Name: Lisolamento di cellule progenitrici endoteliali da volontari sani e il loro potenziale migratori influenzato dal siero campioni dopo cardiochirurgia (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-02-14T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 43 s
Description: Scopri l'isolamento di cellule progenitrici endoteliali dal sangue periferico e la valutazione del loro potenziale migratorio verso campioni di siero di pazienti sottoposti a cardiochirurgia. Questo metodo aiuta a studiare la rigenerazione vascolare dopo eventi ischemici.

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Il sangue per l&#39;isolamento di EPC è stato ottenuto da volontari sani, dopo consenso informato secondo il comitato etico locale. I campioni di siero utilizzati nei saggi di migrazione sono stati ottenuti da pazienti sottoposti a chirurgia cardiaca convenzionale con l&#39;uso del bypass cardiopolmonare (CPB). I criteri di esclusione erano operazioni di emergenza, la gravidanza accertata o sospetta, patient`s età inferiore a 18 anni, e il fallimento di ottenere il consenso informato. I campioni di siero sono stati elaborati oltre alle misurazioni di routine clinici (immediatamente prima dell&#39;intervento e subito dopo riperfusione miocardica / apertura aortico cross-clamp) e successivamente conservati a -80 ° C fino all&#39;analisi finale. Il comitato di revisione istituzionale (comitato etico, RWTH Aachen University) ha approvato questo studio. I pazienti hanno mostrato una età media di 68,6 anni e un peso medio di 81,7 kg. malattie pre-esistenti inclusi: ipertensione (65%), malattia polmonare cronica (19%), arteriopatia cardiaco extra (16%), disfunzione cerebrale (6%), angina instabile (3%), infarto miocardico recente (28% entro 90 d), malattia renale cronica (14%), malattie epatiche (2%) e diabete (34%). 1. Rivestimento di T75 Flask: <ol><li> Preparare 5 soluzione fibronectina ml (1 mg fibronectina umana diluito in 15 ml di acqua ultrapura) per bombola T75. </li><li> Aggiungere la soluzione in un pallone T75 e attendere finché non viene evaporata l&#39;acqua. Per evitare inutili interruzioni durante il processo di isolamento dovuto all&#39;evaporazione, eseguire questo processo in anticipo (ad esempio durante la notte) ea temperatura ambiente. Questa soluzione dà 4,44 mcg fibronectina / cm 2. </li><li> Preparare la crescita delle cellule endoteliali medio MV2 integrando il supporto MV2 basale con la crescita integratori fattore fornite dal produttore. </li></ol> 2. Isolamento di cellule progenitrici endoteliali (EPC) da 60 ml di sangue: NOTA: Come il CD34-positivo selezione di cocktail unnd le perline magnetiche sono disponibili in commercio in un kit selezione combinato, non esistono concentrazioni fornite dal produttore. Tuttavia, circa 100 microlitri di anticorpo sono sufficienti per elaborare fino a 5 x 10 8 cellule. Le sfere magnetiche sono diluiti in acqua, destrano rivestito e circa 5,000x più piccola rispetto ad altre perle disponibili in commercio. Per ulteriori informazioni, consultare le istruzioni del fabbricante. <ol><li> Mescolare il sangue (con o senza anticoagulanti) 1: 1 con il Ca 2+ 2+ -Mg-free PBS. </li><li> Aggiungere 15 ml di soluzione gradiente di densità per tubo da 50 ml. Per ulteriori informazioni, consultare le istruzioni del fabbricante. </li><li> Lentamente strato il sangue diluito in cima alla soluzione gradiente di densità. </li><li> Centrifugare i campioni a 2.500 xg per 30 min con accelerazione lenta e senza frenatura. </li><li> Raccogliere accuratamente lo strato di buffy coat di ogni tubo (Figura 1) usando una pipetta