Name: Misurazione della pressione sanguigna a lungo termine in topi liberi di muoversi utilizzando la telemetria (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-05-17T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 54 s
Description: Impara a misurare la pressione sanguigna a lungo termine in topi liberi di muoversi utilizzando la telemetria radiante impiantabile. Questo metodo consente il monitoraggio continuo dei parametri fisiologici senza artefatti da contenzione o anestesia.

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Questo lavoro è stato sostenuto dal National Institutes of Health (NIH/NHLBI) [Grant no. HL114869] e il supporto da UTHSC a SM.

Etica dichiarazione: Tutte le procedure origine animale di cui in questo video-articolo è stato esaminato e approvato dal Comitato di cura e l&#39;uso di animali (IACUC) presso l&#39;Università del Tennessee Health Science Center. Nota: utilizzare gli strumenti di microchirurgia sterili durante tutta la procedura chirurgica. Gli strumenti chirurgici possono essere sterilizzati utilizzando uno sterilizzatore infrarossa ad una temperatura ottimale di sterilizzazione 1.500 ° F (815,6 ° C). Telemetri possono essere riutilizzati, tuttavia, prima di inserirla nell&#39;animale assicurarsi di sterilizzare l&#39;intero trasmettitore secondo le istruzioni del produttore e che la punta del catetere è stata riempita con un gel speciale fornito dal produttore. 1. Gli animali sperimentali <ol><li> Ottenere l&#39;approvazione IACUC per tutti gli esperimenti che verranno eseguite. La consultazione con IACUC istituzionale è altamente raccomandato per quanto riguarda i requisiti per l&#39;uso di analgesici post-operatorio dopo questa procedura. </li><li> Tenere gli animali in ccamere limate controllata aventi una temperatura ambiente di 21 ° C, 60% umidità relativa, e un ciclo luce-buio di 12 ore con libero accesso a cibo e acqua. Nota: Perché il corpo del mouse deve accogliere la sonda telemetria (approssimativamente 1 cm di diametro x 2 cm di lunghezza), è preferibile utilizzare i topi che pesano 20 grammi. </li></ol> 2. Anestesia e preparazione Operativo <ol><li> Pesare il mouse usando una bilancia di precisione e registrare il suo peso. Assicurati di gestire l&#39;animale dolcemente e silenziosamente. </li><li> Posto l&#39;animale nella camera di induzione e chiuderlo. Impostare la velocità del flusso di ossigeno a 0,5 L / min e impostare la concentrazione isoflurano al 4-5%. </li><li> Quando il mouse perde conoscenza, metterlo su un piatto corpo riscaldamento mantenuto a 36-37 ° C. Mantenere l&#39;anestesia tramite nosecone con set isoflurano al 2% (tenere a portata di 0,5 l / min). </li><li> Preparare le regioni di funzionamento rimuovendo i capelli dalla parte posteriore del collo e tegli faccia ventrale del collo mediante l&#39;applicazione di crema depilatoria. </li><li> Trattare il sito di incisione con 3 applicazioni di lavaggio chirurgico (soluzione betadine) in alternanza con il 70% di alcol isopropilico. </li></ol> 3. Chirurgia <ol><li> Posizionare il mouse in posizione supina. Verificare la presenza di riflessi pizzicare il piede, e regolare l&#39;anestesia fino a quando non vi è alcuna risposta. Effettuare un approssimativamente 1 cm incisione mediana sotto il collo del mouse con un bisturi. Nel lato sinistro del taglio creare uno spazio sottocutaneo separando accuratamente la pelle dal tessuto connettivo sottostante. </li><li> Capovolgere il mouse, e utilizzare un bisturi per fare una incisione cutanea di circa 1,5 cm di lato dorsale sinistro dietro la scapola. Creare una tasca sottocutanea lungo il fianco dell&#39;animale sufficientemente grande per il dispositivo. Inserire il trasmettitore nella tasca. </li><li> Inserire un piccolo pinza emostatica nell&#39;incisione posteriore e manovrarlo sottocutanea verso la parte anterioreapertura del collo. Utilizzando la fascetta inserita-emostatico, prenda delicatamente un tubo in polietilene atossico (4 cm Lunghezza x 1 mm ID). <ol><li> Tirare il hemostat indietro attraverso il tunnel l&#39;incisione laterale nella parte posteriore finché il tubo sporge da entrambi addominale e dorsale incisione, rilasciare il tubo dal emostatico. Dalla parte posteriore, inserire il sensore catetere nel tubo per tunnel la punta del catetere di rilevamento della pressione attraverso il collo. Dalla anteriore del collo, tirare e rimuovere il tubo in polietilene e chiudere l&#39;incisione dorsale mediante clip metalliche. </li></ol></li><li> separare con cura le ghiandole mandibolari utilizzando applicatori di punta di cotone sterile e ritrarre la ghiandola mandibolare sinistra utilizzando un gancio elastico soggiorno. Utilizzando pinze curve punta fine, individuare la carotide lungo il lato sinistro della trachea. Mantenere il sito chirurgico sterile, mettendo e garantire un telino sterile. <ol><li> isolare con cura il recipiente dal tessuto circostante e delicatamente separare lanervo vago (colore biancastro) che si trova lungo l&#39;arteria carotide lontano dalla arteria. Fare attenzione a non tagliare o danneggiare il nervo o l&#39;arteria. </li></ol></li><li> Passare tre pezzi di non assorbibile 7-0 sutura sotto la sezione carotide isolato. Legare la sutura cranica per chiudere il flusso di sangue. Estrarre la sutura che è più vicino allo sterno per occludere temporaneamente il flusso di sangue dall&#39;aorta. </li><li> Fare un nodo sciolto utilizzando la sutura centrale. Questo verrà utilizzato per fissare il catetere nel vaso. Tagliare una piccola incisione nell&#39;arteria tra il cranio e le suture sternale con micro-forbici. </li><li> Afferra il catetere con una pinza speciale nave incannulamento, facendo attenzione a non comprimere il catetere per prevenire la perdita di gel dalla sonda. Delicatamente, afferrare l&#39;arteria con una pinzetta punta fine curvo pinze, recuperare il catetere, e inserirla nel vaso attraverso la piccola incisione. </li><li> Stringere il nodo di sutura intorno all&#39;arteria centrale e far avanzare con delicatezza il gattoheter. rilasciare delicatamente la sutura che è prossimale allo sterno e continuare ad avanzare il catetere verso l&#39;aorta trasversale. <ol><li> Osservare il contrassegno sul catetere che fornisce un indice approssimativa di quanto il catetere deve essere inserito. Una volta che il punto è raggiunto, delicatamente stringere sia inferiore e la sutura superiore intorno al catetere. Il catetere è fissato alla carotide dai nodi di sutura. </li></ol></li><li> Chiudere l&#39;incisione cutanea con non assorbibile 5-0 di sutura. Una volta chiusa, sigillare l&#39;incisione con tessuto adesivo. </li></ol> 4. chirurgico di recupero e BP Misure <ol><li> Monitorare animali da vicino per il ritorno di posture normali e comportamenti. Durante il periodo post-operatorio amministrare analgesia 24 ore come indicato da un veterinario del personale. </li><li> Una volta che gli animali hanno recuperato (5 - 7 giorni dopo l&#39;intervento), li alloggiare individualmente in una gabbia regolare del mouse posizionato sulla parte superiore della piastra ricevitore di telemetria. </li><li> Ruotare il TR impiantatoansmitters &quot;on&quot; e &quot;off&quot; utilizzando un dispositivo magnetico posizionati brevemente vicino all&#39;animale dall&#39;esterno della gabbia. </li></ol>

