Name: Maturazione di staminali umane cardiomiociti derivati dalle cellule in Biowires Utilizzando Stimolazione Elettrica (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-05-06T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 11 s
Description: Scopri la maturazione di cardiomiociti umani derivati da cellule staminali in biowires con stimolazione elettrica. Questo metodo migliora la maturità tissutale per applicazioni nell'ingegneria cardiaca e nel testing farmacologico.

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Questo lavoro è stato sostenuto da una sovvenzione-in-aiuto del Heart and Stroke Foundation of Canada (G-14-0.006.265), sovvenzioni di funzionamento dal Canadian Institutes of Health Research (137.352 e 143.066), e una borsa di studio fondazione JP Bickell (1.013.821 ) al SSN.

1. master e Fabrication Nota: utilizzare litografia soft per la fabbricazione di dispositivi. Fare un doppio strato SU-8 master per polidimetilsilossano (PDMS) stampaggio. <ol><li> Progettare il dispositivo utilizzando un design e redazione software (Figura 1A, sinistra). Disegnare ogni strato del maestro separatamente. Stampa il design del dispositivo su due fotomaschere a 20.000 dpi, corrispondenti ai due strati del maestro 15. Impostare il modello dispositivo trasparente e la zona circostante scura; le maschere serviranno da modello per trasferire il disegno otticamente dispositivo sul SU-8 mediante litografia (come descritto da altri 15). </li><li> Distribuire circa 4 mL di SU-8 50 sul centro di un wafer di silicio da 4 pollici. Coat SU-8 50 uniformemente sul wafer utilizzando un rivestitore rotazione mediante filatura a 2000 giri al minuto (rpm) per 30 s. Cuocere il wafer su una piastra riscaldante a 95 ° C per 10 min. Esporre il wafer a raggi ultravioletti (UV) lilotta a 200 mJ / cm 2. </li><li> Versare circa 4 mL di SU-8 2050 sul centro del wafer e centrifuga a 2500 giri per 30 s. Cuocere sulla piastra C 95 ° per 15 min. Raffreddare a temperatura ambiente (RT). </li><li> Ripetere il punto 1.3 altre due volte. </li><li> Coprire il wafer rivestito con la trasparenza fotomaschera primo strato. Esporre il wafer di luce UV a 270 mJ / cm 2 per effettuare il primo strato. Cuocere sulla piastra C 95 ° per 15 min. </li><li> Rendere il secondo strato di SU-8 2050 ripetendo passo 1,3 volte. </li><li> Allineare la maschera secondo strato alle caratteristiche sul primo strato mediante un allineatore maschera. Poi, esporre a luce UV a 240 mJ / cm2. Cuocere in forno a 95 ° C per 15 min. NOTA: Il tempo di esposizione è determinato dalla dose di UV totale richiesta e l&#39;intensità di uscita luce UV misurata il giorno prima dell&#39;uso. </li><li> Sviluppare il wafer immergendo in propilenglicole monometiletere acetato (PGMEA) e agitazione a 200 giri per 30 minuti in un agitatore orbitale. </li><li> Postoil master in una piastra di Petri e con attenzione versare il composto PDMS (base a reticolante ad un rapporto di 10: 1 in peso) sul centro del wafer. Coprire tutte le caratteristiche ed evitare bolle d&#39;aria. </li><li> Il calore in un forno a 70 ° C per 2 ore. Utilizzare una lama tagliente per tagliare intorno al bordo della dima BIOWIRE PDMS (Figura 1A, destra). Sbucciare le PDMS dal master. Tagliare il dispositivo con la lama. Mettere il modello BIOWIRE PDMS in un sacchetto di sterilizzazione e autoclave a vapore a 121 ° C per 20 minuti. </li><li> In un armadio biosicurezza (BSC), posizionare il PDMS BIOWIRE modello in una capsula di Petri. Utilizzare una pinzetta per tenere e montare un pezzo di sterile sutura chirurgica seta (6-0) al centro del canale del micropozzetto PDMS tali sedili nelle scanalature su entrambe le estremità del canale (Figura 1B-I). </li></ol> 2. Creazione della stimolazione elettrica Camera <ol><li> Fare un paio di pezzi di policarbonato rettangolari (lunghezza x larghezza x spessore: 2 cm x0,85 cm x 0,35 cm) e usarli come la struttura della camera di stimolazione elettrica (Figura 2). </li><li> Praticare due fori 3 millimetri larghezza 2 cm di distanza lungo la linea centrale di ogni pezzo di telaio in policarbonato. </li><li> Tagliare due pezzi di 1,5 cm aste lungo carbonio. Praticare un foro 1 mm di larghezza attraverso l&#39;asta di carbonio di circa 3 mm dall&#39;estremità. Infilare un filo di platino attraverso il foro dell&#39;asta del carbonio e serrare il filo avvolgendolo intorno all&#39;asta carbonio. Collegare una clip all&#39;altra estremità del filo di platino per la connessione in seguito con lo stimolatore elettrico. </li><li> Inserire le barre di carbonio nelle parti del telaio del policarbonato. Posizionare il telaio assemblato con le barre di carbonio in un pozzetto di una piastra a sei pozzetti. </li><li> Versare 2 ml di PDMS