Name: Un ripetitivo Concussive trauma cranico Modello nei topi (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-10-12T14:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 42 s
Description: Scopri come stabilire un modello di trauma cranico concussivo ripetitivo nei topi utilizzando un sistema di impatto elettromagnetico. Questa tecnica permette di studiare gli effetti del TBI lieve sul funzionamento cerebrale.

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Questo lavoro è stato supportato da un finanziamento di una sovvenzione della Florida Health (Fondo per la ricerca sulle lesioni cerebrali e del midollo spinale) (KKW).

Tutte le procedure sono state eseguite secondo protocolli # 201.207.692 approvato dal comitato di Cura e uso istituzionale degli animali della University of Florida e secondo il National Institutes of Health Guide per la Cura e l&#39;Utilizzo di animali da laboratorio. 1. Animal Care <ol><li> Utilizzare 3-4 mesi di età maschi 6J / C57BL. Fornire biancheria, materiale di nidificazione, cibo e acqua ad libitum. Mantenere i topi in temperatura ambiente controllata a 20 - 22 ° C con la luce / 12-hr cicli scuri 12 hr costanti. </li></ol> 2. Pre-compressione Preparazione <ol><li> Collegare un silicone gommato punta in metallo su misura per un dispositivo elettromagnetico impatto stereotassico. Assicurarsi che il fondo piatto della punta è parallelo alla superficie della punta della sonda (Figura 1A). </li><li> Anestetizzare il mouse con il 4% isoflurano seguita da anestesia di mantenimento del 2,5% isoflurano. Controllare l&#39;anestesia con flussimetro. Monitor livello anestesia finché l&#39;animale raggiunge un livello chirurgica di anestesia mostrando perdita del pedale recesso reflex. </li><li> Mettere il mouse in posizione prona su una piastra elettrica. Utilizzare un cono a forma di imbuto per mantenere il mouse in anestesia. Completamente radersi la testa con un trimmer. Utilizzare vaselina pomata oftalmica sugli occhi del topo per prevenire la secchezza mentre sotto anestesia. </li></ol> 3. I parametri di impatto Impostazione NOTA: Il sistema di impatto comprende una scatola di controllo per impostare i parametri di impatto, un attuatore per eseguire l&#39;occlusione, e una cornice stereotassico digitale con 3 assi di movimento. <ol><li> Pre-impostare la velocità del dispositivo di impatto a 4 m / sec e tempi a 240 msec sulla scatola di controllo. </li></ol> 4. Posizionamento del Centro Impact <ol><li> Mettere una piastra elettrica morbido sotto il corpo dell&#39;animale per mantenere la temperatura corporea vicino a 39 ° C. Montare il mouse in una cornice stereotassica in una prone posizione con le barre orecchio smussato-end. </li><li> Abbassare la punta impatto vicino alla testa del mouse spostando il Z-driver. Regolare la punta piatta impatto (diametro 9 mm) spostando il X e Y piloti a metà strada per le coordinate di destinazione al di sopra della sutura sagittale. </li><li> Assicurarsi che un bordo della punta impatto verticalmente parallela a una linea orizzontale immaginaria tracciata tra le due orecchie (Figura 1C). Il centro di impatto corrisponde alla metà sutura sagittale centrale tra suture interfrontal e lambdoid (interaurali 9 mm a Interaural 0 millimetri, 4,5 millimetri laterale). </li></ol> 5. Impatto Profondità Impostazione <ol><li> Per impostare correttamente la profondità dell&#39;impatto, utilizzare ulteriore punta della sonda per sostituire la gomma rivestita punta impatto silicone isolamento. </li><li> Per assicurarsi che non vi è alcun spostamento del centro impatto dopo punte di commutazione, impostare il X e il canale Y sul pannello di controllo stereotassico digitale a zero prima di passare le punte. </li><li> Spostare il probe punta al centro della zona di impatto spostando manualmente i-drive Y X-e. </li><li> sonda a contatto clip di coda del mouse. </li><li> Spostare il dispositivo di simulazione (unità Z) verso il basso fino a quando la punta della sonda tocca la superficie del sito di impatto. </li><li> Impostare il canale Z sul pannello di controllo stereotassico a zero. </li><li> Spostare la punta impatto di nuovo alla zona di impatto regolando manualmente X e Y-driver (non il pulsanti a zero sul