di plastica sterile e metterlo in un altro tubo.Evitare di raccolta della soluzione gradiente di densità. La resa PBMC atteso è di circa 3-4 x 10 6 cellule / ml di sangue. </li></ol><img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/55192/55192fig1.jpg" /> Figura 1: Densità centrifugazione in gradiente di Bbuffy Coat su Ficoll Solution. Viene mostrato il risultato del gradiente di centrifugazione densità a 2.500 xg per 30 min sulla soluzione gradiente di densità. Raffigurato sono eritrociti e granulociti (rosso), la frazione di cellule mononucleate (strato bianco), plasma (giallo), e la soluzione gradiente di densità (biancastra). <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55192/55192fig1large.jpg" target="_blank">Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a> <ol start="6"><li> Diluire la frazione di cellule mononucleate del sangue periferico con almeno 3 volumi di PBS e mescolare. Centrifugare a temperatura ambiente per 15 min a 200 x g. </li><li> Ripetere il punto 2.6 due volte. &lt;/ Li&gt; <li> Aspirare il surnatante e risospendere pellet di cellule in 5 ml MV2 medium. </li><li> Aggiungere 100 microlitri di anticorpo CD34 umano (sufficiente per elaborare fino a 5 x 10 8 cellule) per buffy coat utilizzato e ruotare per 15 min a 37 ° C con 5% di CO 2. </li><li> Aggiungere 50 ml di biglie magnetiche rivestite destrano per buffy coat utilizzato e ruotare per 10 min a 37 ° C con 5% di CO 2. </li><li> Dopo l&#39;incubazione, trasferire la sospensione per tubi FACS con un massimo di 3 ml in ciascun tubo. quantità maggiori non sarà consentita con il magnete. </li><li> Inserire il tubo (s) FACS nel magnete (s) e attendere 5 minuti. </li><li> Scartare il surnatante senza tirare i tubi FACS dal magnete. </li><li> Risospendere le cellule in ciascun tubo FACS con 3 ml di mezzo MV2 di fuori del magnete. </li><li> Ripetere i passaggi 2,12-2,14 due volte. </li><li> Tirare i tubi FACS fuori dei magneti e risospendere le cellule in 3 ml di mezzo MV2. </li><li> Trasferire la sospensione cellulare in pre-rivestito T75 Flasks e aggiungere 17 ml MV2 medio per bombola. NOTA: Il mezzo deve essere cambiato dopo 3 giorni. Dopo una settimana, le cellule mostrano strutture mandrino-simili (Figura 2) e sono pronti all&#39;uso. Per una trascuranza dell&#39;isolamento vedi figura 3. </li></ol><img alt="figura 2" src="/files/ftp_upload/55192/55192fig2.jpg" /> Figura 2: Immagine microscopica di EPC isolate. Viene mostrato un immagine rappresentativa di isolato precoce EPC in un pallone T75 prima di distacco. Apparente è la struttura del mandrino-simile del EPC. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55192/55192fig2large.jpg" target="_blank">Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a> <img alt="Figura 3" src="/files/ftp_upload/55192/55192fig3.jpg" /> Figura 3: diagramma di flusso che mostra la procedura di isolamento EPC. Raffigurato è uno schema, spettacoloing delle singole fasi del protocollo isolamento EPC. Per un protocollo più dettagliata si veda la Sezione 2 nella sezione del protocollo. 3. Migrazione Assay <ol><li> Rimuovere il supporto dal EPC nel pallone T75. </li><li> Lavare con 5 ml di PBS agitandolo con attenzione. </li><li> Rimuovere PBS e aggiungere 5 ml di soluzione commerciale distacco delle cellule. Attendere fino a quando le cellule si staccano (verificare al microscopio). Accelerare il distacco toccando con cura il fondo del pallone. </li><li> Quando le cellule vengono staccate, aggiungere rapidamente 5 ml di terreno completo MV2 e trasferire la sospensione cellulare in un altro tubo. </li><li> Centrifugare a 2000 xg per 