nel pozzo. Immergere la parte inferiore dei telai policarbonato in PDMS mantenendo il livello di superficie PDMS vicino ma non raggiungere il fondo delle barre di carbonio. Il calore in un forno a 70 ° C per 2 ore. </li><li> Prendere la camera di stimolazione elettrica dei seipiastra -well e metterlo in un sacchetto di sterilizzazione per la sterilizzazione a vapore a 121 ° C per 20 min. </li></ol> 3. enzimatica dissociazione di HPSC-CMS <ol><li> Indurre HPSC di differenziarsi in cardiomiociti utilizzano un protocollo stabilito 4. NOTA: Brevemente, generare cardiomiociti via corpo embrioide fissato (EB) protocolli stelo pro mezzo attraverso la supplementazione sequenziale con proteina ossea morfogenetica 4, fattore di crescita dei fibroblasti, activin A, fattore di crescita vascolare endoteliale, e Dickkopf omologo 1 4. Utilizzare EBs dal giorno 20-34 di differenziazione per fare biowires. </li><li> Raccogliere EBS dalla piastra partire allegato con un puntale P 1.000 e trasferire in una provetta conica. Pellet per centrifugazione per 5 min a 125 xg ed RT. Eliminare il supernatante e risospendere il pellet con pre-riscaldato a 37 ° C collagenasi tipo I contenente 1% deossiribonucleasi I (DNAsi I). Incubare a 37 ° C per 2 hper la digestione. </li><li> Aggiungere 5 ml di pre-riscaldato a 37 ° C lavare medio e centrifugare per 5 min a 125 xg ed RT. Eliminare il surnatante. Risospendere il pellet con 2 ml di soluzione di tripsina / acido etilendiamminotetraacetico (EDTA) e incubare a 37 ° C per 5 min. </li><li> Aggiungere 1 ml di mezzo di arresto contenente 3% (v / v) DNasi I. </li><li> Inserire un ago 20 G (0,9 mm) ad una siringa da 5 ml e passare la sospensione attraverso EB 3-5 volte. </li><li> Aggiungere 7 ml di mezzo di lavaggio e centrifugare a 280 xg per 5 min. Eliminare il surnatante. Risospendere il pellet in mezzo (IMDM) Iscove modificato da Dulbecco e memorizzare sul ghiaccio. Determinare il numero di cellule con un emocitometro. Prendere 0,5 x 10 6 cellule e pellet mediante centrifugazione a 280 xg per 5 min. Rimuovere il surnatante. </li><li> Pre-raffreddare tutti i componenti del gel su ghiaccio prima di loro miscelazione in una provetta sterile. Miscelare i seguenti componenti del gel di collagene (concentrazione finale): 2,1 mg / mL tipo coda di ratto collagene I, 24,9 mM glucosio, 23,8 mM NaHCO 3, 14,3 mM NaOH, 10 mM HEPES, e il 10% della matrice extracellulare in mezzo 1x M199. Aggiungere il collagene e la matrice extracellulare scorso. Mescolare pipettando su e giù. </li><li> Risospendere 0,5 x 10 6 cellule con 3,5 ml di gel di collagene e mescolare bene. </li><li> Utilizzare un puntale P10 aggiungere 4 ml di sospensione cellulare nel canale di 0,5 cm di lunghezza (Figura 1B-II). Regolare la posizione della sutura con pinza sterile se necessario. </li><li> Coprire il fondo del piatto Petri sterile con tampone fosfato salino (PBS), facendo attenzione a non toccare il gel. Incubare a 37 ° C per 30 min. </li><li> Sostituire la PBS con 12 ml di terreno di coltura (per esempio, stelo pro o terreno raccomandato dal produttore di celle), sufficienti a coprire le cellule (Figura 1B-III). Cultura in un incubatore a 37 ° C per 1 settimana. Cambiare il mezzo di ogni altro giorno. </li></ol> 4. La stimolazione elettrica per BIOWIRE coltivazione <ol><li> InBSC, aggiungere 2 ml di PBS a ciascun pozzetto di una piastra a sei pozzetti che ospiterà una camera stimolatore elettrico. Utilizzare pinzette sterili per posizionare delicatamente il dispositivo di stimolazione elettrica autoclavato nel pozzo. Eliminare il PBS dal pozzo. </li><li> Coprire le barre di carbonio con 5 ml di terreno di coltura pre-riscaldato. Utilizzare pinzette sterili per montare i biowires nella camera di stimolazione elettrica e orientarli perpendicolari alle barre di carbonio (Figura 2). </li><li> Posizionare il coperchio sulla parte superiore della piastra di sei pozzetti, ma lascia fili di platino sufficienti raggiungono all&#39;esterno della piastra di connettersi con lo stimolatore elettrico. Posizionare la piastra sei pozzetti in un incubatore di coltura cellulare a 37 ° C e collegare il filo di platino allo stimolatore elettrico. </li><li> Stimolare i biowires utilizzando uno stimolatore elettrico con le seguenti impostazioni: bifasica impulso ripetizione, durata dell&#39;impulso 1-ms, 3 V / cm, e 1 impulso al secondo (PPS). Sollevare il PPS ogni 24 ore per i seguenti valori: 1.83, 2.66, 3.49, 40,82, 5,15 e 6. Cambiare il mezzo di ogni altro giorno. </li><li> Osservare la contrattilità cardiomiociti in risposta alla stimolazione elettrica sotto un microscopio a ingrandimento 10X. NOTA: Dopo una settimana di stimolazione, i biowires diventa maturo (vedere la sezione risultati). </li></ol>

