Name: Edificio a due piani trappole per individuazione tempestiva di smeraldo cenere Borer (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-10-04T11:30:00.000+00:00
Duration: 6 min 7 s
Description: Scopri come costruire trappole a due piani per il monitoraggio dello smeraldo cenere Borer (EAB). Questo metodo dimostra l'assemblaggio corretto e il posizionamento ottimale per catturare efficacemente gli adulti in popolazioni a bassa densità.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Diversi tecnici e studenti laureati presso la Michigan State University hanno contribuito a sviluppare, perfezionare e valutare la progettazione di trappola DD nel corso degli anni, tra cui Andrea Anulewicz, Robert McDonald e Nathan Siegert. Ringraziamo James Wieferich e Jeremy Lowell (MSU) per la loro assistenza nello sviluppo di istruzioni per l'installazione di DD. Recensione di James Wieferich e Molly Robinett (MSU) una prima stesura di questo manoscritto e apprezziamo i loro suggerimenti. Joseph Francese e Damon Crook (USDA APHIS) generosamente condiviso le loro osservazioni sulla risposta EAB di sostanze volatili di colore e host. Finanziamenti per la valutazione e lo sviluppo di trappola DD è stato fornito da sovvenzioni dalla tutela della salute di foresta di USDA Forest Service, Area nord-orientale.

1. preparare il verde e il viola pannelli <ol><li>Acquire verde e viola ondulato pannelli di plastica (120 × 60 cm) per il trapping EAB da un distributore commerciale di pest gestione forniture. Usare un taglierino o coltello per segnare due linee di piega in ogni pannello tagliando parzialmente attraverso la plastica lungo le ondulazioni verticali, 40 cm dai due bordi corti del pannello. In questo modo il pannello per essere piegato in un prisma su 3 lati (ogni faccia sarà 40 x 60 cm). Pannelli sono solitamente segnati dal distributore per facilitare la piegatura, quindi questo passaggio potrebbe non essere necessario.</li>
	<li>Due coppie di trapano dei fori in ogni gruppo utilizzando un ½ pollice (1,3 cm) bit come indicato nella Figura 1. I fori 4 pollici (10 cm) dalla parte superiore del pannello e 4 pollici su entrambi i lati della piega sinistra. Forare la seconda coppia di fori 19 pollici (48 cm) dalla parte superiore del pannello e direttamente sotto i fori superiori (cioè, 4 pollici su entrambi i lati della piega sinistra).</li>
</ol> 2. Preparare il tubo in PVC <ol><li>ottenere una sezione di tubo di programma 40 cloruro di polivinile (PVC), 3 m di lunghezza e 10 cm di diametro, da un negozio di ferramenta commerciale o altro fornitore per ogni trappola. Quattro fori nel tubo in PVC, come mostrato nella Figura 2. Eseguire utilizzando un trapano di ½ pollice (1,3 cm), una coppia di fori 4 pollici (10 cm) dalla parte superiore del tubo del PVC e 3½ pollici (8,9 cm) a parte. Allineare i fori orizzontalmente.</li>
	<li>Trapano un secondo paio di fori, 3½ pollici a parte e 52 pollici (1,3 m) sotto la parte superiore del tubo, direttamente sotto la prima serie di fori.</li>
</ol> 3. Installare un T-post <ol><li>uso un post libbre per installare un t-post nella posizione desiderata. Guidare il post abbastanza profondo in modo che la flangia è appena sotto la superficie del terreno, ma non c'è nessun bisogno di andare più in profondità. Il t-post fornirà un sacco di supporto per la trappola DD, anche in venti forti. Ragazzo fili o supporti supplementari non sono necessari. Anche se il t-post non deve necessariamente essere impostata profondamente nel terreno, è una buona idea per cercare di sottoservizi o tubi interrati prima mettendo il post terra.</li>
</ol> 4. Assemblare la trappola di DD <ol><li>Fold un pannello viola in un prisma. Se i pannelli sono pre-incollati, assicurarsi che la parte adesiva è all'esterno. I due piccoli lembi attraverso le feritoie di alimentazione e utilizzare due fascette di 8 pollici (20 cm) per fissare le estremità del pannello insieme. Ripetere con un pannello verde.</li>
	<li>Sostenere il tubo in PVC orizzontalmente sopra la terra. Far scorrere il prisma viola sui tratti di tubo di PVC e giù per la serie più bassa di fori nel tubo in PVC.</li>
	<li>Feed un grande, fascetta ferma-cavo lungo 2 piedi (60 cm) orizzontalmente attraverso la parte superiore a sinistra buco nel prisma, poi attraverso la coppia di fori nel tubo in PVC e infine attraverso il foro adiacente sul lato destro del prisma. Assicurarsi che il prisma è allineato contro la parte solida del tubo di PVC che si trova tra i due fori. Chiudere e serrare la fascetta ferma-cavo, assicurandosi che la fascetta non sia attorcigliata.</li>
	<li>Alimentare una seconda fascetta grande attraverso il foro inferiore nel prisma, intorno al tubo e attraverso il foro corrispondente sul lato adiacente del prisma. Chiudere la fascetta e serrare, nuovamente avendo cura di assicurare la fascetta non attorciglia prima serrato.</li>
	<li>Far scorrere il prisma verde sui tratti di tubo di PVC e allegarlo alla serie superiore di fori nel tubo in PVC con due fascette ferma-cavo di 60 cm, seguendo la stessa procedura descritta in precedenza. Ci sarà un gap di 21 pollici (54cm) tra i prismi superiori e inferiori.</li>
</ol> 5. Applicare la colla di insetto e Set Up the Trap <ol><li>applica chiaro colla di insetto intrappolamento ai pannelli che non sono pre-incollati. Anche pre-incollate spesso richiedono ulteriore colla per catturare EAB coleotteri. Per applicare colla cattura insetti, impostare la base del tubo del PVC sul terreno e prop la faccia interna del prisma superiore sul post-t.</li>
	<li>Guanti utilizzando lattice (o simili), raccogliere due o tre manciate di colla e striscio su tutta la superficie di un pannello, facendo attenzione che la superficie del pannello sia adeguatamente coperto. Ruotare il tubo in PVC per accedere a tutte le superfici in tre su due prismi. Colla non deve necessariamente essere applicato al tubo di PVC.</li>
	<li>Prendere il tubo in PVC, tenerlo verticalmente e far scorrere l'estremità inferiore sopra il post di t. Evitare di toccare i pannelli appiccicosi.</li>
</ol> 6. Esca la trappola di DD <ol><li>come pre-incollati prismi di solito arrivano con un piccolo foro (4 mm) vicino al bordo inferiore di un pannello del prisma, utilizzare una fascetta per cavi da 4 pollici (10 cm) per collegare una bustina di cis -3-hexenol al bordo inferiore del prisma superiore (verde). Se non c'è un buco, utilizzare un punzone buco palmare o un coltellino per tagliare un piccolo buco o fessura nella plastica, quindi utilizzare la piccola fascetta per attaccare l'esca. 
	Nota: Il cis -3-hexenol composto nelle esche viene rilasciato lentamente per circa un periodo di 10 settimane. Se trappole devono rimanere efficace per più di 10 settimane, sostituire le esche come necessario.</li>
</ol> 7. Controllo trappole per EAB coleotteri <ol><li>Check trappole a intervalli di 2-4 settimane, se possibile, per evitare di perdere i coleotteri catturati, che occasionalmente scendono le trappole, soprattutto in caso di pioggia. Esaminare tutti i tre lati del prisma inferiore per coleotteri EAB. Quindi, utilizzando guanti in lattice monouso, sollevare il tubo in PVC, verso l'alto e fuori il t-post e prop la faccia interna del prisma superiore sul t-post, esponendo un pannello di due prismi.</li>
	<li>Uso forcipe di rimuovere qualsiasi sospetto EAB coleotteri e metterli in un sacchetto di plastica richiudibile esemplare.</li>
	<li>Ruotare il tubo in PVC per esaminare tutti i tre pannelli su entrambi prismi per sospetto EAB coleotteri, quindi far scorrere il tubo indietro sopra il post-t. 
	Nota: Mosche, fare clic su scarafaggi e altri insetti vari saranno inevitabilmente catturati sulle trappole. Ci vuole un occhio attento per individuare uno scarabeo di EAB. Portando una foto tessera di riferimento può essere utile quando il controllo di trappole per la prima volta.</li>
	<li>Per confermare l'identificazione di specie, restituire coleotteri sospetti al laboratorio e metterli a bagno in un agente di compensazione istologico non tossico per un giorno o due per rimuovere la colla dell'intrappolamento dell'insetto. Coleotteri possono quindi essere esaminati sotto un microscopio per dissezione.</li>
</ol>

