Name: La raccolta selettiva di Marginating-polmonari leucociti (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-03-11T15:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 6 s
Description: Impara la raccolta selettiva di leucociti marginanti-polmonari da polmoni di ratti e topi mediante perfusione forzata. Questa tecnica consente di studiare le funzioni immunologiche uniche di queste cellule.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Gli autori e questo lavoro sono stati sostenuti da NIH / NCI concessione # R01CA172138 (a SBE).

Le procedure che coinvolgono soggetti animali sono stati approvati dalla cura e l&#39;uso Comitato Istituzionale Animal (IACUC) a Tel-Aviv. 1. Protocollo Rat <ol><li> preparativi <ol><li> Disporre 2 farfalla 21 aghi G. Facoltativamente, preparare 2 farfalla 21 aghi smussati G taglio presentando il bordo tagliente dell&#39;ago. </li><li> Sterilizzare strumenti chirurgici: 2 paia di forbici, pinze smussato-taglio, emostatico, forcipe dente-tessuto sterilizzati in autoclave a 121 ° C per almeno 30 minuti su impostazione gravità (a secco). </li><li> Preparare eparinizzato PBS (30 unità / ml) aggiungendo 30 unità di eparina per ml di soluzione di tampone fosfato (PBS 1x). Utilizzare a temperatura ambiente. 35 ml è il volume minimo necessario per animale. </li><li> Streaming eparina PBS nelle linee pompa peristaltica e gli aghi a farfalla per evitare bolle d&#39;aria. </li></ol></li><li> Perfusione dei polmoni e la raccolta di MP-leucociti <ol><li> Eutanasia l&#39;animale da una dose eccessiva di 8% isoflurano. Confermare l&#39;eutanasia dal monitoraggio respirazione cessazione. </li><li> Al momento della cessazione della respirazione, aprire immediatamente le cavità peritoneale e al torace con le forbici sterili e pinze dente-tessuto. Effettuare una incisione addominale mediana lungo l&#39;addome fino al processo xifoideo. </li><li> Sollevare lo sterno con le pinze, con cautela tagliare la gabbia toracica su entrambi i lati, senza pungere qualsiasi organo interno o grandi vasi sanguigni. Bloccare una pinza emostatica sullo sterno, e rostralmente piegare la gabbia toracica per esporre il complesso cardiopolmonare. </li><li> Inserire un ago a farfalla nel ventricolo destro del cuore, ed entro circa un minuto raccogliere il massimo volume di sangue in una siringa (~ 6 ml da 250 g animale). </li><li> Bloccare la vena cava con un emostatico per evitare la perfusione a ritroso del fegato (vedi la discussione). </li><li> Tenere l&#39;ago a farfalla nel ventricolo destro durante la sostituzione della siringa contenente il sangue con il tubo di efflusso della ppompa eristaltic. </li><li> Inserire un secondo ago a farfalla collegato ad una siringa da 5 ml raccolta nel ventricolo sinistro, evitando la penetrazione del setto interventricolare. </li><li> Accendere la pompa peristaltica ad una velocità di circa 5 ml / min e raccogliere delicatamente nella siringa la prima porzione di perfusato che sono contaminati con il sangue. Continuare fino a quando il colore si trasforma perfusato dallo scuro al rosso pallido. (Scartare il perfuste sangue contaminato). </li><li> Senza cessazione della pompa peristaltica, rapidamente sostituire la raccolta siringa da 5 ml con una siringa da 20 ml raccolta e raccogliere 20 ml di perfusato polmone impiegando una maggiore velocità di perfusione (fino a 7 ml / min). Monitorare continuamente il flusso perfusato nella siringa raccolta, evitando la formazione di vuoto. </li><li> Cessare la portata della pompa peristaltica. </li></ol></li><li> I leucociti Estrazione <ol><li> Centrifugare il perfusato per 10 