<ol><li>Sun, X., Nunes, S. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Overview+of+hydrogel-based+strategies+for+application+in+cardiac+tissue+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Biomed+Mater%22%5BJournal%5D)">Overview of hydrogel-based strategies for application in cardiac tissue regeneration.</a> Biomed Mater. 10 (3), 034005(2015).</li>
<li>Sun, X., Altalhi, W., Nunes, S. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vascularization+strategies+of+engineered+tissues+and+their+application+in+cardiac+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Adv+Drug+Deliv+Rev%22%5BJournal%5D)">Vascularization strategies of engineered tissues and their application in cardiac regeneration.</a> Adv Drug Deliv Rev. 96, 183-194 (2016).</li>
<li>Hastings, C. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drug+and+cell+delivery+for+cardiac+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Advanced+Drug+Delivery+Reviews%22%5BJournal%5D)">Drug and cell delivery for cardiac regeneration.</a> Advanced Drug Delivery Reviews. 84 (0), 85-106 (2015).</li>
<li>Yang, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+cardiovascular+progenitor+cells+develop+from+a+KDR%2B+embryonic-stem-cell-derived+population%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Human cardiovascular progenitor cells develop from a KDR+ embryonic-stem-cell-derived population.</a> Nature. 453 (7194), 524-528 (2008).</li>
<li>Zhang, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extracellular+matrix+promotes+highly+efficient+cardiac+differentiation+of+human+pluripotent+stem+cells%3A+the+matrix+sandwich+method%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Res%22%5BJournal%5D)">Extracellular matrix promotes highly efficient cardiac differentiation of human pluripotent stem cells: the matrix sandwich method.</a> Circ Res. 111 (9), 1125-1136 (2012).</li>
<li>Lian, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Robust+cardiomyocyte+differentiation+from+human+pluripotent+stem+cells+via+temporal+modulation+of+canonical+Wnt+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Robust cardiomyocyte differentiation from human pluripotent stem cells via temporal modulation of canonical Wnt signaling.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 109 (27), E1848-E1857 (2012).</li>
<li>Snir, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessment+of+the+ultrastructural+and+proliferative+properties+of+human+embryonic+stem+cell-derived+cardiomyocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Heart+Circ+Physiol%22%5BJournal%5D)">Assessment of the ultrastructural and proliferative properties of human embryonic stem cell-derived cardiomyocytes.</a> Am J Physiol Heart Circ Physiol. 285 (6), H2355-H2363 (2003).</li>
<li>Dolnikov, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+properties+of+human+embryonic+stem+cell-derived+cardiomyocytes%3A+intracellular+Ca2%2B+handling+and+the+role+of+sarcoplasmic+reticulum+in+the+contraction%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Functional properties of human embryonic stem cell-derived cardiomyocytes: intracellular Ca2+ handling and the role of sarcoplasmic reticulum in the contraction.</a> Stem Cells. 24 (2), 236-245 (2006).</li>
<li>Yang, X., Pabon, L., Murry, C. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Engineering+adolescence%3A+maturation+of+human+pluripotent+stem+cell-derived+cardiomyocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Res%22%5BJournal%5D)">Engineering adolescence: maturation of human pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes.</a> Circ Res. 114 (3), 511-523 (2014).</li>
<li>Zimmermann, W. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue+engineering+of+a+differentiated+cardiac+muscle+construct%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Res%22%5BJournal%5D)">Tissue engineering of a differentiated cardiac muscle construct.</a> Circ Res. 90 (2), 223-230 (2002).</li>
<li>Radisic, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+assembly+of+engineered+myocardium+by+electrical+stimulation+of+cardiac+myocytes+cultured+on+scaffolds%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Functional assembly of engineered myocardium by electrical stimulation of cardiac myocytes cultured on scaffolds.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 101 (52), 18129-18134 (2004).</li>
<li>Schaaf, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+engineered+heart+tissue+as+a+versatile+tool+in+basic+research+and+preclinical+toxicology%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Human engineered heart tissue as a versatile tool in basic research and preclinical toxicology.</a> PLoS One. 6 (10), e26397(2011).</li>
<li>Tulloch, N. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Growth+of+engineered+human+myocardium+with+mechanical+loading+and+vascular+coculture%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Res%22%5BJournal%5D)">Growth of engineered human myocardium with mechanical loading and vascular coculture.</a> Circ Res. 109 (1), 47-59 (2011).</li>
<li>Nunes, S. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biowire%3A+a+platform+for+maturation+of+human+pluripotent+stem+cell-derived+cardiomyocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Biowire: a platform for maturation of human pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes.</a> Nat Methods. 10 (8), 781-787 (2013).</li>
<li>Lake, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.nature.com/protocolexchange/protocols/4049">Microfluidic device design, fabrication, and testing protocols.</a> Protocol Exchange. , (2015).</li>
<li>Shiba, Y., Hauch, K. D., Laflamme, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+applications+for+human+pluripotent+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Pharm+Des%22%5BJournal%5D)">Cardiac applications for human pluripotent stem cells.</a> Curr Pharm Des. 15 (24), 2791-2806 (2009).</li>
<li>Yang, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tri-iodo-l-thyronine+promotes+the+maturation+of+human+cardiomyocytes-derived+from+induced+pluripotent+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Mol+Cell+Cardiol%22%5BJournal%5D)">Tri-iodo-l-thyronine promotes the maturation of human cardiomyocytes-derived from induced pluripotent stem cells.</a> J Mol Cell Cardiol. 72, 296-304 (2014).</li>
<li>Zhang, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue-engineered+cardiac+patch+for+advanced+functional+maturation+of+human+ESC-derived+cardiomyocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Tissue-engineered cardiac patch for advanced functional maturation of human ESC-derived cardiomyocytes.</a> Biomaterials. 34 (23), 5813-5820 (2013).</li>
<li>Radisic, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oxygen+gradients+correlate+with+cell+density+and+cell+viability+in+engineered+cardiac+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnol+Bioeng%22%5BJournal%5D)">Oxygen gradients correlate with cell density and cell viability in engineered cardiac tissue.</a> Biotechnol Bioeng. 93 (2), 332-343 (2006).</li>
<li>Reubinoff, B. E., Pera, M. F., Fong, C. Y., Trounson, A., Bongso, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Embryonic+stem+cell+lines+from+human+blastocysts%3A+somatic+differentiation+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Embryonic stem cell lines from human blastocysts: somatic differentiation in vitro.</a> Nat Biotechnol. 18 (4), 399-404 (2000).</li>
</ol>

