Name: Preparazione di singole colonie-coorte e trattamento ormonale di lavoratore api per analizzare Fisiologia associati con il ruolo e / o sistema endocrino (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-09-06T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 53 s
Description: Scopri come preparare colonie di api operaie a singola coorte e trattarle con ormoni per analizzare la fisiologia legata al ruolo e al sistema endocrino. Questo metodo standardizzato aiuta a studiare il comportamento delle api.

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Questo lavoro è stato supportato da una sovvenzione per la ricerca scientifica (B) e da una sovvenzione per la ricerca scientifica su aree innovative 'Sistemi di etologia molecolare' dal Ministero dell'Istruzione, della Cultura, dello Sport, della Scienza e della Tecnologia (MEXT) del Giappone. T.U. ha ricevuto una sovvenzione dalla Società giapponese per la promozione della scienza per giovani scienziati.

1. Preparazione di singole colonie-coorte <ol><li> Preparare tre colonie di api per la creazione di due colonie singola coorte e per ottenere un numero sufficiente di lavoratori nuovi emersi. <ol><li> Verificare che alcune pupe nelle cellule periferiche innevate nei favi ha occhi marroni e una cuticola pigmentato aprendo i pettini innevate con una pinzetta. Se sono presenti queste pupe in cellule pettine periferici, la maggior parte pupe in tutta la pettini emergerà in circa 1-3 giorni. </li><li> Successivamente, raccogliere i pettini che contengono queste pupe dopo tutte le api adulte aderenti sono stati rimossi con una spazzola, e mescolare i pettini delle tre colonie di ridurre al minimo la variabilità tra le colonie. </li></ol></li><li> Posizionare i pettini raccolti in una scatola vuota alveare e incubare a 33 ° C in condizioni di umidità (&gt; 60% di umidità relativa). Raccogliere circa 6.000 lavoratori nuovi emersi nel corso di 3 giorni (3.000 lavoratori per colonia) dai pettini raccolti. </li><li> Determinare la quantità di workeRS sulla base del peso di cinque operai recentemente emersi raccolti in modo casuale dalle colonie non manipolata. <ol><li> Pesare cinque lavoratori nuovi emersi raccolti in modo casuale da colonie non manipolate con macchine di pesatura. Nota: Il peso di cinque operai recentemente emersi è generalmente 500-600 mg. </li><li> Stima la quantità di lavoratori raccolti dividendo il peso dei lavoratori raccolti dal peso medio di cinque lavoratori nuovi emersi. </li></ol></li><li> Applicare segni di vernice alle thoraces di circa 1.800 lavoratori (900 operai per colonia) utilizzando marcatori vernice poster a base d&#39;acqua. Nota: marcatore lavabile che viene utilizzato per applicare la vernice è elencato nella tabella dei materiali. </li><li> Introdurre una regina e circa 3.000 delle vecchie lavoratori 0-2 al giorno per una nuova casella alveare che contiene due pettini, un pettine di miele e polline come conserve e un altro pettine vuoto per la deposizione delle uova dalla regina. Raccogliere il pettine di miele e polline from un&#39;altra colonia non manipolata dopo tutte le api aderenti vengono rimossi. Nota: Si consiglia l&#39;uso della scatola alveare nucleare (piccola scatola alveare dimensioni). </li><li> Raccogliere api nutrici e raccoglitori precoci con vernice segna 6 a 8 giorni dopo la creazione di colonie singola coorte. <ol><li> Per raccogliere le api infermiere, raccogliere i lavoratori che mettono le loro teste nelle cellule pettine per prendersi cura della covata. Utilizzare le pinzette per raccogliere le api infermiere da pettini che contengono molti lavoratori covata e adulti. Nota: Se HPGs dei lavoratori raccolti sono sviluppate quando sezionato come descritto al punto 1.7, questi lavoratori sono definiti come api nutrici. Tenendo le thoraces di pinzette si raccomanda di raccogliere i lavoratori dai favi. </li><li> Per raccogliere raccoglitori, utilizzare una rete per catturare insetti lavoratori che ritornano ai loro alveari con carichi di polline sulle zampe posteriori. Nota: Se HPGs dei lavoratori catturati appare rimpicciolita quando sezionato come descritto al punto 1.7, questi lavoratori sono definiti come raccoglitori. </li></ol></li><li> ClasSify l&#39;HPG in tre gruppi, &#39;sviluppato&#39;, &#39;intermedi&#39;, e &#39;Shrunken&#39; dalla dissezione sotto uno stereomicroscopio. <ol><li> Anestetizzare 10-15 api in una gabbia insetto in frigorifero per 10-15 minuti fino a quando le api non possono volare o camminare. Quindi spostare api su ghiaccio e completare l&#39;anestesia in ghiaccio per 5 min. Nota: Ci vogliono circa 15-20 minuti in totale per ottenere l&#39;anestesia. Se il tempo di anestesia deve essere ridotto, il numero di api in una gabbia deve essere ridotto a 1-3 api per gabbia. </li><li> Sezionare la testa dal corpo con le forbici e pinzette. Fissare la testa sulle impronte dentarie posto su una capsula di Petri con perni. Inserire due perni nelle basi delle antenne per fissare la testa. Mettere a bagno le teste fisse in soluzione salina insetto (130 mM NaCl, 5 mM KCl, 1 mM CaCl 2). </li><li> Rimuovere la faccia anteriore della cuticola della testa con una pinzetta fini e un bisturi al microscopio binoculare. Nota: I HPGs possono essere facilmente trovati in testa dopo la rimozione di cuticle. L&#39;HPG è un organo botrioide che esiste intorno al cervello nella testa. </li><li> Rimuovere il tessuto tracheale che è un tessuto membranoso bianca sotto la cuticola. Poi, sezionare i HPGs dalla testa tirandole lentamente con una pinzetta. </li><li> Adesso HPGs con ampia e circolare acini come &#39;sviluppato&#39;. Adesso HPGs con il piccolo e distorto acini come &#39;Shrunken&#39;. Adesso HPGs corrispondente a nessuno &#39;sviluppato&#39; né &#39;Shrunken&#39; come &#39;intermedio&#39;. Nota: fotografie rappresentativi che mostrano queste tre classi di HPG stati sono indicati in figura 2. </li><li> Soggetto &#39;sviluppato&#39; e HPGs &#39;Shrunken&#39; per l&#39;estrazione di RNA come &#39;infermiere api HPGs&#39; e &#39;HPGs falciatrici&#39;, rispettivamente, e confrontare l&#39;espressione genica nelle HPGs tra api nutrici e raccoglitori (sezione 4). </li></ol></li></ol> 2. Iniezione di 20E <ol><li> Raccogliere api nutrici da colonie tipiche come described nella procedura 1.6.1. Nota: HPGs non possono essere esaminate in queste api come saranno allevate le api. </li><li> Anestetizzare le api a 4 ° C in frigorifero (non su ghiaccio). Nota: Ci vogliono circa 30 minuti per raggiungere l&#39;anestesia. Se il tempo di anestesia è ridotto, il numero di api nella gabbia deve essere ridotta a 1-3 api per gabbia. </li><li> Usando le pinzette, immobilizzare le api su impronte dentarie posti su una piastra di Petri. </li><li> Iniettare 1 ml di soluzione di 20E nella faccia anteriore della testa con una punta di iniezione a base di una micropipetta capillare calibrato con un estrattore ago di vetro. <ol><li> Sciogliere 20E in soluzione salina etanolo-insetto (130 mM NaCl, 5 mM KCl, 1 mM CaCl 2) miscela (1: 4) a 2,5 mg / mL. </li><li> Collegare la punta di iniezione ad un tubo di gomma, e collegare una punta micropipetta giallo al lato opposto del tubo. </li><li> Mettere 1 ml di soluzione di 20E su parafilm utilizzando una micropipetta, tenere la punta micropipetta gialla in bocca, und disegnare la soluzione nella punta di iniezione. </li><li> Inserire la punta di iniezione nella base delle antenne, e iniettare la soluzione soffiando attraverso la punta micropipetta gialla. Nota: Il protocollo mostrato in questa fase è il metodo di iniezione rappresentante, ma l&#39;uso della macchina per iniezione automatica è raccomandato per la sicurezza se necessario 20. </li></ol></li><li> Posteriore le api iniettati in gabbie di insetti a 33-36 ° C (la temperatura ideale è di 35 ° C) in condizioni di buio e umido (&gt; 60% di umidità relativa) per 1 o 3 giorni. miscela di miele-acqua di alimentazione (1: 1) per le api. Se necessario, contare sopravvivenza delle api dopo l&#39;iniezione. </li></ol> 3. Applicazione di Methoprene <ol><li> Raccogliere i pettini che contengono pupe da tipiche colonie dopo tutte le api adulte aderenti vengono rimossi con un pennello. Incubare i pettini a 33-36 ° C (la temperatura ideale è di 35 ° C) in ambiente umido (&gt; 60% di umidità relativa) fino a 1 giorno. </li><li&gt; Raccogliere le api nuovi emersi dai favi raccolti e applico segni di vernice ai loro thoraces con vernice poster come descritto nel protocollo per la preparazione di colonie singola coorte. Riportare le api marcate nelle