pannello di controllo stereotassico digitale) fino a quando X e Y driver sono pari a zero (dove la punta impatto è stato posizionato in precedenza). </li><li> Ritrarre l&#39;attuatore spostando l&#39;interruttore di ritrazione sulla scatola di controllo. Spostare manualmente il dispositivo di simulazione verso il basso (driver Z) da 4 mm. </li></ol> 6. Impatto <ol><li> Innescare l&#39;impatto cliccando l&#39;interruttore impatto sulla scatola di controllo e di raggiungere una profondità di deformazione di 4 mm. </li></ol> 7. Post-occlusione <ol><li> Misurare il tempo per l&#39;impatto fino primo respiro del mouse utilizzando un timer. </li><li&gt; Rimuovere l&#39;animale dallo strumento e metterli su un pad caldo per mantenere la loro temperatura corporea. Non lasciare l&#39;animale incustodito fino a quando non ha ripreso conoscenza sufficiente a mantenere decubito sternale. </li><li> Consentire il recupero prima di tornare l&#39;animale di nuovo in una gabbia pulita. Non restituire un animale alla compagnia di altri animali fino alla completa guarigione. </li><li> Osservare e pesare i topi quotidiano. Se i topi mostrano segni di dolore, per via intraperitoneale li iniettare con Meloxicam a 1-2 mg / kg ogni 12 - 24 ore. </li></ol> 8. Impaction ripetitivo <ol><li> Dare i topi lesioni aggiuntive nei giorni 4, 7, e 10 dopo la lesione iniziale (intervallo di 72 ore tra impatti). </li></ol> 9. immunoistochimica (IHC) <ol><li> perfusione transcardial <ol><li> Anestetizzare i topi tramite iniezione intraperitoneale con 200 m / pentobarbital kg. </li><li> Valutare e garantire chirurgica piano anestesia da un pizzico dito del piede. secondoure il mouse in posizione supina con nastro adesivo delicatamente le zampe anteriori e le zampe posteriori per una superficie di lavoro di polistirolo all&#39;interno di una cappa. </li><li> Fare un&#39;incisione attraverso la pelle lungo la linea mediana del torace da appena sotto il processo xifoideo alla clavicola. Fare due incisioni cutanee aggiuntivi al processo xifoideo e procedere lungo la base della gabbia toracica ventrale laterale. </li><li> Aprire la cavità toracica e esporre il cuore tagliando attraverso la muscolatura del torace e costole. </li><li> Fissare il cuore pulsante con una pinza smussato e fare un 1 - mm incisione 2 nel ventricolo sinistro. </li><li> Inserire immediatamente un ago a farfalla nell&#39;atrio destro. Iniziare l&#39;infusione di 20 ml di soluzione salina spingendo la siringa lentamente. </li><li> Passare dalla soluzione salina al 4% paraformaldeide. Continuare perfusione con 20 ml di paraformaldeide. </li><li> Decapitare il mouse e togliere la pelle con le forbici. Isolare il cervello dal cranio con un cutter osso. </li></ol></li><li> Cryostat sezionamento <ol><li> tessuti cerebrali Incorpora in temperatura di taglio (OCT) formulazione e congelamento ottimale a -80 ° C. Posizionare il cervello nel criostato in un orientamento sagittale. sezioni di cervello Cut 5 micron di spessore. </li></ol></li><li> colorazione <ol><li> Asciugare le sezioni congelate a temperatura ambiente per 1 ora. </li><li> Incubare i vetrini con 100 ml di 2% siero di capra e 0,1% Triton X-100 in tampone fosfato salino (PBS) per 1 ora a temperatura ambiente. </li><li> Lavare i vetrini 3 volte con 300 ml di PBS. Poi incubare i vetrini con anti-GFAP (1: 200) o anticorpo anti-ferritina (1: 200) separatamente per una notte a 4 ° C. </li><li> Lavare i vetrini 3 volte con 300 ml di PBS. Poi incubare i vetrini per 2 ore a temperatura ambiente con anticorpo secondario biotina-coniugato. </li><li> Lavare i vetrini 3 volte con 300 ml di PBS. Poi incubare i vetrini con soluzione avidina-biotina complesso (ABC) (1:50) a temperatura ambiente per 30 min. </li><li>Lavare i vetrini 3 volte con 300 ml di PBS. Poi incubare in 3,3&#39;-diaminobenzidina soluzione (DAB) substrato (50 ml PBS, 10 microlitri H 2 O 2, 10 mg DAB pillola, filtro prima dell&#39;uso) per 5 - 8 min. Osservare i vetrini al microscopio fino a quando compaiono le cellule positive. </li><li> Sciacquare i vetrini in acqua di rubinetto corsa lenta per 5 min. diapositive pulite con un laboratorio-wipe. Quindi montare le sezioni con mezzo di montaggio e vetrino. </li></ol></li></ol>