minuti a 400 × g. </li><li> Aspirare il fluido. </li><li>Aggiungere 10 ml di PBS o medie, centrifugare a 400 xg per 10 min, e aspirare il liquido. Ripetere questa operazione due volte. L&#39;uso di PBS o mezzo dipende il conseguente impiego del campione. </li><li> Aggiungere 20 ml di PBS o medie, centrifugare a 400 xg per 10 min, e aspirare il liquido. </li><li> Ricostituire cellule alla concentrazione desiderata, basati sull&#39;utilizzo campione (FACS, PCR, etc.). </li></ol></li></ol> 2. Il protocollo del mouse <ol><li> preparativi <ol><li> Disporre 2 farfalla 25 aghi G. Facoltativamente, preparare 2 farfalla 25 aghi smussati G taglio presentando il bordo tagliente dell&#39;ago. </li><li> Sterilizzare strumenti chirurgici: 2 paia di forbici, pinze smussato-taglio, emostatico, forcipe dente-tessuto sterilizzati in autoclave a 121 ° C per almeno 30 minuti su impostazione gravità (a secco). </li><li> Preparare eparinizzato PBS (30 unità / ml) aggiungendo 30 unità di eparina per ml di soluzione di PBS 1x. Utilizzare a temperatura ambiente. 25 ml è il volume minimo necessario per animale. </li><li> stream eparinizzato PBS nelle linee pompa peristaltica e gli aghi a farfalla per evitare bolle d&#39;aria. </li></ol></li><li> Perfusione dei polmoni e la raccolta di MP-leucociti <ol><li> Eutanasia l&#39;animale da una dose eccessiva di 8% isoflurano. Confermare l&#39;eutanasia dal monitoraggio respirazione cessazione. </li><li> Al momento della cessazione della respirazione, aprire immediatamente le cavità peritoneale e al torace con le forbici sterili e pinze dente-tessuto. Effettuare una incisione addominale mediana lungo l&#39;addome fino al processo xifoideo. </li><li> Sollevare lo sterno con le pinze, con cautela tagliare la gabbia toracica su entrambi i lati, senza pungere qualsiasi organo interno o grandi vasi sanguigni. Bloccare una pinza emostatica sullo sterno, e rostralmente piegare la gabbia toracica per esporre il complesso cardiopolmonare. </li><li> Bloccare la vena cava con un emostatico per evitare la perfusione a ritroso del fegato (vedi la discussione). </li><li> Inserire un ago a farfalla collegato al tubo di efflusso della pompa peristaltica nel ven destratricle del cuore, ed un secondo ago a farfalla collegato ad una raccolta siringa da 2 ml nel ventricolo sinistro del cuore, avoidingpenetration del setto interventricolare. </li><li> Accendere la pompa ad una velocità di circa 2 ml / min e raccogliere i primi millilitri di perfusato sangue contaminato nella siringa di raccolta fino a quando il perfusato si trasforma dallo scuro al chiaro rosso (Scartare il perfuste sangue contaminato). </li><li> Senza cessazione della pompa peristaltica, rapidamente sostituire la raccolta siringa da 2 ml con una siringa da 10 ml raccolta e raccogliere 10 ml di perfusato polmone impiegando una maggiore velocità di perfusione (fino a 4 ml / min). Monitorare continuamente il flusso perfusato nella siringa raccolta, evitando la formazione di vuoto. </li><li> Cessare la portata della pompa peristaltica. </li></ol></li><li> I leucociti Estrazione <ol><li> Centrifugare il perfusato per 10 minuti a 400 × g. </li><li> Aspirare il fluido. </li><li> Aggiungere 10 ml di PBS o mezzo, centrifugare a 400xg per 10 min, e aspirare il liquido. Ripetere questa operazione tre volte. L&#39;uso di PBS o mezzo dipende il conseguente impiego del campione. </li><li> Aggiungere 10 ml di PBS o medie, centrifugare a 400 xg per 10 min, e aspirare il liquido. </li><li> Ricostituire cellule alla concentrazione desiderata, basati sull&#39;utilizzo campione (FACS, PCR, etc.). </li></ol></li></ol>

