consentire molecole con maggiore indice terapeutico e minori effetti fuori bersaglio. N -methylpyrrole / N poliammidi -methylimidazole sono molecole che possono essere razionalmente progettati per indirizzare specifiche sequenze di DNA con squisita precisione. E a differenza di molti fattori di trascrizione naturali, poliammidi possono legarsi al DNA metilato e chromatinized senza perdita di affinità. La specificità sequenza di poliammidi è stata ampiamente studiata in vitro con l&#39;identificazione del sito cognate (CSI) e con approcci tradizionali biochimici e biofisici, ma lo studio di poliammide vincolanti agli obiettivi genomici nelle celle rimane inafferrabile. Qui riportiamo un metodo, la reticolazione di piccole molecole per Isolate cromatina (COSMIC), che identifica i siti di legame di poliammide in tutto il genoma. COSMIC è simile a immunoprecipitazione della cromatina (ChIP), ma differisce in due modi importanti: (1) un photocrosslinker viene impiegato per consentire selettiva, cattura temporalmente controllata di poliammide eventi di legame, e (2) la maniglia affinità biotina è usato per purificare poliammide coniugati -DNA in condizioni di semi-denaturazione per diminuire DNA che non è legato covalentemente. COSMIC è una strategia generale che può essere utilizzato per rivelare gli eventi di legame genoma di poliammidi e di altri agenti chemioterapici genome-targeting.

Per tenere conto di non uniforme genoma frammentazione e altre variabili, il DNA purificato deve sempre essere normalizzato contro un riferimento di DNA Input. Primer specifici di un luogo di interesse possono essere utilizzati. È utile analizzare anche un locus qualora non si preveda la molecola di legare, come controllo negativo. Vediamo un aumento&gt; 100 volte in occupazione poliammide upon irraggiamento con luce di 365 nm (Figura 2). Arricchito DNA può essere analizzato...

Identificare gli obiettivi diretti di molecole-genoma di mira resta una sfida importante. Per capire come le molecole che legano il DNA impegnano il genoma, abbiamo sviluppato un metodo che si basa sulla reticolazione di piccole molecole per isolare cromatina (COSMIC).

Mappatura Genome-wide di Drug-DNA interazioni nelle celle con COSMIC (reticolazione di piccole molecole per isolare cromatina)

The genome is the target of some of the most effective chemotherapeutics, but most of these drugs lack DNA sequence specificity, which leads to ...

