Name: Un modello di trasferimento del tessuto libero: The Rat Epigastrica libero Flap (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-01-15T15:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 10 s
Description: Impara la tecnica del lembo epigastrico libero nel ratto per la formazione in microchirurgia ricostruttiva. Questo metodo dettagliato guida i chirurghi nella dissezione vascolare e nelle anastomosi.

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Uno degli autori (Diogo Casal) ha ricevuto una sovvenzione dal programma di Advanced Medical Education, che è sponsorizzato da Fundação Calouste Gulbenkian, Fundação Champalimaud, Ministério da Saúde e Fundação para a Ciência e Tecnologia, Portogallo. Gli autori desiderano ringraziare l&#39;aiuto tecnico di Alberto Severino nella ripresa e di montaggio del video. Gli autori sono anche grato a Mr. Octávio Chaveiro, Marco Costa e il signor Carlos Lopes per il loro aiuto nella preparazione dei provini, presentato in questo documento. Infine, gli autori desiderano ringraziare la signora Gracinda Menezes per il suo aiuto in tutti gli aspetti logistici relativi alla acquisizione e il mantenimento degli animali.

Tutte le procedure che coinvolgono soggetti animali sono stati approvati dal Comitato Istituzionale cura degli animali e uso e Comitato Etico presso Nova University Medical School, Lisbona, Portogallo (08/2012 / CEFCM). 1. procedura chirurgica Note di set-up <ol><li> Utilizzare ratti Wistar adulti del peso di 250-350 g. </li><li> Mantenere i ratti con cibo e acqua ad libitum con cicli di luce-buio 12 hr 7 giorni prima dell&#39;intervento. </li><li> Pesare il ratto per determinare la quantità di anestetico necessaria. </li><li> Autoclavare tutti gli strumenti chirurgici prima dell&#39;intervento chirurgico. </li><li> Layout tutte le forniture e strumenti chirurgici necessari per la procedura (vedere la tabella dei materiali). </li><li> Eseguire l&#39;intervento chirurgico sotto un microscopio operatorio utilizzando strumenti convenzionali e di microchirurgia. </li><li> Posizionare la coperta omeotermi, sonda rettale, e lampada di calore. </li><li> Posizionare uno flaconcino da 20 ml sterilizzata contenente 0,9% di soluzione salina in un bagno d&#39;acqua riscaldata a37 ° C. </li><li> Indossare guanti sterilizzati per disinfettare tutte le superfici della impostazione di funzionamento con una soluzione alcolica. Rimuovere i guanti. </li><li> Posizionare un tappo scrub e maschera. </li><li> Disinfettare le mani con acqua e sapone e indossare un altro paio di guanti sterilizzati. </li><li> Indossare un abito chirurgico sterile. </li></ol> 2. Anestesia e pelle Preparazione NOTA: Hai un aiuto assistente con le seguenti quattro fasi, come un abito sterile e guanti sono indossati. <ol><li> Anestetizzare il topo con una miscela di ketamina e Diazepam data per via intraperitoneale. La dose è di 5 mg / kg di ketamina e 0,25 mg / kg diazepam. Giudicare la profondità dell&#39;anestesia per pizzico punta e per l&#39;osservanza della frequenza respiratoria durante l&#39;intera procedura di 8,14,15,32. </li><li> Applicare un gel oftalmico sopra la superficie anteriore degli occhi per evitare l&#39;abrasione corneale. </li><li> Rimuovere i capelli sulla superficie ventrale dell&#39;addome con una crema depilatoria. Dopo REMOV capellial, togliere la crema depilatoria con soluzione salina calda. </li><li> Spruzzare una notevole quantità di soluzione alcolica sul sito operatorio. Lasciare il prodotto sul sito operatorio e non pulirla. Attendere almeno 15 secondi. Ripetere l&#39;applicazione per 3 volte. Lasciare un tempo di contatto di almeno 2 minuti prima di procedere con la chirurgia. Altre unità di ricerca usano altri protocolli per prevenire l&#39;infezione del sito chirurgico. </li><li> Indossare guanti sterilizzati, inserire 2 teli chirurgici su entrambi i lati del ratto. </li></ol> 3. donatore sito Procedura chirurgica <ol><li> Impostare i confini di un lembo epigastrico che vanno circa 5 cm di lunghezza e 3 cm di larghezza. <ol><li> Con un pennarello pelle chirurgica, tracciare una linea dal processo xifoideo dello sterno alla sinfisi pubica, al fine di segnare la linea mediana sulla superficie ventrale dell&#39;addome del ratto. </li><li> Sul lato sinistro del ratto, utilizzando un marcatore pelle chirurgica, disegnare due linee perpendicolari alla prima linea: dae attraversando immediatamente caudale alla gabbia toracica, e un altro, parallelamente a quest&#39;ultimo e solo cranici all&#39;inguine piegatura (figure 3 e 6). </li><li> Segnare la incisione laterale con un pennarello pelle chirurgica con una linea parallela alla linea mediana e circa 3 cm di distanza da esso. </li></ol></li><li> Flap raccolta <ol><li> Incidere la pelle con una lama di bisturi numero 15 fino a raggiungere il livello di pannicolo carnosus. </li><li> Deeper al piano carnosus pannicolo, rendere l&#39;incisione con un bisturi elettrico fino a raggiungere la fascia muscolare. </li><li> Sollevare il lembo da mediale a laterale e dal cranio al caudale, esponendo peduncolo del lembo. </li><li> legare con cura e dividono i vasi perforanti in arrivo dallo strato muscolare profondo e andare in profondità la superficie del lembo. </li><li> Posizionare un divaricatore sotto l&#39;aspetto caudale del lembo e sezionare peduncolo del lembo cautela per prendere in giro delicatamentevia i tessuti sciolti circostanti (Figura 7). </li><li> Legare e dividere il laterale dell&#39;arteria circonflessa femorale e la vena con 9/0 in nylon per le legature. </li><li> Isolare l&#39;arteria femorale e la vena. Quando presenti, legare (con 9/0 in nylon) e dividere i rami di queste navi ai muscoli adiacenti. </li><li> In primo luogo, utilizzare un morsetto doppio vascolare per serrare l&#39;aspetto prossimale della vena femorale. Successivamente fissare il suo aspetto distale. Quindi, serrare la parte distale dell&#39;arteria femorale e infine il suo aspetto prossimale. </li><li> Fissare la porzione distale dell&#39;arteria femorale e infine il suo aspetto prossimale. </li><li> Inserire un singolo morsetto vascolare nella vena epigastrica superficiale e un&#39;altra in arteria epigastrica superficiale. Utilizzare un paio di forbici