Name: Roditore Working Model Cuore per lo Studio della performance miocardica e consumo di ossigeno (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-08-16T14:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 43 s
Description: Impara a preparare un modello di cuore isolato sinistro da roditore per studiare la performance miocardica e il consumo di ossigeno. Questa tecnica consente il controllo preciso delle condizioni di precarico e postcarico ventricolare.

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Le attrezzature e gli esperimenti qui descritti sono stati finanziati dal Dipartimento di Cardiologia, Ospedale dei bambini Boston e da donazioni filantropiche della famiglia Haseotes. Siamo grati al Drs. Frank McGowan e Huamei Lui per averci fornito le prime esperienze con questo modello, e per Lindsay Thomson per l&#39;assistenza con opere d&#39;arte.

Questo protocollo viene eseguita in un protocollo di corrente sotto comitato cura degli animali e l&#39;uso dell&#39;istituzione. 1. Preparazione per lo Studio <ol><li> Accendere bagnomaria per riscaldare il serbatoio tampone Krebs-Henseleit (KHB) (impostato a 42 ° C). </li><li> Preparare 16 L di KHB contenente (in mM) 128 NaCl, 5.7 KCl, 1,3 MgSO 4, 25 NaHCO 3, 2.7 CaCl 2, 0,53 EDTA, 0.54 NaC 3 H 3 O 3, e 10.8 destrosio. 13 Le masse substrato sono le seguenti : 27,584 g NaCl, 1,58 g di KCl, 0,578 g MgSO 4, 8,401 g NaHCO 3, 1,47 g CaCl 2, 0,744 g di EDTA, 0,22 g NaC 3 H 3 O 3 e 7.208 g di destrosio. Nota: questi componenti possono essere conservati in provette coniche in forma di polvere per la costituzione del giorno di sperimentazione. <ol><li> Filtro 4 L di acqua deionizzata attraverso un filtro da 0,22 micron. </li><li> Aggiungere 3,7 L di questa acqua per un 4 Lbecher. Aggiungere tutti i componenti eccetto CaCl 2 all&#39;acqua. </li><li> Sciogliere il CaCl 2 nei restanti 300 ml di acqua, utilizzando un becher separato. </li><li> Ossigenare la soluzione con 95% O 2/5% CO 2 a 1 L / min (LPM) per 5 min. Questo corregge il pH a 7,40 e migliora dissoluzione CaCl 2. </li><li> Aggiungere il CaCl 2 al resto del KHB. </li><li> Aggiungere il KHB completato ad un serbatoio e far circolare attraverso tutti i tubi per 30 min. Assicurarsi che il sistema sia privo di bolle macroscopiche. Ossigenare con il 95% O 2/5% di CO 2 a 0,5 LPM. NOTA: KHB può essere conservato notte in frigorifero per non più di 1 - 2 giorni riportato a temperatura ambiente e ri-filtrato per uso. Non riutilizzare KHB tra esperimenti. </li><li> Preparare 2 x 50 ml bicchieri puliti con KHB ghiacciata e metterli in un secchio di ghiaccio nei pressi della stazione di dissezione. Assicurarsi che il KHB è ghiacciata (piuttosto che fredda) prima di ex<html> piantare cuore. </li><li> Posizionare il catetere micro pressione-volume (PV) in una siringa da 10 ml riempita con filtrato KHB per 30 minuti prima della calibrazione, secondo le istruzioni del produttore. NOTA: Temperatura di KHB utilizzato per bagnare il catetere fotovoltaico dovrebbe essere il più vicino a 37 ° C il più possibile. </li></ol></li><li> Preparare l&#39;anestesia e la stazione di dissezione per l&#39;animale. <ol><li> Provvedere ad una sufficiente isoflurano nel serbatoio. Elaborare 500 U di eparina in una siringa da 1 ml; posizionare un ago calibro 26 (1/2 &quot;) su questo siringa. Preparare una maschera per anestetizzare l&#39;animale. </li></ol></li><li> Impostare la pressione di perfusione blocco aortica a 80 mmHg e la atriale sinistro (LA) pressione di perfusione blocco a 10 mmHg. Aprire sia il blocco aortica e blocco per consentire LA caldo KHB a gocciolare fuori. Quando si è pronti a sezionare l&#39;animale, aprire il blocco aortica per consentire un lento e costante flebo di KHB fuori. </li><li> Calibrare il catetere fotovoltaico in base alle istruzioni del fabbricante. </li></ol>&quot;&gt; 2. Preparazione degli animali e la dissezione NOTA: Per ottenere i migliori risultati, assicurarsi animale è tra 300 e 500 g; abbiamo trovato che un peso dell&#39;animale tra i 425 a 450 grammi è ideale per il nostro sistema. <ol><li> Anestetizzare l&#39;animale in una camera di isoflurano utilizzando (1 - 2%) finché l&#39;animale è inconscia. Trasferire l&#39;animale alla stazione di dissezione e posizionare la maschera di anestesia con isoflurano e ossigeno sull&#39;animale. Eseguire punta pizzico per valutare il livello di sedazione. Applicare veterinario pomata sugli occhi per prevenire la secchezza mentre sotto anestesia. </li><li> Iniettare eparina, 500 unità intraperitoneale nella cavità addominale. Lasciare 10 min per l&#39;eparina di essere assorbito. Fissare gli arti dell&#39;animale con nastro per migliorare la visualizzazione del torace. </li><li> La dissezione del cuore. <ol><li> Una volta garantendo che non vi è alcuna risposta ad una presa punta, sollevare la pelle lontano dalla cavità addominale con una pinza e quindi utilizzare le forbici per incidere la cavità peritoneale, seguendo la curva di tsi diaframma torna all&#39;angolo posteriore delle costole. </li><li> Una volta che il diaframma è visibile, utilizzando piccole forbici, tagliare lungo la superficie anteriore del diaframma seguendo la direzione dei tagli prima di consentire l&#39;ingresso nel torace. Estendere ogni taglio lungo la linea ascellare bilaterale per l&#39;ascella. NOTA: I passi successivi devono essere eseguiti in modo efficiente in quanto la ventilazione sarà compromessa una volta che il diaframma è inciso. </li><li> Ritrarre la gabbia toracica anteriormente dal processo xifoideo con pinze. Incidere il pericardio e della pleura. </li><li> Identificare la vena cava inferiore (IVC) e l&#39;aorta appena sopra il diaframma e ritrarre loro in blocco anteriormente con pinze smussato. </li><li> Utilizzando grandi, forbici curve, rapidamente fare un&#39;incisione attraverso il IVC e l&#39;aorta, tirando il cuore e polmoni dalla cassa in blocco. Tagliare l&#39;esofago, trachea, arterie e vene brachiocefalici cranialmente per rimuovere il cuore ed i polmoni dal torace. Accise L&#39;tuatessuto microfono con questo blocco di tessuto. Fare attenzione a non tagliare la porzione prossimale dell&#39;aorta ascendente. </li><li> immergere immediatamente il cuore e polmoni in KHB ghiacciata e spostare all&#39;apparato Langendorff, precedentemente impostato come descritto al punto 1. </li></ol></li></ol> 3. aortica Cannulazione <ol style="margin-left: 40px;"><li> Posizionare il complesso cuore-polmoni in un piatto piano e orientare il cuore con il timo e dei grossi vasi di fronte lo sperimentatore e l&#39;aspetto posteriore dei polmoni di fronte al tavolo. Separare i due lobi