Gli autori dichiarano di non avere interessi finanziari in competizione.

Questo manoscritto descrive la configurazione e implementazione della piattaforma progettata, BIOWIRE, per migliorare la maturazione di HPSC-CM. Il dispositivo può essere realizzato in impianti di microfabbricazione standard e biowires può essere prodotto con tecniche di coltura cellulare comuni e uno stimolatore elettrico. A nostra conoscenza, non esiste un metodo simile a quello riportato biowires. Questa strategia rivela che il miglioramento delle proprietà di maturazione sono dipendenti ...

La terapia a base di cellule è una delle strategie più promettenti e studiati per raggiungere cardiaca riparazione / rigenerazione. E &#39;stato aiutato da ingegneria dei tessuti cardiaco e il co-fornitura di biomateriali 1, 2. La maggior parte delle fonti di cellule disponibili sono stati studiati in modelli animali per i loro effetti potenzialmente benefici sulla danneggiati, malati, o cuori di età compresa tra 3. In particolare, notevoli sforzi sono stati fatti per usare cellule staminali pluripotenti umane (HPSC) -derived cardiomiociti (HPSC-CM), una fonte di cellule autologhe potenzialmente illimitato per l&#39;ingegneria tissutale cardiaco. HPSC-CM può essere prodotto utilizzando diversi protocolli stabiliti 4, 5, 6. Tuttavia, le cellule ottenute mostrano fenotipi fetali simile, con una serie di caratteristiche immaturi rispetto al cardiomiociti ventricolari adulti 7, </sup&gt; 8. Questo può essere un ostacolo per l&#39;applicazione di HPSC-CMS come modelli di tessuto cardiaco degli adulti nella ricerca scoperta di nuovi farmaci e lo sviluppo di modelli di malattia cardiaca per adulti 9. Per superare questa limitazione di immaturità fenotipica, nuovi approcci sono stati attivamente studiati per promuovere la maturazione dei cardiomiociti. I primi studi hanno rivelato efficaci proprietà pro-maturazione in cardiomiociti neonatali di ratto tramite ciclico 10 meccanica o stimolazione elettrica 11. Compattazione gel e ciclica stimolazione meccanica stati mostrati anche di migliorare alcuni aspetti della HPSC-CM maturazione 12, 13, con un minimo aumento delle proprietà di manipolazione elettrofisiologiche e di calcio. Pertanto, un sistema piattaforma chiamata &quot;wire biologica&quot; (BIOWIRE) è stato ideato fornendo sia segnali strutturali e campo elettrico stimulation per migliorare la maturazione di HPSC-CM 14. Questo sistema utilizza una piattaforma microfabbricazione per creare tessuto cardiaco allineato che è suscettibile di stimolazione campo elettrico. Questo può essere usato per migliorare la maturità strutturale ed elettrofisiologico di HPSC-CM. Qui, descriviamo i dettagli di tale biowires.