microchirurgia dritti per tagliare l&#39;arteria epigastrica superficiale e vena loro origine e la terminazione, rispettivamente. </li><li> Abbondantemente irrigare il lume di queste navi con soluzione fisiologica eparinizzata 10 UI / ml, Fino a quando non sangue o residui sono visti all&#39;interno del lume delle navi 33. </li><li> Tirare e tagliare un polsino di avventizia vicino ai siti di sezione vascolari. </li><li> Trasferire il lembo epigastrico al collo con pinze di Addison (Figura 8). </li><li> Chiudere il sito donatore con sottocuticolare interrotti 5/0 punti di sutura riassorbibili. </li><li> Chiudere la pelle con interrotti 5/0 punti di sutura in nylon. </li></ol></li></ol> 4. Destinatario del sito Procedura chirurgica <ol><li> L&#39;esposizione delle navi destinatario del sito <ol><li> Con un pennarello pelle chirurgica, tracciare una linea sul bordo mediale del muscolo sternocleidomastoideo sinistro (SCM). </li><li> Con un pennarello pelle chirurgica, disegnare un&#39;altra linea immediatamente cranica e parallela alla clavicola sinistra. Queste due linee devono convergere in corrispondenza del giunto sterno-clavicolare sinistra. </li><li> Incidere la pelle con una lama di bisturi numero 15. </li><li> Utilizzare un bisturi elettrico per tagliare il subcutaneous tessuto. </li><li> Utilizzare un paio di forbici dissezione per skeletonize la vena giugulare esterna laterale al muscolo SCM. </li><li> Isolare e legare tributari del giugulare esterna in questo (Figura 9). </li><li> Legare la vena giugulare esterna appena sotto la mandibola con una sutura in nylon 9/0. </li><li> Posizionare un morsetto venoso sotto quest&#39;ultimo legatura e tagliare la giugulare esterna della vena con un paio di forbici microchirurgia diritte. </li><li> Lavare il lume della vena con soluzione fisiologica eparinizzata in una concentrazione di 10 UI / ml. </li><li> Isolare il margine mediale del muscolo SCM e ritrarre questo muscolo laterale, esponendo così l&#39;arteria carotide e il nervo vago (Figura 10). </li><li> Fare un incisione trasversale nel terzo medio del muscolo SCM utilizzando il bisturi elettrico. </li><li> Inserire un divaricatore tra la superficie profonda del muscolo SCM ei muscoli cinghia. </li><li> Tease via il nervo vago dalla carotidearteria, facendo attenzione a non danneggiare queste strutture. </li></ol></li><li> anastomosi vascolari <ol><li> Posizionare un morsetto doppia arteriosa nella carotide. </li><li> Posizionare un nylon punto 9/0 nella parte laterale della carotide, e utilizzare questo punto per tirare questa parte della parete del vaso. </li><li> Utilizzare un paio di forbici microchirurgia rette per produrre un&#39;apertura in questa regione della parete del vaso. </li><li> Utilizzando INTERROTTA 10/0 Nylon suture eseguire una anastomosi termino-laterale tra l&#39;arteria epigastrica superficiale del lembo e l&#39;arteria carotidea a livello dell&#39;apertura carotide recentemente creata. </li><li> Avvicinatevi al moncone prossimale della vena giugulare esterna e la vena epigastrica superficiale e ispezionare il calibro di questi due vene. <ol><li> Se la discrepanza in termini di dimensioni è da lieve a moderata, dilatare il lume della fine taglio della vena epigastrica superficiale con pinze di dilatazione. </li><li> Se la differenza di calibro è molto pronounced, oltre a pinze dilatazione, smusso l&#39;estremità della vena epigastrica superficiale in un angolo di 30 a 45 °. </li><li> Eseguire l&#39;anastomosi venosa, utilizzando interrotto 11/0 punti di sutura in nylon. </li></ol></li><li> Rimuovere le singole fascette poste sulle navi della falda. </li><li> Rimuovere la doppia pinza posizionato nella vena femorale. </li><li> Rimuovere la doppia pinza collocato in arteria femorale. </li></ol></li><li> Valutare la pervietà e la competenza di anastomosi <ol><li> Verificare arteria e vena del lembo sono completamente dilatata e nessun sanguinamento significativo si osserva dopo 3 min di rimuovere le pinze vascolari (Figura 11). <ol><li> Se c&#39;è sanguinamento durante questo periodo di posizionare una garza salina umida sopra l&#39;anastomosi e applicare una leggera pressione. </li><li> Se il sanguinamento da anastomosi non si ferma dopo 3 minuti, aggiungere ulteriori 11/0 Nylon interrotto suture, dopo il posizionamento morsetto vascolare, a seconda delle necessità. </li></ol></li><li> Attendere 10 min con il lembo collegato ai vasi del collo e avvolto da una garza inumidito con soluzione salina calda. </li><li> Valutare la perfusione e il collo ferita emostasi del lembo. Ispezionare le anastomosi per i segni di emorragia, trombosi o di trazione eccessiva. </li><li> Fissare il lembo nel sito ricevente a partire da 5/0 sottocuticolare punti staccati. </li><li> Chiudere la pelle con 5/0 Nylon interrotto suture (Figura 12). </li></ol></li></ol> Cura 5. post-operatoria <ol><li> Lasciare il ratto di recuperare all&#39;interno della sua gabbia individuale in decubito laterale destro. Tenere il caldo gabbia mettendo un rilievo di calore elettrico impostato sul basso sotto. Posizionare un panno luce tra la gabbia e il rilievo di calore elettrica per evitare l&#39;ipertermia. </li><li> Guarda l&#39;animale continuamente ruotandola verso decubito laterale opposta ogni 5 minuti, fino a quando non riprende decubito sternale ed è in grado di deambulare. </li><li> Casa i ratti singolarmente fino rimozione tha punti di sutura chirurgici due settimane dopo l&#39;intervento chirurgico. </li><li> Dare un antinfiammatorio farmaco 1 mg / kg per via sottocutanea una volta al giorno per 3 giorni dopo l&#39;intervento, per l&#39;analgesia postoperatoria. </li></ol> 6. Valutazione Flap <ol><li> Presentare un trattamento alimentare sopra la testa del topo e di valutare la redditività di falda mediante ispezione visiva. </li><li> Se l&#39;esposizione è sufficiente utilizzare il passaggio precedente, un assistente applicando tocco delicato sulla regione interscapolare del ratto, esaminando il lembo. </li><li> Usare la fotografia digitale e il software ImageJ per valutare quantitativamente le aree di deiscenza della ferita, lembo epidermolisi, iperemia, congestione e / o necrosi, come spiegato in dettaglio da Trujillo et al. 15. </li></ol>