del timo e identificare il decollo delle arterie brachiocefalici dall&#39;aorta. <ol><li> Telo l&#39;aorta oltre il bordo del piatto e transetto aorta utilizzando piccole forbici circa 5 mm al di sopra della valvola aortica, appena prossimale al decollo dell&#39;arteria succlavia destra. NOTA: L&#39;incisione dovrebbe produrre un cerchio rotondo pulita - l&#39;aorta in sezione trasversale. Se è angolari (cioè, un ovale largo)o incompleti, ripetere il taglio per ottenere il risultato desiderato. Ciò faciliterà efficiente incannulazione aortica. </li></ol></li><li> Usando 2 coppie di pinze curve su entrambi i lati dell&#39;aorta, guidare l&#39;aorta sopra la cannula aortica (che dovrebbe essere gocciolando lentamente con KHB). La valvola aortica dovrebbe sedersi 1 - 2 mm sotto la punta della cannula. <ol><li> Dopo dell&#39;aorta incannulamento, riposizionare la pinza perpendicolarmente l&#39;aorta per contenere l&#39;aorta in posizione. In alternativa, mettere un piccolo fascetta attraverso l&#39;aorta per tenere il complesso polmone cuore a posto, permettendo un singolo sperimentatore per completare questo modello. </li></ol></li><li> Avere un assistente passare una sutura di seta 4-0 proprio sotto la pinza e cravatta in posizione, loop intorno alla cannula e legando più volte, sia davanti e dietro il cuore. Aprire la cannula completamente per iniziare pieno flusso aortico retrogrado. Osservare il cuore battere con vigore. NOTA: Se il cuore non inizia a battere rapidamente (~ 200 BPM) e vigorosamente, lacravatta o cannula può essere occludere una o entrambe le arterie coronarie. Se si sospetta, rimuovere la fascetta e riposizionarlo lontano dalle arterie coronarie. Se il cuore si distende e non batte, la cannula può essere attraverso la valvola aortica. Se le perdite delle arterie coronarie (KHB spray dalla radice aortica), avanzare la cannula più vicino alla valvola aortica (questo fenomeno può verificarsi se una arteria anonima è cannulate in sostituzione dell&#39;aorta ascendente). </li></ol> 4. polmonare occlusione della vena e preparazione dell&#39;arteria polmonare per Incannulamento NOTA: Lo scopo di questa fase è quello di creare un sistema atriale sinistra chiuso per assicurare che tutto il volume e la pressione dal blocco atriale sinistra vengono trasmessi alle strutture cardiache sinistre. La mancata per occludere completamente le vene polmonari potrebbe risultare in deficit di precarico e può falsare i risultati o creare una preparazione instabile cuore di lavoro. <ol><li> Rimuovere il timo per migliorare l&#39;esposizione dei tharteria polmonare e (PA). </li><li> ruotare manualmente la cannula aortica in modo che la faccia posteriore del cuore sia rivolto verso l&#39;operatore. Sezionare i vasi che portano al polmone destro. Sospendere il tessuto polmonare destra usando pinze per delineare ulteriormente questi vasi. Uso di clip chirurgici medio-grandi (o di sutura), occludere l&#39;arteria e la vena giusta polmonare e dei bronchi con una singola clip. Resecare il distale polmone destro alla clip. NOTA: a causa di difficoltà di dissezione dell&#39;arteria polmonare libera, la nostra pratica è per occludere le vene polmonari per distendere l&#39;arteria polmonare, rendendo più facile per incidere senza ferire le strutture vicine in un modello di cuore che batte. </li><li> Ripetere il passaggio 4.2 sul polmone sinistro. NOTA: potenziali insidie ​​e la soluzione dei problemi: Una volta che entrambe le arterie polmonari sono occluse, l&#39;atrio destro si visibilmente distendere e il cuore possono diventare bradicardia. Questo perché il ventricolo destro diventa pressurizzato. Se ciò non si verifica, è probabile che il pulmvene coronarico non sono completamente occluse, e che precarico saranno sufficienti per lavorare in modalità cuore. Se il cuore non è in grado di mantenere la gittata cardiaca dopo atriale sinistro (LA) incannulamento e tentato transizione al cuore (vedi sotto) di lavoro, è consigliabile inserire ulteriori clip o una cravatta attorno ai ceppi della vena polmonare per occludere qualsiasi perdita residua. Una volta che le PA sono occluse, tuttavia, Step 5 dovrebbe essere eseguita immediatamente per ridurre al minimo l&#39;ischemia miocardica. Si noti che alcuni ricercatori incise polmonare prima legatura delle vene polmonari per evitare pressurizzazione del ventricolo destro. </li><li> Polmonare arteriosa incisione <ol><li> Ruotare la cannula aortica in modo che l&#39;aspetto anteriore del cuore è rivolto verso l&#39;operatore. Identificare l&#39;arteria polmonare. Di nuovo, questa arteria può essere disteso. Utilizzando piccole forbici fare una incisione trasversale circa 3 mm sopra la valvola polmonare. NOTA: Questo sarà immediatamente alleviare la pressione e la frequenza cardiaca può aumentare. Esserecausare questo cannula è facile da rimuovere, cannulate l&#39;arteria polmonare dopo incannulamento atriale sinistra è completa. </li></ol></li></ol> 5. atriale sinistra Incannulamento <ol><li> Ruotare la cannula aortica modo che l&#39;atrio sinistro sia rivolto verso l&#39;operatore. Utilizzando le piccole forbici, fare un 2 - mm incisione 3 nel corpo superiore dell&#39;atrio sinistro, circa 3 mm sopra la scanalatura atrioventricolare. <ol><li> Posizionare la cannula atriale sinistra perpendicolare al piano della valvola mitrale e puntato verso il setto atriale. </li><li> Aprire la cannula LA fino KHB scorre. Assicurarsi che il KHB è calda al tatto (che si raffreddi in fretta quando si è seduti in qualsiasi tubi non-giacca) in modo da evitare disfunzione miocardica a causa di ipotermia seguente passaggio alla modalità di funzionamento. Transizione verso un tasso di gocciolamento durante l&#39;incannulamento. </li></ol></li><li> Utilizzando pinze per tenere contro-trazione, inserire la cannula atriale nel corpo dell&#39;atrio sinistro, facendo attenzione a non usare excessive la forza, che può strappare l&#39;atrio. NOTA: La cannula LA deve essere posizionato in modo che si trova nel mezzo dell&#39;atrio senza alcuna tensione sulla parete atriale. </li><li> Far passare una sutura 4-0 di seta intorno al corpo dell&#39;atrio sinistro e fare un nodo per creare un sigillo dell&#39;atrio attorno alla cannula. Fare attenzione che la faccia posteriore dell&#39;atrio sinistro è incluso nella sutura. Aggiungere suture supplementari necessarie. Una volta sigillato, tirare indietro la cannula 1 - 2 mm in modo che esso si trova nel mezzo dell&#39;atrio piuttosto che contro il setto atriale. NOTA: Il motivo più comune che il cuore diventa malperfused in sede di transizione di lavorare in modalità cuore è che la cannula LA