5 min. </li><li> Risospendere le cellule in 5-10 ml di PBS e centrifugare nuovamente a 2.000 xg per 5 min. </li><li> Ripetere il punto 3.6. </li><li> Risospendere il pellet cellulare in MV2 medio fame (50.000 cellule in sono necessari 75 microlitri per la trasmigrazione bene). NOTA: Quale sistema di migrazione è necessario dipende dal tipo di cellula e saggio. Vi sono diff<html> diametri erenti pori e dimensioni piatto (numero di pozzi). Per EPC una dimensione dei pori di 5 micron di 96 sistema ben è ottimale. </li><li> Preparare la piastra di migrazione aggiungendo 235 ml di campione di siero (siero diluito 1: 5 in MV2 medio fame) nella camera inferiore (figura 4). </li></ol><img alt="Figura 4" src="/files/ftp_upload/55192/55192fig4.jpg" /> Figura 4: Migrazione Assay in una camera di Boyden modificata. Viene mostrato il disegno generale di una camera di Boyden modificata. Gli inserti di coltura cellulare (= camera superiore) sono indicati in blu scuro e vengono inseriti nella camera inferiore. Il fondo (ma non le pareti) di questi inserti rappresenta il sistema di filtro inclusi i pori. (A) mostra la configurazione al punto di tempo zero. (B) Dopo un punto di tempo prescelto, le cellule sono migrate attraverso il filtro verso uno stimolo.fig4large.jpg &quot;target =&quot; _ blank &quot;&gt; Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura. <ol start="10"><li> Aggiungere l&#39;inserto poco prima di aggiungere la soluzione di cellule. </li><li> Aggiungere 75 ml della soluzione di cellule (= 50.000 cellule) nella camera superiore. </li><li> Sia l&#39;EPC migrare per 3 ore a 37 ° C e CO 5% 2 (tempo di migrazione dipende dal tipo di cellula e del sistema). <ol><li> Per evitare di siero manufatti auto-fluorescenza, quantificare le cellule migrate per scattare foto del pozzo sotto un microscopio e contare le cellule utilizzando il software semi-automatico &quot;ImageJ&quot;. </li></ol></li><li> Rimuovere la camera superiore (che contiene tutte le cellule non migrati). </li><li> Aggiungere 70 ml soluzione di paraformaldeide 3,6%, tra cui la Hoechst colorante (diluito 1: 1.000). La piastra può essere conservato a 37 ° C e 5% CO 2 durante la notte. </li><li> Centrifugare la piastra a breve per ottenere tutte le cellule nello stesso piano focale a 2.000 g per 1-2 min. </li><li> Prendere 5 immagini per well (figure 5 e 6) con un ingrandimento 100x. </li></ol><img alt="Figura 5" src="/files/ftp_upload/55192/55192fig5.jpg" /> Figura 5: Schema che mostra la posizione delle foto scattate. Lo schema raffigura la posizione dei cinque immagini riprese, che sono necessari per la determinazione di cellule migrate, in relazione al pozzo. Le immagini sono prese a contare le cellule e calcolare un valore medio per ogni bene. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55192/55192fig5large.jpg" target="_blank">Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a> <img alt="Figura 6" src="/files/ftp_upload/55192/55192fig6.jpg" /> Figura 6: Immagine microscopica delle cellule per la quantificazione. Viene mostrato un&#39;immagine rappresentativa, che è stata presa per la quantificazione delle cellule. Le cellule sono state colorate e USI fissing Hoechst colorante nel 3,6% paraformaldeide. I punti rappresentano fissate e colorate le cellule progenitrici endoteliali. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55192/55192fig6large.jpg" target="_blank">Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a> <ol start="17"><li> Contare le cellule migrate utilizzando il software semi-automatico &quot;ImageJ&quot; da parte del National Institute of Health. </li></ol>