<ol><li>Danaei, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+preventable+causes+of+death+in+the+United+States%3A+comparative+risk+assessment+of+dietary%2C+lifestyle%2C+and+metabolic+risk+factors%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Med%22%5BJournal%5D)">The preventable causes of death in the United States: comparative risk assessment of dietary, lifestyle, and metabolic risk factors.</a> PLoS Med. 6 (4), e1000058(2009).</li>
<li>Dornas, W. C., Silva, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+models+for+the+study+of+arterial+hypertension%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biosci%22%5BJournal%5D)">Animal models for the study of arterial hypertension.</a> J Biosci. 36 (4), 731-737 (2011).</li>
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<li>Kurtz, T. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recommendations+for+blood+pressure+measurement+in+humans+and+experimental+animals.+Part+2%3A+Blood+pressure+measurement+in+experimental+animals%3A+a+statement+for+professionals+from+the+subcommittee+of+professional+and+public+education+of+the+American+Heart+Association+council+on+high+blood+pressure+research%5BTitle%5D)+AND+%22Hypertension%22%5BJournal%5D)">Recommendations for blood pressure measurement in humans and experimental animals. Part 2: Blood pressure measurement in experimental animals: a statement for professionals from the subcommittee of professional and public education of the American Heart Association council on high blood pressure research.</a> Hypertension. 45 (2), 299-310 (2005).</li>
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</ol>

