Name: Primaria endodermico cellule epiteliali Cultura dal tuorlo Sac membrana di giapponesi Quail embrioni (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-03-10T13:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 53 s
Description: Impara a isolare e coltivare cellule epiteliali endodermiche primarie dalla membrana del sacco vitellino di embrioni di quaglia giapponese. Questo metodo consente di studiare il trasporto dei lipidi e l'utilizzo dei nutrienti durante lo sviluppo embrionario aviario.

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Il finanziamento per lo sviluppo del protocollo attuale è sostenuta in particolare da &quot;Obiettivo per il Piano Top Università&quot; della National Taiwan University, Taiwan (grant ID-104R350144), così come il Ministero della Scienza e della Tecnologia di Taiwan (grant ID: PIU &#39;104 -2313-B-002-039-MY3). Ringraziamo in modo particolare il Centro di Biotecnologie della National Taiwan University per fornire un ambiente animale e spazio laboratorio per lo studio corrente.

NOTA: Questa procedura è una modifica di un modello di pollo protocollo di cultura sviluppato da Bauer et al 2013 e Nakazawa et al, 2011. 2,9.. 1. Preparare sano embrionale Giorno 5 embrioni da Quail giapponese <ol><li> Mettere 1 maschio e 3 femmine sessualmente maturi quaglia giapponese insieme nella stessa gabbia. Portare l&#39;alimentazione e acqua ad libitum. Regolare la luce nella stanza animale 14 ore di luce e 10 ore di buio. </li><li> Raccogliere le uova fecondate in sacchetti di plastica ogni giorno nel pomeriggio e tenerli in un frigorifero C 16 ° per ritardare il tasso di crescita degli embrioni. </li><li> Dopo aver raccolto un numero sufficiente di uova in un periodo di due settimane, incubare le uova fecondate in un incubatore a 37 ° con una buona ventilazione per cinque giorni. </li></ol> 2. Preparare basale medio e Wash Solutions <ol><li> Utilizzare DMEM / F-12 di media (regolata a pH 7.2) come mezzo di crescita, e integrarlacon il 10% nuovo siero vitello nato (siero bovino neonatale) e l&#39;1% Pen-Strep Ampho. Soluzione (PSA, penicillina, 10 5 unità / l; streptomicina, 100 mg / l; amfotericina B, 0,25 mg / L). </li><li> Preparare la soluzione tampone fosfato (PBS) ad una concentrazione 10 volte per lo stoccaggio; usare una soluzione di PBS 1x (contenente NaCl, 137.93 mm, KCl, 2.667 mm, KH 2 PO 4, 1.471 mm, Na 2 HPO 4 -7h 2 O, 8,06 mm, regolare a pH 7,2) per lavare e inumidire il sacco vitellino membrana mentre che separa il endoderma dal tuorlo d&#39;uovo e l&#39;albumina. </li><li> Utilizzare terreno DMEM (regolata a pH 7,2) per risospendere pellet endoderma. </li></ol> 3. Raccolta di primaria TEE da Quail YSMs giapponesi <ol><li> Incubare le uova raccolte per 5 giorni (passo 1,3). Esaminare le uova da parte di un Candler uovo per confermare il normale sviluppo embrionale. NOTA: Il embrionali giorno 5, il confine del YSM mesoderma è molto chiara e le 3 strati embrionali sono meno strettamente collegati tra loro, per cui è facile da obTain endoderma. Utilizzare solo le uova che mostrano lo sviluppo normale circolazione capillare per le collezioni YSM. </li><li> Pulire il guscio d&#39;uovo accuratamente con acqua fresca e il 75% di etanolo. Aprire il guscio d&#39;uovo dalla posizione di cella d&#39;aria per un paio di forbici, delicatamente sbucciare e raccogliere tutta la YSM da pinze e posto in un piatto della cultura 10 centimetri pieno di 37 ° C 1x PBS. </li><li> Utilizzando un paio di forbici rimuovere l&#39;embrione, tuorlo e albume d&#39;uovo, e delicatamente lavare la YSM con 1x PBS tre volte e posizionare YSM in soluzione PBS in un piatto della cultura 10 cm. </li><li> Utilizzare pinze e un paio di forbici per rimuovere il ectoderma da YSM. Utilizzare 2 pinze, una per tenere saldamente lo strato di cellule endodermico, e l&#39;altro per tenere il mesoderma capillare. </li><li> Sotto un microscopio da dissezione, separare e separare l&#39;endoderma dal bordo del mesoderma nella direzione verso l&#39;embrione. Raccogliere il endoderma