Name: Derivazione delle Culture leptomeningi Explant da Postmortem cervello umano donatori (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-01-21T13:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 18 s
Description: Impara a derivare culture di fibroblasti leptomeningei da tessuto cerebrale umano postmortem. Questo metodo consente di ottenere cellule fibronectina-positive per studiare la patologia del morbo di Parkinson.

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Lo sviluppo di questo protocollo è stato finanziato da donazioni private dirette al Parkinson's Institute Brain Donation Program.

La registrazione donazione del cervello include la documentazione dal dichiarante della loro intenzione di donare. Il permesso autopsia per il recupero dei tessuti è fornito dal parente più prossimo di quanto consentito dalla legge. Gli studi di ricerca che utilizzano i campioni autoptici raccolti sono esaminati dal comitato di revisione istituzionale (IRB) per garantire il rispetto Health Insurance Portability e Accountability Act regolamenti (HIPAA). NOTA: i campioni leptomeningi vengono raccolti dal dissector cerebrale o neuropathologist durante una dissezione del cervello e sono memorizzati in 50 provette coniche ml contenente 25-30 ml meningi terreni di coltura. Il campione viene conservato a 4 ° C fino preparazione del campione. Il trattamento deve essere eseguita appena possibile la vitalità delle cellule diminuisce con il tempo post mortem. 1. Set-up prima di iniziare la leptomeningi Dissection NOTA: i passaggi 1,1-1,3 sono da eseguire all&#39;interno di un armadio biosicurezza. <ol><li> Preparare mezzi di crescita meningi combinando 375 mL di Dulbecco Modified Eagle Media, 100 mL di siero fetale bovino, 5 mL 10 mM aminoacidi non essenziali, 5 mL 200 mM di L-alanil-L-glutammina, 5 mL 100 mM di sodio piruvato, 5 ml 10.000 U / mL di penicillina / streptomicina e 5 ml 250 mg / ml amfotericina B in 500 unità filtro mL. Filtrare e mescolare. Utilizzare supporti fino a quattro settimane. </li><li> Mettere tutti i materiali nell&#39;armadio biosicurezza prima di iniziare la dissezione: piatti 4x Petri, 2x 6 pozzetti, 2x bisturi, 15-20 sterilizzati coprioggetto 15 mm, tampone fosfato salino (PBS), pipette sierologiche, aspirando pipette. </li><li> Aggiungere 1 mL di soluzione sterile autoclavato gelatina 0,1% a ciascun pozzetto di una piastra da 6 pozzetti. Impostare la piastra da parte per 30-60 min. Preparare 2x 6 pozzetti. </li></ol> 2. Preparazione del campione leptomeningi NOTA: i passaggi 2,1-2,3 sono da eseguire all&#39;interno di un armadio biosicurezza. <ol><li> Aggiungere circa 10 ml di soluzione salina insterile 10-cm piatto di coltura tissutale e posizionare il campione meningi nel piatto. Utilizzando pinze, lavare delicatamente leptomeningi con PBS per rimuovere il sangue. </li><li> Trasferire le meningi in un nuovo 10-cm piatto di coltura tissutale contenente 10 ml di PBS fresco e continuare lavaggio. Ripetere se necessario rimuovere tutto il sangue possibile. </li><li> Utilizzando due bisturi, tagliate leptomeningi tessuto in un circa 6 cm x 6 cm grosso pezzo. </li><li> Mettere il coperchio su un piatto di coltura e trasferimento ad un microscopio da dissezione in una cappa a flusso laminare orizzontale. </li></ol> 3. La dissezione di leptomeningi Tissue NOTA: passi 3.1 - 3.3 devono essere eseguite all&#39;interno di una cappa a flusso laminare orizzontale utilizzando un microscopio da dissezione. <ol><li> Rimuovere vasi sanguigni da una regione sul pezzo leptomeningi (passo 2.3) sufficiente per creare almeno 20-25 3 parti mm x 3 mm. Tenere le leptomeningi in posizione con una bisturi e con l&#39;altra, usare un dolce e poco profondo mo raschiandozione per separare i vasi. </li><li> Tagliare piccoli quadrati di tessuto dalla zona preparata. Tagliare in un processo graduale facendo prima pezzi più grandi e quindi affettare quelli in sezioni più piccole. </li><li> Utilizzare uno scalpello per tenere il tessuto in luogo e un altro bisturi per tagliare il tessuto con un movimento rotatorio. La consistenza del tessuto, è difficile far scorrere i bisturi contro l&#39;altro. Questo sarà strappare solo il tessuto a parte e si traduce in bordi frastagliati. </li><li> Continuare a tagliare i pezzi a metà fino a quando ci sono circa 20-25 pezzi 3 mm x 3 mm. </li></ol> 4. Trasferimento di Dissected meningi Pezzi su piastre di coltura tissutale NOTA: Passo 4 deve essere eseguito all&#39;interno di un armadio biosicurezza. <ol><li> Aspirare la gelatina da 6 pozzetti (dal punto 1.3). Aggiungere 1 ml di terreni di crescita meningi in ciascun pozzetto. Utilizzando pinze sterili, posizionare 3-4 pezzi di biopsia in tutti i pozzetti. </li></ol> 5. collocamento di Slips copertura sopra Meninges Pezzi NOTA: I