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</ol>

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

L'aspetto più importante per ottenere una sopravvivenza costante del lembo è prestare attenzione ai dettagli nelle varie fasi della tecnica microchirurgica. Ad esempio, per ottenere una buona visualizzazione dei vasi, degli strumenti chirurgici e delle sottili linee di sutura, è molto utile posizionare sotto i vasi, uno sfondo plastico colorato sterilizzato. Come molti ricercatori, preferiamo utilizzare frammenti sterilizzati di palloncini gialli o verdi (Figure 7 e 11). Questo sfondo offre l'ulteriore vantaggio di ridurre al minimo l'aderenza delle linee di sutura alle strutture adiacenti, il che a volte porta alla necessità di tirare la linea di sutura con troppa tensione, che a sua volta può portare a lacerazione vascolare. Infine, l'uso di un fondo ha l'ulteriore vantaggio di diminuire la probabilità di trascinare inavvertitamente potenziali detriti di tessuto trombogenico nel sito dell'anastomosi.
Considerando che i vasi del lembo sono molto sottili e fragili, è importante non pizzicare l'intera larghezza dei vasi, al fine di evitare lesioni intimali che, a loro volta, porteranno a trombosi intravascolare e insufficienza del lembo. Per evitare lesioni involontarie sia ai vasi del lembo che ai vasi del sito ricevente, è più sicuro legare e dividere liberamente gli affluenti vicini, il che consentirà una più facile manipolazione di questi vasi.
Prima di iniziare le anastomosi, è fondamentale posizionare i vasi nella loro posizione definitiva, cercando di prevenire l'attorcigliamento vascolare o la torsione del peduncolo del lembo. Dato il piccolo calibro e la consistenza delicata dei vasi, questi sono spesso difficili da escludere in modo inequivocabile. Un trucco utile è quello di fissare il lembo nella sua posizione finale con 3 punti posizionati lontano dal sito delle anastomosi. Successivamente, in caso di dubbio, aprire temporaneamente le pinze vascolari posizionate sul peduncolo del lembo e riempire il lume dei vasi con soluzione fisiologica eparinizzata in una concentrazione di 10 UI/mL fino a quando non si ingrossano. Questo porta i vasi ad assumere la configurazione che presenteranno dopo essere stati perfusi dal sangue, come quando le pinze vengono rimosse dopo il completamento delle anastomosi.
Inoltre, è di fondamentale importanza rilevare eventuali bolle d'aria, anche se piccole, all'interno dei vasi durante l'intera procedura e in particolare prima di legare i punti finali. Se queste bolle sono distanti dalla sezione vascolare, i vasi possono essere munti delicatamente con una pinza microchirurgica. Se si trovano in prossimità dei siti anastomotici, la semplice irrigazione porta le bolle meno dense ad essere facilmente espulse dal lume vascolare. Il mancato riconoscimento della presenza di bolle d'aria può causare ischemia e necrosi irreversibili dei lembi, senza dubbio a causa del calibro fine dei vasi a lembo. 
Inoltre, non si sottolineerà mai abbastanza la necessità di una cura meticolosa durante il passaggio e la legatura dei punti, al fine di: includere i tre strati dei vasi (intima, media e avventizia); ottenere una buona eversione dei vasi per garantire un adeguato contatto intimale, che è vitale per la sigillatura dell'anastomosi e la ricrescita endoteliale; evitare il contatto vascolare allentato, che si tradurrà in incompetenza anastomotica, cioè sanguinamento; ed evitare di afferrare troppo tessuto vascolare, che porterà ad anastomosi, stenosi e propensione alla trombosi, che a sua volta si tradurrà in congestione venosa o scarsa perfusione del lembo, se la vena o l'arteria sono coinvolte, rispettivamente.
Infine, è fondamentale garantire una perfetta emostasi, durante l'intera procedura, soprattutto quando si solleva il lembo nella sua superficie profonda. In caso contrario, è probabile che ne derivi la formazione di ematomi e la morte dei ratti.
Modifiche e risoluzione dei problemi della tecnica
Gli autori hanno osservato che praticare un'incisione trasversale nella porzione centrale dell'SCM utilizzando un cautere elettrico, non solo consente una migliore esposizione dell'arteria carotide, ma riduce anche al minimo il rischio di tensione eccessiva sulla futura anastomosi arteriosa.
Un altro consiglio tecnico importante è quello di iniziare l'anastomosi dalla parete posteriore dei vasi, in modo da ridurre al minimo il rischio di impigliarsi involontariamente in questa parete quando si posizionano i punti nella parete frontale più facilmente esposta. Se la parete posteriore è suturata alla faccia anteriore dell'anastomosi, la mancanza di pervietà vascolare risulterà quasi invariabilmente o immediatamente a causa di motivi meccanici o dopo solo poche ore a causa della trombosi8. 
Se le anastomosi dei vasi epigastrici del ratto sono considerate troppo impegnative dal punto di vista tecnico a causa del piccolo calibro di questi vasi, i vasi femorali possono essere legati distalmente all'origine dei vasi epigastrici e utilizzati come peduncolo vascolare del lembo epigastrico. In questo modo verranno utilizzati vasi più grandi (l'arteria femorale ha un calibro da 1,0 a 1,2 mm e la vena femorale ha un calibro da 1,2 a 1,5 mm). Inoltre, sezionando e legando gli altri affluenti dei vasi femorali, si può ottenere una lunghezza peduncolare vascolare di oltre 2 cm, che faciliterà l'insetting del lembo18,34,35. 
Riproducibilità
La nostra esperienza di oltre dieci anni nell'uso di questo lembo per scopi didattici e di ricerca suggerisce fortemente che il lembo epigastrico di ratto è un modello riproducibile di trasferimento di tessuto libero11,13,17,18,26. Può essere facilmente incorporato nei corsi di microchirurgia, in quanto è un buon modello di insegnamento e formazione per i tirocinanti di microchirurgia11,13,17,18,26. Nella nostra esperienza, anche se tecnicamente impegnativo all'inizio per il principiante in microchirurgia, dopo un po' di allenamento, il lembo epigastrico libero può essere trasferito con successo al collo del ratto con necrosi successiva minima o nulla nel 70-80% dei casi. Questi risultati concordano con quelli generalmente riportati in letteratura13,18,36. 
Importanza rispetto ai metodi esistenti
Numerosi lembi liberi sono stati descritti nel ratto10,16,18,37-39. I più comunemente usati per scopi didattici e di ricerca sono stati il lembo miocutaneo trasverso del retto dell'addome , il lembo muscolare anteriore del latissimus dorsi e del dentato , il modello di reimpianto degli arti posteriori e il lembo epigastrico (inguine)18,35. Questi lembi sono stati favoriti, a causa della loro anatomia coerente e del peduncolo vascolare di grandi dimensioni. Il lembo epigastrico è probabilmente quello associato a una minore morbilità del sito donatore, poiché viene sezionato sopra la fascia muscolare18. Inoltre, il lembo epigastrico, descritto nel 1967, è stato il primo lembo ad essere descritto nei ratti34,35. Ciò avvenne solo 4 anni dopo la prima descrizione di un lembo sperimentale in un animale da parte di Goldwyn. È interessante notare che questo lembo era un lembo inguinale nel cane34. 
Limiti della tecnica
I due principali limiti di questo modello sono la necessità di competenze microchirurgiche per eseguire l'intervento chirurgico e la presenza di necrosi significative nel 20-25% dei casi, secondo diversi autori13,18,36. Un altro potenziale limite del modello qui presentato è l'autocannibalismo del lembo. Tuttavia, come gli autori sopra, questo è un reperto raro che si verifica quasi solo nei casi di necrosi totale del lembo.
Applicazioni future della tecnica
Il lembo libero epigastrico di ratto può essere utilizzato in studi sperimentali di perfusione tissutale, riparazione tissutale e infezione chirurgica della ferita40,41. I suoi recipienti nutritivi sono particolarmente adatti per l'iniezione intravascolare di soluzioni contenenti sostanze di interesse, vale a dire farmaci, vettori virali o liposomi, che produrranno per lo più un effetto locale o regionale30,31. Inoltre, sotto il lembo, possono essere posizionati anche agenti patogeni, corpi estranei, semi radioattivi o sostanze chimiche, imitando diversi processi patologici e potenziali trattamenti30,31.