<ol><li>Kuebler, W. M., Goetz, A. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+marginated+pool%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+Surg+Res%22%5BJournal%5D)">The marginated pool.</a> Eur Surg Res. 34, 92-100 (2002).</li>
<li>Benish, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+marginating-pulmonary+immune+compartment+in+mice+exhibits+increased+NK+cytotoxicity+and+unique+cellular+characteristics%5BTitle%5D)+AND+%22Immunol+Res%22%5BJournal%5D)">The marginating-pulmonary immune compartment in mice exhibits increased NK cytotoxicity and unique cellular characteristics.</a> Immunol Res. 58, 28-39 (2014).</li>
<li>Melamed, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+marginating-pulmonary+immune+compartment+in+rats%3A+characteristics+of+continuous+inflammation+and+activated+NK+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunother%22%5BJournal%5D)">The marginating-pulmonary immune compartment in rats: characteristics of continuous inflammation and activated NK cells.</a> J Immunother. 33, 16-29 (2010).</li>
<li>Shakhar, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Amelioration+of+operation-induced+suppression+of+marginating+pulmonary+NK+activity+using+poly+IC%3A+a+potential+approach+to+reduce+postoperative+metastasis%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Surg+Oncol%22%5BJournal%5D)">Amelioration of operation-induced suppression of marginating pulmonary NK activity using poly IC: a potential approach to reduce postoperative metastasis.</a> Ann Surg Oncol. 14, 841-852 (2007).</li>
<li>Smyth, M. J., Godfrey, D. I., Trapani, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+fresh+look+at+tumor+immunosurveillance+and+immunotherapy%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Immunol%22%5BJournal%5D)">A fresh look at tumor immunosurveillance and immunotherapy.</a> Nat Immunol. 2, 293-299 (2001).</li>
<li>Talmadge, J. E., Meyers, K. M., Prieur, D. J., Starkey, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+of+NK+cells+in+tumour+growth+and+metastasis+in+beige+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Role of NK cells in tumour growth and metastasis in beige mice.</a> Nature. 284, 622-624 (1980).</li>
<li>Grimm, E. A., Mazumder, A., Zhang, H. Z., Rosenberg, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lymphokine-activated+killer+cell+phenomenon.+Lysis+of+natural+killer-resistant+fresh+solid+tumor+cells+by+interleukin+2-activated+autologous+human+peripheral+blood+lymphocytes%5BTitle%5D)+AND+%22J+Exp+Med%22%5BJournal%5D)">Lymphokine-activated killer cell phenomenon. Lysis of natural killer-resistant fresh solid tumor cells by interleukin 2-activated autologous human peripheral blood lymphocytes.</a> J Exp Med. 155, 1823-1841 (1982).</li>
<li>Melamed, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Marginating+pulmonary-NK+activity+and+resistance+to+experimental+tumor+metastasis%3A+suppression+by+surgery+and+the+prophylactic+use+of+a+beta-adrenergic+antagonist+and+a+prostaglandin+synthesis+inhibitor%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Behav+Immun%22%5BJournal%5D)">Marginating pulmonary-NK activity and resistance to experimental tumor metastasis: suppression by surgery and the prophylactic use of a beta-adrenergic antagonist and a prostaglandin synthesis inhibitor.</a> Brain Behav Immun. 19, 114-126 (2005).</li>
<li>O'Dea, K. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lung-marginated+monocytes+modulate+pulmonary+microvascular+injury+during+early+endotoxemia%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Respir+Crit+Care+Med%22%5BJournal%5D)">Lung-marginated monocytes modulate pulmonary microvascular injury during early endotoxemia.</a> Am J Respir Crit Care Med. 172, 1119-1127 (2005).</li>
<li>Sorski, L., Melamed, R., Ben-Eliyahu, A unique role for marginating-pulmonary and marginating-hepatic NK cells in cancer anti-metastatic surveillance and in immunotherapy. Annual Meeting of the Psychoneuroimmunology Research Society, Philadelphia, USA.(2014, , (2014).</li>
<li>Levi, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Continuous+stress+disrupts+immunostimulatory+effects+of+IL-12%29%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Behav+Immun%22%5BJournal%5D)">Continuous stress disrupts immunostimulatory effects of IL-12).</a> Brain Behav Immun. 25, 727-735 (2011).</li>
</ol>