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Impiantabile radio-telemetria è migliorata significativamente negli ultimi dieci anni; dimensioni più piccole della sonda rende l&#39;impianto meno traumatica per l&#39;animale, la durata della batteria prolungata aiuta a ridurre i costi, e le frequenze telemetro indipendenti eliminare le interferenze tra i ricevitori. Telemetria è considerato il metodo allo stato dell&#39;arte per la raccolta di una vasta gamma di parametri fisiologici da animali liberi di muoversi senza artefatti dovuti all&#39;uso di contenzione, int...

L&#39;ipertensione è uno dei principali fattori di rischio per le malattie cardiovascolari, senza dubbio si tratta di un grave problema di salute pubblica sia nei paesi sviluppati e in via di sviluppo 1. Diversi modelli animali di ipertensione sperimentale sono stati sviluppati per imitare risposte ipertensive come quelle osservate nell&#39;uomo 2. Tra gli altri, il mouse ambulatoriale rappresenta un ottimo modello per studiare la genesi e la progressione dell&#39;ipertensione permettendo nell&#39;analisi vivo delle conseguenze dell&#39;esposizione cronica a ipertensione. La pressione sanguigna (BP) monitoraggio nei topi ha aiutato i ricercatori a svelare diversi meccanismi coinvolti nella fisiologia e fisiopatologia delle malattie come l&#39;ipertensione e insufficienza cardiaca 3, 4. Infatti, la manipolazione del genoma del topo permesso generazione di transgenici o modelli gene targeting adatto per studiare l&#39;ipertensione 5, 6. Tuttavia, anche la manipolazione delicatadi topi consapevole induce emozioni che possono potenzialmente introdurre artefatti durante l&#39;acquisizione dei dati, mentre l&#39;uso di sedazione o tranquillanti profondamente influenzare la pressione sanguigna 7. Questi aspetti sono particolarmente importanti e devono essere presi in considerazione quando si tenta di monitoraggio a lungo termine BP. Ci sono diversi modi per registrare BP nei topi, e un confronto tra le tecniche più comuni attualmente disponibili sono stati discussi altrove 8, 9. Tuttavia, le raccomandazioni AHA per la misurazione BP concluso che la misurazione endoarteriosa di BP sono generalmente preferiti per la loro capacità di misurare direttamente BP per un periodo prolungato di tempo 10. Radio-telemetria accoppiato con la misura diretta della pressione arteriosa è il metodo di state-of-the-art per il monitoraggio delle funzioni fisiologiche in sveglio e liberi di muoversi animali da laboratorio, riducendo al minimo lo stress e manufatti per l&#39;ambiente associati 9, 11.Radio-telemetria offre la possibilità di raccogliere automaticamente la pressione arteriosa, frequenza cardiaca, la temperatura corporea e l&#39;attività degli animali provenienti da animali coscienti multipli. Anche se questa metodologia sta diventando molto popolare in molti laboratori, radio-telemetria impianto in topi può essere tecnicamente impegnativo. Qui mostriamo un protocollo passo-passo che illustra come impiantare un trasduttore di pressione nei topi. La tecnica prevede l&#39;inserimento sottocutaneo della sonda nel corpo del mouse, incanalare il catetere al collo e in avanti vicino all&#39;arco aortico attraverso l&#39;arteria carotide sinistra. dati in remoto catturati vengono trasmesse in diretta sul monitor del computer. I dati sono memorizzati anche per l&#39;analisi &quot;off-line&quot;.