confina con il setto atriale, che occlude l&#39;afflusso atriale sinistra. Il tracciato LA cambia spesso per dimostrare una vera e propria onda d&#39;onda e v quando la cannula è nella posizione corretta (vedi Figura 2E). </li><li> Aprire la valvola cannula LA interamente per amministrare la piena precarico per l&#39;atrio sinistro. monitorare latasso a goccia dal cuore (che viene da effluenti coronarica). Assicurarsi che il tasso di gocciolamento non cambia quando la cannula LA è aperto. Se lo fa, retie l&#39;atrio attorno alla cannula come descritto al punto 6.4, poiché questo rappresenta una perdita nel sistema. </li></ol> 6. Cannulazione arteria polmonare e di transizione alla modalità di funzionamento del cuore <ol><li> Se la misurazione del consumo di ossigeno del miocardio (o altre sostanze in effluenti coronarica, quali livelli di farmaco o citochine), inserire 1/32 &quot;tubo flessibile nella incisione prima nell&#39;arteria polmonare. NOTA: Il consumo di ossigeno è misurato come la differenza di contenuto di ossigeno tra perfusato atriale sinistra e effluenti arteria polmonare 2. <ol><li> Per la misura continua del consumo di ossigeno del miocardio, utilizzare un elettrodo di ossigeno in linea di confrontare atriale sinistra ed effluenti seno coronarico. </li><li> Raccogliere effluente del seno coronarico (sia dal arteria polmonare e che gocciola dal cuore) in un cyl graduatoinder per la quantificazione temporizzata del flusso coronarico. </li><li> Calcolare il consumo di ossigeno del miocardio come precedentemente descritto. 2 </li></ol></li><li> Transizione di lavorare in modalità cuore spegnendo la pompa aortica retrograda. NOTA: Quando questo è fatto, la pressione LA diventa la pressione di precarica e il resistore precedentemente fornendo resistenza alla pompa retrogrado nella modalità Langendorff fornisce ora resistenza alla gittata cardiaca, creando una pressione arteriosa media. Se la pressione arteriosa media declina sotto ~ 80 mmHg, la causa è probabilmente correlato a uno o precarico funzione miocardica. Il problema più probabile è la cannula atriale sinistra, che devono essere adeguati dopo il riavvio della pompa retrograda. </li></ol> 7. Inserimento del ventricolo sinistro Volume Pressione Catetere NOTA: Il catetere PV può essere posizionato sia retrograda (attraverso la valvola aortica) o tramite foratura apicale. Il vantaggio di retrograda è che posizione è più coerente ed evita la necessità di foratura apicale ei rischi concomitanti lesioni coronarica o perdita di precarico. Tuttavia, il posizionamento retrogrado a volte può essere molto impegnativo, in modo che entrambe le tecniche descrivere qui. <ol><li> Attaccare un catetere 1.4 pressione-volume francese al sistema a ciclo pressione volume. Calibrare il sistema a caldo KHB secondo le istruzioni del produttore. Assicurarsi la forma d&#39;onda è visibile in tempo reale. Portare il catetere e cavi vicino alla superficie del LV in modo da non staccare seguendo posizionamento. </li><li> Per il posizionamento retrogrado, aprire la valvola regolabile e nutrire il catetere PV delicatamente attraverso la valvola aortica fino a quando vengono identificati una pressione stabile e la forma d&#39;onda del volume. Evitare l&#39;uso eccessivo della forza che può danneggiare la valvola aortica o forare l&#39;apice del ventricolo. NOTA: Abbiamo trovato che è importante ridurre al minimo la lunghezza dei tubi e del numero di giri che il catetere PV deve navigare avvicinarsi al AV. essopuò essere utile per ridurre il tubo che viene fornito con il sistema. </li><li> Per il posizionamento apicale, utilizzare un 24 G angio-catetere per creare una foratura apicale nel LV. Assicurati di evitare discendente anteriore dell&#39;arteria coronaria. Obiettivo l&#39;ago verso la valvola aortica dall&#39;apice del ventricolo. Avanzare il catetere pressione-volume nel corpo del LV. Arrestare avanzare il catetere non appena la pressione e il volume waveform LV è identificato. </li><li> Una volta che il catetere di pressione-volume è in posizione, spostare la camicia d&#39;acqua in posizione intorno al cuore. Fissare il catetere alla parete della camicia d&#39;acqua con un piccolo pezzo di nastro. </li><li> Garantire almeno un periodo di 30 minuti di stabilità prima di iniziare qualsiasi misurazione o interventi. </li></ol> 8. L&#39;infusione di farmaci <ol><li> (Opzionale) Infondere farmaci (ad esempio, dopamina) nel blocco atriale sinistra utilizzando una pompa farmaco standard. NOTA: Abbiamo i farmaci dosati secondo il da te peso corporeo dell&#39;animale dal flusso equivalente ad una gittata cardiaca intera passa attraverso il blocco atriale; solo una piccola parte di questo passa attraverso la circolazione coronarica, come avviene in vivo. In alternativa, una seconda serie di perfusato può essere creato con una concentrazione prefissato di farmaco e usato per perfusione cuore. NOTA: Nel nostro protocollo, abbiamo infondere farmaci per un periodo di 12 min, raccogliendo dati fisiologici durante la finale 10 min di ogni infusione e confrontandola con una immediatamente precedente 10 min basale. </li></ol> 9. fisiologici Manipolazioni <ol><li> Frequenza cardiaca <ol><li> (Opzionale) sutura due fili di stimolazione sulla parete dell&#39;atrio destro e collegare a un dispositivo di stimolazione temporanea. NOTA: Ciò consente un preciso controllo della frequenza cardiaca (sopra la frequenza sinusale nativo) e la comprensione del rapporto tra la frequenza cardiaca e della contrattilità indipendente da un farmaco cardiotonico. </li></ol></li><li> precarico <ol><li> variare laprecarico (definita come il volume diastolica del ventricolo sinistro) variando l&#39;altezza della colonna di alimentare il blocco atriale sinistra. </li></ol></li><li> Pressione sanguigna <ol><li> Manipolare la pressione del sangue (il determinante primario di post-carico in questo modello) utilizzando le valvole di pressione sulla IH-51. </li></ol></li><li> contenuto di ossigeno coronarica <ol><li> Realizzare vari gradi di ipossia miocardica mediante perfusione del cuore con KHB saturi in varie miscele di gas. Per fare ciò, utilizzando serbatoi rivestiti separati (ciascuno con una propria miscela di gas) al fine di garantire l&#39;equilibrio tra il gas e KHB. </li><li> Realizzare ischemia coronarica da sutura legando un coronarica distale. NOTA: La legatura delle arterie coronarie prossimali in modalità cardiaca di lavoro può causare disfunzione miocardica letale. </li><li> Indurre ischemia coronarica globale interrompendo o ritardare la perfusione retrograda per un periodo di tempo definito. </li></ol></li></ol>