loro colonie. </li><li> Dopo 6 giorni, raccogliere i lavoratori verniciato (6 giorni di età) dalle colonie. Pick up lavoratori dipinte dai favi tenendo loro thoraces con una pinzetta. </li><li> Anestetizzare le api a 4 ° C in frigorifero (non su ghiaccio) come nella procedura 2.2. Usando le pinzette, immobilizzare le api su impronte dentarie posti su una piastra di Petri e applicare 1-5 ml di soluzione di methoprene (50-250 mg / mL) disciolto in acetone per le loro teste usando una micropipetta. Utilizzare una punta filtro che è resistente alla acetone. Nota: Acetone può avere effetti dannosi sulle api che portano alla morte. Se si osserva l&#39;elevata mortalità delle api, si raccomanda la riduzione del volume di acetone per 1 ml al minimo. </li><li> Posteriore le api in gabbie di insetti a 33-36 ° C (la t idealeemperature è di 35 ° C) per 7 giorni in condizioni di buio e umido (&gt; 60% di umidità relativa). miscela di miele-acqua di alimentazione (1: 1) per le api. Se necessario, contare sopravvivenza delle api dopo l&#39;applicazione topica. Nota: In questo articolo, le api sopravvissute sono contati 7 giorni dopo l&#39;applicazione (Tabella 3). </li></ol> 4. RNA Estrazione e RT-PCR quantitativa <ol><li> Anestetizzare le api e sezionare HPGs come descritto nei punti 1.7.1 a 1.7.4. </li><li> Raccogliere le HPGs sezionato in una provetta in ghiaccio secco e conservare a -80 ° C fino al momento dell&#39;uso. </li><li> Aggiungere 400 ml di reagente per denaturazione proteica. Nota: Questo reagente è disponibile in commercio (si veda la tabella dei materiali). </li><li> Omogeneizzare i tessuti HPG con una mano tesa miscelatore elettrico con un pestello omogeneizzazione che si inserisce all&#39;interno di una provetta. Omogeneizzare ad una velocità di rotazione di circa 300 rpm per 1 min in ghiaccio per rompere e cellule del tessuto Lisare. tabella dei materiali). </li><li> Aggiungere 80 ml di cloroformio e mescolare bene. Incubare per 5 minuti a temperatura ambiente. </li><li> Centrifugare le provette da microcentrifuga a 14.170 xg per 15 min a 4 ° C. Trasferire la fase acquosa in una nuova provetta. Aggiungere un volume uguale di isopropanolo e 1 ml di glicogeno (5 mg / ml). Incubare a -20 ° C per almeno 20 min. </li><li> Centrifugare le provette da microcentrifuga a 14.170 xg per 10 min a 4 ° C e rimuovere il surnatante. </li><li> Aggiungere 400 ml di etanolo al 75% per il pellet e mescolare bene, centrifugare le provette da microcentrifuga a 14.170 xg per 15 min a 4 ° C, e rimuovere il surnatante. Ripetere queste procedure ancora una volta. </li><li> Far asciugare il pellet per 5-10 minuti e poi si dissolvono in 10 acqua priva di RNasi microlitri. Nota: essiccazione completa del pellet può causare insolubilizzazione del pellet di RNA in acqua. Così, il pellet che è leggermente surf è appropriato perdissoluzione. </li><li> Misurare la concentrazione di RNA utilizzando uno spettrofotometro come NanoDrop o simili. </li><li> Trattare 500 ng di RNA totale con 2.0 U di DNasi I incubando a 37 ° C per 30 min a degradare qualsiasi DNA genomico contaminante. </li><li> Reverse-trascrivere 200 ng di RNA DNasi I trattati ed eseguire real time PCR utilizzando kit disponibili in commercio (si veda l&#39;elenco nella tabella dei materiali e reagenti) e primer gene-specifici (mrjp2; 5&#39;-AAATGGTCGCTCAAAATGACAGA-3 &#39;e 5 &#39;-ATTCATCCTTTACAGGTTTGTTGC-3&#39;, Hbg3; 5&#39;-TACCTGGCTTCGTGTCAAC-3 &#39;e 5&#39;-ATCTTCGGTTTCCCTAGAGAATG-3&#39;). Eseguire la PCR come segue: [95 ° C x 30 sec + (95 ° C x 5 sec + 60 ° C x 15 sec + 72 ° C x 20 sec) x 45-55 cicli]. </li><li> Normalizzare la quantità di trascrizione con quella del fattore di allungamento 1α-F2 (EF1α˗F2) o ribosomiale proteina 49 (rp49) 9,16,21,22. Questi geni sono un controllo affidabile gEnes per l&#39;analisi dell&#39;espressione genica nelle HPGs con qRT-PCR. </li><li> Eseguire due code t-test per rilevare le differenze significative tra due gruppi sperimentali (api nutrici contro raccoglitori precoci, api 20E-trattati contro le api di controllo, e le api Methoprene trattati vs. api di controllo) utilizzando il software statistico. Nota: Se F-test assume l&#39;omogeneità della varianza, test t può essere utilizzato. Se no, t-test di Welch può essere utilizzato. </li></ol>

