Name: Un metodo per testare l effetto dei segnali ambientali sul comportamento di accoppiamento in Drosophila melanogaster (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-07-17T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 13 s
Description: Scopri un metodo per testare l'effetto dei segnali ambientali sul comportamento di accoppiamento in Drosophila melanogaster. Questa tecnica permette di analizzare come i segnali chimici influenzano la frequenza di accoppiamento.

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Ringraziamo il Bloomington Drosophila Stock Center per gli stock fly; C. Gahr, JT Alkema e S. van Hasselt per il loro primo tentativo di sviluppare il dosaggio dell&#39;aria sotto pressione; Jasper Bosman per il consiglio sulla coltivazione del lievito; E Rezza Azanchi e Joel Levine per sviluppare in origine il monitoraggio del comportamento di accoppiamento Drosophila . JA Gorter è stato sostenuto da una borsa di studio della Neuroscience Research School di BCN / NWO. Questo lavoro è stato sostenuto in parte dall&#39;organizzazione olandese per la ricerca scientifica (NWO) (riferimento: 821.02.020) a JC Billeter.

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Gli autori non hanno interessi concorrenti per rivelare.

Questo protocollo descrive un test per verificare il comportamento di accoppiamento per 24 ore mentre controlla continuamente i segnali ambientali che una coppia di accoppiamenti è ipotizzata per utilizzare per determinare la frequenza di accoppiamento. È possibile aumentare la frequenza di accoppiamento in risposta all&#39;aria del lievito erogata attraverso un sistema di aria compressa quando il mezzo contiene anche il lievito ( Figura 2B ). Inoltre, una risposta simile in frequenza di accoppiamento p...

