11 novembre 2016
Qui, descriviamo le impostazioni per monitorare in parallelo la bioluminescenza circadiana e l'attività secretoria delle cellule insulari umane e dei miotubi primari. Per questo, abbiamo impiegato la somministrazione genica lentivirale di un reporter di clock con nucleo di luciferasi, seguita dalla sincronizzazione in vitro e dalla raccolta del terreno di deflusso mediante perifusione cellulare continua.
L'obiettivo generale di questa procedura è la valutazione parallela della bioluminescenza circadiana e dell'attività secretoria di cellule endocrine primarie umane coltivate e sincronizzate in vitro. Questo metodo può aiutare a studiare il modello temporale della secrezione cellulare e come può essere regolato da orologi circadiani autonomi dalle cellule. Il vantaggio principale di questa tecnica è che ci permette di monitorare le luciferine circadiane come reporter e, contemporaneamente, raccogliere il mezzo di deflusso per misurare i livelli di ormoni secreti e miochine. Per introdurre i reporter di bioluminescenza circadiana nelle cellule primarie mediante trasduzione lentivirale, in primo luogo, trasferire le piastre di Petri da 3,5 cm contenenti mioblasti umani al 30%-50% di confluenza in una cappa a flusso laminare. Sostituire il terreno di coltura dei mioblasti umani con 2 ml di terreno di crescita. Quindi trasdurre la coltura cellulare primaria pipettando la soluzione di lentivirus nella piastra per ottenere una molteplicità di infezioni pari a tre. Incubare le cellule per una notte in un incubatore per colture tissutali. Cambiare il mezzo il giorno successivo. Per ottenere la sincronizzazione in vitro, aggiungere 10 micromolari di attivatore dell'adenilil ciclasi in 2 mL di terreno per piastra di Petri da 3,5 cm contenente le cellule primarie precedentemente trasfettate. Incubare le cellule per 60 minuti a 37
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Questo studio descrive metodi per monitorare la bioluminescenza circadiana insieme all'attività secretoria di cellule insulari umane e miotubi primari. L'approccio prevede la trasduzione genica lentivirale di un reporter luciferasico del core clock, seguita da sincronizzazione in vitro e perfusione continua delle cellule per la raccolta del mezzo.
La misurazione parallela dell'espressione genica dell'orologio circadiano e della secrezione ormonale in colture cellulari primarie umane consente un'analisi diretta della regolazione temporale nei sistemi endocrino e muscolare umani. Questo approccio aumenta la fiducia predittiva nella validazione degli obiettivi, collegando gli oscillatori molecolari circadiani a risultati funzionali di secrezione. L'integrazione di queste misurazioni nella fase di scoperta supporta l'avanzamento calibrato sui rischi di programmi metabolici e di cronobiologia lungo l'intero portafoglio.
Questo metodo collega la fase iniziale della scoperta alla ricerca preclinica, permettendo la verifica di ipotesi sulla regolazione circadiana in cellule primarie umane, sostenendo sia la validazione del bersaglio che la continuità traslazionale.