<table><tbody><tr><td>Sistema per anestesia per piccoli animali</td><td>Kent Scientific Corp, Torrington, Connecticut, USA</td><td></td><td>sistema per anestesia per piccoli animali a basso flusso</td></tr><tr><td>Scaldapad e termometro per topi</td><td>Kent Scientific Corp, Torrington, Connecticut, USA</td><td></td><td>consente il monitoraggio della temperatura corporea e il controllo omeotermico nei piccoli animali</td></tr><tr><td>Microscopio binoculare</td><td>Kent Scientific Corp, Torrington, Connecticut, USA</td><td>Corpo binoculare KSCXTS-1121</td><td>con asta del supporto a braccio e</td></tr><tr><td>pinze emostatice</td> LED superiore <td>Kent Scientific Corp, Torrington, Connecticut, USA</td><td>INS750451</td><td>utilizzato per bloccare i vasi sanguigni o etichettare le suture</td></tr><tr><td>Piccole clip metalliche, 7 mm, acciaio inossidabile</td><td>Kent Scientific Corp, Torrington, Connecticut, USA</td><td>INS750344</td><td>utilizzato per la chiusura della pelle</td></tr><tr><td>Soluzione di betadina</td><td>Purdue Products L.P., Stamford, CT, USA</td><td>NDC-67618-150-01</td><td>Soluzione topica di iodio povidone al 10%</td></tr><tr><td>Soluzione salina normale</td><td>Abott Laboratories</td><td>04930-04-10</td><td>necessaria per prevenire l'essiccazione dei tessuti.</td></tr><tr><td>Nair (lozione depilatoria)</td><td></td><td></td> <td>necessario per la rimozione della pelliccia dal sito di incisione / chirurgia</td></tr><tr><td>Sutura di seta treccia</td><td>Teleflex Medical OEM, Coventry, Connecticut, USA</td><td></td><td>Taglia 5.0, 6.0, 7.0</td></tr><tr><td>Etanolo</td><td></td><td>2716</td><td>70% etanolo per la disinfezione</td></tr><tr><td>Forbici a molla&nbsp;</td><td>Strumento Fine Science</td><td>15000-10</td><td>per dissezione minore</td></tr><tr><td>Forbici (angolate lateralmente)</td><td>Strumento Fine Science</td><td>14063-011</td><td>Manico n. 3 Lama</td></tr><tr><td></td><td>bisturi</td><td>2976-0</td><td>N. 10</td></tr><tr><td>Pinze (curve)</td><td>Strumento Fine Science</td><td>11150-10</td><td>per trattenere i tessuti</td></tr><tr><td>Pinze (diritte)</td><td>Strumento Fine Science</td><td>11151-10</td><td>per trattenere i tessuti</td></tr><tr><td>Porta aghi&nbsp;</td><td>Strumento di scienza fine</td><td>12002-12</td><td>per sutura</td></tr><tr><td>Naso ad ago sottile Pinze</td><td>Strumento</td><td></td><td></td>di scienza fine</tr><tr><td>Isoflurano</td><td>Henry Schein&nbsp; Salute animale, Melville, New York, Stati Uniti</td><td></td><td>un agente anestetico per inalazione generale</td></tr><tr><td>Sterilizzatore</td><td>Benchmark Scientific, 116 Corporate Blvd, South Plainfield, NJ, USA</td><td>B1000</td><td>sterilizzare gli strumenti chirurgici in 5-10 secondi utilizzando il riscaldamento a infrarossi</td></tr><tr><td>Garze Pads</td><td>Johnson & Johnson, New Brunswick, NJ, USA</td><td>JJ8513</td><td>da utilizzare per la pulizia, la preparazione, lo sfregamento o la medicazione delle ferite Dispositivo di</td></tr><tr><td>telemetria</td><td>Data Sciences International, St. Paul, MN, USA</td><td>DSI-PA-C10</td><td>per registrare la pressione sanguigna nei mouse che si muovono liberamente Sistema</td></tr><tr><td>di ricezione della telemetria&nbsp; accartocciato con un PC</td><td>Data Sciences International, St. Paul, MN, USA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tubing</td><td>Instech Laboratories, Plymouth Meeting, PA USA</td><td>BTPE-90</td><td></td></tr><tr><td>Pinze per incannulamento dei vasi, 13 cm, 0,5 mm OD</td><td>World Precision Instruments</td><td>503374</td><td>speciali pinze per incannulamento dei vasi</td></tr><tr><td>Adesivo per tessuti</td><td>3M Animal Care Products, St. Paul, MN, USA</td><td>NAC No.:&nbsp; 11380041</td><td>utilizzare per chiudere piccole ferite, spesso eliminando la necessità di suture e/o bende</td></tr><tr><td></td><td></td><td>Bilancia analitica da laboratorio di precisione</td> <td>BB300</td></tr></tbody></table>

misurazione della pressione sanguigna a lungo termine in topi liberi di muoversi utilizzando la telemetria