Trasferimento tessuto libero è stato utilizzato sempre più nella pratica clinica per ricostruire i tessuti mancanti dal 1970 1-5. Questo ha permesso la ricostruzione di difetti complessi e altrimenti incurabili derivanti da tumore estirpazione, traumi, infezioni, malformazioni o ustioni 1-7. Lembi liberi di questo tipo sono particolarmente utili per ricostruire regioni anatomiche altamente complessi, come quelli della testa e del collo, la mano, il piede, e il perineo 1,4. Tuttavia, ancora oggi gli allievi chirurgici sono spesso scoraggiati dalla complessità delle diverse fasi del processo di raccolta, trasferimento e insetting un lembo libero con l&#39;uso di tecniche e strumenti 8,9 microchirurgia. Inoltre, è ampiamente accettato che per diventare un abile microsurgeon, vasta pratica sperimentale in un modello animale è obbligatoria 4,8-13. la ricerca, inoltre, di base e traslazionalenella zona di trasferimento panno che è di grande potenzialità 8,14-16 clinica. Nonostante ciò, i ricercatori sono spesso dissuasi dal utilizzando modelli di microchirurgia di trasferimento dei tessuti a causa della mancanza di informazioni riguardanti gli aspetti tecnici coinvolti nelle procedure operative 4,8-14. Il ratto è un buon modello animale per la ricerca e la formazione microchirurgico, in quanto è relativamente poco costoso, facile da mantenere, e suscettibili di frequenti manipolazioni 8,11,13,14,17,18. Anche se diversi lembi ossei liberi, muscoli e la pelle sono stati descritti nel ratto 18-24, il lembo fasciocutaneo epigastrica libero è il più utilizzato a scopo didattico 9,12,13,18,25. Questo lembo libero è stato descritto nel 1967 da Strauch e Murray e ha guadagnato crescente popolarità da quando, a causa di diversi fattori, vale a dire l&#39;anatomia costante vascolare, relativa facilità di dissezione, vasi di nutrienti consistenti, e la ridondanza della pelle nella zona donatrice, which permette la chiusura primaria del difetto derivante dalla elevazione del lembo 4,9-11,13,17,18,25-28. Flap Anatomia e Istologia Il lembo epigastrica è fornita dal arteria epigastrica superficiale e vena (Figura 1). Questi vasi provengono da e scarico nell&#39;arteria femorale e la vena rispettivamente. Mediamente il calibro della vena epigastrica superficiale è di 0,6 a 0,8 mm, in contrasto con i 0,3 a 0,5 mm di arteria epigastrica superficiale (Figura 2) 17,18. L&#39;arteria epigastrica superficiale emette due rami principali: una laterale e un ramo mediale che a sua volta dividere più volte, originari reti capillari che forniscono la maggior parte del tegumento della regione epigastrica. Questi capillari scaricano nelle affluenti delle vene epigastrici superficiali che hanno un percorso parallelo all&#39;albero arteriosa (Figura 2) 13,17,18. Il diagramma della figura 3 representa la regione della parete addominale ventrolaterale fornite dai vasi epigastrici superficiali che possono essere mobilizzati nel lembo epigastrico. Questo lembo può essere fino a 5 cm di lunghezza e 3 cm di larghezza 13,17,18. Istologicamente, il lembo è composto dal tegumento che copre le ventrolateral muscoli della parete addominale (Figura 4) 13,17,18. Esso contiene uno strato superficiale della pelle, formata dal derma e dell&#39;epidermide. Sotto la pelle vi è uno strato di tessuto grasso chiamato pannicoli adiposi. Sotto questo strato c&#39;è un altro strato di muscolo striato noto come pannicolo carnosus 18,28,29. Sotto la carnosus pannicolo c&#39;è tessuto areolare sciolto, che è superficiale alla fascia profonda che copre i muscoli addominali più grandi. Quindi, il lembo è un blocco composto di tessuti, contenente tutti questi strati, tranne per la fascia muscolare profondo (Figura 5) 13,17,18,27-31.