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</ol>

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Preparazione delle colonie singola coorte Qui abbiamo descritto il protocollo utilizzato nel nostro studio precedente 16 per preparare colonie singola coorte per l&#39;analisi di HPG fisiologia associata con lo spostamento nel ruolo di api operaie. Api bottinatrici infermiere e precoci che soddisfacevano i criteri descritti nelle procedure di 1.6-1.7 e la figura 2 sono stati osservati nelle colonie singolo di coorte (Tabella 1). Le fotografie in <...

L&#39;ape europea, Apis mellifera, è un insetto eusocial con una società altamente organizzata 1. Api operaie (casta lavoro) sono impegnati in varie attività per mantenere l&#39;attività delle colonie, e questi compiti cambiano a seconda dell&#39;età del lavoratore api dopo eclosion, che viene indicato come divisione relativa all&#39;età del lavoro 2-4. Lavoratori giovani (&lt;13 giorni) si prendono cura della nidiata nell&#39;alveare secernendo pappa reale (api nutrici), mentre i lavoratori più anziani (&gt; 15 giorni) raccolgono il nettare e il polline di fuori dell&#39;alveare (raccoglitori) 2-4. La fisiologia dei lavoratori cambia in associazione con questo spostamento ruolo. Ad esempio, la funzione delle ghiandole ipofaringee (HPGs), accoppiato ghiandole esocrine situati nella testa, i cambiamenti in associazione con il passaggio da ruolo infermieristico a foraggiare 2,5. HPGs infermiera ape sintetizzano principalmente principali proteine ​​pappa reale, che sono i principali componenti di latte api. D&#39;altra parte, HPGs falciatrici principalmentesintetizzare enzimi carboidrati metabolizzare, come α-glucosidasi III, per elaborare nettare miele convertendo saccarosio in glucosio e fruttosio. I nostri studi precedenti hanno rivelato che l&#39;espressione di mrjp2, che codifica per una proteina importante pappa reale, e Hbg3, che codifica α-glucosidasi III, i cambiamenti durante il turno ruolo di 6-9. Per determinare se i cambiamenti fisiologici nei tessuti lavoratore, compresi i HPGs, è associato con lo spostamento ruolo o con l&#39;età dei lavoratori, sarebbe utile per manipolare la composizione della popolazione di una colonia di api, ad esempio per preparare singolo coorte colonie in cui i lavoratori di quasi la stessa età di eseguire diversi compiti 10,11. Robinson et al. (1989) ha descritto un metodo per stabilire un singolo-coorte colonia 10. colonie singola coorte inizialmente comprendono una regina e vecchi operai 0-2 al giorno. Alcuni giorni dopo aver stabilito le colonie, i lavoratori di almost la stessa età assumere compiti diversi. Alcuni lavoratori svolgono compiti di cura, come nelle colonie tipiche, mentre altri lavoratori eseguire le attività di foraggiamento prima del solito e sono quindi chiamati raccoglitori precoci. Il confronto di espressione genica tra api nutrici e raccoglitori precoci potrebbero fornire informazioni utili sulla fisiologia di ruolo associata dei tessuti dei lavoratori 12-16. Qui, descriviamo un protocollo dettagliato per la preparazione di colonie singola coorte per l&#39;analisi della fisiologia di ruolo e / o età-associate di HPGs 16. Abbiamo anche descrivere brevemente come esaminare l&#39;espressione genica di mrjp2 e Hbg3 da reazione a catena della polimerasi di trascrizione inversa-quantitativa (RT-PCR) per valutare HPG fisiologia. Oltre all&#39;analisi della fisiologia dei lavoratori nelle colonie singola coorte, l&#39;esame del sistema endocrino è importante per analizzare i meccanismi di regolazione di ruolo associata la fisiologia dei lavoratori. ormone giovanile (JH), che viene known come l&#39;ormone &#39;status quo&#39; in larve di insetti, accelera lo spostamento nel ruolo da infermieristico per l&#39;alimentazione delle api operaie a 11. Inoltre, ecdysone, che è conosciuto come l&#39;ormone della muta durante la metamorfosi, potrebbe essere coinvolto nel passaggio ruolo di geni che codificano per molecole di segnalazione ecdysone sono espressi nei corpi di funghi, un più alto centro del cervello operaio 17-19. Pertanto, abbiamo anche descritto il protocollo dettagliato utilizzato nel nostro studio precedente 16 per trattare i lavoratori con 20E, che è una forma attiva di ecdysone e metoprene, un analogo JH, per l&#39;analisi degli effetti del sistema endocrino sulla HPG fisiologia (espressione mrjp2 e Hbg3).