giallo chiaro in 50 ml provette da centrifuga con un contagocce e posto in 15 ml di mezzo di coltura in un C wat 37 °er bagno fino a tutte le collezioni di tessuti sono stati completati. </li></ol> 4. La digestione del Endoderma fette da digestione collagenasi <ol><li> Appena sciogliere 6,5 unità di tipo IV collagenasi in 10 ml di DMEM. </li><li> Centrifugare le provette da 50 ml (3.4) a 130 xg per 3 min a RT. Aspirare il terreno e mettere tutto il endoderma in un piatto di cultura 6 centimetri con una pipetta. Aggiungere la soluzione collagenasi 1 ml di questo piatto della cultura. </li><li> Tagliare il endoderma raccolto da 2 embrioni quaglia con un paio di forbici curve finché le dimensioni di ogni fetta è di circa 2 a 3 mm. Utilizzare un contagocce, raccogliere tutte le fette in un tubo da 50 ml centrifuga insieme a 9 ml di soluzione di collagenasi fresca. </li><li> Digerire il tessuto con collagenasi per 30 min a 37 ° C agitando bagnomaria a 175 rpm. Questo parziale digestione con collagenasi viene utilizzato per migliorare la proliferazione cellulare espianto. </li><li> Centrifugare a 130 xg per 3 minuti a temperatura ambiente e rimuovere delicatamente la frazione surnatante con una pipetta. Lavare il pellet mediante sospensione in 20 ml di DMEM e rimuovere il surnatante dopo 130 xg centrifugazione per 3 min. </li><li> Risospendere il pellet con 12 ml di terreno di coltura (DMEM / F12 con il 10% e l&#39;1% NBCS PSA) e seminare con delicatezza e altrettanto in un 24-pozzetti (ogni soluzione cella bene con 500 microlitri). </li><li> Incubare espianti di tessuto a 37 ° C in 5% CO 2 in aria per 2 giorni per consentire cellule a proliferare dai tessuti. </li><li> Incubare le cellule per altri 2 giorni e si caratterizza per la vitalità cellulare da un protocollo di test di vitalità cellulare. 15 NOTA: Living cellule mantengono un ambiente riducente all&#39;interno del citoplasma. Resazurina, l&#39;ingrediente attivo, è non tossico, cellule composto permeabile che è di colore blu e praticamente non fluorescente. Una volta aggiunto al colture cellulari, resazurina si riduce a resorufina nel citosol dagli enzimi mitocondriali. Resorufina è di colore rosso e altamente fluorescente. cellule vitali continuamente convertire resazurina a resorufina, increAsing la fluorescenza complessiva e il colore del mezzo di coltura delle cellule circostanti. </li><li> Eseguire endoderma cellule epiteliali isolamento RNA totale, trascrizione e quantitativa real-time PCR dell&#39;espressione dell&#39;mRNA gene marcatore invertire come descritto. 16,17 <ol><li> Utilizzare PCR trascrittasi inversa per rilevare SOAT1 mRNA (senso: 5&#39;-GAAGGGGCCTATCTGGAACG-3 &#39;; antisenso: 5&#39;-ATCTGCACGTGACATGACCA-3&#39;; PCR prodotto = 168 bp) come marcatore specifico per le cellule CEE. Utilizzare β-actina mRNA (senso: 5&#39;- TGGTGAAGCTGTAGCCTCTC-3 &#39;; antisenso: 5&#39;-GTGATGGACTCTGGTGATGG-3&#39;; prodotto di PCR = 151 bp) come gene housekeeping e di controllo interno. </li><li> Utilizzare elettroforesi su gel per rilevare la dimensione del prodotto di RT-qPCR. Preparare 1% gel, e mescolare 10 ml di prodotto qPCR con la tintura di carico 2 ml. Carico 10 microlitri miscela in ciascun pozzetto nel gel di agarosio 1%, ed eseguire il gel mediante 100V per 30 min. </li></ol></li></ol>

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</ol>

Non vi sono interessi finanziari concorrenti o altri conflitti di interesse. Non abbiamo ricevuto alcun finanziamento da nessuna società privata.

Poiché il sistema di coltura precedente ha solo un successo limitato, è necessario un sistema di coltura migliore. L&#39;endoderma quaglie YSM giapponese richiede un trattamento con enzimi proteolitici, come collagenasi per allentare le giunzioni cellula-cellula per ottenere una migliore performance di crescita negli espianti ex-vivo. I nostri dati mostrano che il numero di cellule derivanti dal trattamento di digestione parziale sono stati superiori dalla coltura tissutale non digerito dopo la semina per 2 giorni <stro...