<table><tbody><tr><td>Skin Skribe Pennarello Chirurgico</td><td>Moore Medical</td><td>31456</td><td>https://www.mooremedical.com/index.cfm?/Skin-Skribe-Surgical-Skin-Marker/ & PG=CTL&CS= HOM& FN=Dettaglio Prodotto& PID=1740& spx=1</td></tr><tr><td>Micro divaricatore</td><td>Strumenti per le scienze</td><td>Fini RS-6540</td><td>http://www.finescience.de</td></tr><tr><td>Pinze Graeffe 0,8 mm punte curve</td><td>Strumenti per le scienze Fini 11052-10</td><td></td><td>http://www.finescience.de</td></tr><tr><td>Morsetti Acland</td><td>Strumenti per le scienze Fini 00398</td><td>V</td><td>http://www.merciansurgical.com/aclandclamps.pdf</td></tr><tr><td>Applicatore per morsetti</td><td>Strumenti per le scienze fini</td><td>CAF-4</td><td>http://www.merciansurgical.com/acland-clamps.pdf</td></tr><tr><td>Cauteria ad alta temperatura</td><td>Fine Science Tools</td><td>AA03</td><td>http://www.boviemedical.com/products_aaroncauteries_high.asp</td></tr><tr><td>Dilatatori per microvasi 11 cm Punte da 0,3 mm 00124</td><td>Fine Science Tools</td><td>D-5a.2</td><td>http://www.merciansurgical.com</td></tr><tr><td>Micro Jewellers Pinze 11 cm angolate 00109</td><td>Fine Science Tools</td><td>JFA-5b</td><td>http://www.merciansurgical.com</td></tr><tr><td>Micro Jewellers Pinze 11 cm dritto 00108</td><td>Fine Science Tools</td><td>JF-5</td><td>http://www.merciansurgical.com</td></tr><tr><td>Acland Single Clamps B-1V (Coppia)</td><td>Fine Science Tools</td><td>396</td><td>&nbsp; http://www.merciansurgical.com</td></tr><tr><td>Micro Forbici Manici Rotondi 15 cm Dritti</td><td>Strumenti di Fine Science</td><td>67</td><td>&nbsp; http://www.merciansurgical.com</td></tr><tr><td>Forbici Iris 11,5 cm Curve EASY-CUT</td><td>Fine Science Tools</td><td>EA7613-11</td><td>&nbsp; http://www.merciansurgical.com</td></tr><tr><td>Forbici Mayo 14 cm Lame dritte smussate EASY-CUT</td><td>Fine Science Tools</td><td>EA7652-14</td><td>&nbsp; http://www.merciansurgical.com</td></tr><tr><td>Portaaghi Derf 12 cm TC</td><td>Fine Science Tools</td><td>703DE12</td><td>&nbsp; http://www.merciansurgical.com</td></tr><tr><td>Monosyn 5-0</td><td>B.Braun</td><td>15423BR</td><td>http://www.mcfarlanemedical.com.au/ 15423BR/ SUTURE-MONOSYN-5_or_0-16MM-70CM-(C0023423)-BOX_or_36/pd.php</td></tr><tr><td>Ethilon 5-0</td><td>Ethicon</td><td>W1618</td><td>http://www.farlamedical.co.uk/category_Ethilon-Suture-1917/Ethilon-Sutures/</td></tr> <tr><td>Dafilon 10-0</td><td>B.Braun</td><td>G1118099</td><td>http://www.bbraun.com/cps/rde/xchg/bbraun-com/hs.xsl/products.html?prid=PRID00000816</td></tr><tr><td>Veet Crema Depilatoria per Pelli Sensibili Aloe Vera e Vitamina E 100 ml</td><td>Veet</td><td></td><td>http://www.veet.co.uk/products/creams/creams/veet-hair-removal-cream-sensitive-skin/</td></tr> <tr><td>Instrapac - Pinza dentata Adson (Extra Fine)</td><td>Fine Science Tools</td><td>7973</td><td>http://www.millermedicalsupplies.com</td></tr><tr><td>Ago Castroviejo supporti</td><td>Fine Science Tools</td><td>12565-14</td><td>http://s-and-t.ne</td></tr><tr><td>Pinza per zanzare diritta</td><td>Fine Science Tools</td><td>91308-12</td><td>http://www.finescience.de</td></tr><tr><td>Disinfettante per la pelle Cutasept F</td><td>Bode Chemie</td><td></td><td>http://www.productcatalogue.bode-chemie.com/products/skin/cutasept_f.php</td></tr><tr><td>Lacri-lube Unguento per gli occhi 5g</td><td>Express Chemist</td><td>LAC101F</td><td>http://www.expresschemist.co.uk/lacri-lube-eye-ointment-5g.html</td></tr><tr><td>Soluzione salina normale per irrigazione</td><td>Hospira, Inc.</td><td>0409-6138-22</td><td>http://www.hospira.com/en/search?q=sodium+chloride+irrigation%2C+usp&fq=contentType%3AProducts</td></tr><tr><td>Soluzione di eparina sodica (5.000 UI/ml)</td><td>B.Braun</td><td></td><td></td></tr><tr><td>http://www.bbraunusa.com/products.html?prid=PRID00006982 Meloxicam Metacam</td><td>Boehringer Ingelheim</td><td></td><td>http://www.bi-vetmedica.com/species/pet/products.html</td></tr><tr><td>Lampada termica HL-1</td><td>Harvard Apparecchio</td><td>727562</td><td>https://www.harvardapparatus.com/webapp/wcs/stores/servlet/ haisku3_10001_11051_39108_-1_ HAI_ProductDetail_N_ 37610_37611_37613</td></tr><tr><td>Sistema di coperte omeotermiche con sonda flessibile</td><td>Apparecchio Harvard</td><td>507220F</td><td>https://www.harvardapparatus.com/webapp/wcs/stores/servlet/ haisku3_10001_11051_39108_-1_ HAI_ProductDetail_N_ 37610_ 37611_37613</td></tr><tr><td>Sterilizzatore a calore secco</td><td>Quirumed</td><td>2432</td><td>http://www.quirumed.com/pt/material-de-esterilizac-o/esterilizadores</td></tr><tr><td>Teli chirurgici</td><td>Barriera</td><td>800430</td><td>http://www.molnlycke.com/surgical-drapes/</td></tr> <tr><td>Guanti chirurgici Biogel</td><td>Medex Supply</td><td>30465</td><td>https://www.medexsupply.com</td></tr><tr><td>Microscopio operatorio</td><td>Leica Surgical Microsystems</td><td>10445319</td><td>http://www.leica-microsystems.com/products/surgical-microscopes/</td></tr></tbody></table>

