28 giugno 2016
Questo articolo descrive un protocollo semplice e riproducibile per manipolare le condizioni di ossigeno disciolto in un ambiente di laboratorio per gli studi di comportamento animale. Questo protocollo può essere utilizzato in entrambe le impostazioni di insegnamento e laboratorio di ricerca per valutare la risposta organismal di macroinvertebrati, pesci, anfibi o alle variazioni di concentrazione di ossigeno disciolto.
L'obiettivo generale di questo metodo è manipolare in modo efficace e graduale le condizioni di ossigeno disciolto (DO) in un ambiente di laboratorio, al fine di osservare le risposte comportamentali di animali acquatici. L'aspetto interessante di questo metodo è che può trovare applicazione in numerosi esperimenti sul comportamento animale.
Sia per vertebrati che per invertebrati. Il principale vantaggio di questa tecnica è che può essere utilizzata sia per l'insegnamento in aula che per scopi di ricerca. In un sito campione selezionato, entro un'ora di trasferimento dal laboratorio, utilizzare le procedure standard con rete da calciatura per raccogliere almeno 35 mosche della pietra.
Dal corso d'acqua, raccogliere quattro litri di acqua per acquario. Più tre litri aggiuntivi per ogni esperimento. Nonché diverse rocce con un diametro massimo di due centimetri.
Di ritorno in laboratorio, distribuire le rocce in acquari posizionati in un frigorifero, impostando la temperatura registrata nel sito del corso d'acqua. Aggiungere quindi quattro litri di acqua del corso d'acqua a ciascun acquario. Successivamente, aggiungere da 20 a 30 plecoperi a ciascun acquario.
E posizionare un sasso aerante collegato a un aeratore per acquario in ciascun serbatoio per aggiungere continuamente aria ambiente all'acqua. Dopo due giorni, collegare un tubo da vuoto standard a una presa a muro al braccio laterale di un pallone da due litri con braccio laterale. E riempire il pallone con 1,9 litri di acqua di ruscello a 12 gradi Celsius.
Posizionare il pallone e il tubo su un vassoio abbastanza grande da contenere un bagno di ghiaccio senza ostacolare la vista dell'interno del pallone laterale. Riempire quindi il vassoio con ghiaccio. Inserire una sonda di ossigeno disciolto in uno dei fori di tre millimetri di un tappo di gomma appositamente preparato.
E un tubo di rame del diametro di due millimetri dotato di un raccordo maschio per tubo flessibile da tre millimetri, inserito attraverso un altro foro da tre millimetri, in modo che la lunghezza del tubo a partire dal fondo del tappo sia entro 10 centimetri dal fondo del pallone. Collegare al raccordo un tubo per gas in polietilene sottile lungo zero virgola sette metri e del diametro di tre millimetri.
Verificare che esista un sigillo sicuro tra il tappo e il pallone, nonché un adattamento stretto tra il tubo e il filo della sonda all'interno del tappo. È fondamentale che i tappi e i tubi siano sigillati ermeticamente per mantenere un ambiente a pressione costante all'interno del recipiente durante tutto l'esperimento e per evitare perdite di azoto dal recipiente. Inserire il tubo di polietilene in un pallone da un litro contenente zero virgola quattro litri di acqua di rubinetto e fissare il tubo con del nastro in modo da mantenere le estremità immerse per tutta la durata dell'esperimento.
Quindi, collegare il tubo del gas da tre millimetri di diametro dalla fiala a vuoto a un diffusore d'aria per acquario. Accendere il diffusore per ossigenare l'acqua nella fiala da due litri con l'ossigeno ambiente. Utilizzare la sonda di OD per monitorare la temperatura dell'acqua e la concentrazione di OD per circa cinque minuti.