La principale risorsa alimentare dell&#39;embrione aviaria è tuorlo, composto da 33% di lipidi, proteine ​​17% e 1% di ceneri. 1 Durante lo sviluppo embrionale, la membrana sacco vitellino (YSM) cresce all&#39;interno della cavità addominale embrionale e copre gradualmente il tuorlo superficie. Con inizio alle embrionali giorno 2, l&#39;espressione del gene associato con il metabolismo dei lipidi e l&#39;angiogenesi è gradualmente aumentata in YSM, e il YSM sviluppa lentamente proiezioni villi-like. 8,9 Queste proiezioni aumentano l&#39;assorbimento delle sostanze nutritive tuorlo per sostenere lo sviluppo embrionale. Il YSM è un tessuto extraembryonic che contiene tre strati germinali, endoderma, mesoderma ed ectoderma. 14 Il ectoderma sacco vitellino si trova di fronte l&#39;albume e collegamenti con la membrana vitellina per coprire delicatamente il sacco vitellino. Le cellule epiteliali endodermico si trovano ad affrontare direttamente verso il tuorlo d&#39;uovo e servono come portali di utilizzo di nutrienti. 6 Come si espande il YSM, endodermico cellule epiteliali (TEE) può essere diviso per ShapE e funzionalità in due gruppi, zona vitellina e zona vasculosa. 7 Area vitellina è composto da cellule endodermico ed è distante dalla dell&#39;embrione; zona vasculosa è composto da cellule mesodermiche e copre TEE differenziati con i vasi sanguigni e dei tessuti connettivi. Di embrionali giorno 5, il tuorlo è totalmente coperto da ectoderma e endoderma di YSM e l&#39;area vascolare è cresciuto rapidamente. Il YSM assorbe, ricompone e rilascia i lipidi (come il tuorlo di derivazione molto lipoproteine ​​a bassa densità) e le proteine ​​nel sistema circolatorio embrionale. 9, 2 Pertanto, abbiamo stabilito un embrionale sistema di coltura cellulare primaria giapponese quaglie endodermico epiteliale, per studiare i meccanismi di lipidi utilizzo in YSM durante lo sviluppo embrionale aviaria. I lipidi quali trigliceridi, lecitina, fosfolipidi e colesterolo estere (CE) sono le fonti di energia primaria per gli embrioni aviaria. Nelle prime fasi di sviluppo, lipidi tuorlo sono composed di solo l&#39;1,3% del CE e sale al 10-15% a medio termine della aviaria sviluppo embrionale 3, 11. estere Il colesterolo è sintetizzato dal colesterolo da steroli O-aciltransferasi 1 (SOAT1) in aviario YSM embrionale. 4 La forma di colesterolo stoccaggio è CE, CE viene effettuata in lipoproteine, e lipoproteine ​​vengono trasportati dalla circolazione ai tessuti. 13 Una settimana prima portello c&#39;è una rapida crescita degli embrioni aviaria. Circa il 68% delle restanti contenuti di lipidi nel tuorlo vengono assorbiti durante questa fase. 10 Il meccanismo con cui tuorlo lipidi vengono utilizzati possono essere chiarita da un modello di ricerca CEE. Un protocollo cultura pollo CEE è stato creato per raggiungere questo obiettivo di ricerca. 2, 9 Tuttavia, a causa del basso tasso di successo di espianti di tessuto, è necessario un procedimento di coltura cellulare CEE per studiare la funzione di alcuni enzimi e proteine ​​nel mediare utilizzazione nutriente embrioni aviaria durante lo sviluppo.

