10 novembre 2016
L'adsorbimento di peptidi su plastica durante le tradizionali diluizioni seriali basate su puntali può avere un impatto significativo sulla determinazione della potenza e confondere la comprensione delle relazioni struttura-attività utilizzate per l'identificazione del piombo e le fasi di ottimizzazione del piombo della scoperta di farmaci. Qui vengono descritti i metodi per la diluizione seriale acustica automatizzata senza contatto di campioni di peptidi.
L'obiettivo generale di questo protocollo automatizzato per la diluizione seriale di campioni peptidici è ridurre al minimo l'assorbimento dei peptidi sulle superfici in plastica, consentendo una determinazione accurata della potenza ai fini della scoperta di farmaci. Questo metodo può migliorare la qualità e la riproducibilità dei dati e la rimozione della pipettatura basata su punte elimina anche il trasferimento incrociato dei campioni, evitando che gli errori si propaghino lungo l'intera serie di diluizioni. Il vantaggio principale di questa tecnica è che aumenta la qualità dei dati riducendo al minimo l'assorbimento dei peptidi sulle superfici in plastica.
Questo è particolarmente importante per guidare una campagna di identificazione di un composto attivo o di una relazione struttura-attività nella scoperta di farmaci. Dopo aver preparato il tampone per il saggio e aver creato un programma di dispensazione per un dispensatore in massa seguendo il protocollo descritto, immergere i tubi della cassetta di dispensazione nel tampone del saggio ed eseguire la messa a punto con il liquido. Posizionare una piastra da saggio a basso volume da 384 pozzetti su un supporto per piastre.
Quindi premere avvio. Dispensare 25 microlitri di soluzioni peptidiche 100 volte concentrate nelle colonne da uno a cinque di una micropiastra acusticamente qualificata da 384 pozzetti a fondo piatto in polipropilene, che verrà designata come piastra sorgente A. Dispensare 25 microlitri di controllo di riferimento 100 volte concentrato nei pozzetti A23 e A24. Quindi dispensare 10 microlitri di tampone per saggio nelle colonne da 11 a 15 e 30 microlitri di tampone per saggio nelle colonne da 21 a 22.
Successivamente, distribuire 10 microlitri di tampone per il saggio nelle colonne sei fino a dieci e sedici fino a venti di una seconda micropiastra in polipropilene acusticamente qualificata da 384 pozzetti, indicata come piastra sorgente B. Centrifugare le piastre sorgente A e B a 300 × g per un minuto. Successivamente, caricare le piastre sorgente e quelle per il saggio nella sezione hotel per piastre del sistema robotico.
Quindi, eseguire il software robotico seguendo il protocollo descritto nel testo, utilizzando dispenser acustici di fluidi integrati nel sistema per preparare tre diluizioni intermedie consecutive uno a cento. Iniziare trasferendo dalle colonne da uno a cinque della piastra sorgente A alle colonne da sei a dieci della piastra sorgente B. Dopo aver preparato la prima diluizione uno a cento, consentire all'automazione di trasferire la piastra sorgente B su una centrifuga integrata e centrifugare a 300 ×g per un minuto prima di riportare la piastra al dispenser acustico di fluidi. Successivamente, dopo aver trasferito la soluzione dalla piastra sorgente B alla piastra sorgente A per la seconda diluizione uno a cento, l'automazione trasferirà la piastra sorgente A sulla centrifuga e procederà alla centrifugazione prima di riportare la piastra al dispenser di fluidi.
Infine, dopo che l'automazione trasferisce la soluzione dalla piastra A alla B per la terza diluizione 1:100, la piastra B viene nuovamente centrifugata. Queste diluizioni di peptidi nella piastra sorgente A e nella piastra sorgente B vengono quindi utilizzate per preparare curve complete di risposta alla concentrazione nel saggio, come descritto nel protocollo testuale. Questo passaggio è fondamentale poiché una metodologia comparativa basata su punte causa una drastica perdita di potenza del campione a causa dell'assorbimento del peptide sulle superfici in plastica.
Scongeliare rapidamente le cellule CHO criopreservate che esprimono il recettore per il GLP1 murino in un bagno d'acqua a 37 gradi e risospendere in 20 millilitri di buffer per saggio. Centrifugare la sospensione cellulare a 200 × g e a temperatura ambiente per cinque minuti. Rimuovere il soprannatante e risospendere il pellet cellulare in 10 millilitri di buffer per saggio.
Con il Trypan Blue, diluire il ceppo cellulare uno a uno e utilizzare un contatore cellulare automatico per determinare la densità cellulare vitale. Successivamente, risospendere le cellule nel buffer per il saggio a una concentrazione di 1,6 milioni di cellule per millilitro. Utilizzando un distributore automatico di reagenti, aggiungere cinque microlitri di sospensione cellulare in ogni pozzetto della piastra per il saggio contenente peptidi diluiti in serie e incubare a temperatura ambiente per 30 minuti.