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</ol>

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

La prima parte di questo studio comprendeva l&#39;isolamento di EPC umani da sangue periferico di volontari sani per consentire una valutazione globale del sangue di pazienti sottoposti a chirurgia cardiaca. Pertanto, una centrifugazione in gradiente di densità è stata eseguita per separare la frazione PBMC dal plasma, granulociti e eritrociti. Per rimuovere la maggior parte delle piastrine contaminanti, questa frazione cellulare è stata sottoposta a breve e lavaggio lento passaggi 29,...

<html> Cellule progenitrici endoteliali (EPC) circolano nel sangue umano e hanno la capacità di differenziarsi in cellule endoteliali 2. Partecipano vasculogenesi e sono in grado di ridurre al minimo i danni causati da infiammazione e ischemia / riperfusione (I / R) lesioni in vari modi 3, 4. Ad esempio, EPC mostrano elevati livelli di enzimi antiossidanti intracellulari come catalasi, glutatione perossidasi o superossido dismutasi manganese (MnSOD) 5. L&#39;elevata resistenza contro lo stress ossidativo permette EPC di funzionare in microambienti con specie elevati reattive dell&#39;ossigeno (ROS) dopo danno ischemico 6. Precedenti studi hanno anche indicato che il numero di EPC potrebbe essere correlata alla riparazione vascolare e che un numero ridotto di circolazione EPC predice il verificarsi di eventi cardiovascolari 7,class = &quot;xref&quot;&gt; 8. Tuttavia, una chiara definizione di una CPI non è stato ancora trovato. Fino ad ora, non vi è alcun indicatore superficie cellulare specifico o fenotipo coerente per EPC e queste cellule sono molto rari nel sangue periferico 9. Un EPC umana deve essere considerato come una cellula circolazione con la capacità di contribuire alla ricostruzione dell&#39;endotelio feriti e nuove strutture vascolari. Un modo di isolare e caratterizzare EPC è attraverso l&#39;adesione alla fibronectina. In tal modo, la capacità di queste cellule viene usato per mostrare una adesione superiore alla fibronectina piatti rivestiti rispetto al tipo 1 collagene, per esempio 3, 10, 11. Tuttavia, altri hanno scoperto che la placcatura cellule mononucleate sui piatti fibronectina rivestite senza alcuna fase di purificazione precedente o ulteriormente porta a colonie comprese le cellule progenitrici mieloidi, monociti, linfociti T e 12, 13, 14. Inoltre, in questo caso, le piastrine potrebbero contaminare il (MNC) frazione di cellule mononucleate e quindi trasferire proteine di membrana plasmatica di eventuali cellule aderenti 15. Oltre caratterizzazione mediante saggi di adesione in vitro, una combinazione di diversi marcatori di superficie cellulare viene usato per descrivere un tipo di cellula considerata come EPC. In questo caso, dopo l&#39;adesione fibronectina-mediata, le cellule vengono analizzati preoccupanti loro attributi endoteliali-like. In questo processo, i due marcatori di cellule endoteliali-associata, lipoproteine ​​a bassa densità acetilata (acLDL) e fattore di crescita vascolare endoteliale del recettore 2 (VEGFR-2, U), giocano un ruolo. Le cellule endoteliali e macrofagi hanno dimostrato di prendere specificamente fino acLDL in un processo chiamato &quot;percorso delle cellule scavenger&quot; 16. Un&#39;altra proteina marcatore è KDR come il recettore VEGF principale endotelialecellule 17. Tuttavia, come EPC in generale sono coltivate in mezzi supplementato con fattori di crescita endoteliali e siero fetale di vitello, è possibile che i macrofagi, che potrebbe anche essere stato erroneamente isolato, presentano un profilo marcatore endoteliale-like. Come precedentemente indicato, se coltivate in un mezzo-endoteliale condizionata, macrofagi esprimono proteine &quot;specifici endoteliali&quot; 18. In generale, ci sono due categorie di EPC all&#39;interno più sottotipi, che possono essere trovati nel sangue o essere coltivate in vitro. Late-escrescenza EPC (fine-EPC) compaiono dopo 2-3 settimane di cultura. Queste cellule sono integrati velocemente in un