<table><tbody><tr><td>UNIPOSCA</td><td>Mitsubishi pencil</td><td>PC-5M</td><td>Pennarello per l'applicazione di segni alle api&nbsp; &nbsp;</td></tr><tr><td>20-idrossiecdisone</td><td>Sigma Aldrich</td><td>H5142</td><td></td></tr><tr><td>Methoprene</td><td>Sigma Aldrich</td><td>33375</td><td></td></tr><tr><td>Insetto da riproduzione</td><td>IRIS OHYAMA</td><td>CP-SS</td><td></td></tr><tr><td>Miscelatore di elettromozione&nbsp;</td><td>ISO</td><td>23M-R25</td><td>omogeneizzazione del reagente</td></tr><tr><td>TRIZol</td> tissutale <td>Invitrogen</td><td>15596-026</td><td>il reagente per l'estrazione dell'RNA totale</td></tr><tr><td>DNasi I&nbsp;</td><td>Kit di reagenti Takara</td><td>2270A</td><td></td></tr><tr><td>PrimeScript RT</td><td>Takara</td><td>RR037A</td><td>il reagente per la trascrizione inversa</td></tr><tr><td>SYBR Premix ExTaq II</td><td>Takara</td><td>RR820A</td><td>il reagente per PCR in tempo reale</td></tr><tr><td>LightCycle 1.2 Strumento</td><td>Roche</td><td>12011468001</td><td>lo strumento per PCR in tempo reale</td></tr><tr><td>LightCycle Capillari (20&mu; l)</td><td>Roche</td><td>4929292001</td><td>il materiale per la PCR in tempo reale</td></tr></tbody></table>

preparazione di singole colonie-coorte e trattamento ormonale di lavoratore api per analizzare fisiologia associati con il ruolo e / o sistema endocrino

Preparation of Single-cohort Colonies and Hormone Treatment of Worker Honeybees to Analyze Physiology Associated with Role and/or Endocrine System

Le operaie delle api sono impegnate in vari compiti relativi al mantenimento dell'attività della colonia. I compiti dei lavoratori cambiano in base alla loro età (divisione del lavoro legata all'età). Le giovani operaie sono impegnate nell'allattamento della covata (api nutrici), mentre le operaie più anziane sono impegnate nella ricerca di nettare e polline (bottinatrici). La fisiologia dei lavoratori cambia in associazione con questo cambiamento di ruolo. Ad esempio, la funzione principale delle ghiandole ipofaringee (HPG) cambia dalla secrezione delle principali proteine della pappa reale (MRJP) alla secrezione di enzimi che metabolizzano i carboidrati. Poiché le mansioni dei lavoratori cambiano man mano che i lavoratori invecchiano nelle colonie tipiche, è difficile discriminare i cambiamenti fisiologici che si verificano con l'invecchiamento da quelli che si verificano con il cambio di ruolo. Per studiare i cambiamenti fisiologici nei tessuti delle operaie, compresi gli HPG, in associazione con il cambio di ruolo, sarebbe utile manipolare la popolazione di colonie di api da miele preparando colonie di singole coorti in cui operaie di quasi la stessa età svolgono compiti diversi. Qui descriviamo un protocollo dettagliato per la preparazione di colonie a coorte singola per questa analisi. Da sei a otto giorni dopo la preparazione della colonia di una singola coorte, nella colonia compaiono precocemente i raccoglitori che svolgono compiti di foraggiamento prima del solito. I risultati rappresentativi hanno indicato cambiamenti associati al ruolo nell'espressione genica dell'HPG, suggerendo la funzione dell'HPG associata al ruolo. Oltre a manipolare la popolazione della colonia, l'analisi del sistema endocrino è importante per studiare la fisiologia associata al ruolo. Qui, descriviamo anche un protocollo dettagliato per il trattamento dei lavoratori con 20-idrossiecdisone (20E), una forma attiva di ecdisone, e metoprene, un analogo dell'ormone giovanile. Il tasso di sopravvivenza delle api trattate è stato sufficiente per esaminare l'espressione genica negli HPG. Sono stati osservati cambiamenti nell'espressione genica in risposta al trattamento con 20E e/o metoprene, suggerendo che i trattamenti ormonali inducono cambiamenti fisiologici degli HPG. Il protocollo per il trattamento ormonale qui descritto è appropriato per esaminare gli effetti ormonali sulla fisiologia del lavoratore.