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Il metodo qui presentata consente la raccolta selettiva e studiando della popolazione unica di MP-leucociti. Rispetto al circolante o leucociti splenici, la popolazione MP è caratterizzata da una diversa composizione delle sottopopolazioni di leucociti, livelli di attivazione superiori, maggior rilascio di varie citochine, e più elevati livelli di mRNA di pro- e citochine antinfiammatorie 2,3. In particolare, abbiamo dimostrato che le cellule MP-NK sono più citotossico cellule NK circolatori contro varie cell...

I leucociti aderenti ai capillari dei polmoni (ad esempio, marginating-polmonare (MP) leucociti) 1 sono stati mostrati ad esporre distinti composizione dei leucociti e l&#39;attività unico rispetto ai leucociti da altri comparti del sistema immunitario (ad esempio, la circolazione, milza, midollo osseo) 2- 4. Ad esempio, mostra MP-leucociti superiore cellule natural killer (NK) citotossicità contro varie cellule tumorali, rispetto al circolanti e milza cellule NK, così come i livelli differenziati RNA messaggero (mRNA) e aumento della secrezione di citochine pro e anti-infiammatori. La composizione delle cellule è anche differenziata da leucociti circolanti come MP-leucociti hanno un rapporto più elevato di immunità innata / adattativa rispetto ai leucociti circolanti (50% contro 30%, rispettivamente). L&#39;obiettivo del metodo qui presentato è quello di consentire la raccolta selettiva di MP-leucociti, per studiare questo compartimento immunitario importante ed unico (popolazione cellulare), e elucIDATE l&#39;impatto delle varie manipolazioni (ad esempio, attivazione immunitaria) su queste cellule specifiche. Per comprendere il significato di questa popolazione unica, è importante notare che il sistema immunitario può controllare cellule tumorali, micrometastasi e malattia residua che circola attraverso funzioni in vivo di immunità cellulo-mediata (CMI). Questa capacità è evidente nonostante il fallimento precedente del sistema immunitario di controllare il tumore primario, e supportato da ampia evidenza in vivo in pazienti oncologici e modelli animali 5. È importante sottolineare che questi risultati sono spesso in contrasto con in vitro ed ex vivo studi che riportano che la maggior parte delle cellule tumorali autologhe sono resistenti alla citotossicità dai leucociti nei campioni di sangue che circola da esseri umani e gli animali (misurata mediante saggi di citotossicità) 6,7. Questa discrepanza può essere attribuita alla presenza in vivo di popolazioni leucocitarie distinte, come il giàmenzionata popolazione leucocitaria MP, e in particolare la sua sottopopolazione di cellule NK attivate 3. Infatti, le cellule tumorali singenici (MADB106), che sono risultati essere resistenti alla circolazione e leucociti splenici, hanno dimostrato di essere lisate dalle cellule MP-NK 3,8. Così, le cellule MADB106 presumibilmente &#39;NK-resistenti &quot;che metastatizzano polmoni di fischer344 (F344) ratti sono controllati da cellule MP-NK, ma non da cellule NK spleniche, comunemente studiato a causa della loro facilità di accesso circolante o. Purificata e attivi MP-leucociti sono inaccessibili attraverso i metodi di raccolta standard dei leucociti dai polmoni, che si basano sulla macinazione tessuto polmonare o degradazione biologica 9. Il nostro approccio ha due grandi vantaggi rispetto agli approcci di lavorazione dei tessuti. Innanzitutto, l&#39;approccio perfusione raccoglie selettivamente MP-leucociti, separandole da altre cellule che provengono dal parenchima polmonare, interstiziale, e compar bronco-alveolaretments. In secondo luogo, la tecnica di perfusione meglio preserva l&#39;integrità e l&#39;ambiente fisiologico MP-leucociti, a differenza della macinazione e trasformazione biologica approcci che danneggiano le cellule, alterano la morfologia e inducono la produzione e il rilascio di vari fattori che modulano l&#39;attività immunitaria e specificamente sopprimono NK citotossicità 10. I polmoni sono un importante organo bersaglio per le metastasi del cancro e per varie malattie infettive. Tutte le cellule maligne circolanti e cellule infettate passano attraverso i capillari polmonari, dove devono deformarsi e interagire con le cellule endoteliali dei capillari e leucociti residenti. In queste condizioni, le cellule circolanti possono essere facilmente bersaglio di MP-leucociti residenti. Sembra quindi biologicamente vantaggioso avere leucociti attivati ​​in questo compartimento immunitario, ed è importante studiare questo unico MP-popolazione in impostazioni biologici, sperimentali e clinici differenti. E &#39;degno di nota che syattivazione stemic immune dai vari risposta modificatori biologici (ad esempio, l&#39;acido polyinosinic-policitidilico (poli I: C) o di tipo C CpG oligonucleotidi (CpG-C ODN)) hanno dimostrato di attivare la MP-leucociti più di leucociti circolanti 3, 8,11.