<ol><li>EAB.info. Emerald Ash Borer Information Network. , Available from:
 <a target="_blank" href="http://emeraldashborer.info/">http://emeraldashborer.info/</a> (2016).</li>
<li>Baranchikov, Y., Mozolevskaya, E., Yurchenko, G., Kenis, M. <a target="_blank" href="http://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1111/j.1365-2338.2008.01210.x/abstract">Occurrence of the emerald ash borer, Agrilus planipennis in Russia and its potential impact on European forestry.</a> OEPP/EPPO Bulletin. 38, 233-238 (2008).</li>
<li>Orlova-Bienkowskaja, M. J. <a target="_blank" href="https://www.researchgate.net/publication/258161566_Ashes_in_Europe_are_in_danger_The_invasive_range_of_Agrilus_planipennis_in_European_Russia_is_expanding">Ashes in Europe are in danger: the invasive range of Agrilus planipennis in European Russia is expanding.</a> Biol. Invasions. 16, 1345-1349 (2014).</li>
<li>Anulewicz, A. C., McCullough, D. G., Cappaert, D. L. <a target="_blank" href="https://www.researchgate.net/publication/280015466_Emerald_Ash_Borer_Agrilus_planipennis_Density_and_Canopy_Dieback_in_Three_North_American_Ash_Species">Emerald ash borer (Agrilus planipennis) density and canopy dieback in three North American ash species.</a> Arbor. Urban For. 33, 338-349 (2007).</li>
<li>Chen, Y., Poland, T. M. <a target="_blank" href="https://www.treesearch.fs.fed.us/pubs/37395">Nutritional and defensive chemistry of three North American ash species: possible roles in host performance and preference by emerald ash borer adults.</a> Grt. Lakes Entomol. 43, 20-33 (2010).</li>
<li>Pureswaran, D. S., Poland, T. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Host+selection+and+feeding+preference+of+Agrilus+planipennis+%28Coleoptera%3A+Buprestidae%29+on+ash+%28Fraxinus+spp%29%5BTitle%5D)+AND+%22Environ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Host selection and feeding preference of Agrilus planipennis (Coleoptera: Buprestidae) on ash (Fraxinus spp).</a> Environ. Entomol. 38, 757-765 (2009).</li>
<li>Rebek, E. J., Herms, D. A., Smitley, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interspecific+variation+in+resistance+to+emerald+ash+borer+%28Coleoptera%3A+Buprestidae%29+among+North+American+and+Asian+ash+%28Fraxinus+spp%29%5BTitle%5D)+AND+%22Environ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Interspecific variation in resistance to emerald ash borer (Coleoptera: Buprestidae) among North American and Asian ash (Fraxinus spp).</a> Environ. Entomol. 37, 242-246 (2008).</li>
<li>Tanis, S. R., McCullough, D. G. <a target="_blank" href="http://www.nrcresearchpress.com/doi/abs/10.1139/x2012-103#.WK3iAjsrLIU">Differential persistence of blue ash and white ash following emerald ash borer invasion.</a> Can. J. For. Res. 42, 1542-1550 (2012).</li>
<li>Tanis, S. R., McCullough, D. G., G, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Host+resistance+of+five+Fraxinus+species+to+Agrilus+planipennis+%28Coleoptera%3A+Buprestidae%29+and+effects+of+paclobutrazol+and+fertilization%5BTitle%5D)+AND+%22Environ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Host resistance of five Fraxinus species to Agrilus planipennis (Coleoptera: Buprestidae) and effects of paclobutrazol and fertilization.</a> Environ. Entomol. 44, 287-299 (2015).</li>
<li>Burr, S. J., McCullough, D. G. <a target="_blank" href="http://www.nrcresearchpress.com/doi/abs/10.1139/cjfr-2013-0415#.WK3iRTsrLIU">Condition of green ash (Fraxinus pennsylvanica) overstory and regeneration at three stages of the emerald ash borer invasion wave.</a> Can. J. For. Res. 44, 768-776 (2014).</li>
<li>Knight, K. S., Brown, J. P., Long, R. P. <a target="_blank" href="https://www.nrs.fs.fed.us/pubs/42821">Factors affecting the survival of ash (Fraxinus spp.) trees infested by emerald ash borer (Agrilus planipennis).</a> Biol. Invasions. 15, 371-383 (2013).</li>
<li>Klooster, W. S. <a target="_blank" href="https://www.researchgate.net/publication/271960197_Ash_Fraxinus_spp_mortality_regeneration_and_seed_bank_dynamics_in_mixed_hardwood_forests_following_invasion_by_emerald_ash_borer_Agrilus_planipennis">Ash (Fraxinus spp.) mortality, regeneration, and seed bank dynamics in mixed hardwood forests following invasion by emerald ash borer (Agrilus planipennis).</a> Biol. Invasions. 16, 859-873 (2014).</li>
<li>Flower, C. E. <a target="_blank" href="https://www.treesearch.fs.fed.us/pubs/47044">Native bark-foraging birds preferentially forage in infected ash (Fraxinus spp.) and prove effective predators of the invasive emerald ash borer (Agrilus planipennis Fairmaire).</a> For. Ecol. Manage. 313, 300-306 (2014).</li>
<li>Gandhi, K. J. K., Herms, D. A. <a target="_blank" href="https://www.researchgate.net/publication/225566518_North_American_arthropods_at_risk_due_to_widespread_Fraxinus_mortality_caused_by_the_Alien_Emerald_ash_borer">North American arthropods at risk due to widespread Fraxinus mortality caused by the alien emerald ash borer.</a> Biol. Invasions. 12, 1839-1846 (2010).</li>