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<li>Liu, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Increased+expression+of+ferritin+in+cerebral+cortex+after+human+traumatic+brain+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Neurol+Sci%22%5BJournal%5D)">Increased expression of ferritin in cerebral cortex after human traumatic brain injury.</a> Neurol Sci. 34 (7), 1173-1180 (2013).</li>
<li>Jordan, B. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+clinical+spectrum+of+sport-related+traumatic+brain+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Neurol%22%5BJournal%5D)">The clinical spectrum of sport-related traumatic brain injury.</a> Nat Rev Neurol. 9 (4), 222-230 (2013).</li>
</ol>

Gli autori non hanno alcun interesse finanziario da rivelare.

Per simulare le lesioni cerebrali morfologicamente simili alle condizioni cliniche, sono attesi i sintomi post-commozione cerebrale. sintomi post-commozione cerebrale generalmente includono mal di testa, capogiri, vertigini, stanchezza, problemi di memoria e di sonno, difficoltà di concentrazione così come ansia e umore depresso. Dal momento che i sintomi somatici non possono ancora essere misurabile in modelli animali, i cambiamenti del motore e la funzione cognitiva e il comportamento emotivo sono utilizzati come crit...

Commozione cerebrale, chiamata anche lievi lesioni cerebrali traumatiche (mTBI), è la presenza più frequente di lesione cerebrale traumatica (TBI) e colpisce milioni di persone in Stati Uniti. Commozioni può essere difficile da diagnosticare e non esiste una cura specifica per commozione cerebrale. Vi è un crescente riconoscimento e alcune prove che lievi traumi meccanici derivanti da infortuni sportivi, combattimento militare, e altre attività fisicamente coinvolgenti può avere conseguenze cumulativi e croniche neurologiche 1,2. Tuttavia, vi è ancora una mancanza di conoscenza per quanto riguarda traumi e dei loro effetti. metodologia attuale limita gli studi di patologia e trattamento negli esseri umani dal momento che solo la valutazione neurologica e la valutazione di imaging sono disponibili per la diagnosi clinica. Modelli animali forniscono un mezzo per studiare traumi in modo efficiente, rigorosa e controllata con la speranza di ulteriori diagnosi e il trattamento di mTBI. Gli studi hanno adattato tradizionale TBImodelli come impatto corticale controllata (CCI), l&#39;impatto del fluido-percussioni (FPI), lesioni calo di peso, e lesioni colpo di vento per eseguire mTBI e stimolare gravità bassi lesioni cambiando i parametri di lesioni. Questi modelli sono utili da usare grazie alla loro capacità di replicare trauma cerebrale morfologicamente simile alla condizione clinica; tuttavia, hanno anche i propri limiti. La gravità del danno indotto da un infortunio di accelerazione (calo di peso) è spesso molto variabile. I due risultati della CCI mite - emorragia subaracnoidea e contusione focale - non sono confrontabili con traumi tipici umani. ICC e FPI richiedono una craniotomia, che non è clinicamente rilevante, mentre la ferita esplosione è un modello più controverso per quanto riguarda i differenti misure di posizione di esposizione e di pressione di picco, così come danno secondario variabile durante l&#39;esposizione 3-6. Un modello animale concussive aggiornato in grado di tradurre la ricerca pre-clinica in Setti clinicang è necessario nella ricerca. La questione chiave nel modellare lieve trauma cranico è quello di definire la gravità delle lesioni sperimentale, che replica più strettamente l&#39;infortunio in un ambiente clinico. Recentemente, diversi gruppi di ricerca hanno sviluppato il trauma cranico chiuso o trauma cranico concussive (CHI) Modello 7-10. CHI è una modifica di CCI senza craniotomia, ma utilizza ancora un urto magnetico elettronico tradizionale per generare un impatto della testa. Un CHI può indurre un trauma cranico che vanno da lieve a moderata, regolando i parametri di impatto. Perdita di coscienza (LOC) può essere osservato immediatamente dopo un impatto rilevando una diminuzione del tasso di respirazione o la cessazione transitoria della respirazione. Il periodo di LOC è utilizzato per determinare la gravità delle lesioni. Questo documento comprende una versione leggermente migliorata e aggiornata di un modello ripetitivo CHI (rCHI) nei topi, insieme ad una dettagliata protocollo passo-passo e risultati rappresentativi. Il rCHI strategie di ricerca del modello dire utile nel determinare effetti mTBI e potenziali trattamenti, soprattutto dal momento che non esiste un modello singolo animale in grado di imitare tutti i concussione indotta cambiamenti patologici.