<table><tbody><tr><td>Acido L-ascorbico</td><td>Sigma</td><td>A-4544</td><td>hPSC-CM terreno di coltura componente</td></tr><tr><td>AutoCAD</td><td>Autodesk, Inc</td><td></td><td>Software per la progettazione del dispositivo</td></tr><tr><td>Barre di carbonio, &Oslash; 3 mm</td><td></td><td></td><td>Componente della camera di stimolazione elettrica</td></tr><tr><td>Collagene, tipo 1, coda di topo</td><td>BD Biosciences</td><td>354249</td><td>Gel di collagene: 2,1 mg/mL di collagene di coda di ratto di tipo I in 24,9 mM di glucosio, 23,8 mM di NaHCO3, 14,3 mM di NaOH, 10 mM di HEPES, in 1 terreno M199 con il 10% di Matrigel ridotto del fattore di crescita.</td></tr><tr><td>Collagenasi di tipo I</td><td>Sigma</td><td>C0130</td><td>0,2% collagenasi tipo I (p/v) e 20% FBS (v/v) in PBS con Ca2+ e Mg2+. Sterilizzare con 0,22 &mu; m e fare aliquote da 12 mL. Conservare a -20 °C.</td></tr><tr><td>Deossiribonucleasi I (DNasi I)</td><td>EMD Millipore</td><td>260913-25MU</td><td>Produrre 1 mg/mL di DNasi I soluzione madre in acqua. Filtrare in modo sterile e conservare aliquote da 0,5 mL a &meno; 20 &deg; C</td></tr><tr><td>Trapano e punte (&Oslash; 1 mm e 2 mm)</td><td>Dremel</td><td></td><td>Fori nei telai in policarbonato</td></tr><tr><td>Stimolatore elettrico</td><td>Erba</td><td>s88x</td><td></td></tr><tr><td>Siero fetale bovino (FBS)</td><td>WISENT Inc.</td><td>080-450</td><td></td></tr><tr><td>D-(+)-Glucosio&nbsp;</td><td>Sigma</td><td>G5767</td><td>Componente in gel di collagene</td></tr><tr><td>L-Glutammina</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>25030081</td><td></td></tr><tr><td>H2O</td><td>MilliQ</td><td></td><td>18.2 M&Omega; &punto medio; cm a 25 gradi C, ultrapuro, per rendere tutte le soluzioni</td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Sigma</td><td>H4034</td><td>Componente in gel di collagene</td></tr><tr><td>Piastra riscaldante</td><td>Torrey Pines</td><td>HS40</td><td></td></tr><tr><td>Iscove's Modified Dulbecco's Medium(IMDM)</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>12440053</td><td></td></tr><tr><td>Allineatore per maschera</td><td>EVG&nbsp;</td><td>EVG 620</td><td></td></tr><tr><td>Matrigel, fattore di crescita ridotto&nbsp;</td><td>Corning</td><td>354230</td><td>Componente in gel di collagene</td></tr><tr><td>Medium 199 (M199)</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>11825015</td><td>Componente in gel di collagene</td></tr><tr><td>Monotioglicerolo (MTG)</td>Componente per terreni di coltura <td>Sigma</td><td>M-6145</td><td>hPSC-CM</td></tr><tr><td>Agitatore orbitale</td><td>VWR</td><td>89032-088</td><td></td></tr><tr><td>Penicillina/Streptomicina (P/S)</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>15070063</td><td></td></tr><tr><td>Soluzione salina tamponata con fosfato (PBS) con Ca2+ e Mg2+&nbsp;</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>14040133</td><td></td></tr><tr><td>Piastra (6 pozzetti)</td><td>Piastra</td><td>Corning 353046</td><td></td></tr><tr><td>(6 pozzetti), attacco basso</td><td>Fili di platino Corning</td><td>3471</td><td></td></tr><tr><td>, 0,2 mm</td><td></td><td></td><td>Componente della camera dello stimolatore elettrico</td></tr><tr><td>Polidimetilsilossano (PDMS)</td><td>Dow Corning</td><td>Sylgard 184</td><td></td></tr><tr><td>Glicole propilenico monometil etere acetato (PGMEA)</td><td>Doe & Ingalls Inc.