Finché non si stabilisce un equilibrio di ossigeno disciolto (DO) all'interno della camera. Prima di aggiungere le perlace, inserire tre o quattro pietre nel matraccio da due litri in modo che gli insetti abbiano un substrato adatto per eseguire flessioni. Quindi iniziare una manipolazione sperimentale del DO staccando il tubo del gas dal diffusore e collegandolo alla linea dell'azoto gassoso.
Iniziare a far gorgogliare l'azoto a 20 piedi cubi all'ora per circa 40-60 secondi. Arrestare immediatamente il flusso di azoto non appena si raggiunge la concentrazione desiderata. Utilizzare l'aeratore dell'acquario per tornare alla concentrazione desiderata se il valore di DOD scende al di sotto dell'obiettivo.
Se il DO è instabile durante il test, verificare che il volume dell'acqua sia ancora di un punto nove litri e che non sia uscita acqua sotto forma di bolle. La temperatura dell'acqua è stabile e le guarnizioni di tutti i raccordi sono chiuse ermeticamente. Dopo aver riequilibrato il sistema, aggiungere un numero di plecotteri pari al numero di osservatori nel matraccio.
E richiudere il pallone con un tappo di gomma. Far passare bolle nell'acqua come appena dimostrato fino a quando non si raggiunge una concentrazione obiettivo di 10 milligrammi per litro. Successivamente, registrare la temperatura iniziale dell'acqua.
Lasciare che le perle si attacchino alla roccia sottostante all'interno del matraccio. Ogni osservatore conterà e registrerà il numero di flessioni esibite da una singola perla nel corso di tre minuti. Successivamente, modificare la concentrazione di ossigeno disciolto al livello sperimentale successivo e ripetere l'osservazione della durata di tre minuti.
In questa figura, il numero medio di flessioni eseguite all'interno di ciascun livello di OD, e all'interno di ognuna delle sei prove, è stato riportato per rappresentare graficamente le flessioni in funzione del livello di OD. Per questi esperimenti, solo la concentrazione di OD ha influenzato in modo significativo il numero di flessioni eseguite dalle perlacee. Nessun'altra variabile o interazione ha dimostrato di essere un predittore significativo del numero di flessioni.
Una volta padroneggiata, questa tecnica può essere riprodotta per raggiungere gli obiettivi specifici stabiliti dal ricercatore. Durante il tentativo di eseguire questa procedura, è importante evitare variazioni di temperatura, poiché ciò potrebbe provocare cambiamenti nell'ossigeno disciolto (DO). Con questa procedura, altri metodi, come quelli che modificherebbero il pH, possono essere utilizzati per rispondere ad ulteriori domande riguardo agli effetti delle variazioni di pH e di DO sugli organismi acquatici. Dopo aver visto questo video, si dovrebbe essere in grado di manipolare l'ossigeno disciolto in un ambiente di laboratorio per condurre diversi esperimenti sul comportamento animale.
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Questo articolo descrive un protocollo semplice e riproducibile per manipolare le condizioni di ossigeno disciolto in un ambiente di laboratorio per studi sul comportamento animale. Questo metodo consente l'osservazione delle risposte comportamentali di animali acquatici sia in contesti didattici che di ricerca.
Questo protocollo consente una manipolazione controllata dell'ossigeno disciolto per studiare le risposte comportamentali in organismi acquatici, supportando la validazione di bersagli in neurofarmacologia e tossicologia ambientale. Fornendo un metodo riproducibile per indurre condizioni ipossiche o anossiche, esso contribuisce alla riduzione del rischio meccanicistica di composti che influenzano le vie di rilevamento dell'ossigeno. L'approccio è scalabile da laboratori didattici a schermature ad alto rendimento, offrendo un valore predittivo per fenotipi comportamentali associati alla disponibilità di ossigeno.
Il metodo si inserisce nel percorso di scoperta che va dal test dell'ipotesi sul bersaglio all'identificazione del composto attivo, in particolare per composti che agiscono su meccanismi di rilevamento dell'ossigeno.