passaggi 5.1 - 5.2 sono essere eseguite all&#39;interno di una cappa a flusso laminare orizzontale utilizzando un microscopio da dissezione. <ol><li> Coprire i pezzi con 1-2 15 mm vetrini circolari sterili per bene. </li><li> Premere saldamente con una pinza per garantire i pezzi tocchino il fondo della piastra. Questo permette il collegamento dei pezzi di tessuto al fondo del pozzo. </li><li> Posizionare il 6 pozzetti in un 37 ° C, 5% CO 2 incubatore. </li></ol> 6. colture cellulari Manutenzione NOTA: i passaggi 6,1-6,3 sono da eseguire all&#39;interno di un armadio biosicurezza. Maneggiare piatti della cultura con cura, come vetrini non dovrebbero muovere e rimuovere i pezzi meningi. <ol><li> Dopo 2 giorni di coltura, aggiungere un ulteriore 1 ml di terreni di crescita meningi fresco in ogni pozzetto. </li><li> A 7 giorni, aspirare accuratamente i media e aggiungere 2 ml di mezzi freschi in ciascun pozzetto. </li><li> Dopo 9 ° giorno, continuerà a cambiare i media di crescita ognialtro giorno fino a quando la cultura diventa confluenti. </li></ol> 7. Passaging NOTA: Tutte le fasi devono essere eseguite all&#39;interno di un armadio biosicurezza. Una volta che i fibroblasti meningei sono migrati fuori dei pezzi di tessuto meningea e iniziare a crescere verso i bordi del recipiente di coltura, espandere fibroblasti meningei nella più grande capsula di Petri. <ol><li> Prima di iniziare la passaging, cappotto piatto cultura con l&#39;1% di gelatina per 15-30 min. </li><li> supporti Aspirare da 6-ben piatto e lavare le cellule con 2 ml di PBS. </li><li> Aggiungere 1 ml di tripsina / EDTA a ciascun pozzetto e incubare a 37 ° C per 5-10 min. Non è necessario rimuovere i vetrini coprioggetto o il tessuto meningeo per questo passo. </li><li> Quando le cellule sono arrotondate e si cominciano a staccare, aggiungere 2 ml di terreni di coltura. </li><li> cellule Pipetta su e giù per distruggere completamente tutti i grumi e trasferire la soluzione cella più grande piatto di coltura. </li><li> Utilizzare un rapporto di 1: 3 a 1: 4 a combinare le cellule da tre piatti 6 pozzetti ina un piatto della cultura T75. </li><li> Una volta che le cellule fibroblasti meningee sono confluenti in T75 fiasche di coltura, le cellule trypsinize, e crioconservazione nei mezzi di crioconservazione a 1x10 6 cellule / ml per fiala. Un T75 pallone di coltura con fibroblasti meningei confluenti contiene circa 5-7 milioni di cellule. </li></ol> 8. Caratterizzazione dei fibroblasti meningei mediante immunocolorazione NOTA: Prima di iniziare la procedura, preparare una soluzione di paraformaldeide al 4%, 5% di siero normale di capra in PBS (tampone bloccante), 0,3% Triton X-100 in PBS (tampone di permeabilizzazione), soluzioni di anticorpi primari e secondari, e 1 mg / mL di Hoechst 33342 diluito in PBS da 10 mg / ml magazzino. <ol><li> Seed 15.000 a 30.000 fibroblasti meningei a 8-ben scorrevole camera rivestite con 0,1% di gelatina. </li><li> Dopo 24 ore quando sono attaccate le cellule, fissare le cellule in 100 microlitri 4% paraformaldeide per pozzetto per 10 min a temperatura ambiente. Lavare i pozzetti 3 volte con PBS 1x. </li><li> Permeabilize le cellule con 150 ml di 0,3% Triton X-100 per 5 min a temperatura ambiente. Lavare i pozzetti 3 volte con PBS 1x. </li><li> Aggiungere 200 microlitri soluzione bloccante (PBS + 5% siero di capra normale) per 1 ha temperatura ambiente. </li><li> Aspirare la soluzione di saturazione, e aggiungere 150 ml di anticorpi primari desiderati diluiti in soluzione bloccante. Per doppia colorazione, preparare diluizioni di lavoro di anticorpi primari in provette da centrifuga separati su ghiaccio come segue: <ol><li> Preparare 1: 300 diluizione anti-fibronectina + 1: 200 diluizione anti-nestina in soluzione bloccante. Preparare 1: 250 diluizione anti-SERPINH1 + 1: 1000 diluizione anti-TUJ1 in soluzione bloccante. Preparare 1: 250 diluizione anti-SERPINH1 + diluizione 1: 100 di anticorpi anti-SOX2 in soluzione bloccante </li></ol></li><li> Incubare a 4 ° C durante la notte. </li><li> Lavare i pozzetti 3 volte con PBS 1x. </li><li> Preparare un lavoro 1: 400 diluizione fluorescente anticorpi secondari di capra anti-coniglio (verde; Ex / Em 2 </sup&gt; 495/519 nm) e di capra anti-topo (rosso; Ex / Em 2 590/617 nm) in soluzione di bloccaggio e aggiungere 100 microlitri di ogni bene. Incubare per 1 ora, al buio, a temperatura ambiente. Quindi lavare i pozzetti una volta con PBS 1x. </li><li> Aggiungere 100 ml di 1 mg / ml Hoechst 33342 (blu; Ex / Em 2 358/461 nm) soluzione ad ogni pozzetto ed incubare al buio per 3 min. Lavare pozzetti 3 volte con PBS 1x, lasciando in finale di lavaggio PBS 1x nel pozzo, e coprire il vetrino con foglio di alluminio. </li><li> Analizzare le cellule al microscopio a fluorescenza. </li></ol>