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</ol>

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Questo modello cuore di lavoro permette valutazione della funzione ventricolare con il pieno controllo del precarico ventricolare e post-carico, tensione di ossigeno del perfusato, così come la frequenza cardiaca. Tra gli altri fattori, permette la valutazione degli effetti del miocardio intrinseche dei farmaci inotropi indipendenti di post-carico e precarico, che modi che non sono possibili utilizzando un modello in vivo. Poiché questo modello utilizza un perfusato cristalloide, permette la valutazione del miocardio senza interferenza da emoglobina, semplificare l&#39;analisi spettroscopica di stati di energia del miocardio, per esempio. 14 In questo modello, l&#39;atrio destro non viene cannulata come parte di una strumentazione, anche se è possibile fare così. Abbiamo volutamente scelto di non farlo, al fine di facilitare la campionatura del flusso seno coronarico per la valutazione del consumo di ossigeno del miocardio. È importante sottolineare, però, il cuore destro esegue ancora la pressione e volume di lavoro in questo modello come le pompe di cosinusale ronary fluiscono nella cannula arteria polmonare. Fornendo alcuni precarico del ventricolo destro migliora il posizionamento del setto ventricolare e migliora le prestazioni del ventricolo sinistro, ed è una componente importante di questo modello. 15 Ci sono diverse insidie ​​sperimentali parlare. La prima è la cannulazione retrograda iniziale, che deve essere eseguita speditamente (cioè, in meno di 2 minuti) per minimizzare il periodo di ischemia. L&#39;abilità più importante da padrone è l&#39;isolamento efficiente, preparazione e la manipolazione dell&#39;aorta ascendente. È importante che il moncone aortico non essere tagliato troppo breve, lasciando spazio sufficiente per incannulazione sopra la valvola aortica. Tuttavia, è anche importante che il moncone aortico non essere troppo lungo, che può causare torqueing dell&#39;aorta intorno alla cannula. E &#39;anche importante che la cannula aorta e radice aortica essere opportunamente dimensioni abbinati. Un troppo grande dell&#39;aorta su una piccola cannula può ancheportare torqueing della radice aortica sulla cannula. L&#39;arteria succlavia destra richiede in genere fuori dal aorta ascendente circa 7 mm sopra la valvola aortica. L&#39;indicazione delle navi brachiocefalici (circa 1 mm di diametro) durante la dissezione e taglio dell&#39;aorta servono punti di riferimento come importanti per l&#39;incisione aortica trasversale. Taglio l&#39;aorta appena sotto il decollo della prima arteria anonima è consigliabile. L&#39;inclusione di questa imbarcazione in radice aortica rifilato porta normalmente a una perdita di KHB, e la perdita di pressione della radice aortica sulla transizione in modalità di lavoro del cuore. Un altro aspetto tecnicamente impegnativo del cateterismo è la cannulazione atriale sinistra. Anche se è fattibile cannulate dell&#39;atrio sinistro, abbiamo trovato che la cannula di frequente si blocca all&#39;interno dell&#39;appendice, e non passa facilmente nel corpo dell&#39;atrio sinistro. Così, si preferisce effettuare l&#39;incisione nel corpo dell&#39;atrio sinistro, circa2 mm superiori al solco atrioventricolare. È importante posizionare la cannula atriale sinistra nel piano corretto prima dell&#39;inserimento per evitare di strappare l&#39;atrio parete sottile quando si fissa la cannula. Abbiamo trovato che la dimensione ideale dell&#39;incisione atrio sinistro era di circa 3 mm. Creazione troppo piccolo di una incisione può anche rendere il posizionamento della cannula atriale sinistra più difficile, e può portare alla lacerazione dell&#39;atrio sinistro. Usiamo una scala da 8 mm, pezzo di tubo smussato impermeabile all&#39;ossigeno (diametro interno 2,9 millimetri) sul blocco atriale sinistra. Abbiamo trovato che con questo, piuttosto che una cannula con un bordo smussato, porta a cannulazione atriale più consistente e facilita il processo di fissaggio del blocco atriale sinistra. Indipendentemente dal tubo impiegato, è importante garantire che l&#39;estremità del tubo non è occlusa dal setto atriale o la valvola mitrale (come illustrato in precedenza, abbiamo scoperto che il tracciato della pressione atriale sinistra era disponibile in questo regard), come anche il movimento sottile cannula atriale può alterare in modo significativo il precarico ventricolare sinistra e conseguenti misure emodinamiche. Per la stessa ragione, è importante garantire che l&#39;atrio sinistro non perde segue dopo l&#39;apertura del blocco atriale sinistra. È importante indipendentemente dal tipo di tubo impiegato per assicurare che il tubo all&#39;interno di questo sistema è ossigeno impermeabile a garantire un adeguato apporto di ossigeno al cuore. Un altro aspetto tecnicamente impegnativo della procedura è il posizionamento del catetere pressione-volume (PV). Inizialmente abbiamo favorito un posizionamento retrograda del catetere attraverso il blocco aortica. Anche se tecnicamente fattibile, abbiamo scoperto che è molto più semplice e conveniente per posizionare il catetere fotovoltaico tramite la puntura transapicale. Bisogna fare attenzione per monitorare la posizione del catetere per tutta la durata dell&#39;esperimento, come a volte il catetere può muoversi dentro o fuori del ventricolo sinistro. Questo può essere fatto controllando la pressiori e tracciati di volume nel tempo. Infine, occorre prestare attenzione per garantire che la soluzione KHB si crea fresco per ogni esperimento. È possibile pesare i costituenti di KHB e memorizzarli in provette coniche in forma di polvere prima del tempo. Il giorno della sperimentazione, questi possono essere miscelati con acqua sterile, filtrata, biossido di carbonio / ossigeno, e quindi calcio aggiunto alla miscela. E &#39;anche importante lavare il sistema con l&#39;enzima detergente in polvere attiva, quali Tergazyme (o simile) e sostituire il filtro perfusato regolarmente. Diversi limiti di questa preparazione sperimentale da notare. In primo luogo, simile a tutti i preparati Langendorff cristalloidi-perfusione, KHB e altri perfusates asanguinous hanno una ossigeno significativamente diminuita capacità di carico rispetto al sangue. Anche se questo è parzialmente compensata attraverso la vasodilatazione coronarica e il flusso coronarico soprafisiologiche, la preparazione non è del tutto physiologic per questo motivo. In secondo luogo, a causa della conformità pressoché infinita della camera Windkessel utilizzato in questo strumento, le pressioni sistolica e diastolica sono solo minimamente separati (vedere la Figura 2A) e quindi la pressione di perfusione coronarica è non fisiologico. Questo può essere superata in modelli futuri incorporando un componente elastance al blocco post-carico. In terzo luogo, come con tutti i preparati cuore isolato, il cuore subisce un determinato periodo di tempo (2 - 3 min) di ischemia calda che rischia di creare danno miocardico o disfunzione. Minimizzare questa lesione attraverso la pratica della tecnica è della massima importanza ai risultati rappresentativi. Inoltre, anche se necessaria per il benessere degli animali, anestetici inalatori possono servire come un soppressore del miocardio nelle prime fasi del processo di riperfusione, anche se si prevede che questo effetto è rapidamente abolito come il cuore è riperfuso con KHB. Il sistema cardiaco lavoro descritto consente una vasta gamma di Physiolindagini OGIC rilevanti per la cura dei pazienti, della ricerca e dell&#39;insegnamento. Con poche modifiche aggiuntive, il sistema può anche essere utilizzato per simulare importante fisiologia rilevante per malattia cardiaca congenita, comprese ipertensione polmonare e singola fisiologia ventricolo. Limitazioni comprendono che è una preparazione ex vivo, che il cuore è perfuso da un buffer invece di un sangue contenuto di ossigeno superiore.