I comportamenti riproduttivi hanno generalmente elevati costi energetici, soprattutto per le femmine, che producono gameti più grandi rispetto ai maschi e devono scegliere con cura le condizioni per aumentare la loro prole in via di sviluppo. A causa del costo energetico, non sorprende che la riproduzione sia connessa alle condizioni nutrizionali. Questo è vero nella maggior parte, se non in tutti, animali compresi i mammiferi, la cui pubertà può essere ritardata dalla malnutrizione e il cui comportamento sessuale può essere influenzato negativamente dalla restrizione alimentare 1 . La riproduzione dell&#39;organismo del modello genetico Drosophila melanogaster è anche influenzata da condizioni nutrizionali. La corte dei maschi a livello più elevato in presenza di volatili alimentari 2 e le femmine sono più ricettive sessualmente in presenza di lieviti, un importante nutrimento per la produzione di uova e la sopravvivenza dei figli 3 , 4 , 5 . QuestoLa risposta riproduttiva evoluzionistica riposta all&#39;alimentazione offre l&#39;opportunità di studiare meccanismi che connettono la disponibilità di cibo ambientale alla riproduzione sessuale in un organismo geneticamente tractable e time-efficient. Infatti, il lavoro in D. melanogaster ha implicato il percorso dell&#39;insulina come un importante regolatore della connessione tra il comportamento alimentare e l&#39;accoppiamento 6 . Ha anche dimostrato che l&#39;atto di accoppiamento modifica la preferenza alimentare delle femmine nonché i neuroni chemiosensori associati 7 , 8 , 9 . È chiaro che le indicazioni alimentari influenzano i comportamenti riproduttivi in D. melanogaster . Questi effetti sembrano interessare principalmente le femmine, in particolare quelle che hanno già maturato 5 . Tuttavia, per testare questi effetti acuti delle condizioni ambientali, il dosaggio classico utilizzato per il comportamento femminile di accoppiamento potrebbeNon essere molto adatto a causa delle lunghe interruzioni tra gli episodi di accoppiamento. Nel classico test di rimozione, una femmina vergine prima si collega con un maschio e viene immediatamente isolata e presentata con un nuovo maschio 24-48 h più tardi. Questo saggio classico è stato usato con grande successo per identificare componenti dell&#39;eiaculato maschile che modificano il comportamento femminile e la risposta femminile 12 , 13 , 14 , 15 , 16 , 17 , 18 . Il test di accoppiamento continuo dimostrato qui è quindi un&#39;aggiunta a saggi classici di accoppiamento che possono essere utilizzati per studiare l&#39;effetto acuto delle condizioni ambientali sui comportamenti riproduttivi. Utilizzando il dosaggio continuo per il comportamento di accoppiamento che viene spiegato qui, abbiamo precedentemente mostrato che una coppia di mosche esposte al lievito rimateràSempre in un periodo di osservazione di 24 ore 5 , 19 , 20 , 21 , mentre mosche non esposte al cibo rimarrà solo una volta 5 . Questa scoperta può essere sconcertante alla luce di una grande parte della letteratura D. melanogaster che indica che le femmine non si ritraggono per diversi giorni dopo un accoppiamento iniziale (riveduto nei riferimenti 10 , 11 ). Tuttavia, questa discrepanza può essere facilmente spiegata da condizioni di analisi, in cui una femmina è isolata per uno a diversi giorni prima di fornire una nuova opportunità di accoppiamento. Se la coppia non si accoppia in questo periodo di osservazione, la donna è caratterizzata come non ricettivo. Inoltre, la frequenza di accoppiamento elevato non dovrebbe sorprendere, dato che i dati provenienti da mosche selvatiche mostrano che le femmine contengono spermatozoi da 4 a 6 maschi nei loro organi di stoccaggio; Così inDicating che le femmine naturalmente rimane diverse volte 22 , 23 . Qui dimostriamo l&#39;uso di questo saggio di accoppiamento continuo per scoprire come le mosche raccolgono e combinano informazioni sulle condizioni ambientali per modulare la frequenza di accoppiamento. Questo test consente di testare un numero relativamente elevato di coppie di maternità per studi genetici e di verificare l&#39;influenza dei segnali ambientali volatili e non volatili. Il dosaggio viene tipicamente eseguito per 24 h, ma può essere esteso a 48 h, consentendo la sperimentazione di segnali ambientali di ciclo come il ciclo scuro (LD). Ci dimostriamo questo test verificando l&#39;influenza dei segnali volatili da una coltura di lieviti all&#39;interno di un sistema di aria pressurata in combinazione con la disponibilità di nutrienti di lievito non volatili nel substrato alimentare. L&#39;impianto a pressione pressurizzata pompava continuamente segnali volatili in un&#39;arena di accoppiamento che contengonoSubstrato alimentare e una coppia di test (il cui comportamento di accoppiamento è monitorato). Per determinare ulteriormente le specificità attraverso le quali il lievito influenza l&#39;accoppiamento, si prova un importante composto volatile di lievito, cioè acido acetico 24 , in combinazione con un contenuto di amminoacidi che corrisponde a quello del lievito nel substrato alimentare, sotto forma di peptone (amino Acidi derivati ​​dalla digestione enzimatica delle proteine ​​animali). Insieme questi esperimenti dimostrano come l&#39;effetto dei segnali ambientali sul comportamento di accoppiamento di D. melanogaster possa essere testato con questo saggio.

