3 aprile 2017
Qui, presentiamo un protocollo per la dissezione di cordone umano ombelicale (UC) e il campione placenta fetale in cavo rivestimento (CL), gelatina di Wharton (WJ), cavo-placenta giunzione (CPJ), e placenta fetale (FP) per l'isolamento e caratterizzazione di cellule stromali mesenchimali (MSC) utilizzando la tecnica di espianto.
L'obiettivo generale di questo protocollo è isolare le cellule stromali mesenchimali da quattro distinte fonti di tessuto perinatale, il rivestimento del cordone ombelicale, la gelatina di Wharton, la giunzione cordone-placenta e la placenta fetale. Questo metodo può aiutare a far progredire il campo della biologia delle cellule staminali, della medicina alternativa ottenendo cellule staminali mesenchimali di qualità speciale, in modo non invasivo. Il vantaggio principale di questa tecnica è che produce in modo produttivo un gran numero di popolazioni cellulari omogenee di alta qualità da fonti di tessuto perinatale distinte.
Le cellule stromali mesenchimali del cordone ombelicale multipotenti derivate da questa tecnica possono essere utilizzate per trattare varie malattie e disturbi poiché sono più primitive delle cellule staminali mesenchimali isolate da tessuti adulti. Questo metodo può fornire informazioni sulle caratteristiche delle cellule stromali mesenchimali provenienti da diversi segmenti e nicchie specifiche del cordone e della placenta. Iniziare posizionando il campione in una capsula di Petri da 150 millimetri su ghiaccio in una cabina di sicurezza biologica e utilizzare un ago e una siringa per sciacquare il tessuto più volte con PBS ghiacciato.
Quando tutti i coaguli di sangue sono stati rimossi, esaminare attentamente il campione per identificare le diverse regioni anatomiche. Quindi usa una pinza per afferrare l'estremità fetale del cordone ombelicale e usa le forbici per praticare con cura un'incisione nella parte superiore della giunzione cordone-placenta. Praticare una seconda incisione sotto la giunzione per separare la giunzione cordone-placenta dalla placenta.
E dividere i tessuti separati in singole piastre di Petri. Quindi, tagliare il cordone ombelicale longitudinalmente per esporre completamente i vasi sanguigni e la gelatina di Wharton circostante senza disturbare l'epitelio. Usa un bisturi per raschiare via la gelatina di Wharton dai vasi sanguigni e dall'interepitelio del subamnio.
Quindi, rimuovere i vasi sanguigni, trasferendo l'eventuale gelatina perivascolare rimanente sotto e intorno ai vasi sanguigni nel piatto di gelatina di Wharton e posizionare il tessuto rimanente del rivestimento del cordone ombelicale nel proprio piatto. Quando tutti i tessuti sono stati sezionati, sostituire il PBS in ogni piatto con tre o cinque millilitri di tripsina e utilizzare le forbici per tagliare ogni campione di tessuto in pezzi da uno a due millimetri per un'incubazione di 30 minuti a 37 gradi Celsius e al cinque percento di anidride carbonica. Utilizzare un microscopio a contrasto di fase per osservare la digestione parziale visualizzando il rilascio di cellule dal tessuto.
Al termine del periodo di digestione parziale, neutralizzare la tripsina con un volume uguale di terreno di coltura e trasferire i campioni in singole provette coniche da 50 millilitri. Lasciare che i pezzi di tessuto si depositino per tre minuti. Quindi aspirare con cura il surnatante e preparare da 15 a 20 pezzi di tessuto parzialmente digeriti per campione in singoli flaconi di coltura tissutale da 75 centimetri quadrati.
Quindi, aggiungere nove millilitri di terreno di coltura per un'incubazione di due o tre giorni a 37 gradi Celsius. Cambiare il terreno di coltura dopo tre giorni ed esaminare le piante xplant mediante microscopia a contrasto di fase per verificare la presenza di cellule in uscita. Quando la crescita cellulare raggiunge la confluenza del 70%, dissociare le cellule in uno o due millilitri di soluzione di tripsina per pallone, ruotando il pallone per un rivestimento uniforme con la soluzione enzimatica e incubare le colture per tre minuti a 37 gradi Celsius.