L'obiettivo generale di questa procedura è determinare i profili di legame su tutto il genoma di poliammidi e altre piccole molecole che bersagliano il DNA all'interno delle cellule. Questo metodo può contribuire a far progredire il campo della chimica farmaco-DNA utilizzando il genoma per guidare la progettazione di molecole bersaglio del DNA. Il vantaggio principale di questa tecnica è che vengono misurate direttamente le interazioni tra ligandi e DNA, fornendo informazioni sul meccanismo d'azione dei ligandi che agiscono sul genoma.Alcuni dei farmaci terapeutici più efficaci sono molecole di piccole dimensioni che si legano al DNA e interferiscono con le attività genomiche. Sebbene questo metodo sia stato sviluppato per lo studio dei poliammidi, può essere applicato anche ad altre classi di molecole bersaglio del DNA. Le cellule utilizzate per questo esperimento vengono coltivate in mezzo E8 su piastre da 10 cm, con un rivestimento superficiale che supporta le cellule staminali pluripotenti, a 37 gradi Celsius in un'atmosfera umidificata al 5% di anidride carbonica.Prima di aggiungere il poliammide, rimuovere il mezzo di coltura usato e aggiungere 8 ml di mezzo fresco per ogni piastra da 10 cm. Da questo momento in poi, proteggere le cellule dalla luce per evitare un precoce incrocio foto-indotto. Utilizzando una pipetta, aggiungere il poliammide direttamente nel mezzo di coltura di ogni piastra.Ruotare la piastra per distribuire uniformemente il poliammide nel mezzo. Incubare le cellule a 37 gradi Celsius in un'atmosfera umidificata al 5% di anidride carbonica per 24 ore, proteggendole dalla luce. Il giorno successivo, lavare ogni piastra da 10 cm con 4 ml di PBS utilizzando una pipetta serologica e un distributore di pipetta.Aspirare il PBS e aggiungere 3 ml di terreno di coltura E8. A luci soffuse, posizionare le cellule su una superficie piana all'esterno della cappa e rimuovere i coperchi delle cinque piastre di coltura. Posizionare un filtro di vetro sulle cinque piastre di coltura per filtrare la luce con lunghezza d'onda inferiore a 300 nanometri.Posizionare la sorgente UV sopra il filtro. Incrociare i campioni per 30 minuti con radiazione UVA a 365 nanometri. Dopo la radiazione UVA, trasferire le piastre di coltura nuovamente nell'incubatore.Aspirare il mezzo con una pipetta di Pasteur collegata a un trappola a vuoto e lavare ogni piastra da 10 cm con 4 ml di PBS. Aspirare il PBS e aggiungere 3 ml di enzima per la dissociazione cellulare per ogni piastra da 10 cm. Incubare per cinque minuti a temperatura ambiente.Neutralizzare l'enzima con 3 ml di mezzo E8 per piastra. Trasferire le cellule dissociate in un tubo conico da 15 ml. Da questo momento, mantenere le cellule sul ghiaccio.Centrifugare le cellule dissociate a 500 x g e 4 gradi Celsius per cinque minuti. Aspirare il soprannatante per rimuovere l'enzima e il mezzo. Per iniziare la procedura di isolamento della cromatina, preparare il buffer cosmico con inibitori di proteasi freschi.Aggiungere 12,1 microlitri ciascuno di inibitori della proteasi PMSF 100 millimolari, benzamidina 100 millimolari e pepstatina 150 micromolari, appena preparati, al tampone basale cosmic. Aggiungere 1,2 ml del tampone cosmic al pellet cellulare e pipettare su e giù diverse volte per ri-sospenderlo. Successivamente, dividere la soluzione cellulare in due tubi microcentrifuga ambrati da 1,7 ml.Sonicare con un sonicatore per frammentare il genoma in dimensioni comprese tra 100 e 500 paia di basi. Mantenere il livello della soluzione di cromatina nel tubo da microcentrifuga parallelo al livello dell'acqua nel serbatoio. Verificare questo livello mediante ispezione visiva.Il tempo di sonificazione è stato ottimizzato empiricamente: sonificare al 60% della potenza, con cicli di 10 secondi accesi e 10 secondi spenti, per 35 minuti. Utilizzare una quantità minima di ghiaccio nel serbatoio per raffreddare i campioni, assicurandosi che il ghiaccio non interferisca tra i campioni e il corno a coppa. Al termine della sonificazione, centrifugare il campione a 12 000 g per 10 minuti.Conservare la soluzione acquosa contenente la cromatina solubile trasferendola in un nuovo tubo microcentrifuga ambrato. Scartare il pellet. Trasferire 110 microlitri o il 10% del campione in un nuovo tubo microcentrifuga.Etichettarlo come DNA in ingresso e conservarlo a -80 gradi Celsius. Conservare il resto