11 giugno 2017
La ricerca sulla neurotossicità dello sviluppo sviluppata da anestesia (AIDN) si è concentrata sui roditori, che non sono generalmente applicabili agli esseri umani. I modelli primati non umani sono più rilevanti, ma sono proibitivi e difficili da utilizzare per la sperimentazione. Il maiale, al contrario, è un modello animale clinicamente rilevante e pratico ideale per lo studio della neurotossicità anestetica.
L'obiettivo generale di questa procedura sperimentale è valutare gli effetti degli anestetici sul cervello neonatale in un modello traslazionale di suinetto clinicamente rilevante. Questo metodo può aiutare a rispondere a domande chiave nel campo della neurotossicità indotta dall'anestesia, come ad esempio come si verifica la tossicità e i cambiamenti dello sviluppo che accompagnano tale tossicità. Il vantaggio principale di questa tecnica è che fornisce un modello animale rilevante dal punto di vista traslazionale per lo studio della neurotossicità dello sviluppo indotta dall'anestesia, in cui l'omeostasi fisiologica viene mantenuta durante la sperimentazione.
Durante l'induzione dell'anestesia e durante tutta la procedura, monitorare quanto segue: pulsossimetria, pressione sanguigna non invasiva, elettrocardiogramma e temperatura. Il singolo passaggio più critico durante questa procedura è il mantenimento dell'omeostasi fisiologica. Ciò include il monitoraggio, la gestione della temperatura, la ventilazione meccanica e l'analisi ematochimica.
Per preparare il suinetto all'intervento chirurgico, posizionare prima un catetere endovenoso periferico calibro 24 nella vena marginale dell'orecchio. Riscaldare il maialino con aria forzata riscaldata. Monitora la sua temperatura utilizzando un termometro rettale e infondi continuamente destrosio contenente liquido isotonico a una velocità di mantenimento.
Quindi mettere il maialino in posizione sdraiata dorsale per un'intubazione tracheale. Successivamente, spruzzare le corde vocali con 0,5 millilitri di lidocaina al 2% per prevenire gli spasmi durante l'intubazione e quindi far avanzare un tubo tracheale cuffiato di tre millimetri nella trachea. Fissare il tubo e quindi verificare la presenza di suoni respiratori bilaterali utilizzando l'auscultazione toracica con uno stetoscopio e verificare la presenza di anidride carbonica di fine espirazione sostenuta.
Quindi, applica un unguento oftalmico sugli occhi. Poco prima di iniziare l'intervento, somministrare un antibiotico ad ampio spettro attraverso la linea endovenosa periferica per prevenire l'infezione del sito chirurgico. Ora, sterilizzare entrambi gli inguini utilizzando almeno due scrub con clorexidina per garantire un corretto campo sterile.
Chiedi al personale chirurgico di indossare berretti, maschere, guanti e protezione per gli occhi. Quindi drappeggia l'animale. Per iniziare, palpare il polso femorale in corrispondenza della piega inguinale.
E poi, usando un bisturi, fai un'incisione craniocaudale superficiale di 1,5 centimetri. Quindi, eseguire una dissezione smussata tra le due teste del muscolo gracile. Ora, individua il fascio neurovascolare femorale.
In genere si trova tra i due muscoli. Quindi, con anse vascolari o lacci di seta, isolare l'arteria all'estremità prossimale e distale. Quindi, usando l'anello all'estremità prossimale, tirare l'arteria fino al livello della pelle distalmente e tirare la fascetta prossimale per interrompere il flusso sanguigno.
Mantenendo la trazione, utilizzare le forbici per tenotomia per eseguire una piccola arteriotomia. Quindi far avanzare il catetere o il tubo in polietilene direttamente nel vaso. Il ritorno del sangue deve essere osservato immediatamente.
A questo punto, collegare e fissare immediatamente un catetere collegato a un trasduttore di pressione. Quindi coprire l'incisione completata con una garza sterile e lavare il catetere con soluzione fisiologica. Durante l'esposizione all'anestesia, monitorare i segni vitali del suinetto.
Cerca le perturbazioni che potrebbero indicare ipotensione, aritmia, ipo o ipertermia o ipossia. Almeno una volta all'ora durante l'esperimento, prelevare un campione di sangue arterioso dal catetere dell'arteria femorale. Quindi utilizzare un sistema di analisi automatizzato per raccogliere i valori del sangue dal campione.
Dopo una sufficiente esposizione all'anestesia, rimuovere il catetere dell'arteria femorale e legare con cura la sutura di seta vascolare prossimale per occludere permanentemente l'arteria femorale e prevenire il sanguinamento. Quindi, irrigare l'incisione con 10-20 millilitri di soluzione salina per aiutare a prevenire l'infezione. Una volta confermata l'emostasi completa, chiudere l'incisione utilizzando una sutura di seta 3-0 in un semplice schema interrotto.
Ora, infiltra la ferita con bupivacaina ed epinefrina per il controllo del dolore. Quindi rivestire l'incisione con un adesivo cutaneo chirurgico sterile, interrompere l'anestetico e lasciare che il maialino si svegli. Sono stati studiati 40 suinetti maschi.
Tra il gruppo di controllo e quello sperimentale, non c'era alcuna differenza significativa rispetto all'età o al peso. Tutti sono stati monitorati in modo completo durante la procedura e tutti l'hanno tollerata bene. I valori medi di laboratorio durante la sperimentazione nel gruppo dell'isoflurano illustrano la consistenza interna e la riproducibilità della procedura.
La coerenza è stata osservata nell'arco di due anni con i dati raccolti da diversi operatori. Dopo aver visto questo video, dovresti avere una buona comprensione di come utilizzare un modello di suinetto traslazionale fisiologicamente appropriato per rispondere a quasi tutte le domande di ricerca pediatrica preclinica. Non dimenticare che lavorare con agenti anestetici può essere pericoloso e che quando si esegue questa procedura è necessario prendere sempre precauzioni come l'appropriata evacuazione dei gas anestetici.
Questo studio investiga gli effetti degli anestetici sul cervello neonatale utilizzando un modello di suinetto clinicamente rilevante. La ricerca mira a comprendere la neurotossicità indotta dall'anestesia e le sue implicazioni per l'anestesia pediatrica.
The piglet model provides a translationally relevant system for assessing anesthetic-induced developmental neurotoxicity, addressing a critical gap in preclinical pediatric safety evaluation. By maintaining physiologic homeostasis throughout experimentation, the model enables reliable mechanistic interrogation of anesthetic effects on the developing brain. This supports predictive de-risking in early discovery by clarifying biological pathways linked to neurodevelopmental outcomes, informing go/no-go decisions in CNS-active compound pipelines.
The method integrates into early discovery workflows by enabling hypothesis testing of anesthetic compounds in a physiologically stable neonatal model, directly supporting lead identification through mechanistic de-risking.