monostrato di vena ombelicale cellule endoteliali umane e possono formare tubi capillari 19. Inoltre, cosiddetto &quot;early-EPC&quot; circolare nel sangue per circa una settimana e agire in maniera più passiva attraverso consegnano molecole angiogeniche, come la crescita endoteliale vascolarefactor (VEGF), o CXCL8 19. I pazienti con malattia coronarica (CAD) hanno mostrato significativamente minori quantità di early-EPC rispetto ad un gruppo di controllo senza CAD 20. È interessante notare che lo stesso gruppo ha mostrato una maggiore quantità di fine-EPC rispetto ad un gruppo di controllo. Un altro studio ha mostrato che i primi-EPC proteggere EPC differenziate da apoptosi in condizioni di ossidazione in modo paracrino 6. Pertanto, primi EPC potrebbero fornire effetti protettivi pertinenti attraverso la migrazione di altre cellule in maniera automatica o paracrino nel sangue periferico. Questo protocollo descrive un metodo per purificare early-EPC dapprima isolando il PBMC in frazioni da sangue periferico umano e successivamente isolare cellule CD34 + da PBMC in frazioni per cancellare questa sospensione cellulare da cellule indesiderate. CD34 è un marcatore, che viene utilizzato per l&#39;isolamento di cellule staminali ematopoietiche umane 9 </sup&gt;. In seguito, le cellule CD34 + sono coltivate su terreni di coltura tissutale fibronectina rivestite. Dopo tre giorni, il mezzo viene cambiato, perdendo quindi tutte le cellule non aderenti. Infine, EPC isolati sono macchiati per verificare l&#39;assorbimento di acLDL e la presenza di KDR come cellule endoteliali-marcatore utilizzando cellule fluorescenza attivate (FACS). Come marcatore addizionale, abbiamo analizzato piastrine molecola di adesione delle cellule endoteliali (PECAM-1, CD31), che si verifica anche sulle cellule endoteliali. Restauro del tessuto miocardico danneggiato o infartuato da una maggiore assunzione di EPC appartiene alle strategie di trattamento intensivo indagati nelle malattie cardiovascolari. Tuttavia, la definizione di risultati sperimentali nella pratica clinica è ancora difficile, data la complessa interazione cellulare nel corpo umano durante varie condizioni fisiopatologiche. Inoltre, l&#39;ho infarto / Infortuni R innescare una eccessiva secrezione di varie citochine, ormoni e fac crescita<html> tori, che controllano la homing di EPC alle regioni di formazione dei vasi sanguigni 13. Come già evidenziato, CXCL8, stromali fattore derivato dalle cellule 1α (SDF-1α, CXCL12), VEGF e il fattore inibitorio della migrazione dei macrofagi (MIF) sono significativamente aumentata nei campioni di siero dopo danno miocardico I / R 1. Tra questi fattori, MIF è una citochina chemochine simile pleiotropica con caratteristiche prevalentemente pro-infiammatori. In contrasto con il suo nome storico, MIF ha funzioni pro-migratorie, agendo come un vero chemochine su vari tipi cellulari 1, 21, 22. Processi di reclutamento delle cellule MIF-mediate sono stati collegati alla recettori per le chemochine CXCR2 e CXCR4, che MIF si lega ed attiva in modo non-cognate 21. Da segnalare, EPC esprimono entrambi questi recettori sulla loro superficie, che in aggiunta diventano up-regolati in condizioni di ipossiaass = &quot;xref&quot;&gt; 23, 24. Inoltre, prove accumulando suggerisce che MIF ha un effetto complessivo cardio-protettivo durante I / R pregiudizio del cuore 22, 25, 26. In questo contesto, è stato ulteriormente dimostrato che MIF può supportare la neovascolarizzazione durante stress ipossico di particolare rilevanza, quando si considerano i meccanismi di recupero limitati del miocardio danneggiato 27. Precedenti studi in vitro ed esperimenti in modelli murini di pre-clinici forniti prima testimonianza sul ruolo della MIF in EPC assunzioni 4. Da segnalare, anche MIF è un importante proteina carico di EPC che possono essere immesse durante EPC reclutamento all&#39;interno di siti ischemici 28. Tuttavia, gli studi in ambienti clinici, in particolare in confronto con gli altri (angiogenici) citochine nel siero rimangono sfuggente.