<table><tbody><tr><td>Cabinet</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Armadio da cucina in acciaio inox</td><td>Horecaworld</td><td>7412.0105</td><td></td></tr><tr><td>LED bianchi</td><td>Lucky Light</td><td>ll-583wc2c-001</td><td>Bianco freddo, 20 mAmp e 2 V</td></tr><tr><td>LED rossi</td><td>Lucky Ligt</td><td>ll-583vc2c-v1-4da</td><td>Lunghezza d'onda tra 625 nm, 20 mAmp e 6 V</td></tr><tr><td>Resistore</td><td>Royal Ohm</td><td>CFR0W4J0561A50</td><td>560 ohm, 0,25 W, 250 V e 5 % di tolleranza</td></tr><tr><td>App per esposimetro per smartphone</td><td>Patrick Giudicelli</td><td></td><td>Light/Lux Meter FREE, versione 1.1.1</td></tr><tr><td>Timer di alimentazione</td><td>Alecto</td><td>TS-121</td><td></td></tr><tr><td>Staffe</td><td></td><td></td> metalliche <td>Angolo acuto 5 x 5 mm, 2 x 5450 e 1 x 1100 mm di lunghezza</td></tr><tr><td>Lastra</td><td></td><td></td> di vetro smerigliato <td>1190 x 545 x 5 mm</td></tr><tr><td>Carta da filtro fogli</td><td>Filtri LEE</td><td>220</td><td>Bianco frost</td></tr><tr><td>Piccola ventola</td><td>Nanoxia Silenzio profondo</td><td>4260285292828</td><td>80 mm Ventola per PC ultra-silenziosa, 1200 giri/min</td></tr><tr><td>Grande ventola</td><td>Nanoxia Silenzio profondo</td><td>4260285292910</td><td>120 mm Ventola per PC ultra-silenziosa, 650-1500 giri/min</td></tr><tr><td>Webcam</td><td>Logitech</td><td>950270</td><td>B910 HD WEBCAM OEM, Angolo: 78 gradi, risoluzione: 5 milioni di pixel&nbsp; &nbsp;</td></tr><tr><td>Software della fotocamera</td><td>DeskShare</td><td></td><td>Monitor di sicurezza pro</td></tr><tr><td>Nome</td><td>Azienda</td><td>Numero di catalogo</td><td>Comments</td></tr><tr><td>Fly rearing</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Bottiglie per l'allevamento di mosche</td><td>Flystuff</td><td>32-130</td><td>6oz Drosophila stock bottiglia</td></tr><tr><td>Flypad</td><td>Flystuff</td><td>59-114</td><td></td></tr><tr>Mosche <td></td><td></td><td>di tipo selvatico</td><td>Canton-S</td></tr><tr><td>Fiale per l'allevamento delle mosche</td><td>Dominique Dutscher</td><td>789008</td><td>Tubi di Drosophila stretti 25x95 mm</td></tr><tr><td>Incubatrice</td><td>Sanyo</td><td>MIR-154</td><td></td></tr><tr><td>Piastra riscaldante magnetica</td><td>Heidolph</td><td>505-20000-00</td><td>MR Hei-Standard</td></tr><tr><td>Agar</td><td>Caldic Ingredienti B.V.</td><td>010001.26.0</td><td></td></tr><tr><td>Glucosio</td><td>Gezond& wel</td><td>1019155</td><td>Destrosio/Druivensuiker</td></tr><tr><td>Saccarosio</td><td>Van Gilse</td><td></td><td>Zucchero semolato</td></tr><tr><td>Farina di mais</td><td>Flystuff</td><td>62-100</td><td></td></tr><tr><td>Germe di grano</td><td>Gezond & wel</td><td>1017683 Farina di</td><td></td></tr><tr><td>soia</td><td>Flystuff</td><td>62-115</td><td></td></tr><tr><td>Melassa</td><td>Flystuff</td><td>62-117</td><td></td></tr><tr><td>Lievito secco attivo</td><td>Red Star</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tegosept</td><td>Flystuff</td><td>20-258</td><td>100%</td></tr><tr><td>Peptone (bacto)</td><td>BD</td><td>211677</td><td></td></tr><tr><td>Acido acetico</td><td>Merck</td><td>1000631000</td><td>Glaciale, 100% </td></tr><tr><td>Piccolo petridish</td><td>Greiner bio-one</td><td>627102</td><td>35 x 10 mm con prese d'aria Film di</td></tr><tr><td>paraffina</td><td>Bemis NA</td><td></td><td>Parafilm</td></tr><tr><td>Name</td><td>Company</td><td>Catalog Number</td><td>Comments</td></tr><tr><td>Lievito e aria pressurizzata set-up</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Grande petridish</td><td>Gosselin</td><td>BP140-01</td><td>140 x 20,6 mm</td></tr><tr><td>Acqua ultrapura</td><td>Millipore corporation</td><td></td><td>MiliQ</td></tr><tr><td>Estratto di lievito</td><td>BD</td><td>212750</td><td></td></tr><tr><td>Agar (puro)</td><td>BD</td><td>214530</td><td>bacto</td></tr><tr><td>Glucosio (0(+)-glucosio monoidrato)&nbsp;</td><td>Merck</td><td>18270000004</td><td></td></tr><tr><td>Cappellini aperti</td><td>Schott</td><td>29 240 28&nbsp;</td><td>GL45</td></tr><tr><td>Setto in silicone</td><td>VWR</td><td>548-0662</td><td></td></tr><tr><td>Raccordi da paratia spinati</td><td>Nalgene</td><td>6149-0002</td><td></td></tr><tr><td>Diametro del</td><td></td><td></td> tubo in PVC grande<td>: esterno 1,2 cm e interno 0,9 cm</td></tr><tr>Diametro<td>del tubo</td><td></td><td></td> in PVC piccolo<td>: esterno 0,8 cm e interno 0,5 cm</td></tr><tr><td>Tubo da 15 ml</td> Pompa per acquario <td>Falcon</td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td>Precisione Sera</td><td></td><td>Sera air 110 plus, AC 220-240 V, 50/60 Hz, 3 W e pressione >100 mbar</td></tr><tr><td>Carbone attivo</td><td>Superfish</td><td>A8040400</td><td>Norit Carbone attivo Unità</td></tr><tr><td>filtrante monouso</td><td>Whatman</td><td>10462100</td><td></td></tr><tr><td>Pipette sierologiche</td><td>VWR</td><td>612-1600</td><td></td></tr><tr><td>Siringa</td><td>BD Plastipak</td><td>300013</td><td></td></tr><tr><td>Colla a caldo</td><td>Pattex</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Filtro per siringa</td><td>Whatman</td><td></td><td>FP 30/dimensione dei pori 0,45 mm CA-S</td></tr><tr><td>Name</td><td>Azienda</td><td>Numero di catalogo</td><td>Comments</strong</td></tr><tr><td>>Analysis</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Statistics software</td><td>R</td><td></td><td>lme4 pacchetto</td></tr></tbody></table>