<table><tbody><tr><td>macchina per anestesia</td><td>Eagle Eye Anesthesia, Inc</td><td>Modello 150&nbsp;</td><td>anestesia</td></tr><tr><td>Impattatore elettromagnetico</td><td>LeicaBiosystems</td><td>Impact One Impattatore stereotassico</td><td>a urto</td></tr><tr><td>Strumento stereotassico digitale</td><td>LeicaBiosystems</td><td>39462501</td><td>montare il mouse e le punte di posizionamento</td></tr><tr><td>Punta in metallo rivestita in gomma Sicilone</td><td>Strumento di precisione e Ingegneria, Gainesvill FL</td><td>punta d'urto</td><td>su misura</td></tr><tr><td>Trimmer all-in-one agli ioni di litio</td><td>WAHL Home Prodotti</td><td>9854-600</td><td>rasatura dei capelli del mouse</td></tr><tr><td>clip di carta</td><td>punta della sonda</td><td>su misura</td><td></td></tr><tr><td>Applicatori con punta in cotone</td><td>MEDLINE</td><td>MDS202055</td><td>testina di lavaggio con soluzione salina</td></tr><tr><td>Tissue Tek O.C.T.</td><td>ASKURA FINETEK USA INC</td><td>4583</td><td></td></tr><tr><td>anticorpo anti-GFAP</td><td>Dako</td><td>CA93013</td> per <td>IHC</td></tr><tr><td>anti ferritina</td><td>Anticorpo Sigma</td><td>F6136</td><td>per IHC</td></tr><tr><td>VECTASTAIN Elite ABC&nbsp; kit</td><td>Vector laboratories</td><td>PK-6100</td><td>Sistema di rilevamento IHC</td></tr><tr><td>Permount Mounting Medium</td><td>Fisher Scientific</td><td>SP15-100</td><td></td></tr><tr><td>Aperio XT ScanScope scanner</td><td>Leica Microsystems Inc,</td><td></td> <td>scansione di vetrini</td></tr><tr><td>Leica AutoStainer XL</td><td>Leica la patologia Azienda</td><td>ST2010</td><td>H& E colorazione</td></tr><tr><td>DAB&nbsp;</td><td>Sistema di rilevamento IHC</td> <td>sigma</td><td>D3939</td></tr></tbody></table>