Una panoramica del protocollo per la preparazione di colonie singola coorte è illustrata nella Figura 1A. Time-corso di esperimenti da preparare colonie singola coorte di assaggiare collezione è mostrato in Figura 1B. I lavoratori che hanno soddisfatto i criteri di comportamento per il comportamento di cura o comportamento alimentare sono stati raccolti da colonie singola coorte, e lo sviluppo HPG è stata stimata in questi lavoratori tabella 1</s...

Qui si descrive il nostro protocollo dettagliato per la preparazione di colonie di api singola coorte - uno strumento utile per analizzare la fisiologia dei lavoratori di ruolo associati. Descriviamo anche protocolli dettagliati per il trattamento di lavoratori con ormone giovanile e ecdysone per valutare il coinvolgimento di questi ormoni nella regolazione del comportamento dei lavoratori e / o la fisiologia.

Preparazione di singole colonie-coorte e trattamento ormonale di lavoratore api per analizzare Fisiologia associati con il ruolo e / o sistema endocrino

Honeybee workers are engaged in various tasks related to maintaining colony activity. The tasks of the workers change according to their age (age-related ...

L'obiettivo generale di queste procedure è esaminare la fisiologia delle api operaie in relazione al ruolo svolto dalle operaie e allo stato del loro sistema endocrino. Si tratta di un metodo ampiamente utilizzato per l'analisi del comportamento delle operaie, che può inoltre contribuire a rispondere a domande fondamentali riguardo la relazione tra fisiologia e ruolo delle api operaie. Il principale vantaggio di questa tecnica è che è relativamente semplice da eseguire.Per creare due colonie singole per coorte, iniziare con tre colonie standard e raccogliere le api operaie appena emerse da ciascuna delle tre. Utilizzando pinzette, ispezionare regolarmente le colonie per individuare la comparsa di pupe nelle celle periferiche tappate con occhi marroni e cuticole pigmentate. Una volta individuate, la maggior parte delle pupe emergerà nei prossimi giorni.Quindi spazzolare gli adulti dai favi ed estrarre i favi dalla colonia. Riunire un favi di questo tipo da ciascuna delle tre colonie in una scatola vuota per arnia nucleo. Preparare due scatole per arnie di questo tipo e incubarle a 33 gradi Celsius con un'umidità relativa di almeno 60%. Nei tre giorni successivi, raccogliere circa 3.000 operaie appena emerse da ciascuna scatola per arnia nuova.Per stimare il numero di api in ciascun campione, pesare cinque operaie appena emerse selezionate casualmente e utilizzare la loro massa media confrontata con la massa delle operaie raccolte per calcolare il numero di api. Preparare nuove scatole per alveari con un favo carico di miele e polline provenienti da una colonia non manipolata e un altro favo vuoto. Successivamente, etichettare i toraci di circa 900 operaie in ciascuna nuova colonia utilizzando pennarelli a vernice acrilica a base d'acqua.Quindi trasferire il gruppo di api operaie in queste nuove arnie e aggiungere una regina. Da sei a otto giorni dopo l'allestimento delle colonie a coorte singola, raccogliere alcune delle loro api nutrici e foraggiatrici precoci per l'analisi. Per raccogliere le api nutrici, utilizzare pinzette per selezionare le api che introducono la testa nelle celle del favo per prendersi cura della covata.Prendeteli per il torace. Per raccogliere le foraggiatrici, utilizzate una rete entomologica per catturare le operaie che ritornano ai loro alveari con carichi di polline sulle zampe posteriori. Per classificare le GPF delle api mellifere, trasferite un campione di 10-15 api in una gabbia per insetti e anestetizzatele a quattro gradi Celsius per 10-15 minuti, fino a quando le api non riescono più a volare o camminare.Quindi trasferire le api sul ghiaccio per raffreddarle fino a uno stato completamente anestetizzato dopo circa cinque minuti. Lasciare le api sul ghiaccio fino al momento dell'utilizzo. Ora, dissezionare le teste dai corpi con forbici e pinzette.In una piastra di Petri, fissare le teste alla cera da dentista utilizzando spilli da entomologia. A tale scopo, inserire due spilli alla base delle antenne. A questo punto, immergere le teste fissate in soluzione fisiologica per insetti e trasferire la piastra su un stereomicroscopio.Utilizzando pinzette fini e un bisturi chirurgico, rimuovere la cuticola anteriore dalla testa per accedere alle aree circostanti il cervello. Successivamente, rimuovere il tessuto tracheale