<table><tbody><tr><td>Fibronectina</td><td>Biochrom AG</td><td>L7117</td><td>Rivestimento di fiasche T-75</td></tr><tr><td>Aqua ad iniectabilia</td><td>Fresenius Kabi</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Terreno di crescita delle cellule endoteliali MV2</td><td>Promo Cell</td><td>C-22221</td><td></td></tr><tr><td>Terreno di crescita delle cellule endoteliali MV2 SupplementMix</td><td>Promo Cell</td><td>C-39226</td><td></td></tr><tr><td>Ficoll-Paque plus</td><td>GE Healthcare</td><td>17-1440-03</td><td>Centrifugazione per densità</td></tr><tr><td>Kit di selezione positivo CD34 umano EasySep</td><td>Stemcell Technologies</td><td>18056</td><td>Isolamento di cellule CD34+</td></tr><tr><td>Magnete EasySep</td><td>Stemcell Technologies</td><td>18000</td><td></td></tr><tr><td>Accutase</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A6964-100ML</td><td>Distacco di cellule</td></tr><tr><td>Corning HTS transwell 96 supporti permeabili a 96 pozzetti</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>CLS3387-8EA</td><td>Sistema di migrazione</td></tr><tr><td>Soluzione di Hoechst</td><td>ThermoFisher</td><td>33342</td><td>Colorazione delle cellule migrate</td></tr><tr><td>ImageJ</td><td>National institutes of health</td><td>xxx</td><td>Conteggio delle cellule migrate</td></tr></tbody></table>