un ripetitivo concussive trauma cranico modello nei topi

A Repetitive Concussive Head Injury Model in Mice

Nonostante la commozione cerebrale/lesione cerebrale traumatica lieve (mTBI) sia l'evento più frequente di lesione cerebrale traumatica, c'è ancora una mancanza di conoscenza sulla lesione e sui suoi effetti. Per sviluppare una migliore comprensione delle commozioni cerebrali, gli animali vengono spesso utilizzati perché forniscono un modello controllato, rigoroso ed efficiente. Gli studi hanno adattato i modelli animali tradizionali per eseguire l'mTBI per stimolare la gravità della lesione lieve modificando i parametri della lesione. Questi modelli sono stati utilizzati perché possono produrre lesioni cerebrali morfologicamente simili alla condizione clinica e fornire uno spettro di gravità delle lesioni. Tuttavia, sono limitati nella loro capacità di presentare le caratteristiche identiche delle lesioni nei pazienti. Utilizzando un sistema di impatto tradizionale, un modello di lesione concussiva ripetitiva (rCHI) può indurre una commozione cerebrale simile a quella umana da lieve a moderata. Il grado di lesione può essere determinato misurando il periodo di perdita di coscienza (LOC) con un segno di un'interruzione transitoria della respirazione. Il modello rCHI è vantaggioso da utilizzare per la sua accuratezza e semplicità nel determinare gli effetti mTBI e i potenziali trattamenti.

In questo modello (Figura 1 AC), ci sono stati brevi periodi di boccheggiare e respirazioni profonde. Una perdita di coscienza (inconscia) è definita come una diminuzione del tasso di respirazione o la cessazione della respirazione transitoria prima di riprendere una normale respirazione. Un impatto sul centro della testa ha causato perdita di coscienza di breve durata (7.5 ± 4.7, 7.8 ± 5.5, 10.2 ± 8.8, 9.5 ± 8.0 sec a ogni impatto separatamente, Figura 1D).</str...

La commozione cerebrale rappresenta il tipo più comune di lesione cerebrale traumatica. Pertanto, un modello animale di commozione cerebrale ripetitiva, che replica le caratteristiche importanti di una lesione nei pazienti, può fornire un mezzo per studiare la commozione cerebrale in modo rigoroso, controllato ed efficiente.

Un ripetitivo Concussive trauma cranico Modello nei topi

Despite the concussion/ mild traumatic brain injury (mTBI) being the most frequent occurrence of traumatic brain injury, there is still a lack of ...