membranoso bianco situato sotto la cuticola per esporre le GPF. Quindi dissezionare le GPF dalla testa estrarle lentamente con l'ausilio delle pinzette.Classificare le GPF con asini grandi e circolari come sviluppati e considerarli provenienti da api nutrici. Classificare le GPF con asini piccoli e distorti come atrofizzati e considerare questi provenienti da api foraggiatrici. Classificare le GPF che non corrispondono né a sviluppati né ad atrofizzati come intermedi.Utilizzare le HPG sviluppate e ridotte per l'estrazione di RNA al fine di confrontare la loro espressione genica. Raccogliere api nutrici da colonie tipiche come descritto in precedenza. Anestetizzare le api nutrici a quattro gradi Celsius per circa 30 minuti.Quindi, utilizzando pinzette, immobilizzare le api sulla cera da dentista in una piastra di Petri. Una volta immobilizzate, iniettare nelle teste delle api nutrici un microlitro di soluzione di 20E. A tale scopo, utilizzare una micropipetta capillare calibrata.Collegare la punta di iniezione a un tubo di gomma e collegare la punta di micropipetta da 200 microlitri all'estremità opposta del tubo. Successivamente, caricare un microlitro di soluzione di 20E su un pezzo di parafilm. Quindi utilizzare l'aspirazione orale per aspirare la soluzione all'interno della punta di iniezione.Successivamente, inserire la punta dell'iniezione alla base delle antenne ed iniettare la soluzione esalando sul tubo. In alternativa, utilizzare una macchina per iniezioni automatizzata, se disponibile. Allevare le api iniettate in gabbie per insetti a 35 gradi Celsius in condizioni buie e umide.Includere acqua zuccherata con miele per l'alimentazione e monitorare la sopravvivenza secondo necessità. Raccogliere i favi contenenti pupe da una colonia e incubarli a 35 gradi Celsius con un'umidità relativa del 60% o superiore per un massimo di un giorno. Raccogliere le api appena emerse dai favi e applicare dei segni di vernice sui loro toraci utilizzando vernice per cartelloni.Quindi, riportare queste api alle loro colonie. Dopo sei giorni, raccogliere le operaie marcate dalle colonie e anestetizzarle a quattro gradi Celsius per 30 minuti. Una volta anestetizzate, immobilizzare le api utilizzando pinzette e cera dentale come descritto in precedenza.Applicare quindi da uno a cinque microlitri di metoprene e acetone sulle loro teste utilizzando una micropipetta resistente all'acetone. Allevare le api in gabbie come descritto in precedenza. Se si osserva una mortalità elevata, ridurre il volume di acetone a un microlitro.Operai che soddisfacevano i criteri comportamentali per l'attività di accudimento o per l'attività di foraggiamento sono stati prelevati da colonie a coorte singola e lo sviluppo del loro HPG è stato stimato. Sulla base delle estrazioni di RNA da HPG e della RT-PCR quantitativa, l'espressione di MRJP2 risultava arricchita nelle api nutrici e quella di Hbg3 nelle foraggiatrici precoci. Gli operai selezionati sono stati iniettati con 20E e le api sopravvissute sono state contate.Sette giorni dopo l'iniezione, circa il 60% al 80% delle api iniettate erano vive. L'iniezione di controllo ha prodotto risultati simili. L'analisi quantitativa con RT-PCR mostra che l'iniezione di 20E ha ridotto l'espressione di MRJP2 nelle HPG.Lo stesso è avvenuto con Hbg3 nelle GPF. Oltre al 20E, è stato esaminato l'effetto dell'applicazione topica di metoprene sull'espressione di MRJP2 e Hbg3 nelle GPF. Dopo l'applicazione topica, la maggior parte delle api è sopravvissuta fino a sette giorni.L'RNA estratto da questi sopravvissuti mostra che l'applicazione di metoprene ha inibito l'espressione di MRJP2 e potenziato l'espressione di Hbg3. Dopo aver visto questo video, si dovrebbe avere una buona comprensione di come preparare colonie di coorte singola e trattare le api con ormoni al fine di analizzare la fisiologia delle operaie associata ai ruoli e al sistema endocrino. Una volta acquisita padronanza, la classificazione dell'HPG può essere eseguita in cinque minuti se effettuata correttamente.Nel tentativo di iniettare la soluzione ormonale, è importante ricordare di ridurre al minimo i danni alle api causati dall'anestesia e dall'iniezione, al fine di mantenere le api in vita durante l'allevamento. Non dimenticare che lavorare con api mellifere può essere pericoloso e che precauzioni come indossare tute e guanti per apicoltori devono essere sempre adottate durante il prelievo delle api e la manipolazione degli alveari.