Lo studio degli organi isolati permette il controllo delle condizioni fisiologiche di là di ciò che è possibile in vivo. Ex vivo preparati cardiaci sono stati descritti da Otto Langendorff, 1 che ha descritto un modello isolata con perfusione retrograda. Successivamente, altri hanno descritto il modello &quot;di lavoro del cuore&quot;, in cui il miocardio esegue sia la pressione e volume di lavoro. 2 Tali preparati sono stati strumentali nel chiarire i meccanismi d&#39;azione del miocardio, 3 metabolismo miocardico, 4-6 e gli effetti di farmaci cardiotonici. 7- 9 L&#39;uso di farmaci che migliorano la contrattilità miocardica è comune nei pazienti critici. Tuttavia, sono disponibili pochi dati a confronto gli effetti relativi di questi farmaci sulla contrattilità e il consumo di ossigeno del miocardio, i dati che possono essere utili nella cura dei pazienti con segni clinici di insufficienza cardiaca del nell&#39;impostazione postoperatorio. 10 Tuttavia, poiché la maggior parte dei farmaci cardiotonico influenzano non solo il miocardio, ma anche la resistenza arteriolare, capacitanza venosa 11, e il tasso metabolico del paziente, 12 ex vivo modelli cuore isolato rimangono il mezzo ottimale per studiare gli effetti di tali farmaci sul miocardio corretta. Descriviamo l&#39;uso di un modello ex vivo per lo studio indipendente dal carico di farmaci inotropi sulla funzione miocardica e consumo di ossigeno. Cuori da ratti Sprague Dawley sono stati cannulate con un ventricolo sinistro di lavoro modello cuore e perfusi utilizzando una versione modificata perfusato Krebs Henseleit. pressione atriale aortica e di sinistra sono stati controllati. cateteri impedenza pressione-volume sono stati collocati nel ventricolo sinistro attraverso la puntura apicale per il monitoraggio continuo della funzione sistolica e diastolica. Il consumo di ossigeno è stata continuamente misurato come differenza indicizzato nel contenuto di ossigeno tra perfus atriale sinistramangiato e l&#39;effluente arteria polmonare. I farmaci da testare sono state infuse nel blocco atriale sinistra, e cambiamenti nel metabolismo cardiaco prestazioni e l&#39;ossigeno sono stati misurati e confrontati con una linea di base immediatamente precedente.

<table><tbody><tr><td>Bicarbonato di sodio</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S5761</td><td>8.401 g/4 L</td></tr><tr><td>Acido etilendiamminotetraacetico</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>E6758</td><td>0.744 g/4 L</td></tr><tr><td>Cloruro di potassio</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P9333</td><td>1.580 g/4 L</td></tr><tr><td>Solfato di magnesio</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M7506</td><td>0.578 g/4 L</td></tr><tr><td>Piruvato di sodio</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P2256</td><td>0,220 g/ 4 L</td></tr><tr><td>Cloruro di sodio</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S3014</td><td>27,584 g/4 L</td></tr><tr><td>Destrosio</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D9434</td><td>7,208 g/4 L</td></tr><tr><td>Cloruro di calcio diidrato</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C7902</td><td>1,470 g/4 L</td></tr><tr><td>Modello di cuore operativo biventricolare</td><td>Harvard Apparatus</td><td>IH-51</td><td></td></tr><tr><td>Catetere a volume di pressione</td><td>Millar, Inc</td><td>SPR-944-1</td><td>Catetere con spaziatura di 6 mm utilizzato</td></tr><tr><td>LabChart Pro 8</td><td>AD Instruments</td><td>Versione 8.1</td><td></td></tr></tbody></table>

roditore working model cuore per lo studio della performance miocardica e consumo di ossigeno

Rodent Working Heart Model for the Study of Myocardial Performance and Oxygen Consumption

I modelli di cuore funzionante isolati sono stati utilizzati per comprendere gli effetti delle condizioni di carico, della frequenza cardiaca e dei farmaci sulle prestazioni miocardiche in modi che non possono essere realizzati in vivo. Ad esempio, i farmaci inotropi comunemente influenzano anche il precarico e il postcarico, precludendo valutazioni indipendenti dal carico dei loro effetti miocardici in vivo. Inoltre, questo modello consente il campionamento dell'effluente del seno coronarico senza contaminazione da ritorno venoso sistemico, consentendo la valutazione del consumo di ossigeno miocardico. Inoltre, l'avvento dei cateteri miniaturizzati a pressione-volume ha permesso la quantificazione precisa dei marcatori delle prestazioni sistoliche e diastoliche. Descriviamo un modello in cui il ventricolo sinistro può essere studiato mentre si esegue un lavoro sia di volume che di pressione in condizioni controllate. 
In questa tecnica, il cuore e i polmoni di un ratto Sprague-Dawley (peso 300-500 g) vengono rimossi in blocco in anestesia generale. L'aorta viene sezionata libera e cannulata per la perfusione retrograda con tampone di Krebs ossigenato. Le arterie e le vene polmonari vengono legate e i polmoni rimossi dal preparato. L'atrio sinistro viene quindi inciso e cannulato utilizzando una cannula venosa separata, attaccata a un blocco di precarico. Una volta determinato che questo è privo di perdite, il cuore sinistro viene caricato e la perfusione retrograda viene interrotta, creando il modello del cuore funzionante. L'arteria polmonare viene incisa e incannulata per la raccolta degli effluenti coronarici e la determinazione del consumo di ossigeno miocardico. Un catetere pressione-volume viene inserito nel ventricolo sinistro retrogrado o attraverso una puntura apicale. Se lo si desidera, è possibile posizionare i fili di stimolazione atriale per un controllo più preciso della frequenza cardiaca. Questo modello consente un controllo preciso del precarico (utilizzando un blocco di pressione atriale sinistra), del postcarico (utilizzando un blocco di postcarico), della frequenza cardiaca (utilizzando fili di stimolazione) e della tensione dell'ossigeno (utilizzando miscele di ossigeno all'interno del perfusato).