Per eseguire il saggio di rilevamento dell'AMP ciclico, utilizzare il buffer di lisi per preparare diluizioni 1:20 di ciascun reagente fluorescente omogeneo risolto nel tempo o HTRF. Utilizzare un distributore automatico di reagenti per aggiungere cinque microlitri di reagente criptato a tutti i pozzetti delle piastre per il saggio. Successivamente, aggiungere cinque microlitri di reagente D2 alle colonne da 1 a 22 della piastra.
Successivamente, aggiungere cinque microlitri del reagente D2 nei pozzetti da E23 a P24. Usare immediatamente una pipetta manuale per aggiungere cinque microlitri di buffer di lisi nei pozzetti da A23 a D24, da utilizzare come pozzetti di controllo per il legame non specifico. Centrifugare le piastre del saggio a 200 ×g e a temperatura ambiente per un minuto al fine di mescolare il contenuto dei pozzetti.
Quindi coprire le piastre e incubare per un'ora. Al termine dell'incubazione, utilizzare un lettore di piastre per misurare il segnale FRET con un'eccitazione a 320 nanometri e un'emissione a 620 e 665 nanometri. Analizzare i dati secondo il protocollo descritto nel testo.
Il primo passaggio del trasferimento acustico per il saggio di rilevamento dell'AMP ciclico consiste nel preparare quattro diluizioni intermedie di peptidi stock in due piastre sorgente, come mostrato qui. Nel secondo passaggio, il dispensatore acustico diluisce ulteriormente le soluzioni stock dalle piastre sorgente A e B per creare un intervallo di concentrazione a 11 punti per ciascun peptide in esame, in duplicato, per un totale di 16 peptidi diversi. Viene effettuato un ripristino con tampone del saggio per garantire un volume costante per pozzetto in tutta la piastra del saggio.
Qui è mostrata una mappa termica relativa a una piastra esempio contenente 16 peptidi in duplicato, analizzati mediante il saggio di accumulo di AMP ciclico. I valori bassi, mostrati in viola, rappresentano un'elevata concentrazione di AMP ciclico. Queste curve concentrazione-risposta illustrano la riproducibilità dei punti in duplicato.
Il campione uno rappresenta un controllo positivo per il saggio. I campioni due, tre e quattro erano inattivi e sono rappresentati dalle linee piatte nel grafico. I campioni da cinque a sedici rappresentano peptidi test attivi.
Il metodo qui presentato consente la generazione di curve complete di risposta alla concentrazione su un'ampia gamma di potenza. Una volta padroneggiata, questa tecnica può essere completata in tre ore, ma ciò dipenderà dal numero di campioni che richiedono preparazione. Durante il tentativo di questa procedura, è importante ricordare che i peptidi sono campioni biologici e devono essere manipolati di conseguenza.
Per preservarne l'integrità, è consigliabile evitare cicli ripetuti di congelamento e scongelamento. Questa tecnica aprirà la strada ai ricercatori nel campo della scoperta di farmaci peptidici e permetterà previsioni precise della potenza necessarie per alimentare le relazioni struttura-attività. Dopo aver visto questo video, si dovrebbe avere una buona comprensione della dispensazione acustica automatizzata per la diluizione seriale di peptidi, il che ridurrà al minimo la perdita di peptidi dovuta all'assorbimento e aumenterà l'accuratezza delle misurazioni.
Non dimenticare che lavorare con peptidi biologicamente attivi con potenze nell'ordine del picomolare può essere estremamente pericoloso e si dovrebbero sempre adottare precauzioni come l'uso di dispositivi di protezione individuale.
Visualizza la trascrizione completa e accedi a migliaia di video scientifici
Questo articolo descrive un protocollo automatizzato per la diluizione seriale di campioni di peptidi, progettato per ridurre al minimo l'adsorbimento dei peptidi sulle superfici in plastica. Riducendo tale assorbimento, il metodo migliora l'accuratezza della determinazione della potenza nel processo di scoperta di farmaci.
Minimizzare l'adsorbimento dei peptidi sulle superfici in plastica è fondamentale per determinare con precisione la potenza nei processi di scoperta di farmaci a base di peptidi, influenzando direttamente gli studi sulle relazioni struttura-attività e le campagne di identificazione dei composti promettenti. La dispensazione acustica automatizzata migliora la qualità e la riproducibilità dei dati eliminando il trasferimento incrociato del campione associato alle punte e riducendo gli errori legati all'adsorbimento. Questo metodo scalabile e senza contatto supporta flussi di lavoro per lo screening ad alto rendimento e consente la generazione affidabile di curve concentrazione-risposta su diverse librerie di peptidi.
Questo metodo si inserisce nel percorso di scoperta che va dalla validazione iniziale del bersaglio all'identificazione del capostazione, in cui dati precisi sull'attività del peptide informano la modellizzazione SAR e la priorizzazione dei composti.