un metodo per testare l &#39;effetto dei segnali ambientali sul comportamento di accoppiamento in<em&gt; drosophila melanogaster</em

A Method to Test the Effect of Environmental Cues on Mating Behavior in Drosophila melanogaster

L&#39;azionamento sessuale di un individuo è influenzato dal genotipo, dall&#39;esperienza e dalle condizioni ambientali. Come questi fattori interagiscono per modulare i comportamenti sessuali rimane poco compreso. In Drosophila melanogaster , i segnali ambientali, come la disponibilità di cibo, influenzano l&#39;attività di accoppiamento che offre un sistema tracciato per indagare i meccanismi che modulano il comportamento sessuale. In D. melanogaster , i segnali ambientali vengono spesso rilevati attraverso i sistemi gassosi e olfattivi chemosensoriali. Qui espostiamo un metodo per testare l&#39;effetto dei segnali chimici ambientali sul comportamento dell&#39;accoppiamento. Il dosaggio è costituito da una piccola arena di accoppiamento contenente un mezzo alimentare e una coppia di accoppiamenti. La frequenza di accoppiamento per ogni coppia viene monitorata continuamente per 24 ore. Qui esprimiamo l&#39;applicabilità di questo test per testare i composti ambientali da una sorgente esterna attraverso un sistema di aria compressa e la manipolazione dei componenti ambientali direttamente nell&#39;arena di accoppiamento. L&#39;uSe di un sistema di aria compressa è particolarmente utile per testare l&#39;effetto di composti molto volatili, mentre manipolazione di componenti direttamente nell&#39;arena di accoppiamento può essere utile per accertare la presenza di un composto. Questo saggio può essere adattato per rispondere a domande sull&#39;influenza delle indicazioni genetiche e ambientali sul comportamento e sulla fecondità di accoppiamento e su altri comportamenti riproduttivi maschi e femmine.

Utilizzando questo test continuo, il comportamento di accoppiamento e la frequenza di accoppiamento in specifiche possono essere determinati in condizioni ambientali sperimentali. Per controllare le condizioni ambientali, abbiamo trasformato un armadio in acciaio inox in una zona di prova, con una propria sorgente luminosa e diffusione che assicura un&#39;elevata abbondanza di luce e una minima quantità di riflessi dalla parte superiore delle arene di accoppiamento ( figura 1A</s...

Noi dimostriamo un dosaggio per analizzare i suggerimenti ambientali e genetici che influenzano il comportamento di accoppiamento nella mosca di frutta Drosophila melanogaster .

Un metodo per testare l &#39;effetto dei segnali ambientali sul comportamento di accoppiamento in<em&gt; Drosophila melanogaster</em

An individual's sexual drive is influenced by genotype, experience and environmental conditions. How these factors interact to modulate sexual behaviors ...