l&#39;isolamento di cellule progenitrici endoteliali da volontari sani e il loro potenziale migratori influenzato dal siero campioni dopo cardiochirurgia

Isolation of Endothelial Progenitor Cells from Healthy Volunteers and Their Migratory Potential Influenced by Serum Samples After Cardiac Surgery

cellule progenitrici endoteliali (EPC) sono reclutati dal midollo osseo in condizioni patologiche come l&#39;ipossia e sono fondamentalmente coinvolti nella neovascolarizzazione di tessuti ischemici. L&#39;origine, la classificazione e la caratterizzazione di EPC sono complesse; Nonostante, due importanti sottotipi di EPC sono stati stabiliti: i cosiddetti &quot;primi&quot; EPC (successivamente indicati come primi-EPC) e tardo-escrescenza EPC (fine-EPC). Essi possono essere classificati per proprietà biologiche nonché dal loro aspetto durante la coltura in vitro. Mentre EPC &quot;precoce&quot; appaiono in meno di una settimana dopo la coltura di cellule mononucleate del sangue periferico di derivazione nei media CE-specifica, EPC tardo-escrescenza si possono trovare dopo 2-3 settimane. EPC tardo-escrescenza sono stati riconosciuti di essere direttamente coinvolti nella neovascolarizzazione, soprattutto attraverso la loro capacità di differenziarsi in cellule endoteliali mature, mentre &quot;presto&quot; EPC esprimono diversi fattori angiogenetici come endogenocargo unità organizzative per promuovere l&#39;angiogenesi in modo paracrino. Nel corso del miocardio da ischemia / riperfusione (I / R), vari fattori controllano la homing di EPC alle regioni di formazione dei vasi sanguigni. Macrofagi fattore inibitorio della migrazione (MIF) è una citochina pro-infiammatoria e ubiquitariamente espresso chemochine simile ed è stato recentemente descritto a funzionare come regolatore chiave della migrazione EPC a concentrazioni fisiologiche 1. È interessante notare, MIF viene memorizzato in piscine intracellulari e può rapidamente essere rilasciato nel flusso sanguigno dopo diversi stimoli (ad esempio infarto miocardico). Questo protocollo descrive un metodo per l&#39;isolamento affidabile e cultura precoce EPC da sangue periferico umano adulto basato sulla selezione CD34-positive con successiva coltura in terreno contenente fattori di crescita endoteliali su piastre di fibronectina rivestite per uso in test in vitro migrazione contro campioni di siero dei pazienti chirurgici cardiaci. Inoltre, laè dimostrata influenza migratoria di MIF sulla chemiotassi di EPC rispetto ad altre citochine angiogenesi-stimolante ben noti.