Uno schema di un cuore completamente fornito in perfusione retrograda (Figura 1A) e nel ventricolo sinistro del cuore lavoro (Figura 1B). Aortica tipica, atriale sinistra e pressione ventricolare sinistra e del volume tracciati sono mostrati in figura 2A -. D Il tipico pressione di fine diastolica è di circa 3 - 5 mmHg in questo modello, e la pressione di picco sistolico si trova a circa 100 mmHg Figura 2E dimostra il cambiamento. in sinistra tracing atriale quando la cannula lA viene allontanato dal setto atriale durante il posizionamento e il posizionamento della cannula. In questi esperimenti, la pressione aortica è stato fissato a 90 mmHg, e pressione LA è stato impostato a 10 mmHg. Per testare gli effetti delle catecolamine, ciascun parametro fisiologico (derivato principalmente dal catetere pressione-volume e il software associato) è stato confrontato immediatamente precedente<html> periodo basale. Nell&#39;esempio illustrato, dopamina è stata infusa a 15 mcg / kg / min nel blocco atriale sinistra. Anche se la fine della pressione diastolica è identico nelle due condizioni (data la pressione atriale fisso in questo modello), il volume diastolica del ventricolo sinistro diminuisce del 2,5%, e il volume sistolico del ventricolo sinistro diminuisce del 4,9%, ottenendo un volume di corsa maggiore (Figura 3A). Rispetto al placebo infusioni, il lavoro di sinistra ictus ventricolare, identificata come l&#39;area all&#39;interno della curva pressione-volume, è aumentato del 32% durante il trattamento con dopamina (Figura 3B, P &lt;0,001, test t, n = 10 per gruppo). Questo è stato associato ad un maggiore aumento del consumo di ossigeno del miocardio rispetto al placebo infusioni (Figura 3C). In questo modo, i relativi costi potenza ed energia di diversi farmaci cardiotonico e dosi possono essere confrontati tra loro indipendente delle loro effetti sulle condizioni di carico. contenuti &quot;fo: keep-together.within-page =&quot; 1 &quot;&gt; <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/54149/54149fig1.jpg" /> Figura 1: Schema di flusso in un cuore completamente fornito in Retrograde perfusione e Modalità Cuore di lavoro (Pannello A: modalità Langendorff; Pannello B:.. Modalità cuore si lavora in modalità retrograda, KHB è infuso ad una pressione impostata di perfusione nella radice aortica. questa modalità viene utilizzata per recuperare il miocardio seguente tempo di ischemia e durante la strumentazione. lavorando modalità cuore, perfusato scorre attraverso il cuore sinistro prima di perfusione della circolazione coronarica. In questa modalità, il miocardio deve generare la propria pressione di perfusione. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54149/54149fig1large.jpg" target="_blank">clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a> <img alt="figura 2" src="/files/ftp_upload/54149/54149fig2.jpg" /> FIGURA 2: pressione Rappresentante e del volume Tracciati ottenuti durante misurazioni basali. (A) pressione della radice aortica, (B) ha lasciato la pressione atriale, (C) pressione ventricolare sinistra e (D) vengono visualizzati tracciati volume ventricolare sinistro durante una misurazione di riferimento. gittata sistolica, il lavoro ictus, la gittata cardiaca, tau, e altri parametri possono essere calcolati e visualizzati in tempo reale dal software automaticamente. Una traccia blunted sinistra atriale (E) associato ad una gittata cardiaca povero in modalità cardiaca di lavoro può essere un indizio che la cannula è mal posizionati nell&#39;atrio sinistro. Si noti che il primo piano v onda nel tracciato pressione atriale sinistra ben piazzato è comune, probabilmente a causa di una conformità atriale sinistra è diminuito negli animali completamente strumentata. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54149/54149fig2large.jpg" target="_blank">Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a> Figura 3:. Effetto della dopamina sulla pressione Volume Curve risultati dopamina infusione in uno spostamento verso sinistra della curva PV (A), tra cui una gittata sistolica aumentata, diminuita volume telesistolico, rispetto a misurazioni di base. Si noti che la forma di alcuni componenti di queste curve FV differiscono da quelli tipicamente misurata in vivo (vedi figura 4) per l&#39;assenza di arterioso e elastance venosa. (B) Rispetto ad una linea di base immediatamente precedente, il lavoro ictus aumentato significativamente più durante infusioni di dopamina rispetto al placebo (**, P = 0,0017, t-test), così come il consumo di ossigeno del miocardio (*, P = 0,013, t-test, C). Utilizzando questo modello, il consumo medio di ossigeno del miocardio al basale era 0,22 ± 0,02 mmol O 2 / grammo di tessuto / minuto, utilizzando un dissolv stimatoed il contenuto di ossigeno del 165 mmol / l in soluzione salina a 40 ° C. Tali misure possono essere utilizzati per confrontare il consumo di ossigeno del miocardio di vari farmaci. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54149/54149fig3large.jpg" target="_blank">Cliccate qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a> <img alt="Figura 4" src="/files/ftp_upload/54149/54149fig4.jpg" /> Figura 4: Analisi di Loops Volume pressione. Il teorico Loop pressione-volume indicato descrive il ciclo normale cardiaca, dopo la chiusura delle valvole aortica (AV) (1), si verifica la contrazione isovolemica (1 - 2). Come la pressione del ventricolo diminuisce al di sotto della pressione atriale. La durata di questa fase è rappresentato da Tau. La valvola mitrale (MV) si apre contemporaneamente con la sistole atriale, riempiendo il ventricolo (2 - 3). Sistole inizia poi con contracti isovolemicail (3 - 4) finché la pressione ventricolare supera la pressione arteriosa diastolica, momento in cui si apre il AV. Gittata sistolica è la differenza tra le linee 1 - 2 e 3 -. 4 lavoro ictus è l&#39;area all&#39;interno del 1 - 2 - 3 -. Curva 4 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54149/54149fig4large.jpg" target="_blank">Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a>

I modelli di cuore funzionante isolati possono essere utilizzati per misurare l'effetto delle condizioni di carico, della frequenza cardiaca e dei farmaci sulle prestazioni del miocardio e sul consumo di ossigeno. Descriviamo i metodi per la preparazione di un modello di lavoro del cuore sinistro di un roditore che consente lo studio delle prestazioni sistoliche e diastoliche e del consumo di ossigeno in varie condizioni.

Roditore Working Model Cuore per lo Studio della performance miocardica e consumo di ossigeno

Isolated working heart models have been used to understand the effects of loading conditions, heart rate and medications on myocardial performance in ways ...