<table><tbody><tr><td>Autoclud Pompa</td><td></td><td></td><td></td>peristaltica</tr><tr><td>Ago a farfalla</td><td>OMG</td><td></td><td>26G</td></tr><tr><td>Ago a farfalla</td><td>OMG</td><td></td><td>21G*3/4"</td></tr><tr><td>Siringa</td><td>Pic soluzione</td><td></td><td>1 ml</td></tr><tr><td>Siringa</td><td>Pic soluzione</td><td></td><td>2,5 ml</td></tr><tr><td>Siringa</td><td>Pic soluzione</td><td></td><td>5 ml</td></tr><tr><td>Siringa</td><td>Soluzione Pic</td><td>10 ml</td>Siringa Soluzione Pic 25 ml Pinza a taglio smussato Emostatico a forbice Pinza tissutale Eparina sodica mucosa suina (senza conservazioni)Sigma Aldrich <td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

la raccolta selettiva di marginating-polmonari leucociti

Selective Harvesting of Marginating-pulmonary Leukocytes

I leucociti marginanti-polmonari (MP) sono leucociti che aderiscono all'endotelio interno dei capillari polmonari. È stato dimostrato che i leucociti MP presentano una composizione e caratteristiche uniche rispetto ai leucociti di altri compartimenti immunitari. L'evidenza suggerisce una maggiore citotossicità delle cellule natural killer e un distinto profilo pro- e anti-infiammatorio della popolazione di leucociti MP rispetto agli immunociti circolanti o splenici. Il metodo qui presentato consente il prelievo selettivo di leucociti MP mediante perfusione forzata dei polmoni sia nei topi che nei ratti. A differenza di altri metodi utilizzati per estrarre i leucociti polmonari, come la macinazione dei tessuti e la degradazione biologica, questo metodo produce esclusivamente leucociti dai capillari polmonari, non contaminati da cellule parenchimali, interstiziali e bronco-alveolari. Inoltre, la tecnica di perfusione preserva meglio l'integrità e l'ambiente fisiologico dei leucociti MP, senza indurre risposte fisiologiche dovute al processamento tissutale. Questa popolazione unica di leucociti MP è posizionata strategicamente per identificare e reagire alle cellule circolanti anormali, poiché tutte le cellule maligne circolanti e le cellule infette vengono trattenute mentre passano attraverso i capillari polmonari, interagendo fisicamente con le cellule endoteliali e i leucociti residenti. Pertanto, il prelievo selettivo di leucociti MP e il loro studio in varie condizioni possono far progredire la nostra comprensione del loro significato biologico e clinico, in particolare per quanto riguarda il controllo delle cellule aberranti circolanti e delle malattie polmonari.

La mostra MP-vano una diversa composizione dei leucociti sottoinsieme rispetto ai leucociti circolanti. Citometria a flusso di analisi, sottopopolazioni di leucociti sono stati identificati e quantificati per caratterizzare la composizione sia del circolante e leucociti MP. Granulociti e linfociti sono stati identificati sulla base disperde in avanti e laterali. All&#39;interno dei linfociti, NKRP-1 le cellule luminose sono stati identificati come cellule NK, CD3 +,...