Long-term Blood Pressure Measurement in Freely Moving Mice Using Telemetry

Durante lo sviluppo di nuovi agenti vasoattivi, monitoraggio della pressione arteriosa è cruciale per valutare l&#39;efficacia di nuovi farmaci proposti. In effetti, la ricerca incentrata sulla scoperta di nuovi potenziali bersagli terapeutici utilizzando topi geneticamente modificati richiede un giudizio affidabile a lungo termine della variazione di pressione arteriosa sistemica. Attualmente, il gold standard per l&#39;ottenimento di misure a lungo termine della pressione sanguigna nei topi ambulatoriali utilizza impiantabili di radio-trasmettitori, che richiedono incannulamento arteria. Questa tecnica elimina la necessità di legare, immobilizzare o anestetizzare gli animali che introducono stress e manufatti durante il campionamento dei dati. Tuttavia, il monitoraggio della pressione arteriosa nei topi tramite cateterizzazione può essere piuttosto difficile a causa delle ridotte dimensioni delle arterie. Qui vi presentiamo una guida passo-passo per illustrare i passaggi chiave cruciali per un impianto sottocutaneo di successo di radio-trasmettitori e carotide cannulation nei topi. Abbiamo anche esempi di attività di pressione sanguigna a lungo termine presi dai topi liberi di muoversi dopo un periodo di recupero post-operatorio. A seguito di questa procedura consentirà registrazioni della pressione sanguigna diretta affidabili da più animali contemporaneamente.

I dati possono essere acquisiti in remoto da un ricevitore; tracce vengono visualizzate su uno schermo di computer per il controllo di qualità (Figura 1a). Dettagli come ID animale, pressione diastolica e pressione arteriosa sistolica sono indicate anche (Figura 1b). Arteriosa BP può essere registrata in continuo (24/7), o per brevi intervalli programmati (ad esempio, 60 sec acquisizione ogni ora). I dati possono essere memorizzati automaticamen...

L'obiettivo di questo protocollo è valutare la pressione sanguigna sistemica in topi coscienti che si muovono liberamente utilizzando dispositivi di radio-telemetria impiantabili.

Misurazione della pressione sanguigna a lungo termine in topi liberi di muoversi utilizzando la telemetria

During the development of new vasoactive agents, arterial blood pressure monitoring is crucial for evaluating the efficacy of the new proposed drugs. ...