<li>Kovacs, K. F. <a target="_blank" href="https://www.treesearch.fs.fed.us/pubs/34370">Cost of potential emerald ash borer damage in U.S. communities, 2009-2019.</a> Ecol. Econ. 69, 569-578 (2010).</li>
<li>Kovacs, K. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/21546148">The influence of satellite populations of emerald ash borer on projected economic damage in U.S. communities, 2010-2020.</a> Environ. Manage. 92, 2170-2181 (2011).</li>
<li>Herms, D. A., McCullough, D. G. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/24112110">Emerald ash borer invasion of North America: history, biology, ecology, impact and management.</a> Ann. Rev. Entomol. 59, 13-30 (2014).</li>
<li>Herms, D. A., McCullough, D. G., Smitley, D. R., Sadof, C. S., Cranshaw, W. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aHerms%2C+DA+%22Insecticide+options+for+protecting+ash+trees+from+emerald+ash+borer%22">Insecticide options for protecting ash trees from emerald ash borer</a>. , 2nd edition, North Central IPM Center Bulletin. 16(2014).</li>
<li>Mercader, R. J., McCullough, D. G., Bedford, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+comparison+of+girdled+ash+detection+trees+and+baited+artificial+traps+for+Agrilus+planipennis+%28Coleoptera%3A+Buprestidae%29+detection%5BTitle%5D)+AND+%22Environ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">A comparison of girdled ash detection trees and baited artificial traps for Agrilus planipennis (Coleoptera: Buprestidae) detection.</a> Environ. Entomol. 42, 1027-1039 (2013).</li>
<li>McCullough, D. G., Poland, T. M., Anulewicz, A. C., Emerald Cappaert, D. Emerald ash borer (Agrilus planipennis Fairmaire) (Coleoptera: Buprestidae) attraction to stressed or baited ash (Fraxinus spp.) trees. Environ. Entomol. 38, 1668-1679 (2009).</li>
<li>McCullough, D. G., Poland, T. M., Cappaert, D., Anulewicz, A. C. <a target="_blank" href="https://www.researchgate.net/publication/255580297_Emerald_ash_borer_Agrilus_planipennis_attraction_to_ash_trees_stressed_by_girdling_herbicide_or_wounding">Emerald ash borer (Agrilus planipennis) attraction to ash trees stressed by girdling, herbicide and wounding.</a> Can. J. For. Res. 39, 1331-1345 (2009).</li>
<li>McCullough, D. G., Siegert, N. W., Poland, T. M., Pierce, S. J., Ahn, S. Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+trap+type%2C+placement+and+ash+distribution+on+emerald+ash+borer+captures+in+a+low+density+site%5BTitle%5D)+AND+%22Environ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Effects of trap type, placement and ash distribution on emerald ash borer captures in a low density site.</a> Environ. Entomol. 40, 1239-1252 (2011).</li>
<li>Hunt, L. Emerald ash borer state update: Ohio. Proceedings of the Emerald Ash Borer and Asian Longhorned Beetle Research and Technology Development Meeting, , U.S. Department of Agriculture, Forest Service Publication FHTET-2007-04. Morgantown, WV. Cincinnati, OH, 29 Oct. - 2 Nov. 2006 (2007).</li>
<li>Mercader, R. J. <a target="_blank" href="https://www.nrs.fs.fed.us/pubs/53037">Estimating local spread of recently established emerald ash borer, Agrilus planipennis, infestations and the potential to influence it with a systemic insecticide and girdled ash trees.</a> For. Ecol. Manage. , (2016).</li>
<li>Rauscher, K. The 2005 Michigan emerald ash borer response: an update. Proceedings of the Emerald Ash Borer Research and Technology Development Meeting, , U.S. Department of Agriculture, Forest Service Publication FHTET-2005-16. Morgantown, WV. Pittsburgh, PA, 26-27 Sept. 2005. (2005).</li>
<li>Ryall, K. <a target="_blank" href="http://cfs.nrcan.gc.ca/publications?id=36130">Detection and sampling of emerald ash borer (Coleoptera: Buprestidae) infestations.</a> Can. Entomol. 147, 290-299 (2015).</li>
<li>Silk, P. J., Ryall, K. <a target="_blank" href="https://cfs.nrcan.gc.ca/publications?id=35741">Semiochemistry and chemical ecology of the emerald ash borer Agrilus planipennis (Coleoptera: Buprestidae).</a> Can. Entomol. 147, 277-289 (2015).</li>
<li>Poland, T. M. Recent development and advances in survey and detection tools for emerald ash borer. Proceedings of the 27th USDA Interagency Research Forum on Invasive Species, , Annapolis, MD. (2016).</li>
<li>Crook, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+a+host-based+semiochemical+lure+for+trapping+emerald+ash+borer%2C+Agrilus+planipennis+%28Coleoptera%3A+Buprestidae%29%5BTitle%5D)+AND+%22Environ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Development of a host-based semiochemical lure for trapping emerald ash borer, Agrilus planipennis (Coleoptera: Buprestidae).</a> Environ. Entomol. 37, 356-365 (2008).</li>
<li>de Groot, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrophysiological+response+and+attraction+of+emerald+ash+borer+to+green+leaf+volatiles+%28GLVs%29+emitted+by+host+foliage%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Chem.+Ecol%22%5BJournal%5D)">Electrophysiological response and attraction of emerald ash borer to green leaf volatiles (GLVs) emitted by host foliage.</a> J. Chem. Ecol. 34, 1170-1179 (2008).</li>