I leucociti polmonari marginanti mostrano caratteristiche uniche e funzioni immunologiche distinte rispetto ad altre popolazioni di leucociti. Qui descriviamo il prelievo selettivo di questa sottopopolazione di leucociti polmonari, mediante perfusione forzata dei polmoni in ratti e topi. I leucociti polmonari marginanti sembrano fondamentali nel determinare la suscettibilità alle malattie trasmesse per via ematica e polmonare.

La raccolta selettiva di Marginating-polmonari leucociti

Marginating-pulmonary (MP) leukocytes are leukocytes that adhere to the inner endothelium of the lung capillaries. MP-leukocytes were shown to exhibit ...

L'obiettivo generale di questa procedura è quello di effettuare la perfusione forzata dei polmoni di topo o ratto al fine di isolare in modo selettivo i leucociti polmonari marginanti, che aderiscono all'endotelio interno dei capillari polmonari. Questo metodo consente lo studio di questa specifica popolazione di leucociti, che presenta caratteristiche uniche e funzioni ematologiche distinte. Il principale vantaggio di questa tecnica è che permette di ottenere leucociti esclusivamente dai capillari polmonari, escludendo le cellule provenienti dai compartimenti parenchimale, interstiziale e broncoalveolare.A dimostrare questa procedura saranno Liat Sorski e Lee Shaashua, due studenti laureate del mio laboratorio. Prima di iniziare la procedura, far scorrere PBS eparinizzato attraverso i tubi della pompa peristaltica e gli aghi a farfalla per rimuovere eventuali bolle d'aria. Quindi, immediatamente dopo la cessazione della respirazione, utilizzare forbici sterili e pinze da tessuto dentellate per aprire le cavità peritoneale e toracica del ratto eutanasizzato praticando un'incisione addominale mediana fino al processo xifoidale.Successivamente, utilizzare la pinzetta per sollevare lo sterno e tagliare con cautela la gabbia toracica su entrambi i lati. Applicare un emostatico allo sterno e piegare la gabbia toracica in direzione rostrale per esporre il complesso cardio-polmonare. Inserire quindi un ago a farfalla nel ventricolo destro del cuore e raccogliere la quantità massima di sangue possibile.Dopo aver raccolto tutto il sangue, clampare la vena cava con un emostatico per evitare la perfusione retrograda del fegato. Successivamente, tenendo ferma l'ago a farfalla nel ventricolo destro, sostituire la siringa contenente il sangue con il tubo di efflusso della pompa peristaltica e inserire un secondo ago a farfalla, collegato a una siringa di raccolta da cinque millilitri, nel ventricolo sinistro. A questo punto, accendere la pompa peristaltica impostandola su una velocità di circa cinque millilitri al minuto e raccogliere delicatamente i primi millilitri di perfusato contaminato dalla siringa di raccolta, fino a quando il perfusato non passa da un colore scuro a uno rosso chiaro.Quindi, senza interrompere il flusso della pompa, sostituire rapidamente la siringa di raccolta da cinque millilitri con una siringa da 20 millilitri e raccogliere 20 millilitri di perfusato polmonare per isolare i leucociti polmonari marginanti del ratto a una velocità di sette millilitri al minuto. Osservare la progressiva decolorazione dei polmoni, da un rosso pallido a un bianco trasparente, indicativa di una perfusione riuscita. Una volta raccolto l'intero volume di perfusato, interrompere il flusso della pompa peristaltica e trasferire il perfusato raccolto in un tubo.Quindi centrifugare il perfusato ed aspirare il sopranatante. Far scorrere PBS eparinizzato attraverso i tubi della pompa peristaltica e gli aghi farfalla per rimuovere eventuali bolle d'aria. Per raccogliere i leucociti polmonari marginanti del topo, immediatamente dopo la cessazione della respirazione, utilizzare forbici sterili e pinze da tessuto dentellate per aprire le cavità peritoneale e toracica praticando un'incisione mediana addominale fino al processo xifoidale.Successivamente, utilizzare una pinza per sollevare lo sterno e tagliare la gabbia toracica su entrambi i lati. Applicare un emostatico allo