<table><tbody><tr><td>Dulbecco's Modified Eagle Medium</td><td>Gibco by Life technologies</td><td>12800-017 10 X 1 L</td><td>Per lavare i pellet EEC</td></tr><tr><td>D-MEM/F-12</td><td>Gibco by Life technologies</td><td>12400-024 10 X 1 L</td><td>Come mezzo basale nella coltura di EEC</td></tr><tr><td>NBCS</td><td>Gibco by Life technologies</td><td>16010-159</td><td>Come siero di alimentazione nella coltura di EECs</td></tr><tr><td>Pen-Strep Ampho. Soluzione</td><td>BI (Industrie Biologiche)</td><td>03-033-1B 100 ml</td><td>Per attenuare la possibile infezione&nbsp;</td></tr><tr><td>Collagenasi Tipo IV</td><td>Gibco di Life technologies</td><td>17104-019 1 g</td><td> La collagenasi è una proteasi con specificità per il legame tra un amminoacido neutro (X) e la glicina nella sequenza Pro-XGly-Pro. Come proteasi per la dissociazione delle cellule dal tessuto primario.</td></tr><tr><td>piastra a 24 pozzetti</td><td>FALCON&reg; </td><td>REF-353047</td><td>Per le TEE per collegare ed estendere</td></tr><tr><td>le provette da centrifuga in PP da 50 ml</td><td>Corning&reg; CentriStarTM</td><td>430829</td><td>Per il trasporto di membrane e la digestione enzimatica</td></tr><tr><td>Tubo a fondo conico da 50 ml con tappo</td><td>PRO TECH</td><td>CT-50-PL-TW</td><td>Per il trasporto di membrane e la digestione enzimatica</td></tr><tr><td>Bagno di agitazione reciproca</td><td>DEAGLE</td><td>SB302</td><td>Per una migliore digestione enzimatica sulle membrane</td></tr></tbody></table>

primaria endodermico cellule epiteliali cultura dal tuorlo sac membrana di giapponesi quail embrioni

Primary Endodermal Epithelial Cell Culture from the Yolk Sac Membrane of Japanese Quail Embryos

Abbiamo stabilito un endodermico epiteliale modello di coltura cellulare (CEE) per studiare la funzione di alcuni enzimi e proteine ​​nel mediare l&#39;utilizzo dei nutrienti da embrioni aviaria durante lo sviluppo. Fecondate uova di quaglia giapponesi sono state incubate a 37 ° C per 5 giorni e poi tuorlo membrane SAC (YSM) sono stati raccolti per stabilire il sistema di coltura CEE. Abbiamo isolato lo strato endoderma embrionale da YSM, e affettato la membrana in 2 - 3 pezzi mm e parzialmente digerito con collagenasi prima della semina in piastre di coltura da 24 pozzetti. Il TEE proliferano fuori del tessuto e sono pronti per studi su colture cellulari. Abbiamo trovato che il TEE aveva caratteristiche tipiche di YSM in vivo, per esempio, l&#39;accumulo di gocce lipidiche, espressione di steroli O-aciltransferasi e lipoproteina lipasi. Il trattamento di digestione parziale significativamente aumentato il tasso di successo della cultura CEE. Utilizzando il TEE, abbiamo dimostrato che l&#39;espressione di SOAT1 è stata regolata dal cAMP dla proteina chinasi A ependent percorso relativo. Questo sistema di coltura quaglia CEE giapponese primario è uno strumento utile per lo studio embrionale trasporto dei lipidi e di chiarire il ruolo dei geni coinvolti nella mediazione di utilizzo dei nutrienti nel YSM durante lo sviluppo embrionale aviaria.

Al fine di raggiungere l&#39;obiettivo di stabilire un modello cellulare coerente e utile, abbiamo bisogno di estendere e stabilizzare il tasso di proliferazione e le prestazioni dei TEE aviaria. Abbiamo confrontato incubazione diretta del endoderma senza digestione enzimatica con endoderma parzialmente digerito con gli enzimi proteolitici, come la collagenasi o collagenasi più 0,6 U di dispasi. Dispasi è un ammino-endopeptidasi che idrolizza i legami peptidici N-terminale di residui di ...

Per studiare il meccanismo di utilizzo dei lipidi nelle membrane del sacco vitellino durante le ultime fasi dello sviluppo embrionale aviario, abbiamo creato un sistema primario di coltura di cellule epiteliali endodermiche embrionali di quaglia giapponese.

Primaria endodermico cellule epiteliali Cultura dal tuorlo Sac membrana di giapponesi Quail embrioni

We established an endodermal epithelial cell culture model (EEC) for studying the function of certain enzymes and proteins in mediating nutrient ...