un modello di trasferimento del tessuto libero: the rat epigastrica libero flap

A Model of Free Tissue Transfer: The Rat Epigastric Free Flap

Il trasferimento di tessuti libero è stato sempre più utilizzato nella pratica clinica a partire dagli anni '70, consentendo la ricostruzione di difetti complessi e altrimenti non trattabili derivanti dall'estirpazione del tumore, traumi, infezioni, malformazioni o ustioni. I lembi liberi sono particolarmente utili per ricostruire regioni anatomiche molto complesse, come quelle della testa e del collo, della mano, del piede e del perineo. Inoltre, la ricerca di base e traslazionale nell'area del trasferimento di tessuti liberi è di grande potenziale clinico. Ciononostante, i tirocinanti e i ricercatori chirurgici sono spesso scoraggiati dall'utilizzare modelli microchirurgici di trasferimento tissutale, a causa della mancanza di informazioni sugli aspetti tecnici coinvolti nelle procedure operatorie. Lo scopo di questo articolo è quello di presentare i passaggi necessari per trasferire un lembo libero epigastrico fasciocutaneo al collo nel ratto.
Questo lembo si basa sull'arteria e sulla vena epigastrica superficiale, che origina e drena rispettivamente dall'arteria femorale e dalla vena. In media il calibro della vena epigastrica superficiale è compreso tra 0,6 e 0,8 mm, in contrasto con gli 0,3-0,5 mm dell'arteria epigastrica superficiale. Istologicamente, il lembo è un blocco composito di tessuti, contenente pelle (epidermide e derma), uno strato di tessuto adiposo (pannicolo adiposo), uno strato di muscolo striato (pannicolo carnoso) e uno strato di tessuto areolare lasso.
In sintesi, il lembo epigastrico viene sollevato sui suoi vasi peduncolari che vengono poi anastomizzati alla vena giugulare esterna e all'arteria carotide sulla superficie ventrale del collo del ratto. Secondo la nostra esperienza, questo modello garantisce la sopravvivenza completa di circa il 70-80% dei lembi epigastrici trasferiti nella regione del collo. Il lembo può essere valutato ogni volta che è necessario mediante ispezione visiva. Pertanto, gli autori ritengono che questo sia un buon modello sperimentale per la ricerca e la formazione microchirurgica.

Secondo l&#39;esperienza degli autori di più di dieci anni con il lembo libero epigastrica come modello di trasferimento del tessuto libero sia nel contesto di corsi di microchirurgia e per scopi di ricerca, il tasso di sopravvivenza lembo dipende in qualche modo sulla manualità e l&#39;esperienza del chirurgo . In generale, se gli aspetti tecnici sopra descritti sono presi in considerazione, un tasso di sopravvivenza quasi completa (&lt;10% di necrosi lembo) di circa il 70% dei lembi è prevedibile. Circa il 10% dei lembi presentano necrosi parziale (10 al 50%). Circa il 20% dei lembi soffre necrosi completa. Un tasso di sopravvivenza quasi completo 80% è stato ottenuto negli ultimi 20 procedure eseguite dal primo autore (DC) (Figura 13). Durante i primi due giorni dopo l&#39;intervento, il lembo epigastrico libero è spesso edematosa e presenta un certo grado di congestione venosa. Questi di solito both abbassarsi gradualmente tra 3 e 5 giorni dopo l&#39;intervento chirurgico. In genere, durante la prima settimana, il topo rimuove la maggior parte dei punti esterni e parte delle suture sottocuticolare, spesso con conseguente aree sparse di lieve deiscenza della ferita (Figura 14). Dopo il giorno 10, i capelli comincia lentamente a crescere sulla superficie del lembo. Alla fine del primo mese dopo l&#39;intervento chirurgico, il lembo viene solitamente coperta con i capelli leggermente più corta rispetto alla pelle adiacente. Due mesi dopo l&#39;intervento, la presenza del lembo viene annunciata da un leggero grumo, e da una cicatrice relativamente poco attorno margini del lembo (Figura 14). il cannibalismo automatica del lembo è un dato infrequente che, nell&#39;esperienza degli autori, si verifica quasi esclusivamente nei casi di necrosi totale lembo. <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/55281/55281fig1.jpg" /> Figura 1: anatomia vascolare del fla libera epigastricap. Questa fotografia mostra la regione epigastrica sinistra di un ratto precedentemente iniettati con una soluzione di lattice rosso nel sistema arterioso e con una soluzione di lattice blu nel sistema venoso. È possibile osservare che la regione epigastrica riceve un apporto di sangue assiale dalla arteria epigastrica superficiale e vena. Questi vasi provengono da e scarico nell&#39;arteria femorale e la vena rispettivamente. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55281/55281fig1large.jpg" target="_blank">Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a> <img alt="figura 2" src="/files/ftp_upload/55281/55281fig2.jpg" /> Figura 2: scansione di immagini al microscopio elettronico di un cast corrosione dei vasi epigastrici superficiali mostra la microscopica afflusso di sangue vascolare al lembo libero epigastrica. Questa immagine microscopio elettronico a scansione di un cast corrosione della superficiali vasi epigastrici di ratto dimostra che la vena ha un calibro più grande che l&#39;arteria. Mediamente il calibro della vena epigastrica superficiale è di 0,6 a 0,8 mm, rispetto ai 0,3 a 0,5 mm di arteria epigastrica superficiale. Questa immagine mostra anche che l&#39;arteria epigastrica superficiale origina due rami principali: una laterale e un ramo mediale che a sua volta dividere più volte, originari reti capillari che forniscono maggior parte della regione epigastrica. Questi capillari scarico nel tributari della vena epigastrica superficiale, che hanno un percorso parallelo per l&#39;albero arterioso. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55281/55281fig2large.jpg" target="_blank">Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a> <img alt="Figura 3" src="/files/ftp_upload/55281/55281fig3.jpg" /> Figura 3: un&#39;area potenziale di una sinistra lembo libero epigastrico nel ratto. Questo schema rappresenta la regione della parete addominale fornite dai vasi epigastrici superficiali e che possono essere mobilitati nel lembo epigastrico. Questo lembo può essere fino a 5 cm di lunghezza e 3 cm di larghezza. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55281/55281fig3large.jpg" target="_blank">Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a> <img alt="Figura 4" src="/files/ftp_upload/55281/55281fig4.jpg" /> Figura 4: fotografia di una sezione macchiato ematossilina-eosina del lembo epigastrico. Questa sezione macchiato ematossilina-eosina della regione epigastrica mostra che il lembo epigastrico è composto dal tegumento di questa regione che copre i muscoli della parete addominale. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55281/55281fig4large.jpg" target="_blank">Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a> Figura 5: composizione istologica del lembo epigastrico. La fotografia a sinistra rappresenta una sezione macchiato ematossilina-eosina di un lembo epigastrico, mentre la fotografia a destra è stata ottenuta dalla sezione tricromica di Masson una di questo lembo. Queste due immagini illustrano che il lembo epigastrico del ratto è un blocco composto di tessuti. Esso contiene uno strato superficiale della pelle, formata dal derma e dell&#39;epidermide. Sotto la pelle vi è uno strato di tessuto grasso chiamato pannicoli adiposi. Sotto questo strato vi è strato di muscolo striato noto come pannicolo carnosus. Sotto il carnosus panniculus c&#39;è una fascia profonda che copre i muscoli addominali più grandi e più profonde. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55281/55281fig5large.jpg" target="_blank">Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura</a>. <img alt="Figura 6" src="/files/ftp_upload/55281/55281fig6.jpg" /> Figura 6. pre-operatorie marcature della pelle sulla superficie ventrale del ratto prima di un intervento chirurgico. Questa fotografia illustra le marcature pelle per le incisioni utilizzate per sollevare il lembo epigastrico sinistra e successivamente inserto questo lembo nella parte ventrale della regione cervicale sinistra. <img alt="Figura 7" src="/files/ftp_upload/55281/55281fig7.jpg" /> Figura 7. Anatomia chirurgica dei vasi di nutrienti del lembo epigastrico sotto il microscopio operatorio (ingrandimento 10x). Questa fotografia mostra l&#39;arteria epigastrica superficiale e vene provenienti da e drenante in arteria femorale e la vena, rispettivamente. Il laterale femorale circonflessa dell&#39;arteria si pone di solito sotto l&#39;aspetto caudale del superficiali epiarteria gastrica. Il laterale femorale circonflessa vena ha un percorso simile e di solito termina nella vena epigastrica superficiale. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55281/55281fig7large.jpg" target="_blank">Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a> <img alt="Figura 8" src="/files/ftp_upload/55281/55281fig8.jpg" /> Figura 8. Il lembo epigastrico ex vivo peduncolato sulle sue navi di nutrienti (l&#39;arteria epigastrica superficiale e venosa -, A, V, rispettivamente). <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55281/55281fig8large.jpg" target="_blank">Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a> <img alt="Figura 9" src="/files/ftp_upload/55281/55281fig9.jpg" /> Figura 9. vista operativo delladissezione della vena destinatario, vale a dire, la vena giugulare esterna, sul lato sinistro del collo (6x). È possibile osservare il corso sottocutaneo della vena giugulare laterale esterna al muscolo sternocleidomastoideo. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55281/55281fig9large.jpg" target="_blank">Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a> <img alt="Figura 10" src="/files/ftp_upload/55281/55281fig10.jpg" /> Figura 10. vista operativo della dissezione dell&#39;arteria donatore, cioè la carotide comune, sul lato sinistro del collo (10x). L&#39;arteria e il nervo vago di accompagnamento sono esposti dopo ritraendo sternocleidomastoideo ei muscoli sottoioidei, come mostrato. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55281/55281fig10large.jpg" target="_blank">Clicca qui per vedere una versione più grande di t</a>la sua figura. <img alt="Figura 11" src="/files/ftp_upload/55281/55281fig11.jpg" /> Figura 11. Fotografia delle anastomosi vascolari tra i vasi del flap e dei vasi riceventi nel collo, come si è visto sotto il microscopio operatorio (10x). Questa fotografia mostra l&#39;anastomosi termino-laterale tra la carotide comune e le arterie epigastrici superficiali. È anche possibile osservare l&#39;anastomosi termino-terminale tra il epigastrica superficiale e le vena giugulare esterna. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55281/55281fig11large.jpg" target="_blank">Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a> <img alt="Figura 12" src="/files/ftp_upload/55281/55281fig12.jpg" /> Figura 12. Fotografia di aspetto ventrale del imme topo<html> diatamente dopo l&#39;intervento chirurgico. Si noti che la zona donatrice è facilmente chiuso in primo luogo. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55281/55281fig12large.jpg" target="_blank">Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a> <img alt="Figura 13" src="/files/ftp_upload/55281/55281fig13.jpg" /> Figura 13. epigastrica lembo libero di sopravvivenza a 20 ratti consecutivi operato dal primo autore (DC). Cinque ratti (20%) presentati completa lembo necrosi (casi 1, 4, 8, 13 e 15, rappresentati dai punti rossi). Aree di necrosi lembo sono stati determinati utilizzando il software ImageJ libera, come spiegato in dettaglio da Trujillo et al. 15. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55281/55281fig13large.jpg" target="_blank">Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a> 14 &quot;src =&quot; / files / ftp_upload / 55281 / 55281fig14.jpg &quot;/&gt; Figura 14. Le fotografie del lembo epigastrica posto sulla faccia ventrale del collo 4, 14 e 60 giorni dopo l&#39;intervento. Quattro giorni dopo l&#39;intervento, di solito c&#39;è qualche deiscenza della ferita, come il topo rimuove i punti. Tuttavia, il lembo rimane normalmente in posto. È possibile esaminare il lembo giornaliera per semplice ispezione visiva. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55281/55281fig14large.jpg" target="_blank">Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a>