<li>Poland, T. M., McCullough, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+trap+types+and+colors+for+capturing+emerald+ash+borer+adults+at+different+population+densities%5BTitle%5D)+AND+%22Environ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Comparison of trap types and colors for capturing emerald ash borer adults at different population densities.</a> Environ. Entomol. 43, 157-170 (2014).</li>
<li>Crook, D. J., Mastro, V. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chemical+ecology+of+the+emerald+ash+borer+Agrilus+planipennis%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Chem.+Ecol%22%5BJournal%5D)">Chemical ecology of the emerald ash borer Agrilus planipennis.</a> J. Chem. Ecol. 36, 101-112 (2010).</li>
<li>Rodriguez-Saona, C. <a target="_blank" href="https://www.treesearch.fs.fed.us/pubs/15033">Behavioral and electrophysiological responses of the emerald ash borer, Agrilus planipennis, to induced volatiles of Manchurian ash, Fraxinus mandshurica.</a> Chemoecology. 16, 75-86 (2006).</li>
<li>Crook, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laboratory+and+field+response+of+the+emerald+ash+borer+%28Coleoptera%3A+Buprestidae%29+to+selected+regions+of+the+electromagnetic+spectrum%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Econ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Laboratory and field response of the emerald ash borer (Coleoptera: Buprestidae) to selected regions of the electromagnetic spectrum.</a> J. Econ. Entomol. 102, 2160-2169 (2009).</li>
<li>Francese, J. A. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/20857732">Optimization of trap color for the emerald ash borer, Agrilus planipennis (Coleoptera: Buprestidae).</a> J. Econ. Entomol. 103, 1235-1241 (2010).</li>
<li>Crook, D. J., Khrimian, A., Cossé, A., Fraser, I., Mastro, V. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Influence+of+trap+color+and+host+volatiles+on+capture+of+the+emerald+ash+borer+%28Coleoptera%3A+Buprestidae%29%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Econ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Influence of trap color and host volatiles on capture of the emerald ash borer (Coleoptera: Buprestidae).</a> J. Econ. Entomol. 105, 429-437 (2012).</li>
<li>Emerald Ash Borer Survey Guidelines. , (USDA APHIS) United States Department of Agriculture Animal and Plant Health Inspection Service, USDA APHIS PPQ.. Available from:
 <a target="_blank" href="https://www.aphis.usda.gov/plant_health/plant_pest_info/emerald_ash_b/downloads/survey_guidelines.pdf ">https://www.aphis.usda.gov/plant_health/plant_pest_info/emerald_ash_b/downloads/survey_guidelines.pdf </a> (2013).</li>
<li>Grant, G. G., Poland, T. M., Ciaramitaro, T., Lyons, D. B., Jones, G. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+male+and+female+emerald+ash+borer+%28Coleoptera%3A+Buprestidae%29+responses+to+phoebe+oil+and+%28Z%29-3-hexenol+lures+in+light+green+prism+traps%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Econ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Comparison of male and female emerald ash borer (Coleoptera: Buprestidae) responses to phoebe oil and (Z)-3-hexenol lures in light green prism traps.</a> J. Econ. Entomol. 104, 173-179 (2011).</li>
<li>Cappaert, D., McCullough, D. G., Poland, T. M., Siegert, N. W. <a target="_blank" href="https://www.treesearch.fs.fed.us/pubs/13648">Emerald ash borer in North America: a research and regulatory challenge.</a> Am. Entomol. 51, 152-165 (2005).</li>
<li>Taylor, R. A. J., Bauer, L. S., Poland, T. M., Windell, K. <a target="_blank" href="https://www.nrs.fs.fed.us/pubs/34720">Flight performance of Agrilus planipennis (Coleoptera: Buprestidae) on a flight mill and in free flight.</a> J. Insect Behav. 23, 128-148 (2010).</li>
<li>Mercader, R. J. <a target="_blank" href="http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S037811271500225X">Evaluation of the potential use of a systemic insecticide and girdled trees in area wide management of the emerald ash borer.</a> For. Ecol. Manage. 350, 70-80 (2015).</li>
<li>Mercader, R. J., Siegert, N. W., Liebhold, A. M., McCullough, D. G. <a target="_blank" href="http://www.nrcresearchpress.com/doi/abs/10.1139/X10-201#.WK3oTTsrLIU">Simulating the effectiveness of three potential management options to slow the spread of emerald ash borer, (Agrilus planipennis) populations in localized outlier sites.</a> Can. J. For. Res. 41, 254-264 (2011).</li>
<li>Mercader, R. J., Siegert, N. W., Liebhold, A. M., McCullough, D. G. <a target="_blank" href="http://link.springer.com/article/10.1007/s10144-010-0233-6">Influence of foraging behavior and host spatial distribution on the localized spread of the emerald ash borer, Agrilus planipennis.</a> Pop. Ecol. 53, 271-285 (2011).</li>
<li>Poland, T. M., McCullough, D. G., Anulewicz, A. C. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/21510200">Evaluation of an artificial trap for Agrilus planipennis (Coleoptera: Buprestidae) incorporating olfactory and visual cues.</a> J. Econ. Entomol. 104, 517-531 (2011).</li>
</ol>