</td><td></td><td>Per sviluppare la busta per wafer</td></tr><tr><td>, convertitori a strappo</td><td></td><td>92308</td><td>per la sterilizzazione a vapore</td></tr><tr><td>Wafer di silicone, 4 pollici</td><td>UniversityWafer Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Bicarbonato di sodio (NaHCO3)Sigma</td><td></td> <td>S5761</td><td>Componente in gel di collagene</td></tr><tr><td>Idrossido di sodio</td><td>Sigma</td><td>S8045</td><td>Componente in gel di collagene</td></tr><tr><td>Sprin coater</td><td>Sistemi di rivestimento speciali</td><td>G3P-8</td><td></td></tr><tr><td>StemPro-34 terreno di coltura</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>10639011</td><td>Terreno di coltura hPSC-CM. Per fare 50 ml, aggiungere 1,3 ml di supplemento, 500 &mu; L di 100&volte; L-Glutammina, 250 &mu; L di 30 mg/mL di transferrina, 500 &mu; l di 5 mg/mL di acido ascorbico, 150 &mu; L di 26 &mu; l /2 mL di monotioglicerolo (MTG) e 500 &mu; L (1 %) penicillina/streptomicina.</td></tr><tr>Mezzi <td></td><td></td><td>di arresto</td><td>: FBS (1:1)</td></tr><tr><td>SU-8 50&nbsp;</td><td>MicroChem Corp.</td><td></td><td>fotoresist, componente principale</td></tr><tr><td>SU-8 2050&nbsp;</td><td>MicroChem Corp.</td><td></td><td>fotoresist, componente principale</td></tr><tr><td>Transferrina</td><td>Roche</td><td>10-652-202</td><td>hPSC-CM terreno di coltura</td></tr><tr><td>composto Tripsina/EDTA, 0,25%</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>25200056</td><td>hPSC-CM terreno di coltura composto</td></tr><tr><td>Terreno</td><td></td><td></td> di lavaggio <td>IMDM contenente l'1% di penicillina/streptomicina</td></tr></tbody></table>

maturazione di staminali umane cardiomiociti derivati ​​dalle cellule in biowires utilizzando stimolazione elettrica

Maturation of Human Stem Cell-derived Cardiomyocytes in Biowires Using Electrical Stimulation

cardiomiociti derivati ​​dalle cellule staminali umane pluripotenti (HPSC-CMS) sono stati una fonte di cellule promettente e hanno così favorito l&#39;esame delle loro potenziali applicazioni nel campo della ricerca cardiaca, tra cui la scoperta di farmaci, la modellazione della malattia, l&#39;ingegneria dei tessuti e della medicina rigenerativa. Tuttavia, le cellule prodotte da protocolli esistenti mostrano una serie di immaturità rispetto ai cardiomiociti adulti ventricolare nativi. Molti sforzi sono stati fatti maturare HPSC-CM, con solo la maturazione moderata raggiunto finora. Pertanto, un sistema ingegnerizzato, chiamato BIOWIRE, è stato ideato prevedendo stimoli fisici ed elettrici di condurre HPSC-CM ad uno stato più maturo in vitro. Il sistema utilizza una piattaforma microfabbricazione per seminare HPSC-CM in collagene tipo I gel lungo un modello di sutura rigido da montare nel tessuto cardiaco allineata (BIOWIRE), sottoposto alla stimolazione campo elettrico con una frequenza progressivamente crescente. Rispetto ai controlli non stimolate,stimolati biowired cardiomiociti presentano un maggiore grado di maturazione strutturale ed elettrofisiologico. Tali cambiamenti dipendono dalla frequenza di stimolazione. Questo manoscritto descrive in dettaglio la progettazione e realizzazione di biowires.