L'obiettivo generale di questa procedura di espianto ex vivo è migliorare il recupero e ampliare l'applicazione delle cellule epiteliali endodermiche aviarie al fine di studiare la funzione di enzimi e proteine nel modulare l'utilizzo dei nutrienti da parte degli embrioni aviani. Questo metodo può contribuire a rispondere a domande fondamentali riguardo all'utilizzo dei lipidi durante l'embriogenesi aviana, ad esempio in che modo i lipidi del tuorlo vengono impacchettati e trasportati dal tuorlo all'embrione nelle fasi successive dello sviluppo. Il principale vantaggio di questa tecnica è che possiamo ottenere con successo cellule epiteliali endodermiche funzionali dalla membrana del sacco vitellino della quaglia giapponese, che possono essere utilizzate come modello per lo studio dello sviluppo embrionale aviano.Iniziare preparando una soluzione di PBS 10x come descritto nel protocollo testuale. Diluire questa soluzione madre da uno a dieci per ottenere PBS 1x, che verrà utilizzato per lavare la membrana del sacco vitellino durante la dissezione dell'endoderma. Per preparare il mezzo di crescita per le cellule epiteliali endodermiche, o EEC, aggiungere innanzitutto al DMEM/F-12 il 10% di siero di vitello e la soluzione di penicillina-streptomicina-anfotericina all'1%.Successivamente, inserire la sonda di un pHmetro nel DMEM precedentemente preparato. Aggiungere tre normali di HCl goccia a goccia al mezzo fino a quando il pH non sarà stato regolato a 7,2. Dopo aver raccolto circa due dozzine di uova di quaglia fecondate, posizionarle verticalmente nei contenitori per uova in modo che le estremità larghe e non affusolate, dove si trovano le camere d'aria, siano rivolte verso l'alto.Successivamente, trasferire le uova in un incubatore ben ventilato impostato a 37 gradi Celsius. Dopo cinque giorni di incubazione, esaminare le uova con un candeloscopio per uova. Se gli embrioni si sono sviluppati normalmente, ci si aspetta di vedere una struttura circolare di vasi capillari al di sotto della camera d'aria.Selezionare un uovo che mostri uno sviluppo normale dei capillari e pulire il guscio con acqua fresca ed etanolo al 75%. Successivamente, aprire il guscio dell'uovo a partire dalla posizione della camera d'aria utilizzando delle forbici. Usare la pinzetta per aiutare delicatamente a versare il contenuto dell'uovo in una piastra di coltura vuota da 10 cm.Quindi, utilizzare le forbici per staccare l'embrione, il tuorlo e qualsiasi albume dalla membrana del sacco vitellino, abbreviata come MVS. Una volta isolata, lavare la MVS tre volte in PBS 1x e successivamente trasferirla in una nuova piastra da 10 cm contenente PBS. Successivamente, posizionare la piastra sotto un microscopio stereoscopico.Quindi, procedere a rimuovere con le forbici qualsiasi residuo di albume, che aderisce allo strato esterno di ectoderma della membrana del sacco vitellino (YSM). Continuare utilizzando la pinzetta per sollevare l'ectoderma traslucido e il mesoderma strutturale dei capillari di colore rosso dal margine del mesoderma presente sulla membrana del sacco vitellino. Successivamente, staccare delicatamente insieme ectoderma e mesoderma per isolare lo strato cellulare sottostante di endoderma.Quindi, con una pinzetta, tenere saldamente lo strato di cellule endodermiche gialle della membrana. Con un'altra pinzetta, afferrare il mesoderma capillare e procedere tirando il mesoderma lontano dal margine di giunzione tra mesoderma ed endoderma. Utilizzando un paio di forbici, tagliare lo strato residuo di endoderma giallo e trasferirlo nella piastra di coltura da sei centimetri riempita con mezzo di crescita.Utilizzando un contagocce, trasferire l'endoderma di colore giallo chiaro dalla piastra da sei centimetri in un tubo da centrifuga da 15 mL dopo il prelievo del mezzo di coltura, e aggiungere 15 mL di mezzo di crescita precedentemente preparato. Collocare il tubo conico in un bagnomaria a 37 gradi Celsius fino al completamento di tutti i prelievi di tessuto. Iniziare sciogliendo 6,5 unità di collaghenasi di tipo IV in 10 mL di DMEM.Successivamente, centrifugare i tubi contenenti l'endoderma a 130 ×g per tre minuti a temperatura ambiente. Dopo la centrifugazione, aspirare il mezzo e utilizzare una pipetta per trasferire tutti i campioni di endoderma in una piastra di coltura da sei centimetri. Quindi, aggiungere un millilitro di soluzione di collagene alla piastra.Con forbici curve, procedere a tagliare l'endoderma raccolto da quattro embrioni di quaglia in fette di dimensioni comprese tra due e tre millimetri. Successivamente, raccogliere le fette in un tubo da centrifuga