19 settembre 2016
Descriviamo in dettaglio la metodologia seguita per confrontare l'efficacia protettiva e la risposta immunitaria polmonare indotta dall'immunizzazione intranasale e sottocutanea con BCG nel modello murino. I nostri risultati mostrano i benefici della vaccinazione polmonare e suggeriscono un ruolo della risposta mediata da IL17 nella protezione indotta dal vaccino.
L'obiettivo generale di questa procedura è studiare le risposte immunitarie nei polmoni dopo la vaccinazione antitubercolare, inclusa l'efficacia protettiva del vaccino contro una sfida intranasale e la risposta immunitaria polmonare locale indotta dal vaccino. Questa metodologia può aiutare a rispondere alle nostre domande fondamentali nel campo del vaccino antitubercolare, inclusa l'identificazione delle risposte immunitarie polmonari difensive attivate dai vaccini polmonari per una protezione immunitaria ottimale a livello polmonare. Un vantaggio di questa metodologia è che la risposta immunitaria polmonare di ciascun animale viene valutata singolarmente in parallelo con l'efficacia protettiva.
consentendo l'identificazione dei parametri immunitari specifici che si correlano con la protezione. Per la somministrazione sottocutanea del vaccino BCG, riempire innanzitutto una siringa da un millilitro munita di un ago da 26 gauge con un millilitro della sospensione del vaccino BCG ed eliminare le bolle d'aria. Successivamente, posizionare un topo anestetizzato in posizione prona all'interno di una cappa a flusso laminare e inoculare l'animale per via sottocutanea con 100 microlitri di batteri in una coscia posteriore.
Per l'amministrazione intranasale, caricare una micropipetta con 20 microlitri di sospensione di BCG e posizionare il topo anestetizzato in posizione supina all'interno della cappa. Somministrare l'inoculo goccia a goccia tra le due narici fino a quando l'intero volume di 20 microlitri non è stato depositato, lasciando un intervallo tra le gocce per permettere al topo di inalare la sospensione. Successivamente, ricaricare la micropipetta con altri 20 microlitri di batteri e ripetere la somministrazione.
Per la sfida intranasale con il ceppo di Mycobacterium tuberculosis H37Rv, al tempo sperimentale appropriato successivo alla vaccinazione, inoculare gli animali mediante somministrazione intranasale di 40 microlitri della sospensione batterica di H37Rv come appena dimostrato. Per ottenere il lavaggio broncoalveolare o il campione ball, utilizzare prima pinze sterili e forbici per esporre la trachea. Successivamente, praticare una piccola incisione nella trachea, avendo cura di non escindere completamente il tessuto, e inserire una cannula collegata a una siringa sterile da 1 mL contenente 800 microlitri di PBS freddo ghiacciato.
Quando la cannula è in posizione, riempire con attenzione i polmoni con il PBS, quindi ritirare lentamente lo stantuffo per recuperare almeno da 500 a 600 microlitri di liquido di lavaggio. Trasferire il campione in una provetta da 1,5 mL posta sul ghiaccio e verificare che la sospensione sia incolore, indicando l'assenza di contaminazione ematica. Conservare i campioni sul ghiaccio fino all'elaborazione del campione.
Per determinare il carico batterico e la risposta immunitaria nei polmoni, fissare il topo con aghi in posizione supina su una superficie piana e disinfettata all'interno della cappa a flusso laminare ed effettuare un'incisione nella pelle superiore del torace. Successivamente, sollevare la pelle per esporre la zona toracica ed aprire i polmoni. Utilizzare forbici e pinze sterili per prelevare i polmoni e il cuore, e posizionare gli organi su una superficie pulita.
Quindi, rimuovere il cuore, la trachea e il tessuto connettivo. Posizionare ciascun polmone in un tubo da 1,5 mL diverso contenente 1 mL di acqua deionizzata su ghiaccio per la successiva determinazione del carico batterico e delle risposte immunitarie cellulari. Rispetto alla via sottocutanea, la via di vaccinazione intranasale conferisce un'efficacia protettiva molto maggiore nei polmoni.
L'analisi di un numero rappresentativo di colonie appartenenti al gruppo vaccinato con BCG per via intranasale, mediante PCR specifica per la regione genomica RD9, dimostra che tutte le colonie producono un frammento di 0,4 chilo paia di basi corrispondente a H37Rv. Il BCG somministrato per via intranasale induce livelli più elevati di IL17 e di interferone gamma nei polmoni, rivelando una correlazione tra l'efficacia protettiva conferita dalla vaccinazione intranasale con BCG e la risposta immunitaria indotta dal vaccino nei polmoni prima della sfida, nonché una concentrazione più alta sia di IgA totale sia di IgA specifica per il derivato proteico purificato di H37Rv nei campioni di lavaggio osservata nei soggetti vaccinati per via intranasale. Un'ulteriore analisi delle cellule produttrici di citochine nei polmoni dopo la sfida con il tubercolosi ha rivelato che, sebbene cellule produttrici di interferone gamma fossero presenti in tutti i gruppi infetti, cellule CD4+ produttrici di IL17A erano presenti soltanto nel gruppo vaccinato con BCG per via intranasale, dimostrando una correlazione significativa tra la presenza di IL17 e la riduzione del carico batterico polmonare.
Seguendo questa procedura, è possibile confrontare le risposte immunitarie locali a livello polmonare nell'uso di vaccini antitubercolari biodiversi, nonché diverse vie di somministrazione e diversi tempi successivi alla sfida infettiva. Inoltre, questa metodologia può essere utilizzata per valutare l'immunità indotta dalla vaccinazione dopo la sfida, consentendo l'identificazione delle risposte immunitarie correlate alla protezione.
È importante sottolineare che il lavoro con Mycobacterium tuberculosis richiede strutture di laboratorio esenti da BCL, e le opportune precauzioni devono essere sempre adottate durante l'esecuzione di questa procedura.
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Questo studio analizza le risposte immunitarie nei polmoni dopo la vaccinazione antitubercolare, confrontando l'efficacia protettiva della vaccinazione BCG intranasale e sottocutanea in un modello murino. I risultati evidenziano i vantaggi della vaccinazione polmonare e il ruolo dell'IL17 nella protezione indotta dal vaccino.
Questo studio dimostra che le vie di vaccinazione polmonare possono potenziare l'efficacia protettiva contro i patogeni respiratori inducendo risposte immunitarie localizzate, tra cui Th1, Th17 e IgA mucosale, che sono fondamentali per lo sviluppo di vaccini contro la tubercolosi. La correlazione tra cellule produttrici di IL17 nei polmoni e la riduzione del carico batterico dopo la sfida fornisce un biomarcatore meccanicistico per prevedere l'efficacia del vaccino nei modelli preclinici. Questi risultati sostengono la valutazione di strategie di immunizzazione mucosale nelle fasi iniziali della scoperta, al fine di ridurre i rischi nella validazione del bersaglio e migliorare la continuità traslazionale per i candidati vaccini polmonari.
Il metodo si integra nel percorso di scoperta, dalla validazione iniziale della proteina bersaglio all'identificazione del composto leader fino alla valutazione preclinica, consentendo una valutazione dipendente dalla via di somministrazione dell'immunità polmonare indotta dal vaccino e della protezione conferita.