Il razionale per l&#39;uso di una sutura nelle biowires è servire come stampo per la formazione di costrutti 3D che si allineano in un asse e imitano la forma di fibre cardiache. Abbiamo dimostrato che dopo sette giorni di coltura in BIOWIRE, cellule rimodellato il gel intorno la sutura (Figura 3A). Le celle assemblate lungo l&#39;asse della sutura per formare in linea di tessuto cardiaco (Figura 3). Dopo 7 giorni di precoltura, i biowires sono stati sot...

La piattaforma BIOWIRE cardiaco è un metodo in vitro utilizzato per maturare embrionale umano e cardiomiociti derivati dalle cellule staminali pluripotenti indotte (HPSC-CM) combinando coltura cellulare tridimensionale con stimolazione elettrica. Questo manoscritto presenta la configurazione dettagliata della piattaforma BIOWIRE cardiaco.

Maturazione di staminali umane cardiomiociti derivati ​​dalle cellule in Biowires Utilizzando Stimolazione Elettrica

Human pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes (hPSC-CMs) have been a promising cell source and have thus encouraged the investigation of their ...

L'obiettivo generale di questa procedura è utilizzare metodi controllati di coltura cellulare tridimensionale con stimolazione elettrica per favorire la maturazione dei cardiomiociti derivati da cellule staminali embrionali umane e da cellule staminali pluripotenti indotte. Questo metodo può contribuire a rispondere a domande fondamentali nel campo dell'ingegneria dei tessuti cardiaci, come l'impatto di diversi parametri di stimolazione elettrica o della durata della stimolazione sulla funzionalità e sullo stato di maturazione delle cellule cardiache. Il risultato finale è la produzione di tessuti cardiaci umani ingegnerizzati con una maturità migliorata.Le implicazioni di questa tecnica si estendono ad applicazioni diagnostiche, come la valutazione della sicurezza e dell'efficacia di nuovi farmaci, poiché i cardiomiociti con caratteristiche mature, come la propagazione elettrica, sono più probabili a fungere da modelli più accurati di cellule cardiache umane negli studi di screening farmacologico. Combinare il monomero PDMS e l'agente indurente in un rapporto 10:1 e mescolare accuratamente. Lasciare riposare per cinque minuti per la degasificazione.Quindi versare la miscela di PDM

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JoVE Journal

Developmental Biology

Biologia dello sviluppo

Abbiamo stabilito un protocollo per l'induzione della cardioblasts pluripotenti direttamente da cellule staminali embrionali umane conservati in condizioni definite con piccole molecole, che permette la derivazione di una grande quantità di risorse umane progenitori cardiaci e funzionale cardiomiociti per la riparazione cardiovascolare.

Derivazione efficiente dei diritti dell&#39;uomo e precursori cardiaci e cardiomiociti pluripotenti da cellule staminali embrionali umane con induzione piccole molecole

Qui, presentiamo un protocollo di differenziazione dei cardiomiociti robusto, veloce e scalabile per cellule staminali pluripotenti umane (hPSC). I cardiomiociti derivati utilizzando questo metodo su larga scala possono fornire un numero sufficiente di cellule per il loro uso efficace nella modellazione delle malattie cardiovascolari umane, nello screening di farmaci ad alto rendimento e potenzialmente in applicazioni cliniche.

Produzione su larga scala dei cardiomiociti da cellule staminali umane pluripotenti usando un altamente riproducibile piccole molecole-Based Differenziazione protocollo

La caratterizzazione elettrofisiologica dei cardiomiociti derivata da cellule staminali pluripotenti umane (hPSC-CM) è fondamentale per la modellizzazione delle malattie cardiache e per la determinazione delle risposte di farmaco. Questo protocollo fornisce le informazioni necessarie per dissociare e piastrare hPSC-CM su matrici multi-elettrodi, misurare il loro potenziale di campo e un metodo per analizzare gli intervalli QT e RR.