Lo scopo di questo protocollo è valutare la pressione arteriosa sistemica in topi coscienti e liberamente in movimento mediante dispositivi di telemetria radioimplantabili. Questo metodo può contribuire a rispondere a domande fondamentali nel campo delle malattie vascolari e consente la valutazione di numerosi fattori coinvolti nella regolazione della pressione arteriosa. Il principale vantaggio di questa tecnica è che permette la raccolta di una vasta gamma di parametri fisiologici da animali liberamente in movimento, evitando gli artefatti associati all'uso di contenimenti, all'interazione umana o all'anestesia, necessari invece in altre tecniche.Allevare gli animali per questo studio a 21 gradi Celsius con un'umidità relativa del 60% in un ciclo luce/buio di 12 ore, con libero accesso a cibo e acqua. Pesare un topo selezionato, maneggiandolo con delicatezza e calma. Poiché il corpo deve poter ospitare una sonda telemetrica, il topo deve pesare almeno 20 grammi.Per indurre l'anestesia, utilizzare una camera di induzione con una concentrazione di isoflurano dal quattro al cinque percento erogata a 0,45 litri al minuto. Trasferire il topo incosciente su una piastra riscaldata ed erogare il due percento di isoflurano attraverso un cono nasale. Successivamente, verificare lo stato anestetico mediante una compressione del dito del piede.Se il topo non reagisce, procedere con la depilazione della parte ventrale del collo utilizzando una crema depilatoria. Rimuovere quindi i peli e l'eccesso di crema e detergere la pelle con tre applicazioni alternate di betadina e alcol isopropilico al 70%. I telemetri utilizzati in questo esperimento possono essere riutilizzati se vengono sterilizzati seguendo le istruzioni del produttore e le punte dei loro cateteri vengono riempite con il gel fornito dal produttore.Ora, con il topo in posizione supina, effettuare un'incisione mediana di un centimetro al di sotto del collo del topo utilizzando un bisturi. Sul lato sinistro dell'incisione, creare uno spazio sottocutaneo separando con attenzione la pelle dal tessuto connettivo sottostante. Successivamente, girare il topo e utilizzare un bisturi per praticare un'incisione di 1,5 centimetri sul lato dorsale sinistro, dietro la scapola.Creare quindi una tasca sottocutanea sufficientemente ampia da contenere il dispositivo. Inserire ora il trasmettitore nella tasca. Successivamente, inserire una piccola pinza emostatica nell'incisione posteriore e manovrarla sottocutaneamente verso l'apertura anteriore del collo.Utilizzando la pinza, afferrare delicatamente un tubo di plastica lungo quattro centimetri ed estrarre l'emostatico attraverso il tunnel e fuori dall'incisione laterale nella schiena. Sbloccare il tubo una volta che sporge sia dall'incisione addominale che da quella dorsale. Inserire ora dalla schiena il sensore del catetere nel tubo per far passare la punta del catetere sensore di pressione attraverso il collo.Quindi, dal collo in senso anteriore, estrarre e rimuovere il tubo in polietilene e chiudere l'incisione dorsale utilizzando clip metalliche. Successivamente, separare con attenzione le ghiandole mandibolari usando applicatori di cotone. Poi, retrarre la ghiandola mandibolare sinistra utilizzando un gancio elastico di mantenimento.Ora, utilizzando pinzette curve con punta fine, individuare l'arteria carotide lungo il lato sinistro della trachea e isolare con cura il vaso dal tessuto circostante. Successivamente, separare delicatamente il nervo vago dall'arteria carotide, avendo cura di non recidere né danneggiare né il nervo né l'arteria. Una volta separati, passare tre pezzi di sutura non riassorbibile 7-0 sotto l'arteria carotide isolata e legare la sutura craniale per interrompere il flusso sanguigno.Tirare il punto più vicino allo sterno per occludere temporaneamente il flusso sanguigno dall'aorta. A questo punto, fare un nodo lento utilizzando il punto centrale per fissare il catetere. Quindi praticare una piccola incisione nell'arteria tra i punti utilizzando forbici microchirurgiche.Utilizzando pinze speciali per la cannullazione dei vasi, fissare delicatamente il catetere in modo che la sonda non venga schiacciata ed espulsa. Quindi, utilizzare pinze aforcipelle per afferrare delicatamente l'arteria. A questo punto, recuperare il catetere e inserirlo nel vaso attraverso la piccola incisione.Il passaggio più critico di questo protocollo è l'inserimento della sonda nel vaso. Pertanto, assicurati di essere rilassato e di sedere comodamente mentre lo esegui, poiché una buona coordinazione manuale è fondamentale per questa fase. Successivamente, stringi il nodo della sutura centrale attorno all'arteria e avanza delicatamente il catetere.Quindi rilasciare delicatamente il punto di sutura prossimale allo sterno e continuare ad avanzare il catetere verso l'aorta trasversa. Quando si avanza il catetere nell'arteria carotidea, è importante osservare l'estremità mic del sonda. Procedere troppo in profondità ostruirebbe l'aorta e il topo morirebbe.Dopo aver inserito il catetere fino al segno corretto, stringere delicatamente entrambi i punti inferiori e superiori intorno al catetere per fissarlo all'arteria carotidea. Infine, chiudere l'incisione cutanea con un punto non riassorbibile 5-0 e sigillare l'incisione con adesivo tissutale. Monitorare il topo nel periodo postoperatorio fino a quando non riprende posture e comportamenti normali.Nelle prime 24 ore somministrare l'analgesia secondo le indicazioni del veterinario responsabile. Una volta che gli animali si sono ripresi, dopo cinque o sette giorni dall'intervento chirurgico, alloggiarli singolarmente in gabbie standard per topi posizionate sopra la piastra ricevente della telemetria. Per raccogliere i dati, posizionare la gabbia del topo sopra la piastra ricevente della telemetria e accendere il trasmettitore utilizzando il dispositivo magnetico del produttore.Dopo la procedura descritta, i dati possono essere acquisiti a distanza mediante un ricevitore. I tracciati vengono visualizzati su uno schermo del computer per il controllo di qualità. Vengono mostrati anche dettagli come l'identificativo dell'animale, la pressione sanguigna diastolica e sistolica e la data di acquisizione.La pressione arteriosa può essere registrata in modo continuo o a intervalli brevi programmati. Un risultato facilmente osservabile dalle registrazioni continue della pressione arteriosa nei topi è che segue un ritmo circadiano. Dopo aver visto questo video, si dovrebbe avere una buona comprensione di come impiantare sonde di telemetria per il monitoraggio basale nei topi neri.Una volta padroneggiata, questa tecnica può essere eseguita in 30 minuti se viene effettuata correttamente.