Quindi neutralizzare la reazione con uno o due millilitri di terreno di coltura. Raccogliere le cellule mediante centrifugazione, risospendendo il pellet nel terreno di coltura per la subcoltura a una densità di semina da una volta dieci a una quarta cellula per centimetro quadrato. Le cellule del rivestimento del cordone ombelicale e le colture di gelatina di Wharton mostrano valori di efficienza di formazione di colonie rispettivamente di 59 e 80 colonie.
Il valore di efficienza di formazione delle colonie delle cellule della giunzione cordone-placenta, tuttavia, è simile a quello osservato per le cellule staminali mesenchimali del midollo osseo, suggerendo che le cellule derivate dalla giunzione cordone-placenta hanno maggiori capacità proliferitive e di auto-rinnovamento. Un'analisi metrica delle sospensioni di singole cellule isolate da questi tessuti perinatali indica che le percentuali di cellule positive per specifici marcatori di cellule staminali mesenchimali da tutte e quattro le fonti tissutali sono simili a quelle espresse dalle cellule mesenchimali standard derivate dal midollo osseo. I rapporti mediani di intensità della fluorescenza, tuttavia, indicano che le cellule derivate dalla gelatina di Wharton e dalla giunzione cordone-placenta sono molto simili o superiori al rivestimento del cordone nelle cellule derivate dalla placenta fetale.
È interessante notare che, nonostante i loro diversi valori di efficienza di formazione delle colonie, tutte le cellule delle diverse fonti perinatali esprimono livelli simili di marcatori di pluripotenza mediante analisi RTPCR quantitativa, ad eccezione delle cellule stromali mesenchimali derivate dalla giunzione cordone-placenta, che hanno espresso i più alti livelli di espressione per tutti i marcatori di pluripotenza testati. Inoltre, le cellule stromali mesenchimali isolate da tutte le fonti perinatali si differenziano facilmente in tipi di cellule adipogeniche, condrogeniche e osteogeniche, oltre a dimostrare una differenziazione trilineare. Sebbene il potenziale di differenziazione vari a seconda della fonte di cellule stromali mesenchimali.
Una volta padroneggiata, questa tecnica può essere completata in due o tre ore se viene eseguita in modo efficiente. Durante il tentativo di questa procedura, è importante praticare la tecnica laterale ed evitare la contaminazione incrociata tra le fonti di tessuto. Questa tecnica ha spianato la strada ai ricercatori per esplorare la natura delle nicchie di cellule staminali nei tessuti perinatali.
Questo protocollo descrive la dissezione del cordone ombelicale umano e della placenta fetale per isolare cellule staminali mesenchimali (MSCs) mediante la tecnica di coltura di espianto. Il metodo consente la caratterizzazione di MSCs provenienti da diverse fonti di tessuto perinatale, contribuendo ai progressi nella biologia delle cellule staminali.
Questo protocollo consente l'isolamento di cellule stromali mesenchimali (MSCs) da diverse fonti di tessuto perinatale, offrendo un'alternativa non invasiva e eticamente vantaggiosa rispetto alle MSCs derivate dal midollo osseo. Confrontando regioni anatomiche come la giunzione cordone-placenta (CPJ), la gelatina di Wharton (WJ), il rivestimento del cordone (CL) e la placenta fetale (FP), il metodo supporta la validazione degli obiettivi e la riduzione del rischio meccanicistico nei percorsi di medicina rigenerativa. L'efficienza maggiore nella formazione di colonie e l'espressione di marcatori di pluripotenza osservate nelle MSCs derivate dalla CPJ forniscono una previsione affidabile per le applicazioni di terapia cellulare, facilitando l'identificazione dei candidati promettenti e la selezione del portafoglio.
Il metodo si integra nel percorso di scoperta, dall'Early Discovery all'Identificazione del Lead e ai lavori Preclinici, supportando la verifica delle ipotesi, la chiarificazione dei percorsi biologici e la riduzione del rischio biologico attraverso l'isolamento di MSC risolti anatomicamente.