sterno e piegare la gabbia toracica in direzione rostrale per esporre il complesso cardio-polmonare. Clampare la vena cava con un emostatico per evitare la perfusione retrograda del fegato e inserire l'ago a farfalla nel ventricolo destro del cuore.Quindi, tenendo il cannula a farfalla all'interno del ventricolo destro, collegare il cannula a farfalla al tubo di efflusso della pompa peristaltica e inserire un secondo cannula a farfalla, collegato a una siringa di raccolta da due millilitri, nel ventricolo sinistro. Accendere la pompa impostandola su una velocità di circa due millilitri al minuto. Raccogliere delicatamente il primo millilitro di perfusato contaminato nella siringa di raccolta finché il perfusato non diventa da scuro a rosso pallido.Quindi, senza interrompere la pompa peristaltica, sostituire rapidamente la siringa di raccolta da due millilitri con una siringa da 10 millilitri e raccogliere 10 millilitri di perfusato polmonare a una velocità di perfusione di quattro millilitri al minuto. Osservare la progressiva decolorazione dei polmoni, da un rosso pallido a un bianco trasparente, indicativa di una perfusione riuscita. Una volta raccolto tutto il perfusato polmonare, interrompere il flusso della pompa peristaltica e trasferire il perfusato raccolto in un tubo.Quindi centrifugare il perfusato ed aspirare il soprannatante. Il compartimento polmonare marginante presenta una composizione diversa di sottoinsiemi di leucociti rispetto a quella osservata nei leucociti circolanti. In effetti, gli immunociti innati, inclusi granulociti, monociti e cellule natural killer, costituiscono oltre il 50% della popolazione di leucociti polmonari marginanti.Rispetto a meno del 30% del compartimento di cellule circolanti. Al contrario, le popolazioni di cellule T e di cellule dendritiche sono presenti in percentuali inferiori nel compartimento marginante-polmonare rispetto alle cellule circolanti. Nel compartimento marginante-polmonare è presente una percentuale di grandi cellule natural killer tre volte maggiore rispetto al compartimento di cellule circolanti, sebbene il numero totale di cellule natural killer complessivo sia simile.Inoltre, l'abilità delle cellule natural killer del compartimento marginante-polmonare di lisiare cellule tumorali è maggiore rispetto a quella delle cellule natural killer circolanti, come misurato mediante un saggio standard di rilascio di cromo su almeno due linee cellulari tumorali diverse. In aggiunta, la stimolazione immunitaria mediante somministrazione in vivo di Poly I:C produce un impatto più marcato sulla citotossicità delle cellule natural killer marginanti-polmonari rispetto a quella delle cellule natural killer circolanti quando vengono utilizzate cellule MADB106 come bersagli. Una volta acquisita, questa tecnica può essere eseguita in pochi minuti se effettuata correttamente.Queste tecniche consentono il prelievo selettivo dei leucociti MP. Lo studio di questi leucociti contribuirà a migliorare la comprensione del loro significato biologico e clinico, in particolare per quanto riguarda il controllo delle cellule aberranti circolanti e delle malattie correlate ai polmoni. Dopo questa procedura, le cellule possono essere caratterizzate e analizzate mediante citometria a flusso, PCR o qualsiasi altro saggio di interesse.Dopo aver visto questo video, dovresti avere una buona comprensione di come raccogliere i leucociti polmonari marginanti.

selective-harvesting-of-marginating-pulmonary-leukocytes

Research

Ricerca

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologia e Infezioni

Una preparazione altamente purificato di cellule dendritiche del polmone del mouse è descritto. Particolare enfasi è data l'isolamento delle tradizionali sottoinsieme delle cellule dendritiche.

Isolamento di cellule polmonari mouse dendritiche

Qui, descriviamo i protocolli per la raccolta murini macrofagi alveolari, che risiedono le cellule immunitarie innate nei polmoni, e di esaminare la loro attivazione in risposta a co-coltura con nanoparticelle polianidride.

