7 ottobre 2016
Descriviamo un protocollo per visualizzare volumetricamente cellule marcate con proteine fluorescenti in profondità all'interno di cuori embrionali e postnatali intatti. Utilizzando metodi di pulizia dei tessuti in combinazione con la colorazione dell'intera montatura, è possibile visualizzare in modo chiaro e accurato singole cellule marcate con proteine fluorescenti all'interno di un cuore embrionale o postnatale.
L'obiettivo generale di questa procedura è quello di visualizzare volumetricamente cellule marcate con proteine fluorescenti in profondità all'interno di cuori intatti, per studiare la funzione genica alla risoluzione di singole cellule durante lo sviluppo cardiaco e nei cuori postnatali. Questo metodo può aiutare a rispondere a domande chiave durante lo sviluppo cardiaco, come lo studio delle funzioni geniche e l'analisi dell'immagine alla risoluzione di una singola cellula durante lo sviluppo cardiaco e gli artefatti animidali. Il vantaggio principale di questo metodo è che è relativamente semplice, poco costoso e professionale in quanto speciale analisi temporale delle funzioni geniche e proteiche alla risoluzione di una singola cellula in embrione o cuore intatti.
Sebbene utilizziamo questo sistema per studiare lo sviluppo del cuore nei topi, puoi anche usarlo per studiare altri sistemi di organi, come muscoli, cervello e polmoni e anche in altri organismi modello. Qui vengono utilizzati embrioni positivi alle proteine fluorescenti provenienti da madri di coriandoli R-26 Cre-RET2 trattate con Tamoxifren. Iniziare la colorazione immergendo ogni embrione fissato con paraformaldeide in un millilitro di PBST allo 0,1% nei pozzetti di una piastra a 48 pozzetti.
Incubare per due ore su un agitatore per piastre a temperatura ambiente per permeabilizzare il tessuto. Quindi, sostituire la soluzione di permeabilizzazione con un mL di tampone bloccante e incubare, agitando, per due ore a temperatura ambiente o durante la notte a quattro gradi Celsius. Successivamente, preparare una diluizione da uno a 100 dell'anticorpo specifico per le cellule endoteliali, PECAM, in 0,3 millilitri di tampone bloccante per ogni pozzetto e aggiungerlo ai pozzetti contenenti gli embrioni.
Incubare per 48 ore agitando a quattro gradi Celsius. Dopo l'incubazione, lavare gli embrioni cinque volte con PBST per 30 minuti ogni volta per rimuovere l'eccesso di anticorpi primari dal tessuto. Successivamente, immergere gli embrioni nella soluzione di anticorpi secondari antivaschetta di capra Alexa Fluor 647 e incubare agitando per 48 ore a quattro gradi Celsius, al riparo dalla luce.
48 ore dopo, dopo il lavaggio precedente, post-fissare gli embrioni con il 4% di PFA per un'ora a temperatura ambiente con agitazione. Quindi, dopo aver lavato due volte con PBS per cinque minuti ogni volta, incubare gli embrioni con la colorazione nucleare DAPI per dieci minuti. Seguire con due lavaggi PBS di cinque minuti ciascuno, quindi procedere alla pulizia dei tessuti.
La pulizia dei tessuti è la fase più critica di questo protocollo per visualizzare il cuore con una risoluzione di una singola cellula. Inoltre, la scelta del metodo di pulizia, scala o CUBIC, è molto importante per preservare i segnali fluorescenti nel cuore embrionale intatto. Trasferire gli embrioni lavati e colorati in una fiala a scintillazione avvolta in un foglio di alluminio, che contiene un millilitro di soluzione in scala A2.
Incubare a quattro gradi Celsius con occasionali agitazioni leggere con le mani per 48 ore. Dopo l'incubazione in scala A2, sostituire la soluzione nel flaconcino con un millilitro di soluzione di scala B4 e incubare a quattro gradi Celsius agitando delicatamente di tanto in tanto per altre 48 ore. Incubare gli embrioni per altre 48 ore con un millilitro di scala 70 a quattro gradi Celsius con agitare leggermente di tanto in tanto come prima.