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Gli 8-Channel High Throughput CODA sistema non invasivo della pressione arteriosa misura la pressione arteriosa in un massimo di 8 topi o ratti contemporaneamente. Questa coda polsino sistema utilizza la pressione del volume di Registrazione (VPR) per misurare la pressione arteriosa attraverso la determinazione del volume di sangue coda.

Misurazione della pressione sanguigna nei topi mediante pressione del volume di registrazione, una coda-bracciale Metodo

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L&#39;impianto di trasmettitori Radiotelemetry Cedendo dati su ECG, frequenza cardiaca, temperatura corporea e attività di movimento libero topi di laboratorio

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Monitoraggio della sistemici e epatica parametri emodinamici nei topi

Topi anestetizzati mostrano non-fisiologica pressione arteriosa sistemica, che preclude una valutazione significativa del tono autonomo dato l'intima relazione tra pressione sanguigna e il sistema nervoso autonomo. Così, è descritto un metodo novello per attività simpatica renale contemporaneamente record del nervo e pressione del sangue con l'infusione endovenosa in topi coscienti.

Nuovo approccio per la registrazione simultanea di attività simpatica renale del nervo e pressione del sangue con l'infusione endovenosa in consapevole, topi sfrenati.

Qui, descriviamo una configurazione per la registrazione simultanea di elettrocardiografia e pressione sanguigna intra-arteriosa (BP) in ratti sperimentali, che possono essere fatto con attrezzatura standard in strutture per animali e possono essere applicati a fisiologiche o farmacologiche studi per studiare i meccanismi patogeni o terapeutici nella medicina cardiovascolare.

Elettrocardiografia simultanea registrazione e invasiva sangue pressione misura in ratti

Il baroriflesso è un meccanismo di regolazione della frequenza cardiaca da parte del sistema nervoso autonomo in risposta ai cambiamenti della pressione sanguigna. Descriviamo una tecnica chirurgica per impiantare trasmettitori di telemetria per la misurazione continua e simultanea dell'elettrocardiogramma e della pressione sanguigna nei topi. Questo può determinare la sensibilità baroriflessa spontanea, un importante marker prognostico per le malattie cardiovascolari.

Impianto combinato di ECG telemetrico e trasmettitori di pressione sanguigna per determinare la sensibilità baroriflessa spontanea in topi coscienti

Il presente protocollo descrive una misurazione continua a lungo termine del flusso sanguigno renale in ratti coscienti e contemporaneamente la registrazione della pressione sanguigna con cateteri impiantati (riempiti di liquido o per telemetria).

Misurazione continua a lungo termine del flusso sanguigno renale nei ratti coscienti

Questo protocollo fornisce una procedura passo-passo per l'esecuzione della somministrazione di dosi multiple in bolo endovenoso e il monitoraggio emodinamico invasivo nei topi. I ricercatori possono utilizzare questo protocollo per il futuro screening dei composti terapeutici per l'ipertensione arteriosa polmonare.

Dosaggio multiplo in bolo endovenoso e valutazione emodinamica invasiva in un modello murino di ipertensione arteriosa polmonare indotta da ipossia

Qui, descriviamo un metodo semplice per impiantare un monitor glicemico continuo commerciale progettato per i pazienti sui topi e forniamo gli script per analizzare i risultati.

Semplice monitoraggio continuo del glucosio in topi che si muovono liberamente

Un modello murino per lesioni ventilatore polmonare indotta è un importante strumento per studiare una lesione acuta del...

Pressione di ventilazione controllata per indurre lesioni polmonari acute nei topi

Impara a misurare la pressione sanguigna a lungo termine in topi liberi di muoversi utilizzando la telemetria radiante impiantabile. Questo metodo consente il monitoraggio continuo dei parametri fisiologici senza artefatti da contenzione o anestesia.

Misurazione della pressione sanguigna a lungo termine in topi liberi di muoversi utilizzando la telemetria

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