Questo articolo descrive i passaggi necessari per sollevare un lembo libero epigastrico fasciocutaneo e trasferirlo al collo nel ratto.

Un modello di trasferimento del tessuto libero: The Rat Epigastrica libero Flap

Free tissue transfer has been increasingly used in clinical practice since the 1970s, allowing reconstruction of complex and otherwise untreatable defects ...

Lo scopo di questo articolo è presentare i passaggi necessari per eseguire un lembo libero epigastrico nel ratto. Il trapianto di tessuto libero è stato utilizzato con crescente frequenza nella pratica clinica per la ricostruzione di tessuti mancanti fin dagli anni '70. Tuttavia, ancora oggi, gli specializzandi in chirurgia spesso si sentono scoraggiati dalla complessità delle diverse fasi coinvolte nel sollevamento, trasferimento e posizionamento di un lembo libero.In effetti, per diventare un chirurgo microvascolare esperto, si ritiene obbligatoria un'ampia pratica sperimentale su un modello animale. Il ratto è il modello più comunemente utilizzato per la ricerca e la formazione in microchirurgia, poiché è relativamente economico, facile da mantenere e presenta una mandibola soggetta a frequenti manipolazioni. Questa fotografia mostra la regione epigastrica sinistra di un ratto, precedentemente iniettato con una soluzione di lattice rosso nel sistema arterioso e con una soluzione di lattice blu nel sistema venoso.È possibile osservare che la regione epigastrica riceve un apporto ematico assiale dall'arteria e dalla vena epigastriche superficiali. Questi vasi originano rispettivamente dall'arteria e dalla vena femorale e vi drenano. Questa cute rappresenta la regione della parete addominale, irrorata dai vasi epigastrici superficiali, che può essere mobilizzata nel lembo epigastrico.Questo lembo può raggiungere una lunghezza di cinque centimetri e una larghezza di tre centimetri. Questa sezione colorata con ematossilina-eosina della regione epigastrica mostra che il lembo epigastrico è costituito dall'integumento di questa regione, che ricopre i muscoli della parete addominale. Pertanto, questo lembo è un blocco costituito da tessuti.Contiene uno strato superficiale di cute formato dal derma e dall'epidermide; al di sotto della cute, si trova uno strato di tessuto adiposo, chiamato pannicolo adiposo. Al di sotto di questo strato, è presente uno strato di muscolo striato, noto come pannicolo carnoso; al di sotto del pannicolo carnoso, si trova la fascia profonda che ricopre i muscoli addominali maggiori. Per quanto riguarda la preparazione preoperatoria, il ratto viene anestetizzato con una miscela di chetamina e diazepam, alla dose di cinque milligrammi per chilogrammo di chetamina e zero virgola 25 milligrammi per chilogrammo di diazepam.Il pelo sulla superficie ventrale dell'addome viene rimosso con una crema depilatoria. La pelle viene disinfettata con una soluzione alcolica. Il lembo viene delineato sulla superficie dell'addome, utilizzando un pennarello chirurgico per la pelle, così come le incisioni sul collo.Prima di tutto, vengono sollevati i margini del lembo. Il lembo viene sollevato dalla parte mediale a quella laterale, utilizzando una cauterizzazione elettrica. I vasi perforanti che irrora la superficie profonda del lembo vengono legati.Successivamente, il peduncolo del lembo viene dissezionato con attenzione. Un retraettore viene posizionato nella parte caudale della ferita per facilitare la dissezione vascolare. Il peduncolo vascolare viene delicatamente dissezionato separando i tessuti molli in via di necrosi.Si possono osservare l'arteria femorale, la vena femorale, l'arteria e la vena epigastrica superficiale e, infine, l'arteria e la vena circonflessa laterale. L'origine di questi ultimi vasi è variabile. Tuttavia, nella maggior parte dei casi, essi originano dai vasi epigastrici superficiali.I vasi femorali vengono quindi clampati temporaneamente. Viene eseguito un ultimo taglio del tessuto in necrosi e una futura posizionamento delle anastomosi. Successivamente, l'arteria e la vena epigastrica superficiale vengono recise.Successivamente, vengono effettuate le incisioni al collo. Innanzitutto, si espone e disseca la vena giugulare esterna. Diversi dei suoi rami collaterali vengono legati, al fine di garantire una successiva mobilità della vena, necessaria per eseguire le anastomosi.Successivamente, in un piano più profondo, si espone la superficie laterale del muscolo sternocleidomastoideo. Segue quindi la superficie profonda di questo muscolo, esponendo così l'arteria carotidea e il nervo vago.L'arteria carotide viene dissezionata in modo ottuso dal nervo vago. Questa immagine mostra l'arteria carotide e il nervo vago. Successivamente, l'arteria carotide viene separata dal nervo vago e un pezzo sterile di palloncino viene posizionato al di sotto dell'arteria carotide.Abbiamo osservato che effettuare un'incisione nella porzione mediale del muscolo sternocleidomastoideo non solo facilita l'esposizione, ma previene anche una tensione eccessiva sull'arteria e sulle anastomosi, che potrebbe portare alla perdita del lembo. Il lembo viene quindi portato all'incisione cervicale. Eseguiamo un'incisione laterale sulla faccia laterale dell'arteria carotidea dopo aver posizionato un punto di sutura in nylon 9/0.Dopo aver reciso i vasi e prima di eseguire le anastomosi, il lume del vaso viene lavato con una soluzione contenente eparina. Per eseguire le anastomosi si utilizza un filo di nylon 9/0 o 10/0 con punto separato. L'anastomosi venosa viene eseguita nello stesso modo.A volte, è necessario dilatare la vena epigastrica superficiale, al fine di renderne il calibro simile a quello della più grande vena giugulare esterna. Dopo aver effettuato le anastomosi, si rimuovono le pinze, iniziando da quelle venose e dai vasi del lembo. L'arteria epigastrica superficiale può essere mobilizzata per alleviare uno spasmo vascolare preesistente.È possibile osservare l'aspetto tipico di anastomosi arteriose pervie e competenti, nonché di un sistema venoso ben irrorato. Questa immagine mostra l'architettura vascolare finale del lembo in sede. L'arteria epigastrica superficiale è connessa in modo termino-laterale all'arteria carotide.Infine, la vena epigastrica superficiale viene anastomizzata in modo termino-terminale alla vena giugulare esterna. Il lembo viene quindi suturato alla cute adiacente con punti separati in nylon 5/0. La zona donatrice viene chiusa in modo analogo, utilizzando la cute addominale lassa per chiudere il difetto addominale.Di solito, cinque giorni dopo l'intervento chirurgico, il ratto ha già rimosso tutti i punti, come mostrato in questo animale anestetizzato. Generalmente, in questo momento, è possibile osservare che l'intero lembo è vitale. Quattordici giorni dopo l'intervento, i peli hanno già iniziato a ricrescere sulla superficie del lembo, come si può vedere qui.Dopo due mesi dal intervento, solo la cicatrice del collo mostra i contorni originali del lembo. Il lembo può essere valutato in qualsiasi momento mediante semplice ispezione visiva. Per facilitare l'esposizione dell'aspetto eventuale del collo e di quello del lembo, si può presentare un premio alimentare sopra la testa del ratto.In alternativa, è possibile applicare un tocco delicato nella regione interscapolare. Mentre un assistente, posizionato davanti al ratto, osserva e fotografa il lembo. È stata ottenuta una percentuale di sopravvivenza quasi completa dell'80 percento negli ultimi 20 interventi eseguiti dal primo autore, come si può vedere in questo grafico.Il tasso di sopravvivenza del lembo dipende, in una certa misura, dall'esperienza del chirurgo. In generale, se si tengono in considerazione gli aspetti tecnici descritti in precedenza, ci si può aspettare un tasso di sopravvivenza quasi completo intorno al 70 percento dei lembi. Circa il 10 percento dei lembi presenta necrosi parziale.E circa il 20 percento dei lembi subisce una necrosi completa. La nostra esperienza pluriennale, accumulata in oltre 10 anni di utilizzo di questo lembo a scopi didattici e di ricerca, suggerisce che il lembo epigastrico del ratto rappresenti un modello rispettabile di trapianto di tessuto libero. Inoltre, costituisce anche un buon modello didattico e formativo per i chirurghi in formazione in microchirurgia.Inoltre, questo modello può essere utilizzato negli studi sulla perfusione tissutale, riparazione tissutale e infezione chirurgica.

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