Infine, immergere il campione in un millilitro di glicerolo al 90% e conservarlo a quattro gradi Celsius fino all'imaging. Per l'imaging, trasferire il campione in una capsula di Petri con fondo di vetro con una quantità minima di glicerolo al 90% e l'imaging con un microscopio confocale dotato di capacità a due fotoni. Per la pulizia CUBICA, immergere ogni embrione in un millilitro di CUBIC one agitando delicatamente di tanto in tanto per 48 ore a 37 gradi Celsius.
Dopo 48 ore, sostituire la soluzione con lo stesso volume di reagente CUBIC fresco e incubare il campione per altre 48 ore, come prima. Dopo l'incubazione, lavare più volte gli embrioni trattati con PBS con CUBIC one agitando delicatamente a mano per rimuovere la soluzione di CUBIC one in eccesso. Quindi, immergere gli embrioni nella soluzione CUBIC two per 48 ore a 37 gradi Celsius con occasionali agitazioni leggere con le mani.
Se ci sarà un ritardo prima dell'imaging, incubare in sequenza i campioni con un millilitro di glicerolo al 30% al 50% e al 70% e PBS per 30 minuti ciascuno. Dopo aver attraversato la serie, trasferire in una soluzione di glicerolo al 90% per la conservazione a quattro gradi Celsius. Quando è pronto, immergerlo in una capsula di Petri con fondo di vetro con glicerolo al 90%, come prima.
Questo filmato mostra le sezioni ottiche di un cuore E 8.75 trattato in scala, dalla superficie del cuore al lume. Il giallo segna l'espressione PECAM e tutti i cardiomiociti appaiono verdi. La profondità è di 110,4 micron e ci sono 93 fette in totale.
Questa è l'immagine 3D della superficie del cuore ricostruito appena mostrata. Anche in questo caso, il giallo segna l'espressione di PECAM e il verde etichetta tutti i cardiomiociti. Questo filmato mostra sezioni di un singolo clone progenitore da un cuore E 9.5 trattato con squame nella regione del tratto di efflusso.
Il giallo contrassegna l'espressione PECAM e il clone appare in verde. La profondità è di 36 micron e ci sono 10 fette in totale. Questo filmato mostra sezioni di un cuore P 2 trattato con CUBIC dalla superficie al lume.
La profondità è di 130 micron con tre micron per sezione. Questo filmato mostra le sezioni di un cuore E 17,5 trattato con CUBIC dalla superficie al lume. La profondità è di 630 micron con sei micron per sezione.
Si tratta di un'immagine 3D della superficie del cuore appena mostrata, ricostruita tramite il software di ricostruzione 3D. Quando si tenta questa procedura, è importante ricordare che l'embrione è fragile e la patologia cardiaca può essere facilmente disturbata. Seguendo questa procedura, è possibile realizzare altre proteine, utilizzando la colorazione per studiare la funzione genica in post-ost lazione e schiuma.
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Questo articolo presenta un protocollo per l'acquisizione volumetrica di immagini di cellule marcate con proteine fluorescenti all'interno di cuori embrionali e postnatali intatti. Il metodo combina tecniche di chiarificazione dei tessuti con la colorazione in toto per ottenere immagini nitide con risoluzione a livello cellulare.
L'analisi mediante imaging di cuori embrionali e postnatale chiarificati a risoluzione singola cellula permette un'indagine dettagliata del comportamento e della differenziazione delle cellule progenitrici cardiache durante lo sviluppo. Questo approccio supporta la validazione degli bersagli chiarificando i meccanismi cellulari e molecolari alla base della morfogenesi cardiaca normale e anomala. Il metodo fornisce un'elevata affidabilità predittiva nei modelli preclinici collegando la funzione genica agli esiti strutturali in tessuti integri.
Il metodo si integra nel percorso di scoperta, dall'analisi iniziale dell'ipotesi sul bersaglio fino all'identificazione del composto promettente e alla validazione preclinica, consentendo letture quantitative e risolte spazialmente della funzione genica in tessuto cardiaco integro.