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<li>Vangipuram, M., Ting, D., Kim, S., Diaz, R., Schüle, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Skin+punch+biopsy+explant+culture+for+derivation+of+primary+human+fibroblasts%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Skin punch biopsy explant culture for derivation of primary human fibroblasts.</a> J Vis Exp. (77), e3779(2013).</li>
<li>Byers, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((SNCA+triplication+Parkinson%27s+patient%27s+iPSC-derived+DA+neurons+accumulate+alpha-synuclein+and+are+susceptible+to+oxidative+stress%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">SNCA triplication Parkinson's patient's iPSC-derived DA neurons accumulate alpha-synuclein and are susceptible to oxidative stress.</a> PLoS One. 6 (11), e26159(2011).</li>
<li>Sanders, L. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((LRRK2+mutations+cause+mitochondrial+DNA+damage+in+iPSC-derived+neural+cells+from+Parkinson%27s+disease+patients%3A+reversal+by+gene+correction%5BTitle%5D)+AND+%22Neurobiol+Dis%22%5BJournal%5D)">LRRK2 mutations cause mitochondrial DNA damage in iPSC-derived neural cells from Parkinson's disease patients: reversal by gene correction.</a> Neurobiol Dis. 62, 381-386 (2014).</li>
<li>Beevers, J. E., Caffrey, T. M., Wade-Martins, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induced+pluripotent+stem+cell+%28iPSC%29-derived+dopaminergic+models+of+Parkinson%27s+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem+Soc+Trans%22%5BJournal%5D)">Induced pluripotent stem cell (iPSC)-derived dopaminergic models of Parkinson's disease.</a> Biochem Soc Trans. 41 (6), 1503-1508 (2013).</li>
</ol>