del campione di cromatina sul ghiaccio per l'uso nei passaggi successivi di questo protocollo. Per catturare i legami crociati ligando-DNA, aggiungere il resto del campione di cromatina alle perle magnetiche rivestite di streptavidina e risospendere la miscela.Incubare la cromatina con le perle per almeno quattro ore su un agitatore rotante a 4 gradi Celsius. Il buffer di lavaggio richiesto deve essere preparato in acqua distillata deionizzata e filtrato con un filtro da 0,2 micrometri prima dell'uso. I buffer 1 e 2 possono essere conservati a 4 gradi Celsius per diversi mesi, ma il buffer 3 deve essere preparato fresco ogni giorno.Al termine dell'incubazione della cromatina con le microsfere magnetiche rivestite di streptavidina, lavare il campione per sette minuti con il buffer di lavaggio 1. Posizionare il campione su un supporto per separazione magnetica per trattenere le microsfere ed eliminare il buffer di lavaggio 1. Aggiungere il buffer di lavaggio 2 e lavare per altri 7 minuti.Quindi lavare due volte con il tampone di lavaggio 3 per sette minuti per ogni lavaggio. Infine, lavare due volte con il Tampone TE. Dopo l'ultimo lavaggio con il Tampone TE, risospendere le perle in 200 microlitri di Tampone TE.Questo campione di DNA catturato è definito DNA purificato per affinità o DNA AP. Successivamente, aggiungere ai campioni di DNA in ingresso e di DNA AP tampone di inversione della cross-linking 10x fino a raggiungere una concentrazione finale di 1x. Incubare per 30 minuti a 90 gradi Celsius.Posizionare il tubo da microcentrifuga contenente il DNA AP sul supporto per separazione magnetica per due minuti a temperatura ambiente, quindi trasferire il liquido contenente il DNA AP in un nuovo tubo da microcentrifuga ambrato. Dopo aver neutralizzato il DNA Input e quello AP, aggiungere RNasi A a entrambi i campioni di DNA fino a una concentrazione finale di 0,2 microgrammi per microlitro. Incubare per un'ora a 37 gradi Celsius.Dopo un'ora aggiungere Proteinasi K sia al DNA Input che al DNA AP fino a una concentrazione finale di 0,2 microgrammi per microlitro. Incubare per un'ora a 55 gradi Celsius. Successivamente, il DNA Input e il DNA AP vengono purificati utilizzando un kit di purificazione del DNA con colonnina e eluiti in acqua di grado DNA.Conservare il DNA a 20 o 80 gradi Celsius fino al momento dell'analisi. Il DNA purificato per affinità deve sempre essere normalizzato rispetto a un campione di controllo di DNA in ingresso. Risultati rappresentativi ottenuti mediante PCR quantitativa con primer specifici per locus mostrano un aumento superiore a 100 volte dell'occupazione da parte del poliammide dopo irradiazione con luce a 365 nanometri.Il DNA arricchito può anche essere analizzato mediante sequenziamento di nuova generazione. Una volta effettuato il sequenziamento, le letture grezze del DNA vengono allineate al genoma e vengono preparate tracce di densità. Questo esempio mostra la traccia di densità per il poliammide lineare 4 progettato per bersagliare ripetizioni AAG.Un'analisi delle distribuzioni dei poliammidi nelle cellule ha rivelato che i siti di legame raggruppati, che coprono un'ampia gamma di affinità, sono i migliori predittori dell'occupazione nelle cellule. È stato sviluppato un algoritmo per assegnare un punteggio all'intero genoma in base al legame con dati di identificazione dei siti cognati ottenuti in vitro. Questi grafici a violino mostrano i punteggi predetti per il legame del Poliammide 2 e del Poliammide 4 sull'intero genoma.Vengono mostrati anche paesaggi genomici rappresentativi per il poliammide 4. Questo metodo di valutazione ha rivelato che loci con molteplici sequenze di bassa e media affinità mostrano un'occupazione da parte del poliammide simile a quella dei loci con poche sequenze ad alta affinità. Una volta padroneggiata, questa tecnica può essere completata in due giorni se eseguita correttamente.Durante l'esecuzione di questa procedura, è importante ricordare di proteggere i campioni dalla luce fino alla purificazione del DNA. Al termine di questa procedura, possono essere eseguiti altri metodi, come la RT-PCR e la RNase C, per rispondere ad ulteriori domande, ad esempio l'effetto del legame sull'espressione genica. Dopo aver visto questo video, si dovrebbe avere una buona comprensione di come utilizzare cosmic per mappare i profili di legame su tutto il genoma dei poliammidi.

