21 novembre 2016
trappole extracellulari dei neutrofili (NET) sono reti di DNA, istoni e proteine neutrofili. Sebbene un componente della risposta immunitaria innata, NET sono implicati in autoimmunità e trombosi. Questo protocollo descrive un metodo semplice per l'isolamento dei neutrofili canina e la quantificazione di NET utilizzando un saggio micropiastra fluorescenza.
L'obiettivo generale di questo esperimento è isolare i neutrofili quiescenti e misurare il loro rilascio di DNA in risposta agli agonisti. Questo metodo può aiutare a rispondere a domande chiave in immunologia e medicina veterinaria, come ad esempio: qual è la risposta dei neutrofili a vari agonisti dell'induzione della trappola extracellulare dei neutrofili o della morte cellulare? Il vantaggio principale di questa tecnica è che consente lo screening rapido di vari agonisti e inibitori della formazione di trappole extracellulari di neutrofili.
Inizia inserendo un ago a farfalla calibro 21 nella vena cefalica di un donatore canino sano, quindi collega una siringa da tre millilitri e ottieni tre campioni di sangue da tre millilitri, trasferendo immediatamente i campioni in provette di sangue contenenti EDTA senza tappo. Fare attenzione che la venipuntura sia atraumatica e che il flusso sanguigno sia buono, poiché un cattivo prelievo di sangue si tradurrà in una scarsa resa di neutrofili. Dopo aver riempito ogni provetta, capovolgere le provette per garantire un'adeguata miscelazione del sangue e dell'anticoagulante.
Raccogli il sangue in una provetta conica da 50 millilitri. Miscelare i campioni con un volume uguale di destrano 500 sterile a temperatura ambiente mediante inversione delicata e lasciare la provetta in posizione verticale per 18-20 minuti a temperatura ambiente. Quindi trasferire lo strato superiore color paglia in un tubo fresco fino a quando non può più essere raccolto senza contaminazione da parte dello strato rosso inferiore.
Centrifugare lo strato superiore. Scartare il surnatante, rispendendo manualmente il pellet in 10 millilitri di PBS sterile a temperatura ambiente. Quindi, aggiungere 10 millilitri di un polisaccarosio a temperatura ambiente in una soluzione di separazione cellulare di diatrizoato di sodio in una provetta conica da 50 millilitri.
Sovrapporre accuratamente le cellule sulla soluzione di separazione. Separare le celle mediante centrifugazione. Scartare i tre strati superiori di plasma e piastrine mononucleati e gradiente di densità.
Lisi gli eritrociti rimanenti con 10 millilitri di acqua a temperatura ambiente. Dopo 30 secondi, aggiungere 10 millilitri di cloruro di sodio sterile a temperatura ambiente all'1,8% per ripristinare la tonicità. Mescolare le cellule mediante una leggera inversione.
Ora raccogli le cellule per centrifugazione. Risospendere delicatamente il pellet bianco in 10 millilitri di PBS sterile. Dopo il conteggio, centrifugare nuovamente le cellule e risospendere il pellet a una concentrazione di cinque volte 10-60 cellule per millilitro in PBS sterile a temperatura ambiente.
A seconda dei casi, asciugare all'aria un piccolo volume di cellule su un vetrino, quindi colorare con un kit di fissazione rapida e colorare secondo le istruzioni del produttore. Se l'isolamento dei neutrofili ha avuto successo, almeno il 95% delle cellule nucleate dovrebbe essere costituito da granulociti con una minima contaminazione eritrocitaria, come osservato al microscopio ottico. Immediatamente dopo l'isolamento dei neutrofili, far passare la sospensione cellulare attraverso un filtro sterile sterile da 70 micron e aggiungere cinque volte 10 alle quarte cellule nei pozzetti di prova di una piastra da 96 pozzetti contenente terreni di coltura per un'incubazione di 30 minuti a 39 gradi Celsius e 4% di anidride carbonica.
Quando le cellule si sono attaccate, aggiungere fino a un volume finale di 100-200 microlitri dell'agonista di interesse in RPMI senza rosso fenolo e integrato con FCS inattivato a caldo ai pozzetti del test, nonché a due pozzetti bianchi contenenti solo PBS. Quindi aggiungere un colorante di acido nucleico impermeabile alle cellule e rimettere la piastra nell'incubatore. Dopo il periodo di incubazione appropriato, misurare la fluorescenza su un lettore di micropiastre.
Una stimolazione di un'ora dei neutrofili canini con il fattore di attivazione piastrinica determina un aumento medio di quattro volte della fluorescenza rispetto alle cellule di controllo non stimolate. La PMA, tuttavia, è un agonista più lento che non dimostra un aumento della fluorescenza dei neutrofili prima di due ore dall'attivazione, ma che alla fine produce un aumento simile delle pieghe nel tempo. La fluorescenza del colorante dell'acido nucleico non è specifica per la formazione di trappole extracellulari di neutrofili, poiché si verifica anche in caso di morte cellulare dovuta ad altri meccanismi o se i reagenti sono contaminati dal DNA.
Ad esempio, in questo esperimento rappresentativo, un preparato commerciale di LPS ha prodotto una fluorescenza molto elevata in assenza di neutrofili, presumibilmente a causa della contaminazione con DNA batterico. Una volta padroneggiata, questa tecnica può essere completata in circa sei ore se eseguita correttamente. Durante il tentativo di questa procedura, è importante ricordare di maneggiare i neutrofili con delicatezza.
Non agitare le cellule e pipettare piuttosto che versare i surnatanti. Seguendo questa procedura, possono essere eseguiti altri metodi, come la microscopia a immunofluorescenza, per confermare che il DNA rilasciato è correlato alla NETosi. Dopo il suo sviluppo, questa tecnica ha aperto la strada ai ricercatori nel campo dell'ematologia per esplorare l'interazione del DNA rilasciato durante la coagulazione e l'effetto di nuovi agonisti del NET tra cui il plasma dei pazienti.
Dopo aver visto questo video, dovresti avere una buona comprensione di come isolare i neutrofili canini e misurare la loro risposta agli agonisti.
Visualizza la trascrizione completa e accedi a migliaia di video scientifici
Questo protocollo descrive un metodo per isolare neutrofili quiescenti dal sangue canino e quantificare la formazione di trappole extracellulari. Le trappole extracellulari dei neutrofili (NET) svolgono un ruolo significativo nella risposta immunitaria innata e sono associate a diverse patologie.
Questo saggio di quantificazione dei NET basato sulla fluorescenza consente uno screening rapido di agonisti e inibitori che influenzano la formazione di trappole extracellulari neutrofile in modelli canini. Il metodo supporta la validazione degli bersagli nella ricerca immunologica e sulle malattie infiammatorie fornendo letture quantitative e riproducibili del rilascio di DNA. Facilita l'analisi meccanicistica e la riduzione dei rischi nei programmi preclinici che indagano su vie mediate dai NET nei modelli di autoimmunità, trombosi e malattie infettive.
Il saggio si inserisce nel percorso di scoperta che va dalla validazione della proteina bersaglio all'identificazione del composto attivo, supportando la riduzione dei rischi associati alla proteina immunologica prima dell'investimento preclinico.