L'obiettivo generale di questa procedura è quello di stabilire un modello murino di concussione ripetitiva utilizzando un sistema d'impatto tradizionale. Questi topi possono contribuire a rispondere a domande fondamentali nel campo della modellizzazione della lesione cerebrale traumatica lieve, o TBI, riguardo l'impatto della concussione sulla funzione cerebrale. Il principale vantaggio di questa tecnica è che il sistema d'impatto a magneti elettronici può essere facilmente gestito e il processo può essere controllato per erogare gli impatti in modo preciso.Cominciare fissando un'apposita punta metallica rivestita di gomma siliconica a un dispositivo elettromagnetico stereotassico per impatti, avendo cura che la base piatta della punta rivestita sia parallela alla superficie della sonda del dispositivo di impatto. Successivamente, posizionare un topo anestetizzato in posizione prona su un tappetino riscaldante e verificare l'assenza di risposta alla compressione delle dita dei piedi. Quindi, utilizzare un tagliacapelli per rasare completamente la testa e applicare un unguento sugli occhi dell'animale.Quando l'animale è pronto, impostare preliminarmente la velocità del dispositivo d'impatto a quattro metri al secondo e il tempo di permanenza a 240 millisecondi sul pannello di controllo. Posizionare un tappetino riscaldante morbido sotto il corpo dell'animale per mantenere la temperatura corporea vicina a 39 gradi Celsius. Successivamente, utilizzare le barre auricolari ottuse per fissare il topo nel telaio stereotassico in posizione prona.Utilizzare il driver Z per abbassare la punta d'impatto vicino alla testa del topo. Spostare i driver X e Y a metà strada rispetto alle coordinate bersaglio, al di sopra della sutura sagittale, per regolare la punta d'impatto piatta con un diametro di nove millimetri, avendo cura che un bordo della punta d'impatto sia verticalmente parallelo a una linea orizzontale immaginaria tracciata tra le due orecchie. Per impostare correttamente la profondità d'impatto, impostare innanzitutto i canali X e Y sul pannello di controllo stereotassico digitale su zero, per assicurarsi che non vi sia alcuno spostamento del centro d'impatto dopo la sostituzione delle punte.Quindi spostare la punta aggiuntiva della sonda sul sito d'impatto del cervello del topo. Regolare manualmente i comandi X e Y per posizionare la punta della sonda al centro dell'area d'impatto e fissare un sensore di contatto alla coda. Utilizzare il comando Z per abbassare l'impattatore finché la punta della sonda non tocca la superficie del sito d'impatto e impostare il canale Z sul pannello di controllo stereotassico su zero.Quindi, utilizzare i comandi X e Y per spostare manualmente la punta d'impatto nuovamente sull'area d'impatto, fino a quando i comandi X e Y non indicano zero. Successivamente, abbassare il comando Z fino a quando sul pannello di controllo il valore del comando Z risulta essere a 4,00. Infine, spostare l'interruttore di retrazione sulla scatola di controllo per ritrarre l'attuatore.Ora fare clic sull'interruttore d'impatto sulla scatola di controllo per innescare un impatto con una profondità di deformazione di quattro millimetri e utilizzare un cronometro per misurare il tempo dall'impatto fino al primo respiro del topo. Successivamente, trasferire l'animale su un tappetino riscaldato con monitoraggio fino al completo recupero. Per impostare un danno ripetitivo, somministrare ai topi ulteriori lesioni ai giorni quattro, sette e dieci, dopo la lesione iniziale.Un impatto al centro della testa provoca una perdita di coscienza a breve termine, definita come una cessazione transitoria della respirazione. I cervelli mostrano una morfologia normale, senza lesioni strutturali evidenti o danni ai tessuti osservati istologicamente. In risposta al danno cerebrale traumatico (TBI), è noto che gli astrociti subiscano determinati cambiamenti, tra cui attivazione, proliferazione o gliosi reattiva.Effettivamente, nel corpo calloso dei cervelli di topi sottoposti a ripetuti traumi cranici concussivi, evidenti segni di attivazione degli astrociti possono ancora essere osservati sette giorni dopo l'ultimo impatto. Inoltre, cellule positive all'immunomarcatura per la ferritina possono essere rilevate nella corteccia dei topi un giorno dopo l'ultimo impatto e fino a almeno sette giorni, suggerendo che impatti multipli possano causare microemorragie corticali. Una volta acquisita, questa tecnica può essere completata in 15 minuti, se eseguita correttamente.Nel tentativo di eseguire questa procedura, è importante ricordare di posizionare correttamente il lato dell’impatto del cervello del topo. Dopo il suo sviluppo, questa tecnica ha aperto la strada alla ricerca nel campo del trauma cranico, permettendo di esplorare gli effetti, la diagnosi e i potenziali trattamenti della lieve lesione cerebrale traumatica in modelli di atleti. Dopo aver visto questo video, si dovrebbe avere una buona comprensione di come impostare un modello murino di concussione ripetitiva, utilizzando un sistema d’impatto tradizionale.

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Fonte: Yang, Z., et.al. Un modello ripetitivo di trauma cranico concussivo nei topi. J. Vis. Exp. (2016). Questo video mostra l'induzione di lesioni cerebrali concussive ripetute in un topo utilizzando un dispositivo a impatto elettromagnetico. La procedura prevede il posizionamento della punta d'impatto tra le suture interfrontali e lambdoidi sul cranio di un topo anestetizzato e l'utilizzo di una punta della sonda per impostare con precisione la profondità d'impatto. L'impatto viene erogato a...