Gli autori dichiarano di non avere nessun concorrenti interessi finanziari.

La progettazione e la collocazione di trappole DD sfruttare l'attrazione di coleotteri adulti EAB alle specifiche tonalità di colore e alla luce. Il prisma verde sulla parte superiore del tubo del PVC è più attraente per gli scarabei maschii, che spendono la loro durata di vita nutrendosi di foglie della cenere, come pure di accoppiamento32,36,38,39. Il prisma inferiore viola assicura trappole ...

Il dispositivo di prelievo cenere verde smeraldo (EAB) (dato planipennis Fairmaire) (Coleoptera: Buprestidae) ha ucciso centinaia di milioni di alberi di frassino (Fraxinus spp.), poiché esso è stato identificato nel 2002 nell'area metropolitana di Detroit, Michigan e in vicino Windsor, Ontario, Canada. Diffusione involontaria di frassini infestati, tronchi e legna da ardere, insieme a dispersione naturale di coleotteri, hanno provocato di EAB istituzione in almeno 27 Stati e due province canadesi alla data1. I rapporti recenti indicano che la EAB ha invaso anche Mosca, in Russia, dove sta uccidendo paesaggio cenere alberi2,3, generando ulteriore preoccupazione sul suo potenziale di diffusione in Europa. Variazione interspecifica in preferenza host EAB e resistenza tra cenere nordamericano specie è stato documentato4,5,6,7,8,9, ma praticamente tutte le specie di cenere in Nord America sono suscettibili di essere padroni di casa adatte. Livelli catastrofici della mortalità di cenere sono stati registrati nelle aree del Michigan e Ohio10,11,12, con impatti ecologici ed economici associati13,14, 15,16.
Metodi efficaci per rilevare nuove infestazioni di EAB e monitorare le popolazioni di bassa densità sono aspetti critici della gestione di questo parassita invasivo nelle impostazioni urbane, residenziale e boscose. Diagnosi precoce fornisce tempo di sviluppare una strategia, garantire finanziamenti e realizzare attività per ridurre gli impatti della EAB. Ad esempio, i proprietari di abitazione e i funzionari comunali può iniziare il trattamento ceneri preziose in paesaggi con insetticidi sistemici prima di danni causati dall'aumento densità larvale limiti efficacia di questi prodotti17,18. Allo stesso modo, identificazione di una nuova infestazione e informazioni attendibili sulla distribuzione locale di EAB dà silvicoltori e proprietari di immobili la possibilità di implementare le vendite di legname, conversione di specie o altre attività per ridurre i costi economici o ecologico effetti della mortalità di cenere.
La diagnosi precoce, delimitazione ed efficace monitoraggio delle popolazioni di EAB a bassa densità, tuttavia, rimangono difficili. Indagini visive per identificare frassini recentemente infestate non sono affidabili perché ash raramente presentano segni esterni o sintomi di infestazione di EAB fino a densità larvale costruire a livelli moderati o anche alta4,19. Il mezzo più efficace di rilevazione molto basse densità di EAB richiedono l'uso di cenere cinto rilevamento alberi19,20,21,22. Frassini sono cinto in primavera o inizio estate rimuovendo una banda di corteccia esterna e floema intorno alla circonferenza del tronco, che sottolinea gli alberi, aumentando la loro attrazione per adulti EAB coleotteri. Cinto di alberi possono essere scortecciati in autunno o in inverno per identificare la densità e presenza larvale EAB. Anche se girdled cenere alberi sono stati utilizzati operativamente per EAB rilevamento19,23,24,25, sono problematici. Scortecciatura cinto alberi possono essere laborioso e individuazione di alberi adatti per anulazione può essere difficile, soprattutto nelle aree urbane o residenziale o quando indagini devono essere condotte per più anni19.
Artificiale trappole innescate con attrattivi EAB eliminano molte preoccupazioni associate all'utilizzo di frassini cinto di rilevamento. A differenza di altri parassiti forestali importanti come il bombice dispari (Lymantria dispar L) e alcuni scarabei di corteccia Scolytinae che producono sesso lunga distanza o feromoni di aggregazione, ad oggi, non efficace interurbani feromoni sono stati trovati per EAB. Un feromone sessuale a corto raggio, cis-lattone, può facilitare l'accoppiamento26,27, ma nelle prove sul campo, cis-lattone esche non hanno costantemente accresciuto attrazione EAB a trappole artificiali28. Coleotteri adulti si basano sui composti volatili emessi dal frassino foglie, corteccia e legno per identificare il loro ospite alberi29,30,31 e incontrare potenziali compagni. Diversi composti volatili sono stati valutati per l'utilizzo in esche per attirare EABs adulto a trappole artificiali27,32. Attualmente, trappole utilizzate operativamente per indagini di rilevazione di EAB negli Stati Uniti sono innescate con esche contenenti cis-3-hexenol, una volatile di foglia verde comune prodotta da cenere fogliame30,33. Negli anni precedenti, trappole EAB utilizzate per US indagini hanno anche stato innescate con l'olio di Manuka, che viene estratta dall'albero del tè di Nuova Zelanda (Leptospermum scoparium Forst e Forst) o olio di Phoebe, un Estratto di noce brasiliana (Phoebe porosa Mez.); entrambi contengono diversi sesquiterpeni presenti anche in cenere corteccia29. Problemi con i rifornimenti incoerente di questi oli naturali, tuttavia, hanno limitato il loro uso.
Oltre alle sostanze volatili prodotte da host, coleotteri adulti EAB rispondono agli stimoli visivi, tra cui colore e luce20,32,34,35. Gli studi iniziali hanno mostrato gli adulti EAB, che sono le alette di filatoio relativamente agile, raramente sono stati catturati da imbuto nero trappole innescate con varie sostanze volatili cenere (DGM e TMP, dati non pubblicati). Sono stati valutati altri disegni di trappola, come Croce-a palette trappole, ma l'avversione di EAB scarabei a spazi scuri e ombre limitato l'efficacia di queste trappole.
Sviluppo di un prisma a tre lati, che possa essere rivestito con chiaro intrappolamento insetto colla35 per catturare gli scarabei, era un miglioramento sostanza nella progettazione di trappola. Attrazione di EABs adulto di colore inoltre è stata valutata estesamente nelle prove sul campo e in studi di laboratorio con un retinograph34. Risultati mostrano EAB coleotteri sono sempre attratti da specifiche tonalità di verde e viola32,36. Trappole di prisma fabbricati dalla plastica ondulata colorata ora sono ampiamente usati nelle attività di indagine EAB negli Stati Uniti e Canada.
Perché gli adulti EAB sono fortemente attratti alla luce, i coleotteri sono molto più propensi a colonizzare albero aperto-cresciutos rispetto all'ombra degli alberi20,21. Linee guida per le indagini di rilevamento EAB negli Stati Uniti richieste individuali Prisma trappole per essere sospeso da un ramo di Mid-baldacchino in un albero di cenere che crescono lungo una strada o il bordo di una zona boscosa37. In teoria, questo dovrebbe garantire che almeno un pannello del prisma è esposto alla luce solare. Operativamente, tuttavia, Prisma trappole possono essere parzialmente ombreggiati da rami spioventi adiacenti o nelle vicinanze di alberi. Delle superfici del pannello appiccicoso sono frequentemente soffiate nel fogliame, conseguente foglie aderendo al e oscurando almeno una parte di uno o più pannelli.
Trappole del Double-Decker (DD) sono stati sviluppati per integrare più segnali visivi ed olfattivi per aumentare l'attrazione di EAB coleotteri. Ogni trappola DD è composto da uno verde e uno prisma plastica ondulato viola attaccato ad un tubo di 40 cloruro di polivinile (PVC) di pianificazione di 3 m di altezza (10 cm di diametro), che è supportato facendo scorrere il tubo in PVC un t-post. Utilizzando prismi sia verdi e viola è progettato per ottenere entrambi i sessi di EAB coleotteri32,36,38,39. Inoltre, piuttosto che essere sospesa da un ramo sotto la tettoia di un frassino, le trappole DD sono posizionate in pieno sole, 5-10 m lontano da frassini lungo il bordo di una zona boscosa o in mezzo a dei dispersi, Apri-grown frassini.