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Questo protocollo descrive un protocollo semplice e robusto per derivare una coltura di fibroblasti meningeo da leptomeningi post-mortem umani raccolti in combinazione con una donazione cervello. Ci sono pochissime le descrizioni di protocolli per ricavare colture di cellule dal materiale umano post-mortem. Due studi descrivono la pelle derivati da colture di fibroblasti 7, 8, 9, uno studio descrive campioni Dura <sup class="xr...

Meningi costituiti da tre membrane che proteggono il cervello: dura madre madre, aracnoide e pia. Più recentemente, è stato riconosciuto che meningi svolgono un ruolo importante nello sviluppo del cervello e del cervello omeostasi 1. Meningi sono derivati da mesenchimali e le cellule derivati dalla cresta neurale ed è interessante notare, è stato dimostrato che le cellule progenitrici residenti nel meningi possono dare origine a neuroni in vitro e dopo il trapianto in vivo 2, 3, 4. Culture meningi sono stati utilizzati con successo anche come strati di alimentazione, in quanto in possesso di cellule derivate da attività Indurre stromale per la differenziazione delle cellule staminali embrionali in neuroni dopaminergici 5. Inoltre, leptomeningi hanno il potenziale di differenziarsi direttamente in neuroni, astrociti, oligodendrociti e in condizioni ischemiche 6. Per questo protocollo, meningi post-mortem umani campioni sono raccolti presso l&#39;aracnoide e pia, chiamati collettivamente le leptomeningi, e sono acquistati come parte di una donazione cervello umano per scopi di ricerca. La dissezione del cervello viene eseguita entro 24 ore di morte e il campione leptomeningi è collocato in terreni di crescita a freddo per l&#39;ulteriore elaborazione entro il prossimo 6-8 h, come illustrato qui in questo protocollo. Questo protocollo descrive la dissezione e preparazione dei campioni meningi umani per lo sviluppo della coltura cellulare leptomeningi primarie paziente. Il tessuto viene tagliato in 25-30 pezzi di circa 3 mm x 3 mm quadrati. Tre pezzi sono collocati in ogni 6 pozzetti di gelatina rivestite bene e tenuto premuto con coprioggetto di vetro rotondo. La dissezione meningi dura circa 25-35 minuti. La sfida principale con questa cultura è la sterilità come l&#39;approvvigionamento del cervello, dei trasporti, e la dissezione non sono generalmente eseguite in condizioni sterili. Therefore, è importante integrare mezzi di coltura con un cocktail di penicillina, streptomicina, e amfotericina B e utilizzare piatti multi-pozzetto per separatamente pezzi di tessuto di coltura. Conseguenza di fibroblasti meningei si verifica di solito entro la prima settimana. Media viene cambiata ogni due o tre giorni fino a quando le cellule sono confluenti e le cellule sono enzimaticamente diversi passaggi. I fibroblasti meningei sono crioconservati a 1 milione di cellule per mL / flacone in mezzi crioconservazione. Con questo protocollo, 20-30 milioni di fibroblasti meningei possono essere derivate in 6-8 settimane per la crioconservazione. applicazioni a valle di questi fibroblasti meningei sono colture primarie per la ricerca sulle malattie, la differenziazione neuronale diretta o derivazione di cellule staminali pluripotenti indotte dalle leptomeningi per la comprensione dei meccanismi della malattia e per lo sviluppo di farmaci.