da 50 mL e aggiungere nove millilitri di soluzione fresca di collagenasi, che si trova già all'interno del tubo da centrifuga da 50 mL. Per migliorare la proliferazione cellulare durante la fase di espianto, posizionare il tubo in un bagnomaria agitato regolato a 37 gradi Celsius.Quindi, incubare il conico per 30 minuti per digerire parzialmente il tessuto con collagenasi. La digestione proteolitica parziale è il passaggio più importante per migliorare la raccolta delle cellule del tuorlo dall'endoderma della membrana del sacco vitellino. I nostri dati mostrano un miglioramento significativo del tasso di successo della coltura cellulare e della proliferazione cellulare grazie alla procedura di digestione con collagenasi.Dopo la digestione con collagenasi, centrifugare il tessuto a 130 ×g per tre minuti a temperatura ambiente, quindi rimuovere la frazione soprannatante con una pipetta. Procedere a lavare il pellet risospendendolo in 20 mL di DMEM. Centrifugare il tubo come descritto in precedenza, quindi rimuovere il soprannatante e risospendere il pellet in 12 mL di mezzo di crescita.Quindi, aggiungere delicatamente 500 microlitri della sospensione in ciascun pozzetto di una piastra a 24 pozzetti. Procedere con l'incubazione degli espianti di endoderma per due giorni a 37 gradi Celsius in un'atmosfera al 5%CO2. Durante questo periodo, ci si aspetta che le cellule proliferino fuori dai tessuti.Successivamente, incubare le cellule per altri due giorni. Poi, sottoporle a un saggio di vitalità cellulare e visualizzare i risultati utilizzando un lettore di piastre. In seguito, eseguire la RT-qPCR per valutare i livelli di espressione dei marcatori di interesse nelle EEC e verificare la dimensione del prodotto ottenuto dalla RT-qPCR mediante elettroforesi su gel, come descritto nel protocollo testuale.Rispetto agli espianti non trattati, quelli parzialmente digeriti con collagenasi hanno mostrato un aumento significativo della proliferazione cellulare, come mostrato in questi grafici e determinato mediante un test t accoppiato, dimostrando il successo del sistema di coltura. Per valutare gli effetti di altri enzimi, sono stati eseguiti saggi di vitalità cellulare su tessuti trattati con collagenasi e dispasi o con collagenasi da sola. Nei primi cinque giorni di incubazione, la crescita cellulare è stata simile in entrambe le condizioni.Tuttavia, dal sesto al nono giorno, solo gli EEC trattati con collagenasi proliferarono in modo costante, suggerendo che una digestione parziale con questo enzima migliora la crescita e dovrebbe essere preferibilmente utilizzata. Quando gli EEC coltivati furono osservati, mostrarono caratteristiche simili a quelle degli adipociti, con grandi goccioline lipidiche di forma circolare come mostrato qui. Tali cellule risultarono inoltre positive alla colorazione con Oil Red O, comunemente impiegata per identificare gli adipociti.Supportando questi dati morfologici, la PCR quantitativa in tempo reale ha rivelato che le EEC coltivate mostrano livelli elevati di SOAT1, una proteina che sintetizza l'estere del colesterolo a partire dal colesterolo. Questo suggerisce ulteriormente che le EEC coltivate manifestano le corrette caratteristiche fisiologiche degli adipociti. In modo importante, quando le EEC sono state esposte a IBMX e forskolina, fattori che aumentano i livelli di adenosina monofosfato ciclico, o cAMP, e coltivate per 24 ore, entrambi i trattamenti hanno stimolato l'espressione di SOAT1, suggerendo possibili meccanismi di regolazione di SOAT1 e di utilizzo dei lipidi nel MSA.Una volta padroneggiata, questa tecnica può essere eseguita in circa quattro ore, durante le quali è possibile raccogliere almeno tre campioni. Dopo aver seguito questa procedura, è possibile effettuare metodi come il saggio di attività enzimatica SOAT1 o altri saggi simili, nonché conferme visive analoghe. Tali saggi possono aiutare a rispondere ad ulteriori domande, ad esempio su come determinate proteine e macronutrienti siano coinvolti nelle fasi successive dello sviluppo embrionale.Dopo il suo sviluppo, questa tecnica ha aperto la strada ai ricercatori nel campo dell'utilizzo dei nutrienti negli embrioni per esplorare il possibile meccanismo attraverso cui i nutrienti vengono utilizzati e trasportati in un modello embrionale aviario. Dopo aver visto questo video, dovresti essere in grado di imparare come raccogliere tessuti endodermici da embrioni aviarî, e sapere anche come coltivare le EEC per studiare il trasporto e l'utilizzo dei nutrienti embrionali utilizzando il modello aviario.

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