Caratterizzazione di isolati cellule endoteliali progenitrici Innanzitutto, l&#39;assorbimento di acLDL stata verificata, così come l&#39;espressione di KDR e CD31 sulla superficie della popolazione di cellule isolate. Come mostra la figura mostra 7a, 85,1% delle EPC isolati ha mostrato un assorbimento di acLDL ed espresso CD31. Le figure 7b e 7c mostrano inoltre...

cellule progenitrici endoteliali (EPC) sono cruciale coinvolti nella neovascolarizzazione di tessuti ischemici. Questo metodo descrive l&#39;isolamento di EPC umani da sangue periferico, così come l&#39;identificazione della loro potenziale migratorio contro campioni di siero di pazienti chirurgici cardiaci.

L&#39;isolamento di cellule progenitrici endoteliali da volontari sani e il loro potenziale migratori influenzato dal siero campioni dopo cardiochirurgia

Endothelial progenitor cells (EPCs) are recruited from the bone marrow under pathological conditions like hypoxia and are crucially involved in the ...

L'obiettivo generale di questa procedura di isolamento cellulare e del protocollo di migrazione è mostrare un metodo affidabile per isolare cellule progenitrici endoteliali e valutarne il potenziale migratorio verso campioni di siero di pazienti sottoposti a interventi cardiaci. Questo metodo può contribuire a rispondere a domande fondamentali sulla rigenerazione del rivestimento endoteliale e dei vasi sanguigni, necessaria dopo un intervento cardiaco a causa di lesioni legate all'ischemia e al danno da riperfusione. Il principale vantaggio di questa tecnica è il modo relativamente semplice di isolare le cellule progenitrici, che include la pre-isolazione di cellule positive per CD-34.Oltre ai decessi, le complicanze gravi della chirurgia cardiaca rimangono troppo frequenti, evidenziando la necessità di identificare i meccanismi di rischio e protettivi durante la chirurgia cardiaca. Le cellule progenitrici endoteliali sono coinvolte in modo cruciale nella neoformazione vascolare dei tessuti ischemici e sono note per conferire proprietà cardio-protettive.Per iniziare l'esperimento, mescolare il sangue, in rapporto uno a uno, con PBS privo di calcio e magnesio. Aggiungere 15 millilitri di soluzione a gradiente di densità in un tubo da 50 millilitri. E stratificare lentamente il sangue diluito sulla sommità della soluzione a gradiente di densità.Successivamente, centrifugare i campioni. Utilizzando una pipetta di plastica sterile, raccogliere con attenzione lo strato di buffy coat da ogni provetta e trasferirlo in un'altra provetta, evitando la soluzione del gradiente di densità. Diluire la frazione di cellule mononucleate del sangue periferico, o PBMC, con almeno tre volumi di PBS e mescolare la soluzione mediante pipettaggio.Centrifugare la miscela a temperatura ambiente per 15 minuti a 200 ×g. Quindi, aspirare il soprannatante e risospendere il pellet cellulare in cinque millilitri di mezzo di crescita per cellule endoteliali, MV-2. Dopo aver risospeso le cellule, aggiungere 100 microlitri di anticorpo anti-CD34 umano per ogni buffy coat utilizzato e ruotare le cellule. Aggiungere 50 microlitri di microsferette magnetiche rivestite di destrano per ogni buffy coat utilizzato e ruotare le cellule.Dopo l'incubazione, trasferire la sospensione in provette fax con un massimo di tre millilitri per provetta. Successivamente, inserire le provette fax nei magneti e attendere cinque minuti. Scartare il sopranatante senza estrarre le provette fax dal magnete.Quindi, all'esterno dei magneti, risospendere le cellule in ciascun tubo da centrifuga con tre millilitri di mezzo MV-2. Trasferire la sospensione cellulare in fiaschi T-75 pre-ricoperti. Aggiungere 17 millilitri di mezzo MV-2 a ciascun fiasco.Per preparare il saggio di migrazione, utilizzare una pipetta per rimuovere il mezzo dalle cellule progenitrici endoteliali o EPC nel flacone T-75. Lavare le cellule con cinque millilitri di soluzione salina tamponata al fosfato o PBS, agitando delicatamente il flacone. Successivamente, rimuovere il PBS e aggiungere cinque millilitri di soluzione commerciale per il distacco cellulare.Quindi, attendere finché le cellule non si staccano al microscopio ottico. Accelerare il distacco picchiettando delicatamente il fondo del fiasco. Quando le cellule si sono staccate, aggiungere rapidamente cinque millilitri di mezzo completo MV-2 e trasferire la sospensione cellulare in un altro tubo.Centrifugare le cellule a 2.000 x G per cinque minuti. Dopo aver formato il pellet cellulare, risospendere le cellule in cinque-dieci millilitri di PBS. Quindi centrifugare nuovamente.Risospendere le cellule in cinque-dieci millilitri di PBS e procedere con la centrifugazione. Risospendere il pellet cellulare nel mezzo MV-2 privo di siero. Successivamente, diluire il campione di siero da uno a cinque nel mezzo MV-2 privo di siero.Preparare la piastra per la migrazione aggiungendo 235 microlitri del campione di siero nella camera inferiore. Aggiungere l'inserto poco prima di aggiungere la soluzione cellulare. Successivamente, aggiungere 75 microlitri della soluzione cellulare nella camera superiore.Lasciare migrare le EPC. Rimuovere la camera superiore contenente tutte le cellule non migrate. Aggiungere 75 microlitri di soluzione di paraformaldeide al 3,6 percento contenente il colorante hoechst diluito uno a 1.000.Centrifugare brevemente la piastra per portare tutte le cellule nello stesso piano focale a 2.000 x G per uno o due minuti. Per evitare artefatti dovuti all'autofluorescenza del siero, quantificare le cellule migrate acquisendo cinque immagini per pozzetto con un ingrandimento di 100x al microscopio. Infine, contare le cellule migrate utilizzando un software semiautomatico.L'analisi mediante FACS degli EPC conferma l'assorbimento di acLDL, nonché l'espressione di CD31 sulla superficie della popolazione cellulare isolata. L'analisi separata di acLDL e CD31 rivela una distribuzione omogenea di ciascun marcatore. Obiettivo dello studio è identificare l'influenza dell'intervento cardiochirurgico successivo a danno da riperfusione miocardica sulle concentrazioni circolanti di MIF, CXCL12, CXCL8 e VEGF nel siero.Sono stati prelevati campioni di siero prima e durante l'intervento chirurgico. I livelli sierici di MIF, CXCL12 e CXCL8 hanno mostrato un aumento significativo durante l'intervento rispetto ai valori basali. Al contrario, le concentrazioni di VEGF non hanno mostrato variazioni significative.È stato eseguito un saggio di migrazione ex vivo, utilizzando campioni di siero prelevati prima e durante l'intervento chirurgico, impiegando EPC isolati da volontari sani, che ha rivelato un tasso di migrazione significativamente aumentato verso i campioni prelevati intraoperatoriamente. Seguendo questa tecnica, le cellule mononucleate del sangue periferico possono essere facilmente isolate per rispondere ad ulteriori domande relative all'infiammazione.

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L'isolamento di cellule progenitrici endoteliali da volontari sani e il loro potenziale migratori influenzato dal siero campioni dopo cardiochirurgia

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