<table><tbody><tr><td>Piastre di Petri Corning</td><td>Fisher Scientific</td><td>351029</td><td></td></tr><tr><td>Nunc Piastra a 6 pozzetti</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-832-11</td><td></td></tr><tr><td>Vetrini coprioggetti da 15 mm</td><td>Fisher Scientific</td><td>12-545-83 15CIR-1D</td><td></td></tr><tr><td>Bisturi, lama sterile, n. 15</td><td>Miltex</td><td>4-415</td><td></td></tr><tr><td>Pinza a punta curva di precisione</td><td>Fisher Scientific</td><td>16-100-122</td><td></td></tr><tr><td>Pipette sierologiche</td><td>Fisher Scientific</td><td>13-678-11E</td><td></td></tr><tr><td>Pipette Pasteur</td><td>Fisher Scientific</td><td>22-230490</td><td></td></tr><tr><td>Gelatina</td><td>Sigma</td><td>G1890-100G</td><td></td></tr><tr><td>Tampone fosfato Soluzione salina</td><td>Fisher Scientific</td><td>SH30264.02</td><td></td></tr><tr><td>Corning 500 mL unità filtro</td><td>Fisher Scientific</td><td>430770</td><td>Combina i componenti dei terreni e filtro.</td></tr><tr><td>Nunc Fiasche per colture cellulari con tappi filtranti, T175 cm2&nbsp;</td><td>Thermo Scientific</td><td>178883</td><td></td></tr><tr><td>Name</td><td>Azienda</td><td>Numero di catalogo</td><td>Comments</td></tr><tr><td>Growth Media</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Hyclone DMEM</td><td>Fisher Scientific</td><td>SH30081.02</td><td></td></tr><tr><td>Hyclone FBS</td><td>Fisher Scientific</td><td>SH30910.03</td><td></td></tr><tr><td>MEM Soluzione di aminoacidi non essenziali (100x)</td><td>Thermo Fisher</td><td>11140-050</td><td></td></tr><tr><td>GlutaMAX Supplement (100x)</td><td>Thermo Fisher</td><td>35050-061</td><td></td></tr><tr><td>Piruvato di sodio (100 mM)</td><td>Thermo Fisher</td><td>11360-070</td><td></td></tr><tr><td>Penicillina-Streptomicina (10.000 U/mL)</td><td>Thermo Fisher</td><td>15140-122</td><td></td></tr><tr><td>Amfotericina B (Soluzione gialla/250 &micro; g/mL)</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP264520</td><td></td></tr><tr><td>Bambanker Freeze 120 mL</td><td>Fisher Scientific</td><td>NC9582225</td><td></td></tr><tr><td>Name</td><td>Azienda</td><td>Numero di catalogo</td><td>Comments</td></tr><tr><td>Colorazione con fibronectina</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Vetrini a camera a 8 pozzetti&nbsp;</td><td>Fisher Scientific</td><td>1256518</td><td></td></tr><tr><td>20% paraformaldeide&nbsp;</td><td>Scienze della microscopia elettronica</td><td>15713</td><td></td></tr><tr><td>Triton X-100&nbsp;</td><td>Sigma</td><td>T8787</td><td></td></tr><tr><td>100% glicerolo</td><td>BioRad</td><td>9455</td><td></td></tr><tr><td>Siero di capra 100% normale&nbsp;</td><td>Fisher Scientific</td><td>101098-382</td><td></td></tr><tr><td>Anticorpo anti-fibronectina [F1]</td><td>Abcam</td><td>ab32419</td><td>Diluizione 1:300 in soluzione bloccante</td></tr><tr><td>Anti-SERPINH1</td><td>Sigma</td><td>S5950-200ul</td><td>Diluizione 1:250 in soluzione bloccante</td></tr><tr><td>Anti-SOX2</td><td>Millipore</td><td>MAB4343</td><td>diluizione 1:100 in soluzione bloccante</td></tr><tr><td>Anti-Nestin</td><td>Millipore</td><td>MAB5326</td><td>1:200 diluizione in soluzione bloccante</td></tr><tr><td>Anti-TUJ1</td><td>Covance</td><td>MMS-435P</td><td>diluizione 1:1.000 in soluzione bloccante</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 488 anti-coniglio</td><td>Thermo Fisher</td><td>A11029</td><td>diluizione 1:400 in soluzione bloccante; (canale verde; Ex/Em2 495/519 nm)&nbsp;</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 555 anti-topo</td><td>Thermo Fisher</td><td>A21424</td><td>diluizione 1:400 in soluzione bloccante; (canale rosso; Ex/Em2 590/617 nm)&nbsp;</td></tr><tr><td>Hoechst 33342 colorante</td><td>Thermo Fisher</td><td>H3570</td><td>diluito ad una concentrazione finale di 1,0 &mu; g/mL; (canale blu; Ex/Em2 358/461 nm)</td></tr><tr><td colspan="4">I fornitori sono suggerimenti, possono essere utilizzati anche prodotti simili di fornitori alternativi.</td></tr></tbody></table>

derivazione delle culture leptomeningi explant da postmortem cervello umano donatori