L'obiettivo generale di questa procedura è creare un modello di cuore sinistro funzionante isolato che permetta un controllo preciso delle condizioni di carico ventricolare da roditori. Questo metodo può contribuire a rispondere a domande fondamentali nella fisiologia cardiovascolare, inclusi gli effetti dei farmaci sulla contrattilità miocardica, la performance tessutale e il consumo di ossigeno. Il vantaggio principale di questa tecnica è che le condizioni di carico del cuore possono essere controllate con precisione.La dimostrazione visiva di questo metodo è fondamentale poiché la dissezione e l'isolamento dell'aorta, la granulazione dell'atrio sinistro e l'isolamento delle vene polmonari richiedono abilità ed esercizio per essere padroneggiati. Dopo un'adeguata sedazione, analgesia e anticoagulazione con eparina, iniziare l'intervento chirurgico sul ratto donatore. Innanzitutto, allontanare la pelle dalla cavità addominale con una pinza e utilizzare le forbici per praticare un'incisione nella cavità peritoneale.Seguendo la curvatura del diaframma fino all'angolo posteriore delle costole. Una volta visibile il diaframma, utilizzare le forbici per tagliare lungo la superficie anteriore del diaframma, allineandosi ai tagli precedenti per accedere alla cavità toracica. Estendere ciascun taglio bilateralmente lungo la linea ascellare fino all'ascella.Quindi ritrarre anteriormente la gabbia toracica dal processo xifoideo utilizzando pinze. Successivamente, praticare un'incisione nel pericardio e nella pleura. Procedere con efficienza poiché la ventilazione è compromessa una volta che il diaframma viene inciso.Individuare la vena cava inferiore e l'aorta appena al di sopra del diaframma e utilizzare pinze ottuse per retrarle in avanti. Successivamente, con forbici grandi e curve, effettuare rapidamente un taglio trasversale attraverso la vena cava inferiore e l'aorta. Senza recidere l'aorta ascendente, tagliare l'esofago, la trachea, le arterie e le vene brachiocefaliche in senso cefalico.Quindi escindere questi tessuti timici insieme al cuore e ai polmoni su un blocco. Immergere immediatamente il cuore e i polmoni in KHB ghiacciato e trasferirli all'apparato di Langendorff. Posizionare il complesso cuore-polmoni in una capsula piana e orientare il cuore in modo che il timo e i grossi vasi siano rivolti verso l'operatore.E la faccia posteriore dei polmoni rivolta verso il tavolo. Successivamente, separare i due lobi del timo e identificare l'origine delle arterie brachiocefaliche dall'aorta. Ora, adagiare l'aorta oltre il bordo della bacinella.Quindi, utilizzando forbici piccole, sezionare l'aorta a circa cinque millimetri sopra la valvola aortica, appena prossimalmente all'origine dell'arteria succlavia destra. È necessaria una sezione trasversale circolare. Ripetere il taglio fino a quando non se ne ottiene uno adeguato.La seguente microscopia video fornisce chiarezza su una parte fondamentale di questa procedura: la dissezione e la sezione dell'aorta in preparazione alla cannullazione. Come mostrato qui, il timo deve essere diviso al centro e si separerà facilmente. Utilizzare movimenti delicati con pinze curve per dividere il pericardio e separare i tessuti circostanti l'aorta.Evitare l'uso di forza eccessiva. Il moncone dell'arteria anonima deve essere identificato e afferrato come punto di trazione sull'aorta. L'aorta deve quindi essere incisa trasversalmente utilizzando forbici piccole e affilate nel punto mediano tra la valvola aortica e l'origine dell'arteria sottoclavia.Se il taglio viene effettuato troppo in alto, l'aorta diventa eccessiva e può causare una torsione del cuore attorno alla cannula. In alternativa, il buffer per crampi può fuoriuscire da un moncone brachiocefalico. Se è troppo corto, la punta della cannula potrebbe attraversare la valvola aortica.Successivamente, utilizzando due paia di pinze curve, guidare l'aorta sopra la cannula aortica, che dovrebbe gocciolare lentamente KHB. La valvola aortica deve trovarsi da uno a due millimetri al di sotto della punta della cannula. Successivamente, riposizionare le pinze perpendicolarmente rispetto all'aorta per mantenerla in posizione.Si potrebbe utilizzare anche una pinza. Quindi, far usare da un assistente un filo di seta 4-0 per fissare la cannula con nodi multipli su entrambi i lati del cuore. Ora, aprire completamente la cannula per iniziare il flusso aortico retrogrado completo.Il cuore dovrebbe battere con vigore. Uno dei potenziali inconvenienti è che la punta della cannula aortica attraversi la valvola aortica entrando nel ventricolo sinistro. Come mostrato qui, se ciò accade, il cuore apparirà pallido e l’atrio sinistro sarà dilatato.Questo deve essere immediatamente corretto interrompendo brevemente il flusso coronarico e riposizionando il cuore verso il basso sull'ago aortico. Si noti che i tessuti aortici nei roditori sono fragili e si lacerano facilmente. Un'altra potenziale insidia è una perdita alla base dell'aorta, dovuta a una lacerazione o a un taglio eccessivamente alto sull'aorta, tale per cui un'arteria brachiocefalica lascia fuoriuscire KHB.Questo può essere risolto interrompendo il flusso coronarico, rimuovendo il cuore dalla cannula aortica e riposizionandolo. Lo scopo di questo passaggio è creare un sistema chiuso in cui tutta la pressione proveniente dal blocco del pre-carico venga trasmessa alle strutture del cuore sinistro. Il mancato completo occlusione delle vene polmonari può portare alla perdita del pre-carico e può generare una preparazione cardiaca instabile o falsare i risultati.Ruotare manualmente la cannula aortica in modo che la faccia posteriore del cuore sia rivolta verso l'operatore. Procedere ora all'isolamento dei vasi che conducono al polmone sinistro. Per facilitare l'accesso ai vasi, utilizzare una pinzetta per sollevare il tessuto del polmone sinistro.Quindi utilizzare una singola clip chirurgica media per occludere l'arteria polmonare sinistra, la vena e il bronco. Successivamente, resecare il polmone sinistro a valle della clip. Ripetere ora il procedimento sul polmone destro.Quando entrambe le arterie polmonari sono completamente occluse, l'atrio destro si dilaterà e il cuore potrebbe diventare bradicardico. Se necessario, aggiungere ulteriori clip o suture per tappare eventuali perdite e lavorare in modo efficiente. Procedere ora con l'incisione dell'arteria polmonare.Ruotare la cannula aortica per accedere alla faccia anteriore del cuore e identificare l'arteria polmonare. Utilizzando forbici piccole, praticare un'incisione trasversale a circa tre millimetri al di sopra della valvola polmonare. L'arteria polmonare potrà ora essere cannullata in un passaggio successivo.Successivamente, canulare l'atrio sinistro. Quando si osserva l'atrio sinistro, utilizzare forbici piccole per praticare un'incisione lunga due-tre millimetri nella parte superiore dell'atrio sinistro, circa tre millimetri al di sopra del solco atrioventricolare. Posizionare quindi la cannula nell'atrio sinistro perpendicolarmente al piano della valvola mitrale, orientandola verso il setto atriale.Aprire la cannula anteriore sinistra fino a quando si osserva il flusso visibile di KHB caldo. Assicurarsi che il KHB sia caldo al tatto, altrimenti potrebbe insorgere ipotermia. Durante la cannullazione, regolare il flusso di KHB a un regime a gocce.Ora, utilizzando una pinzetta per esercitare una trazione contraria, inserire la cannula atriale nel corpo dell'atrio sinistro. Non esercitare una forza eccessiva, poiché l'atrio è fragile. Posizionare la cannula in modo che si trovi al centro dell'atrio senza esercitare alcuna tensione sulla parete atriale.Ora fissare la cannula all'atrio con un punto di sutura in seta 4-0 posizionato intorno al corpo dell'atrio sinistro, comprendendo anche l'aspetto posteriore dell'atrio sinistro. Aggiungere ulteriori punti di sutura secondo necessità. Una volta sigillata, ritirare leggermente la cannula di uno-due millimetri in modo che si posizioni al centro dell'atrio piuttosto che appoggiata al setto atriale.Questo può essere verificato osservando l'onda del tracciato atriale sinistro. Ora aprire completamente la valvola del cannello per somministrare il pieno pre-carico all'atrio sinistro. È fondamentale monitorare la velocità di gocciolamento dal cuore.Deve rimanere stabile mentre la cannula è aperta. In caso contrario, rifare il legame dell'atrio intorno alla cannula per sigillare la perdita che probabilmente sta causando il problema. Per misurare sostanze nel defluito coronarico, come gas, farmaci o citochine, inserire un tubo flessibile nell'incisione nell'arteria polmonare.Per consentire la misurazione continua di pressione e volume, inserire un catetere conduttivo di volume e pressione calibrato nel ventricolo sinistro. Questa procedura viene eseguita meglio in senso retrogrado attraverso la valvola aortica. Tuttavia, quando questa operazione risulta tecnicamente difficoltosa, può essere effettuata anche mediante puntura ventricolare apicale.Il valore massimo di DPDT dovrebbe essere almeno 3500-4000 per una preparazione adeguata. Raccogliere l'effluente del seno coronarico dall'arteria polmonare e dal cuore in un cilindro graduato per la quantificazione temporizzata del flusso coronarico. Calcolare ora il consumo miocardico di ossigeno.Infine, spegnere la pompa aortica retrograda per passare alla modalità cuore lavorante. È stata preparata una perfusione retrograda come descritto. Inizialmente, durante l'allestimento, il flusso era retrogrado.Quando la pompa retrograda è stata spenta, il flusso si è invertito in senso anterogrado, permettendo al cuore di funzionare. La pressione tipica alla fine della diastole è di circa tre-cinque millimetri di mercurio in questo modello. E la pressione sistolica massima è di circa 100 millimetri di mercurio.Quando la cannula atriale sinistra viene spostata lontano dal setto atriale, è possibile rilevare un cambiamento nel tracciato dell'atrio sinistro. In questi esperimenti, la pressione aortica è stata impostata a 90 millimetri di mercurio e la pressione atriale sinistra è stata regolata a 10 millimetri di mercurio. Per un esperimento, la dopamina è stata infusa a 15 microgrammi per milligrammo al minuto nel blocco atriale sinistro.Sebbene la pressione diastolica finale fosse invariata, la dopamina ha causato una riduzione del volume ventricolare sinistro alla fine della diastole del 2,5% e una riduzione del volume ventricolare sinistro alla fine della sistole del 4,9%, determinando un aumento del volume sistolico. Rispetto alle infusioni di placebo, il lavoro sistolico del ventricolo sinistro, identificato come l'area all'interno della curva pressione-volume, è aumentato del 32% durante il trattamento con dopamina. Questo fenomeno è stato associato anche a un maggiore incremento del consumo miocardico di ossigeno.Una volta padroneggiata, questa tecnica può essere completata in 15 minuti se eseguita correttamente.