<table><tbody><tr><td>Pannello di plastica ondulata verde chiaro: 120 cm x 60 cm</td><td>Great Lakes IPM; www.greatlakesipm.com</td><td>IPM-EAB GR</td><td>Tutte e tre le superfici di ciascun prisma devono essere ricoperte con colla trasparente per insetti, anche se i pannelli sono pre-incollati. I pannelli pre-incollati spesso non sono abbastanza appiccicosi da catturare o trattenere costantemente i coleotteri EAB. Sono disponibili altri prodotti a base di colla trasparente per la cattura degli insetti, ma sono notevolmente più difficili da applicare. &nbsp; &nbsp;</td></tr><tr><td>Pannello in plastica ondulata viola chiaro: 120 cm x 60 cm</td><td>Great Lakes IPM; www.greatlakesipm.com</td><td>IPM-EAB&nbsp; </td><td></td></tr><tr><td>Fascetta LP Large (4): 60 cm con portata di 79 kg</td><td>Cabletiesandmore.com; http://www.cabletiesandmore.com/cableties.php</td><td>CT-24-NU-100PK</td><td></td></tr><tr><td>Fascette medie (4): 20 cm con portata di 22,7 kg</td><td>Cabletiesandmore.com; http://www.cabletiesandmore.com/cableties.php</td><td>CT261</td><td></td></tr><tr><td>Fascetta stringicavo piccola: 10 cm con portata di 8,2 kg</td><td>Cabletiesandmore.com; http://www.cabletiesandmore.com/cableties.php</td><td>CT204</td><td></td></tr><tr><td>busta cis-3-esanolo</td><td>Synergy Semiochemicals; http://www.semiochemical.com/html/buprestids.html)</td><td>3136</td><td>Le esche utilizzate per esche le trappole DD sono costituite da buste contenenti cis-3-esenolo, un composto non tossico presente nelle foglie di frassino. Una tasca è attaccata al bordo inferiore del prisma superiore utilizzando una piccola fascetta. Ogni busta di cis-3-esenolo ha un tasso di rilascio di circa 50 mg/die. Si noti che il cis-3-esenolo è talvolta scritto come Z-3-esenolo.</td></tr><tr><td>Aphinity Hexenol</td><td>Sylvar Technologies</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Lure GLV4 piralide del frassino smeraldo</td><td>Chemtica, Heredia, Costa Rica</td><td></td><td></td></tr><tr><td>cis-3-esanolo sacchetto</td><td>WestGreen Global Technologies; http://www.westgreenglobaltechnologies.com/</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>Colla trasparente per intrappolare insetti &nbsp;</td><td>Hummert Internazionale; http://www.hummert.com/product-details/8196/pestick</td><td>01-3522-1&nbsp; &nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Agente di pulizia istologica Histoclear II</td><td>National Diagnostics; www.nationaldiagnostics.com</td><td>HS-202</td><td>Histoclear II sarà necessario per rimuovere la colla appiccicosa per insetti dai coleotteri sospetti. Sono disponibili altri agenti di pulizia istologica, ma potrebbero non rimuovere la colla e alcuni prodotti dissolvono la plastica, una considerazione importante se si utilizzano contenitori di plastica per immergere i coleotteri.</td></tr><tr><td>Agente di pulizia istologica Histoclear II</td> Great <td>Lakes IPM; www.greatlakesipm.com</td><td>10011</td><td>Histoclear II sarà necessario per rimuovere la colla appiccicosa per insetti dai coleotteri sospetti. Sono disponibili altri agenti di pulizia istologica, ma potrebbero non rimuovere la colla e alcuni prodotti dissolvono la plastica, una considerazione importante se si utilizzano contenitori di plastica per immergere i coleotteri.</td></tr><tr><td>palo a t: 1,5 m</td><td>di fonti</td><td></td> multiple <td>Un palo a t (alto 5 piedi) (1,5 m) viene utilizzato per sostenere il tubo in PVC. &nbsp;</td></tr><tr><td>Puntapala</td><td></td><td>Fonti multiple</td><td>Usa un puntapalo per posizionare i pali a T nel terreno. Non è necessario alcun supporto aggiuntivo.</td></tr><tr><td>Tubo in PVC HDPE (polietilene ad alta densità): 3</td><td></td><td></td><td></td>m x 10 cm di diametro fonti multiple</tr><tr><td>Pinze (rigide)</td><td>fonti</td><td></td> multiple <td>Saranno necessarie pinze (pinzette) per rimuovere i coleotteri sospetti dalle trappole. Le pinze rigide funzionano meglio delle pinze flessibili.</td></tr><tr><td>I guanti in lattice</td><td>sono</td><td></td><td>necessari per applicare la colla per intrappolare gli insetti ai prismi e per controllare le trappole per raccogliere i coleotteri EAB. &nbsp; &nbsp;</td></tr><tr><td>Olio per bambini o salviette per neonati&nbsp;</td><td></td><td></td><td>L'olio per bambini o le salviette per neonati sono utili per rimuovere la colla da intrappolare le mani e le attrezzature.</td></tr><tr><td>Sacchetti per campioni in plastica richiudibili: 5 cm x 8 cm.</td><td>Fonti</td><td></td> multiple <td>I piccoli sacchetti di plastica richiudibili per campioni sono utili per raccogliere i coleotteri dalle trappole. Ogni borsa deve essere etichettata, con etichette adesive prefabbricate o con pennarelli morbidi. &nbsp; &nbsp;</td></tr><tr><td>Le guide per aiutare a distinguere l'EAB dai coleotteri nativi del Nord America sono disponibili sul sito web nazionale dell'EAB all'indirizzo www.emeraldashborer.info.</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

edificio a due piani trappole per individuazione tempestiva di smeraldo cenere borer

Building Double-decker Traps for Early Detection of Emerald Ash Borer

Trivellatore di cenere verde smeraldo (EAB) (dato planipennis Fairmaire), l'insetto più distruttivo di foresta a hanno invaso il Nord America, ha ucciso centinaia di milioni di alberi di frassino (Fraxinus spp.) di foresta e paesaggio. Parecchi disegni artificiale trappola per attirare e catturare EAB coleotteri sono stati sviluppati per rilevare, delineare e monitorare le infestazioni. Trappole del Double-Decker (DD) costituiti da due ondulato plastica prismi, uno verde e uno viola, collegato ad un tubo di cloruro di polivinile (PVC) di 3 m di altezza supportato da un t-post. Il prisma verde nella parte superiore del tubo del PVC è innescato con cis-3-hexenol, un composto prodotto da fogliame di cenere. Le superfici di due prismi sono ricoperte di colla appiccicosa dell'insetto per catturare coleotteri adulti EAB. Double-Decker trappole devono essere collocati vicino agli alberi di frassino ma in aree aperte, esposti al sole. Posizionamento e costruzione trappola a due piani sono presentati qui, insieme a un riepilogo degli esperimenti di campo che dimostrano l'efficacia delle trappole DD a catturare EAB coleotteri. In uno studio recente in siti con relativamente basse densità di EAB, trappole del Double-Decker catturato EAB significativamente più di trappole Prisma verde o viola o verde imbuto trappole, che sono progettati per essere sospeso da un ramo nel baldacchino di alberi di frassino. Una percentuale maggiore di doppio decker trappole erano positivi, vale a dire, catturato almeno un EAB, rispetto al prisma trappole o trappole di imbuto che sono stati appesi in baldacchini di albero di frassino.