Derivation of Leptomeninges Explant Cultures from Postmortem Human Brain Donors

Anche se è stato fatto grandi progressi nella caratterizzazione clinica della malattia di Parkinson, diversi studi riportano che la diagnosi della malattia di Parkinson non è patologicamente confermato fino al 25% della malattia diagnosi clinica di Parkinson. Pertanto, tessuti raccolti da pazienti clinicamente diagnosticata la malattia di Parkinson idiopatica può avere un alto tasso di diagnosi errate; da qui in studi in vitro da tali tessuti per studiare il morbo di Parkinson in un modello preclinico può diventare inutile. Raccogliendo leptomeningi umani post-mortem con una diagnosi neuropatologica confermata di malattia di Parkinson e caratterizzata da perdita di cellule nigrostriatale e inclusioni proteiche intracellulari chiamati corpi di Lewy, si può essere certi che parkinsonismo clinicamente osservata non è causata da un altro processo patologico di base (ad esempio tumori, arteriosclerosi). Questo protocollo presents la dissezione e la preparazione di leptomeningi umani post mortem per la derivazione di una cultura di fibroblasti meningea. Questa procedura è robusto e ha un alto tasso di successo. La sfida della cultura è la sterilità come l&#39;approvvigionamento del cervello non è generalmente effettuata in condizioni di sterilità. Pertanto, è importante integrare mezzi di coltura con un cocktail di penicillina, streptomicina, e amfotericina B. La derivazione dei fibroblasti meningei dai casi autopsia confermati con la malattia di Parkinson fornisce le basi per la modellazione in vitro di malattia di Parkinson. fibroblasti meningei compaiono 3-9 giorni dopo la preparazione del campione e circa 20-30 milioni di cellule possono essere crioconservati in 6-8 settimane. La cultura fibroblasti meningeo omogeneo e le cellule esprimono fibronectina, un marker comunemente usato per identificare meningi.

Quando il protocollo di trasformazione leptomeningi ha avuto successo, conseguenza di fibroblasti meningei prima si osserva tre a nove giorni dopo la dissezione, anche se questo può dipendere dalla lunghezza dell&#39;intervallo post-mortem per il cervello. La figura 1 mostra colture di fibroblasti meningei di quattro diversi donatori. La figura 1A mostra un pezzo leptomeningi tenuto premuto da una scivolata copertura in vetro (linea diagonale scuro) e fi...

Il protocollo cultura leptomeningi espianto dal post-mortem cervello umano è un modo tecnicamente robusto e semplice da ricavare fibroblasti meningei fibronectina-positivo entro 6-8 settimane e crioconservazione circa 20-30 milioni di cellule.

Derivazione delle Culture leptomeningi Explant da Postmortem cervello umano donatori

Even though great progress has been made in the clinical characterization of Parkinson&#39;s disease, several studies report that the diagnosis of ...

