14 marzo 2016
Eliminare cellule specifiche senza danneggiare altre cellule è estremamente difficile, specialmente nei tessuti consolidati, ma c'è un urgente bisogno di un metodo di eliminazione cellulare nel campo dell'ingegneria tissutale. Qui, presentiamo un metodo per l'eliminazione di cellule specifiche da una coltura cellulare 3D mista utilizzando la fotoimmunoterapia nel vicino infrarosso (NIR-PIT).
L'obiettivo generale di questa procedura sperimentale è dimostrare l'eliminazione di specifiche cellule di interesse da una coltura cellulare tridimensionale mista mediante fotoimmunoterapia a infrarossi vicini. Questo metodo può contribuire a rispondere a domande fondamentali nel campo dell'ingegneria tissutale riguardo alla medicina rigenerativa. Il principale vantaggio di questa tecnica è che può essere utilizzata contro una varietà di molecole bersaglio e che il trattamento può essere limitato a lesioni specifiche di interesse.
Questo può ridurre al minimo l'effetto collaterale. Per la coniugazione di IR700 agli anticorpi monoclonali, incubare gli anticorpi di interesse con IR700 in Fosfato Biodisodico in un tubo da microcentrifuga a temperatura ambiente per un'ora, coperto con carta d'alluminio. Al termine dell'incubazione, lavare una colonna PD10 due volte con 15 millilitri di PBS.
Successivamente, caricare la soluzione di anticorpo sulla colonna e purificare la miscela mediante eluizione con PBS seguendo le istruzioni del produttore. Per confermare il numero di molecole di fluoro-4 coniugate a ciascuna molecola di anticorpo monoclonale, utilizzare uno spettrofotometro per determinare la concentrazione proteica dell'anticorpo monoclonale. Successivamente, conservare il coniugato a 4 gradi Celsius.
Per preparare la coltura cellulare 3D mista, aggiungere 1 millilitro di acqua sterile nella sezione del serbatoio della piastra a goccia sospesa da 96 pozzetti. Successivamente, seminare diversi rapporti dei tipi cellulari di interesse nel mezzo di coltura cellulare appropriato, con almeno 5.000 cellule per 50 microlitri di mezzo per pozzetto, per un periodo di cinque a sette giorni in un incubatore umidificato a 37 °C e 5% di anidride carbonica. Cambiare il mezzo di coltura ogni due giorni e osservare quotidianamente la morfologia e le dimensioni degli sferoidi mediante microscopio a campo chiaro invertito con un ingrandimento da 10 a 40 volte.
Quando gli sferoidi hanno raggiunto un diametro compreso tra 400 e 600 micron, sostituire il mezzo della piastra a goccia sospesa con mezzo contenente il coniugato anticorpo-fotoassorbente e reinserire la piastra nell'incubatore per sei ore. Al termine dell'incubazione, lavare gli sferoidi due volte con mezzo di coltura fresco privo di rosso fenolo. Successivamente, utilizzare una punta di pipetta da 200 microlitri con l'estremità tagliata per trasferire uno sferoide alla volta in singole piastre da 50 millimetri con fondo in vetro contenenti 100 microlitri di mezzo di coltura fresco privo di rosso fenolo per ogni piastra.
Utilizzare il microscopio invertito per osservare i cambiamenti nella morfologia degli sferoidi. Per irradiare gli sferoidi, posizionare un diodo a emissione luminosa a non più di 5 pollici sopra le piastre con fondo in vetro. Utilizzare un misuratore di potenza ottica per verificare l'emissione di una lunghezza d'onda compresa tra 670 e 710 nanometri a 2 joule per centimetro quadrato.
Dopo la fotoimmunoterapia con infrarosso vicino (NIR), trasferire gli sferoidi in una nuova piastra per gocce sospese con 50 microlitri di mezzo di coltura fresco per pozzetto, per un giorno nell'incubatore per colture cellulari. Successivamente, utilizzando un'altra punta da pipetta da 200 microlitri con l'estremità tagliata, trasferire delicatamente gli sferoidi in nuove piastre con fondo in vetro contenenti 100 microlitri di mezzo di coltura privo di rosso fenolo e valutare l'espressione del reporter ottico al microscopio fluorescente. Infine, rilevare le cellule morte aggiungendo ioduro di propidio al mezzo.
O mediante la perdita della fluorescenza citoplasmatica di GFP. In questo esperimento rappresentativo, sferoidi misti composti da diverse proporzioni di cellule A431-luc-GFP e 3T3-RFP sono stati preparati come appena illustrato. È stata quindi eseguita una fotoimmunoterapia ripetuta nell'infrarosso vicino (NIR) con l'incubazione di panitumumab-IR700 come mostrato.
E l'eliminazione delle cellule bersaglio è stata monitorata mediante la valutazione dell'attività fluorescente e della luciferasi nelle colture a goccia sospesa. Una volta acquisita padronanza, questa tecnica può essere completata in un'ora se eseguita correttamente. Durante il tentativo di questa procedura, è importante ricordare che l'energia luminosa diminuisce secondo la legge dell'inverso del quadrato.
Visualizza la trascrizione completa e accedi a migliaia di video scientifici
Questo studio presenta un metodo per l'eliminazione specifica di cellule bersaglio da una coltura cellulare tridimensionale mista mediante fotoimmunoterapia nell'infrarosso vicino (NIR-PIT). Questa tecnica affronta le sfide nell'ingegneria tissutale minimizzando i danni alle cellule circostanti.
Nell'ingegneria tissutale e nella medicina rigenerativa, l'eliminazione di cellule contaminanti o tumorigeniche specifiche da colture tridimensionali complesse senza danneggiare le popolazioni cellulari desiderate rimane una sfida fondamentale. La fotoimmunoterapia a infrarossi vicini (NIR-PIT) offre un approccio mirato per ablare selettivamente le cellule indesiderate preservando l'integrità del tessuto, favorendo modelli preclinici più sicuri e affidabili. Questa capacità aumenta la fiducia predittiva nelle fasi iniziali della scoperta, consentendo una riduzione del rischio meccanicistica delle terapie cellulari prima della traduzione in vivo.
La NIR-PIT si inserisce nel percorso di scoperta che va dalla validazione del bersaglio al perfezionamento dei modelli preclinici, in particolare nei casi in cui è necessario un controllo spaziale sulle popolazioni cellulari per valutare la specificità e la sicurezza terapeutica.