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L'Hi-C metodo consente l'identificazione imparziali, genoma delle interazioni della cromatina (1). Hi-C coppie legatura di prossimità e di sequenziamento massicciamente parallelo. I dati ottenuti possono essere usati per studiare architettura genomica alle scale multiple: risultati iniziali identificate caratteristiche come territori cromosoma, la segregazione della cromatina aperti e chiusi, e la struttura della cromatina alla scala megabase.

Hi-C: un metodo per studiare l&#39;architettura tridimensionale dei genomi.

La trappola dei cromosomi associati (ACT) saggio è un nuovo metodo imparziale per identificare interazioni a lungo raggio del DNA. La caratterizzazione delle interazioni a lungo raggio del DNA ci permette di determinare la relazione di architettura nucleare per l'espressione genica sia in fisiologia normale e in stati malati.

Cromosoma Trappola associate per identificare interazioni a lungo raggio del DNA

Descriviamo qui un test con l'accoppiamento di identificazione del DNA adenina metiltransferasi (DamID) ad alto rendimento sequenziamento (DamID-ss). Questo metodo fornisce una migliore risoluzione più elevata e una gamma dinamica più ampia, e permette di analizzare i dati DamID-Seq in combinazione con altri dati di sequenziamento ad alto rendimento, come ChIP-seq, RNA-Seq, etc.

DamID-seq: Genome-wide Mappatura delle interazioni proteina-DNA da High Throughput Sequencing di Adenina-metilato frammenti di DNA

Descriviamo la cedola endogena cromatina accoppiata con sequenza ad alto rendimento (ChEC-seq), un metodo ortogonale di immunoprecipitazione cromatina (ChIP) per la mappatura dei siti di legame proteico a livello genomico con proteine ​​di fusione microscopica nuclease (MNase).

Mappatura di interazioni proteine-DNA con ChEC-seq nel gene-wide<em&gt; Saccharomyces cerevisiae</em

Un'analisi di fluorescenza facile è presentata per valutare l'efficienza di amino-acil-tRNA-sintetasi/tRNA coppie conglobando amino acidi non canonico (ncAAs) proteine espresse nelle cellule di mammifero. L'applicazione di ncAAs per studiare i recettori accoppiati a proteine G (GPCR) è descritto, tra cui la mappatura foto-reticolazione di associazione siti e bioorthogonal GPCR etichettatura su cellule vive.

Ottimizzando la costituzione genetica di chimico sonde in GPCR per foto-reticolazione Mapping e chimica di Bioorthogonal in cellule di mammiferi dal vivo

Presentiamo un protocollo per identificare le implicazioni funzionali delle varianti non codificanti identificate dagli studi di associazione a livello di genoma (GWAS) utilizzando interazioni tridimensionali della cromatina.

Mappare le varianti della malattia di Alzheimer ai loro geni bersaglio utilizzando l'analisi computazionale della configurazione della cromatina

La determinazione precisa delle posizioni di legame proteico in tutto il genoma è importante per comprendere la regolazione genica. Qui descriviamo un metodo di mappatura genomica che tratta il DNA immunoprecipitato di cromatina con digestione dell'esonucleasi (ChIP-exo) seguito da sequenziamento ad alta produttività. Questo metodo rileva le interazioni proteina-DNA con una risoluzione di mappatura vicina alla coppia di basi e un elevato rapporto segnale-rumore nei neuroni dei mammiferi.

Mappatura ad alta risoluzione delle interazioni proteina-DNA nei neuroni derivati dalle cellule staminali del topo utilizzando l'immunoprecipitazione-esonucleasi della cromatina (ChIP-Exo)

Hi-C 3.0 è un protocollo Hi-C migliorato che combina crosslinker di formaldeide e disuccinimidil glutarato con un cocktail di enzimi di restrizione DpnII e DdeI per aumentare il rapporto segnale-rumore e la risoluzione del rilevamento dell'interazione cromatina.

Acquisizione della conformazione cromosomica su scale di lunghezza

Viene presentato un protocollo per mappare l'organizzazione tridimensionale del genoma con risoluzione nucleosomica utilizzando il metodo di cattura della conformazione cromosomica a livello di genoma Micro-C-XL.

Mappatura delle interazioni del genoma 3D dei mammiferi con Micro-C-XL

Presentiamo un metodo rapido ed efficiente per rilevare le comuni rotture dei siti fragili attraverso l'immunoprecipitazione nativa della cromatina γH2A.X (ChIP). Questo approccio riduce significativamente sia il tempo che la manodopera associati ai tradizionali saggi ChIP γH2A.X, mantenendo al contempo un'elevata riproducibilità e affidabilità dei risultati.

Cattura delle rotture di siti fragili comuni mediante γH2A nativo. X ChIP

Scopri il metodo COSMIC per mappare le interazioni genome-wide tra farmaci e DNA nelle cellule. Questa tecnica misura direttamente i legami ligando-DNA per guidare la progettazione di nuovi agenti terapeutici.

Mappatura Genome-wide di Drug-DNA interazioni nelle celle con COSMIC (reticolazione di piccole molecole per isolare cromatina)

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