Sono Birgitt Schule, direttrice del programma di donazione del cervello presso il Parkinson's Institute and Clinical Center. In questo video, descriviamo una tecnica per l'espiantazione di una coltura cellulare e la durata del fibroblasto primario da leptomeningi di cervello umano post mortem da pazienti con malattia di Parkinson. Questi fibroblasti possono essere utilizzati per una varietà di applicazioni, compresi i saggi basati su cellule.Questo è importante, perché possiamo studiare linee cellulari da casi provati dall'autopsia di malattia di Parkinson sporadica con patologia a corpi di Lewy. Iniziare posizionando tutti i materiali necessari nella cappa di coltura tissutale. Tutti gli oggetti che entrano nella cappa devono essere spruzzati con etanolo al 70% e puliti.Il primo passo è trasferire le meningi dal tubo al piatto di taglio. Inizia versando circa 10 millilitri di soluzione salina tamponata con fosfato in un piatto da taglio sterile da 10 centimetri. Qui puoi vedere le meningi.Utilizzando una pinza sterile, trasferire con cura le meningi nel piatto da taglio. Eseguire questo passaggio lentamente per evitare strappi. Il passo successivo è lavare le meningi in PBS per rimuovere quanto più sangue possibile.Se il tuo campione è troppo sanguinante, potresti prendere in considerazione l'idea di trasferirlo su un altro piatto da taglio. Aggiungere altri 10 millilitri di PBS in un piatto fresco di 10 centimetri. Ripetere questo lavaggio per continuare a rimuovere il sangue dalle meningi.Infine, trasferite le meningi in un piatto fresco di 10 centimetri contenente PBS. Al termine, coprire il piatto e trasferirlo al microscopio da dissezione nella cappa a flusso laminare. Il passo successivo consiste nel continuare a sezionare le meningi in pezzi più piccoli.Usando due bisturi sterili, separa delicatamente i vasi sanguigni dalle meningi con un movimento raschiante superficiale. Prepara una regione abbastanza grande da tagliare circa 18 pezzi da 3 millimetri per 3 millimetri, come mostrato in questa immagine. Quindi, prendi il bisturi e, con un movimento a dondolo, seziona la regione preparata in pezzi di 3 millimetri per 3 millimetri.È più facile farlo in un processo graduale tagliando prima le meningi in pezzi più grandi e poi tagliando quei pezzi in sezioni più piccole. Coprire il piatto di taglio e trasferirlo nuovamente nella cappa di coltura tissutale. Successivamente, preparati a trasferire le meningi in una piastra di coltura tissutale a sei pozzetti che è stata ricoperta con 1 millilitro di gelatina allo 0,1% per 30-60 minuti.Aggiungere un millilitro di terreno di coltura per meningi in ciascun pozzetto. Quindi, con una pinza sterile, trasferire tre o quattro pezzi di meningi al centro di ciascun pozzetto. Le cellule coltivate su questa piastra saranno un passaggio zero.La fase successiva utilizza vetrini coprioggetti per garantire che i pezzi di meningi siano fermi e rimangano a contatto con la piastra di coltura. Posizionare un vetrino coprioggetti circolare sterile da 15 millimetri sui pezzi di meningi. Se necessario, riposizionare i pezzi di meningi con un vetrino coprioggetti.Quindi, utilizzando la pinza, premere con decisione sul vetrino coprioggetti per assicurarsi che i pezzi tocchino la piastra. Questa immagine mostra i pezzi di meninge tenuti in posizione con un vetrino coprioggetti. Posizionare il coperchio sulla piastra a sei pozzetti e trasferire con cura la piastra in un incubatore impostato a 37 gradi Celsius e 5% di anidride carbonica.Dopo due giorni di coltura, aggiungere un ulteriore millilitro di terreno di coltura fresco a ciascun pozzetto. A sette giorni, aspirare il supporto. Quindi, riempire ogni pozzetto con 2 millilitri di terreno fresco.Dopo il settimo giorno, continuare a rifornire i pozzetti con 2 millilitri di terreno fresco a giorni alterni. Questa immagine mostra il giorno iniziale dei pezzi di meningi e della cultura al microscopio invertito. Dopo circa sei-nove giorni, si può osservare l'attaccamento cellulare nella prima escrescenza.Tra i 15 e i 19 giorni, il numero di cellule aumenta e la crescita diventa più densa. I fibroblasti meningei sono caratterizzati dall'espressione di fibronectina. Queste immagini mostrano cellule meningee in coltura che sono state colorate e sono positive per la fibronectina.Dopo aver visto questo video, dovresti avere una buona comprensione di come derivare le colture di espianti di leptomeningi da donatori di cervello umano post mortem. Questa tecnica fornisce un modo semplice e robusto per derivare i fibroblasti meningei entro tre-sei settimane e consente di conservare da 15 a 20 milioni di cellule con un basso numero di passaggi.

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