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Dimostriamo come implementare un metodo di farmacologia comportamentale in un paradigma di condizionamento appetitivo olfattivo nelle api (Apis mellifera) mediante l'applicazione sistemica di farmaci. Questo metodo permette di indagine del processo di apprendimento dei meccanismi di base e formazione della memoria in modo semplice e affidabile.

Farmacologia Comportamentale nel condizionamento classico della risposta estensione proboscide in api ( Apis mellifera)

In questo protocollo, si descrive due strategie che sopprimono contemporaneamente due geni (doppia knockdown gene) di api mellifere. Poi ci presentiamo come usare la risposta estensione proboscide (PER) test per studiare l'effetto di doppio knockdown gene sul miele d'api percezione gustativa.

RNAi mediato doppia Gene atterramento e gustative Percezione misura di api mellifere (<em&gt; Apis mellifera</em&gt;)

In lavoratori api, l'invecchiamento dipende comportamenti sociali piuttosto che su età cronologica. Qui vi mostriamo come operaio-tipo con modelli molto diversi di invecchiamento possono essere ottenuti e analizzati per senescenza cellulare.

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Il protocollo di condizionamento Proboscis Extension Response (PER), sviluppato per l'ape mellifera (Apis mellifera), fornisce un mezzo ecologicamente rilevante e facilmente quantificabile per studiare diversi meccanismi di apprendimento in molte specie di insetti.

Una proboscide risposta estensione Protocollo per Indagare plasticità comportamentale in Insetti: Applicazione di base, biomedica e ricerca agricola

Consorzi microbici all'interno alveari dell'ape di bumble arricchiscono e preservare il polline per larve di ape. Mediante sequenziamento di nuova generazione, insieme al laboratorio ed esperimenti sul campo, questo manoscritto descrive protocolli utilizzati per verificare l'ipotesi che residui di fungicidi alterano il microbioma di polline e demographics di Colonia, infine conducendo alla Colonia perdita.

Empirica, metagenomica e tecniche computazionali illuminano i meccanismi attraverso i quali salute delle API di fungicidi compromesso

Questo manoscritto descrive diversi protocolli per la somministrazione di agenti farmacologici alle api, tra cui semplici metodi non invasivi per le api in volo libero, così come le varianti più invasive che consentono preciso trattamento localizzato delle api trattenuti.

Manipolazione neurofarmacologico di sobrio e-volo libero api mellifere,<em&gt; Apis mellifera</em

Qui vi presentiamo   un metodo per alimentare antiparassitario alimenti contaminati sia un individuo ape e una colonia alveare. La procedura valuta l'effetto dei pesticidi sulle singole api mellifere in vivo l'alimentazione della dieta larvale di base e anche la condizione naturale della colonia dell'alveare.

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Le dosi subletali di pesticidi possono influire sulle colonie in modi che sono difficili da rilevare utilizzando solo metodi periodici o visual. Metodi per misurare la massa totale dell'ape adulta, nidiata e le risorse alimentari di pesatura alveari e parti di alveare, fotografare fotogrammi e l'installazione di sensori, sono fornite. Analisi dei dati si rivolge anche.

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Preparazione di singole colonie-coorte e trattamento ormonale di lavoratore api per analizzare Fisiologia associati con il ruolo e / o sistema endocrino

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