In una grande scala studio, tre disegni trappola artificiale anche come cinto frassini sono stati distribuiti sistematicamente, 10-20 m di distanza, attraverso un recente infestate 16 ettari boschiva con una densità molto bassa di EAB25. Disegni di trappola artificiale testato inclusi prismi viola innescate con l'olio di Manuka e sospeso &#62; 3 m di altezza da un ramo nel baldacchino di cenere alberi, trappole DD 3 m di altezza con due pannelli verdi, e DD intrapp...

Trappole efficaci per attirare e catturare il trivellatore di cenere verde smeraldo (EAB) sono un elemento chiave della rilevazione e la gestione di questo parassita invasivo. Trappole a due piani, posizionate in pieno sole nei pressi di frassini, incorporano spunti visivi ed olfattivi ed erano più probabili catturare EAB rispetto agli altri modelli di trappola nelle prove sul campo.

Edificio a due piani trappole per individuazione tempestiva di smeraldo cenere Borer

Emerald ash borer (EAB) (Agrilus planipennis Fairmaire), the most destructive forest insect to have invaded North America, has killed hundreds of millions ...

Il nostro obiettivo è dimostrare come costruire, configurare e monitorare trappole a doppio livello per rilevare o sorvegliare basse densità di Scolite del frassino. Le trappole a doppio livello con esca, se correttamente assemblate e posizionate, si sono dimostrate costantemente più efficaci di qualsiasi altra trappola artificiale nel catturare adulti di Scolite del frassino in popolazioni a bassa densità. Negli ultimi 8 anni abbiamo condotto studi sullo Scolite del frassino con tecniche di trappolaggio in oltre 50 località.E questa rimane la progettazione di trappola artificiale più efficace che abbiamo testato. A dimostrare la procedura oggi saranno James Wieferich e Andrew Tluczek, entrambi tecnici di ricerca nel mio laboratorio. Per iniziare, utilizzando una punta da mezzo pollice, praticare una coppia di fori in ciascun pannello di plastica scanalato, a quattro pollici dal bordo superiore del pannello e a quattro pollici da entrambi i lati della piega sinistra.Preparare successivamente un tubo in PVC lungo tre metri e con un diametro di dieci centimetri. Utilizzando una punta da mezzo pollice, praticare due fori a quattro pollici dalla sommit&agrave; del tubo in PVC e distanti 3,5 pollici tra loro. Allineare i fori in orizzontale.Quindi praticare una seconda coppia di fori, distanti 3,5 pollici, a 52 pollici sotto la sommit&agrave; del tubo e perfettamente allineati con il primo set di fori. A questo punto installare un paletto a T nella posizione desiderata utilizzando un battipalo. Infilare il palo abbastanza in profondit&agrave; in modo che la flangia si trovi appena sotto la superficie del terreno, ma non &egrave; necessario andare pi&ugrave; in profondit&agrave;.Non sono necessari fili guida né supporti aggiuntivi. Successivamente, piegare i pannelli di plastica in terzi. Quindi inserire le due linguette attraverso le fessure.Utilizzare due fascette da otto pollici per fissare insieme i bordi del pannello, formando un prisma a tre lati. Successivamente, far scorrere il prisma sul tubo in PVC e abbassarlo fino al set inferiore di fori. Quindi far passare una fascetta lunga due piedi attraverso il foro superiore sinistro del prisma, attraverso i fori sul tubo in PVC, e fuoriuscire attraverso il foro sul lato destro del prisma.Quindi chiudere e stringere il fascetta, assicurandosi che la fascetta non sia attorcigliata. Prima di procedere, verificare che il prisma sia ben premuto contro il tubo tra i fori. Inserire ora un'altra fascetta lunga attraverso il foro inferiore del prisma, intorno al tubo, e attraverso il foro corrispondente sul lato adiacente del prisma.Serrare questo legaccio come l'altro. Il passaggio successivo consiste nell'attaccare il prisma verde al tubo attraverso il gruppo superiore di fori, utilizzando la stessa tecnica impiegata per fissare il prisma viola. Per applicare la colla trappola per insetti su una trappola, appoggiare la base del tubo in PVC a terra e sostenere la faccia interna del prisma superiore sul palo a T.Per posizionare l'esca nella trappola, cercare un piccolo foro vicino al bordo inferiore di un pannello del prisma verde. Quindi, utilizzando un fascetta da quattro pollici, fissare una busta di SIS 3-Esano al bordo inferiore del prisma verde. Questa esca dovrebbe durare 10 settimane o più.Indossando guanti monouso, prendere due o tre manciate di colla e spalmarle sulla superficie del pannello. Rivestire accuratamente il pannello su tutti e tre i lati; anche i pannelli pre-incollati richiedono spesso colla aggiuntiva per catturare i coleotteri di Agrilus planipennis. Controllare le trappole a intervalli di due o quattro settimane, se possibile, per evitare di perdere i coleotteri catturati che a volte cadono dalle trappole, specialmente in caso di piogge abbondanti.Esaminare tutti e tre i lati del prisma inferiore alla ricerca di coleotteri di EAB. Quindi, indossando guanti di lattice monouso, sollevare il tubo in PVC verticalmente dal T Post e appoggiare la faccia interna del prisma contro il T Post, esponendo un pannello di entrambi i prismi. Successivamente, rimuovere la trappola dal T Post, appoggiarla contro il T Post ed esaminare il prisma verde superiore.Utilizzare pinzette per rimuovere eventuali coleotteri sospetti di Agrilus planipennis dai prismi e posizionarli in un sacchetto di plastica richiudibile per campioni. Mosche, clickidi e vari altri insetti verranno inevitabilmente catturati nelle trappole. È necessario un occhio attento per individuare un coleottero di Agrilus planipennis.Ruotare il tubo per esaminare gli altri pannelli. Una volta completata l'ispezione della trappola, far scivolare nuovamente il tubo sul palo a forma di T. Successivamente, immergere i possibili insetti di Agrilus planipennis in un agente chiarificante istologico non tossico per uno o due giorni per rimuovere la colla trappola per insetti.Quindi, confermare la loro identità al microscopio stereoscopico. Nel complesso, le trappole a doppio livello si sono rivelate le più efficaci nel catturare i coleotteri dell'agrilo del frassino (EAB). In esperimenti successivi, la combinazione verde-violacea si è dimostrata più efficace rispetto alla combinazione viola-violacea.Dopo aver visto questo video, dovresti avere una buona comprensione di come installare e controllare trappole a doppio strato per rilevare e monitorare popolazioni a bassa densità del Coleottero del Frassino. Queste trappole rappresentano un aspetto importante nella gestione del Coleottero del Frassino. Il rilevamento precoce permette di disporre del tempo necessario per sviluppare e attuare strategie di controllo e gestione efficaci contro questo parassita invasivo.