Modellazione di lesioni ripetitive alla testa da commozione cerebrale in un modello murino

Gli atleti assorbono ogni anno centinaia di lievi infezioni traumatiche cerebrali (mTBI) / concussioni; Tuttavia, la conseguenza di queste nel cervello è poco capita. Pertanto, un modello animale di mTBI singolo e ripetitivo che replica costantemente sintomi clinicamente rilevanti fornisce i mezzi per avanzare lo studio di mTBI e concussione.

Un modello di mouse del singolo e ripetitivo dolore cerebrale traumatico lieve

L'alterazione del neurotrasmettitore è un meccanismo di disfunzione neurale che si verifica dopo la commozione cerebrale e contribuisce alle conseguenze a lungo termine a volte catastrofiche. Questo modello di ratto combina la microdialisi, permettendo la quantificazione della neurotrasmettitore in vivo, con una tecnica di caduta di peso che esercita una rapida accelerazione e decelerazione della testa e del torso, un fattore importante del trauma craniocerebrale umano.

Un nuovo e traslazionale modello di commozione cerebrale che combina forza e rotazione con la microdialisi cerebrale in vivo

Il protocollo descrive una lieve lesione cerebrale traumatica in un modello murino. In particolare, viene spiegato un protocollo passo-passo per indurre un lieve trauma cranico chiuso della linea mediana e la caratterizzazione del modello animale.

Modello elettromagnetico controllato a testa chiusa di lieve lesione cerebrale traumatica nei topi

Questo protocollo presenta un modello murino modificato di lesione cerebrale traumatica lieve ripetitiva (rmTBI) indotta tramite un metodo di lesione cranica chiusa (CHI). L'approccio presenta una finestra cranica assottigliata e una percussione fluida per ridurre l'infiammazione comunemente causata dall'esposizione alle meningi, insieme a una migliore riproducibilità e accuratezza nella modellazione dell'rmTBI nei roditori.

Modello murino modificato di lesione cerebrale traumatica lieve ripetitiva che incorpora finestra cranica assottigliata e percussione fluida

Le commozioni cerebrali pediatriche possono provocare sequele a lungo termine con perturbazioni fisiologiche e psicologiche. Questo modello murino pediatrico di commozione cerebrale provoca neuroinfiammazione a lungo termine, alterazioni della sostanza bianca e modifiche neuronali con disfunzione comportamentale. Il modello può essere adattato a punti di impatto differenziali o commozioni cerebrali ripetute per valutare i cambiamenti della durata.

Un modello di commozione cerebrale pediatrica nei topi: trauma cranico chiuso con disturbi a lungo termine (CHILD) 

Il Risparmiata lesioni nervose modello animale è descritto qui come un modello murino di dolore neuropatico periferico dopo denervazione parziale del nervo sciatico con lesione dei rami del nervo tibiale e peroneale comune, lasciando i rimanenti nervo surale intatta. Modificazione comportamentale che derivi dalla meccanica allodinia è quantificato da von filamenti Frey.

Risparmiato il Nerve pregiudizio (SNI) Modello di Allodinia meccanica indotta nei topi

Controllata cervicale lesioni lacerazione nei topi

Descriviamo modelli di danno renale da ischemia-riperfusione indotta moderata e grave in cui i topi sottoposti unilaterale peduncolo renale serraggio seguita da nefrectomia controlaterale simultaneo o ritardato, rispettivamente. Questi modelli sempre danno luogo a disfunzione renale e fibrosi post-infortunio, ma la gravità delle lesioni e la sopravvivenza dipendono da sfondo, età e attrezzature chirurgiche mouse.

Ischemia-riperfusione Modello di danno renale acuta e post Infortunio fibrosi nei topi

Questo metodo è stato sviluppato con l'obiettivo di fornire una soluzione di droga costante attraverso l'arteria carotide, per valutare la farmacocinetica di nuovi farmaci in modelli murini.

Infusi carotide di farmacocinetica e di farmacodinamica Analisi dei taxani nei topi

Scopri come stabilire un modello di trauma cranico concussivo ripetitivo nei topi utilizzando un sistema di impatto elettromagnetico. Questa tecnica permette di studiare gli effetti del TBI lieve sul funzionamento cerebrale.

Un ripetitivo Concussive trauma cranico Modello nei topi

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