Analisi elettrofisiologica dei cardiomiociti derivanti da cellule staminali pluripotenti umane (hPSC-CMs) Utilizzando matrici multi-elettrodo (MEAs)

Qui, presentiamo un metodo per sfruttare in modo efficiente il potenziale di differenziazione cardiache di giovane fonti di cellule staminali mesenchimali umane al fine di generare cellule funzionali, contraenti, del cardiomyocyte-come in vitro.

In Vitro Differenziazione delle cellule staminali mesenchimali umane in funzionale del Cardiomyocyte-come le cellule

Qui presentiamo un protocollo per la formazione di una popolazione delle cellule usando stimoli elettrici e meccanici, emulando la fisiologia cardiaca. Questa stimolazione elettromeccanica migliora il potenziale di cardiomiogenici delle cellule trattate ed è una strategia promettente per ulteriore terapia cellulare, la modellazione di malattia e lo screening di stupefacenti.

Simultanea stimolazione elettrica e meccanica per migliorare il potenziale di cardiomiogenici delle cellule

Questo articolo contiene una serie di protocolli per lo sviluppo di reti di cardiomiociti derivate da cellule staminali derivate da cellule staminali derivate dall'uomo (hiPSC-CM) coltivate su piastre MEA multiwell per elettropolarmente la membrana cellulare per misurazioni potenziali di azione. Le registrazioni ad alta velocità vengono ottenute ripetutamente dagli stessi siti cellulari nel corso di giorni.

Reti di cardiomiociti derivati da umani da iPSC su array di microelettrodi multiwell per registrazioni di potenziali azioni ricorrenti

Questo protocollo descrive la procedura per sezionare e coltivare fette cardiache umane per test preclinici sui farmaci e descrive in dettaglio l'uso della mappatura ottica per la registrazione simultanea della tensione transmembrana e dei segnali di calcio intracellulare da queste fette.

Valutazione elettrofisiologia cardiaca preclinica mediante mappatura ottica a doppia tensione e calcio delle fette cardiache di organitypica umana

I cardiomiociti derivati da cellule staminali pluripotenti indotte dall'uomo (hiPSC-CM) offrono un'alternativa all'uso di animali per lo screening preclinico della cardiotossicità. Una limitazione all'adozione diffusa di hiPSC-CMs nello screening preclinico della tossicità è il fenotipo immaturo e fetale delle cellule. Qui sono presentati protocolli per la maturazione robusta e rapida delle hiPSC-CM.

Screening della cardiotossicità ad alto rendimento utilizzando monostrati di cardiomiociti pluripotenti indotti da cellule staminali umane mature

Qui, dimostriamo un metodo di valutazione della contrattilità dei dispositivi medici cardiaci non invasivi utilizzando monostrati 2D di cardiomiociti derivati da cellule staminali pluripotenti indotte umane (hiPSC-CM), placcati su un substrato flessibile, accoppiati con microscopia basata su video. Questo strumento sarà utile per la valutazione in vitro delle proprietà contrattili dei dispositivi di elettrofisiologia cardiaca.

Valutazione della terapia di modulazione della contrattilità cardiaca in cardiomiociti 2D derivati da cellule staminali umane

Qui, viene descritto un metodo consolidato per eseguire misurazioni della contrattilità e del calcio in cardiomiociti derivati da cellule staminali pluripotenti indotte umane utilizzando una piattaforma basata sull'ottica. Questa piattaforma consente ai ricercatori di studiare l'effetto delle mutazioni e la risposta a vari stimoli in modo rapido e riproducibile.

Misurazioni in tempo reale dei parametri di calcio e contrattilità in cardiomiociti derivati da cellule staminali pluripotenti indotte dall'uomo

Viene presentato un metodo riproducibile per generare tessuti miocardici 3D combinando scaffold di scrittura elettrofilante (MEW), policaprolattone (PCL) e idrogel di fibrina con cardiomiociti e fibroblasti derivati da hiPSC. Questa tecnica offre un controllo preciso sull'architettura dello scaffold e può essere applicata nei test preclinici sui farmaci e nella modellazione delle malattie cardiache.

Generazione 3D di tessuto miocardico umano mediante scrittura di elettrofilatura per fusione di scaffold di policaprolattone e cellule cardiache derivate da hiPSC

Scopri la maturazione di cardiomiociti umani derivati da cellule staminali in biowires con stimolazione elettrica. Questo metodo migliora la maturità tissutale per applicazioni nell'ingegneria cardiaca e nel testing farmacologico.

Maturazione di staminali umane cardiomiociti derivati ​​dalle cellule in Biowires Utilizzando Stimolazione Elettrica

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