building-double-decker-traps-for-early-detection-of-emerald-ash-borer

Research

Ricerca

JoVE Journal

Environment

Ambiente

Quantitativa real-time PCR (QRT-PCR) è un efficace strumento per diagnosticare i livelli di mRNA nei tessuti degli insetti diversi e fasi di sviluppo. In questo rapporto si mostra l'uso di qRT-PCR per accertare i livelli di mRNA in diversi tessuti larvali e gli stadi di sviluppo delle specie di insetti invasivi, smeraldo piralide cenere.

Analisi dell&#39;espressione genica in Borer Emerald Ash ( Agrilus planipennis) Utilizzando quantitativa Real Time-PCR

Beech malattia corteccia è iniziata dalle attività della cocciniglia di faggio che creano punti di ingresso fungine nella corteccia di alimentazione. Gli alberi che sono resistenti alla cocciniglia sono anche resistenti alle malattie. Qui vi presentiamo il protocollo che abbiamo sviluppato per lo screening individuali faggi per la resistenza scala di faggio.

Una tecnica a Screen Faggio americano per la Resistenza al Beech cocciniglia (<em&gt; Cryptococcus fagisuga</em&gt; Lind.)

Prevenire la colonizzazione dei nidi dell'uccello da invasive api mellifere africanizzate è importante per gli sforzi di conservazione di nidificazione sito uccelli limitato. Forniamo un approccio di gestione integrata delle specie nocive per le api "push" da cassette nido con un insetticida repellente, permetrina, e "pull" loro verso feromone esca trappole sciame.

Un protocollo push-pull per ridurre la colonizzazione di Bird nidi dalle api

Monitoraggio completo della piralide bacca di caffè e le dinamiche di pianta ospite è essenziale per l'aggregazione dei dati a livello di paesaggio per migliorare la gestione di questo parassita invasivo. Qui, presentiamo un protocollo per il monitoraggio scientifico del movimento borer bacca di caffè, infestazione, mortalità, fenologia di pianta del caffè, meteo e gestione delle aziende agricole tramite un dati elettronici mobile applicazione di registrazione.

Il protocollo di Hawaii per monitoraggio scientifico di Coffee Berry Borer: un modello per caffè agroecosistemi in tutto il mondo

Qui, presentiamo un protocollo per studiare la preferenza di impupamento delle larve mature di Ectropis grisescens in risposta a fattori di terreno (ad es., substrato tipo e contenuto di umidità) utilizzando analisi biologiche scelta. Presentiamo anche un protocollo di analisi biologiche no-scelta per determinare i fattori che influenzano i comportamenti di impupamento e sopravvivenza di E. grisescens.

Scelta e analisi biologiche No-scelta per studiare l'impupamento preferenza e il successo di emersione di Ectropis grisescens

Misurazione dei reticoli di emersione degli insetti richiede precisione. I sistemi esistenti sono solo semi-automatizzato e campione di dimensione è limitata. Abbiamo affrontato questi problemi di progettazione di un sistema utilizzando microcontrollori per misurare con precisione il tempo di comparsa di un gran numero di insetti emergenti.

Un sistema preciso ed autonomo per l'individuazione di modelli di emersione degli insetti

Descriviamo come quantificare gli artropodi delle abitazioni delle foglie sigillando le foglie e la fine dei rami in un sacchetto, tagliando e congelando il materiale insaccato e risciacquando il materiale precedentemente congelato in acqua per separare gli artropodi dal substrato per la quantificazione.

Un metodo per quantificare gli artropodi Foliage-Dwelling

Descriviamo un approccio semi-quantitativo di misurazione delle caratteristiche delle comunità di artropodi corticolous (bark-dwelling). Abbiamo piazzato trappole appiccicose fabbricate commercialmente sui boli degli alberi per stimare l'abbondanza, la lunghezza totale (un surrogato alla biomassa), la ricchezza e la diversità di Shannon per il confronto tra le specie arboree.

Quantificare gli artropodi di Corticolous usando trappole appiccicose

Per studiare gli impatti della luce artificiale di notte (ALAN) sugli insetti volanti notturni, il campionamento deve essere limitato alla notte. Il protocollo descrive una trappola di intercettazione di volo automatizzata a basso costo che consente ai ricercatori di campionare in periodi definiti dall'utente con una maggiore replica.

Trappola di intercettazione di volo automatizzata a basso costo per il sottocampionamento temporale di insetti volanti attratti dalla luce artificiale di notte

È stato sviluppato un metodo che utilizza frutta di caffè verde (GF) per testare la tossicità degli insetticidi contro la piralide delle bacche di caffè (CBB). Insetticidi o sostanze tossiche sono stati applicati ai GF disinfettati prima o dopo l'infestazione da CBB. Sono stati valutati la mortalità degli insetti, la repellenza e la capacità riproduttiva, oltre ad altri parametri.

Metodologia per testare agenti di controllo e insetticidi contro la bacca di caffè Borer Hypothenemus hampei

Qui presentiamo un protocollo per ottenere funghi entomopatogeni da una piralide forestale e un modo sostitutivo per valutare le loro attività entomopatogene utilizzando un insetto modello di Coleotteri. Questo metodo è efficiente e conveniente per esplorare le risorse fungine entomopatogene da insetti nocivi che perforano il legno nelle foreste naturali.

Isolamento, identificazione comportamentale e valutazione della patogenicità di funghi entomopatogeni da una piralide forestale

Scopri come costruire trappole a due piani per il monitoraggio dello smeraldo cenere Borer (EAB). Questo metodo dimostra l'assemblaggio corretto e il posizionamento ottimale per catturare efficacemente gli adulti in popolazioni a bassa densità.

Edificio a due piani trappole per individuazione tempestiva di smeraldo cenere Borer

Esplora altri video