Raccolta murini macrofagi alveolari e Valutare l&#39;attivazione cellulare indotta da nanoparticelle polianidride

In questo video, dimostriamo l'isolamento dei leucociti epatici marginanti dal fegato di topo mediante perfusione forzata.

Isolamento di leucociti epatici marginanti da un fegato di topo

Questo protocollo descrive una tecnica di isolamento per ottenere cellule mesenchimali stromali residenti polmonare primaria da ratti, attraverso l'uso di digestione enzimatica, la separazione gradiente di densità, aderenza plastica e CD146 + selezione perlina magnetica.

Isolamento di CD146<sup&gt; +</sup&gt; cellule residenti del polmone mesenchimali stromali da Rat Polmoni

I leucociti epatici marginanti mostrano caratteristiche uniche e funzioni immunologiche distinte rispetto ad altre popolazioni di leucociti. Qui descriviamo un metodo per il prelievo selettivo di questa specifica popolazione di cellule epatiche, attraverso la perfusione forzata del fegato di ratti o topi. I leucociti epatici marginanti sembrano fondamentali nel determinare la suscettibilità alle malattie e alle metastasi epatiche.

La raccolta selettiva di Marginating-epatiche leucociti

Questo protocollo descrive la rimozione e la purificazione delle cellule endoteliali dell'arteria polmonare (PAECs) che aderiscono alle punte palloncino del catetere di Swan-Ganz mentre essi sono incuneate in arteria polmonare durante la cateterizzazione del cuore destro e rimanere aderente alla palloncino sgonfio dopo la rimozione dal corpo del paziente.

Raccolta delle cellule endoteliali dalle punte del palloncino del catetere di Swan-Ganz dopo cateterizzazione del cuore destro

Descriviamo un metodo per la lavorazione del fluido di lavaggio bronchoalveolar e corrisponde al sangue periferico di individui cronicamente affetti da HIV sulla terapia antiretrovirale per valutare i serbatoi polmonari di HIV. Questi metodi portano all'acquisizione di cellule T CD4 altamente pure e macrofagi alveolar che possono successivamente essere utilizzati per immunofenofizzazione e quantificazioni HIV DNA/RNA mediante reazione a catena di polimerasi ultrasensibili.

Trattamento del bronchoalveolar Lavage Fluid e del sangue abbinato per il macrofago alveoere e CD4- Immunofenotyping a cellule T e valutazione del serbatoio dell'HIV

Le cellule endoteliali linfatiche leptomeningee (LLEC), un tipo di cellula intracranica recentemente identificato, hanno funzioni poco conosciute. Questo studio presenta un protocollo riproducibile per la raccolta di LLEC dai topi e la creazione di colture primarie in vitro . Questo protocollo è progettato per consentire ai ricercatori di approfondire le funzioni cellulari e le potenziali implicazioni cliniche delle LLEC.

Raccolta e coltura primaria di cellule endoteliali linfatiche leptomeningee

Questo protocollo descrive in dettaglio l'isolamento di popolazioni vive immunitarie e non immuni dal polmone di topo allo stato stazionario e in seguito all'infezione influenzale. Fornisce inoltre strategie di gating per l'identificazione di sottogruppi di cellule epiteliali e mieloidi.

Isolamento di popolazioni di cellule mieloidi ed epiteliali vive dal polmone di topo

Un metodo rapido per ottenere leucociti infiltrati dal cervello murino è descritto. Questo metodo utilizza una pendenza costante Percoll e gradiente discontinuo di Ficoll selezionare e purificare i leucociti arricchito strato. Leucociti isolati può quindi essere caratterizzata da misure di citometria a flusso.

Isolamento di Brain-infiltrazione Leucociti

Impara la raccolta selettiva di leucociti marginanti-polmonari da polmoni di ratti e topi mediante perfusione forzata. Questa tecnica consente di studiare le funzioni immunologiche uniche di queste cellule.

La raccolta selettiva di Marginating-polmonari leucociti

Esplora altri video