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Il seguente protocollo descrive la preparazione e l'utilizzo di tamponi per la misurazione quantitativa dei tassi di ossidazione del glucosio e degli acidi grassi nel cuore di ratto funzionante isolato. Vengono inoltre discussi i metodi utilizzati per l'analisi dei campioni e l'interpretazione dei dati.

Metodi per la determinazione dei tassi di glucosio e acidi grassi ossidazione nel cuore isolato di lavoro Rat

Questo protocollo mostra un approccio semplice e flessibile per la valutazione di nuovi agenti di condizionamento o strategie per aumentare la fattibilità della donazione cardiaca dopo la morte circolatoria.

Modello preclinico di donazione cardiaca dopo la morte circolatoria

L'obiettivo di questo studio era quello di stabilire un metodo per studiare le dinamiche cardiache utilizzando un modello animale traslazionale. L'approccio sperimentale descritto incorpora l'optocardiografia a doppia emissione in combinazione con uno studio elettrofisiologico per valutare l'attività elettrica in un modello cardiaco porcina isolato e intatto.

Optocardiografia ed elettrofisiologia Studi di Ex Vivo Langendorff-perfusi

Questo articolo presenta un metodo efficiente per eseguire l'ischemia miocardiale e la successiva riperfusione cronica nei ratti utilizzando un approccio minimamente invasivo. Inoltre, la funzione emodinamica ventricolare sinistra dei ratti è valutata con ecocardiografia e metodi isolati del cuore di lavoro.

Metodo semi-minimo invasivo per indurre l'infarto miocardico nei ratti e la valutazione della funzione cardiaca da parte di un sistema cardiaco funzionante isolato

Il modello di ischemia-riperfusione miocardica del cuore di ratto viene migliorato utilizzando un riavvolgitore autoprodotto, un tubo di cloruro di polivinile e un metodo di annodatura unico. L'elettrocardiogramma, il cloruro di trifeniltetrazolio e la colorazione istologica e i risultati dell'analisi percentuale di sopravvivenza hanno mostrato che il gruppo modello migliorato ha tassi di successo e sopravvivenza più elevati rispetto al gruppo modello già esistente.

Modello di roditore migliorato di ischemia miocardica e danno da riperfusione

Descriviamo un protocollo di funzionamento del cuore di ratto isolato ex vivo per testare le strategie di conservazione del cuore del donatore. Questo documento descrive il protocollo per l'uso nelle celle frigorifere statiche dei cuori dei donatori di roditori; Tuttavia, il protocollo può essere utilizzato anche per i cuori dei donatori ottenuti dopo la donazione dopo la morte circolatoria e la morte cerebrale.

Utilizzo di un modello di cuore di ratto funzionante isolato per testare le strategie di conservazione del cuore del donatore

Test di sensibilità visiva in lucertole utilizzando un paradigma di condizionamento operante che si avvale di riproduzione video di casuale-puntino kinematograms e generati dal computer invertebrati.

Test di sensibilità visiva alla velocità e direzione del movimento in lucertole

Impara a preparare un modello di cuore isolato sinistro da roditore per studiare la performance miocardica e il consumo di ossigeno. Questa tecnica consente il controllo preciso delle condizioni di precarico e postcarico ventricolare.

Roditore Working Model Cuore per lo Studio della performance miocardica e consumo di ossigeno

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