L'obiettivo generale di questo test comportamentale è quantificare l'effetto degli stimoli ambientali sui comportamenti riproduttivi, come il corteggiamento e l'accoppiamento. Questo metodo può contribuire a rispondere a domande fondamentali nel campo della biologia comportamentale e della neurogenetica, ad esempio riguardo all'influenza di fattori genetici e ambientali sui comportamenti riproduttivi e ai meccanismi che modulano tali comportamenti.Questa tecnica offre velocità e flessibilità nel testare un'ampia gamma di stimoli ambientali che influenzano la riproduzione, e ciò con un numero molto elevato di repliche. La procedura sarà dimostrata da Jenke Gorter, una studentessa laureanda del mio laboratorio.Iniziare l'esperimento preparando un litro di mezzo ricco per Drosophila. Versare un litro di acqua del rubinetto in un becher di vetro da due litri contenente una bacchetta magnetica di agitazione. Posizionare quindi il becher su una piastra magnetica riscaldante.Mantenere la miscelazione spenta e aumentare il calore fino a 300 gradi Celsius, finché non si raggiunge la temperatura di ebollizione. Accendere la miscelazione a 500 giri al minuto e aggiungere gli ingredienti all'acqua bollente. Attendere che il lievito schiumi vigorosamente.Quindi ridurre la temperatura della piastra riscaldante a 120 gradi Celsius. Dopo 10 minuti, abbassare ulteriormente la temperatura della piastra a 30 gradi Celsius. Lasciare mescolare la miscela finché non si sarà raffreddata a 48 gradi Celsius.Controllare la temperatura inserendo un termometro direttamente nell'alimento. Sciogliere due grammi di Tegosept in 10 millilitri di etanolo al 96%. Aggiungere la miscela e cinque millilitri di acido propionico uno molare al becher.Agitare per tre minuti. Riscaldare un ago fino a incandescenza in un becco di Bunsen e praticare un foro di 0,3 centimetri di diametro sulla parte superiore di una piastra di Petri di plastica di 3,5 centimetri per 1,0 centimetro.Quando si prepara il mezzo alimentare con composti odorosi, pipettare prima 30 microlitri del composto desiderato nella piastra per 1/2 delle piastre sperimentali. Lasciare l'altra metà delle piastre vuota per confronto. Utilizzando una pipetta sierologica da cinque millilitri, versare tre millilitri di mezzo alimentare, coprendo il fondo della piastra.Coprirlo con un panno di garza per prevenire contaminazioni e lasciare solidificare il mezzo per un'ora a temperatura ambiente. Successivamente, posizionare un coperchio sulle piastre e sigillare i coperchi con del nastro adesivo su due lati. Preparare piccoli tappi di pellicola di paraffina per coprire i fori delle piastre arrotolando pezzi di pellicola di paraffina in rotoli spessi zero virgola due centimetri.E quindi tagliarli in segmenti di zero virgola cinque centimetri. Praticare due piccoli fori nel settino per inserire con precisione raccordi a barbetta passaparete. Montare coperchi da quattro virgola cinque centimetri con un settino in silicone spesso zero virgola tre due centimetri.Collegare il tubicino in PVC a entrambe le uscite che escono dalla bottiglia e a una sola delle entrate che entrano nella bottiglia. Successivamente, collegare un tubo di vetro all'uscita di ciascuna bottiglia di coltura YPD, utilizzando un tubicino piccolo. Riempire il tubo con fibra di vetro.E sterilizzarlo in autoclave prima dell'uso. Avvolgere i tappi a tenuta e i tubi in carta di alluminio. E sterilizzarli in autoclave per 25 minuti a 120 gradi Celsius e una pressione di un bar.Immergere un’aspira sterile da 100 microliter in una delle colonie di lievito presente nella piastra di Agar YPD ed inserirla nel flacone contenente il mezzo liquido YPD sterilizzato. Chiudere con un tappo sterilizzato il flacone contenente il lievito e il mezzo liquido YPD inoculato, così come un flacone di controllo con mezzo YPD senza lievito, utilizzando tappi sterilizzati montati all’interno di un’uscita. Per prevenire la contaminazione del mezzo YPD con microrganismi, collegare un tubicino di dimensioni ridotte ad un filtro sterile per siringa da zero virgola quattro cinque micrometri, utilizzando un connettore plastico a innesto sul raccordo del tubicino, orientato verso il filtro.E un connettore filettato in plastica passante che esce dal filtro. Quindi collegare il tubo all'ingresso della bottiglia contenente la coltura YPD. Posizionare le bottiglie su piastre magnetiche separate.E agitare la soluzione a 100 giri/min, a temperatura ambiente, per 24 ore prima dell'inizio dell'esperimento. Collegare gli ingressi di entrambe le bottiglie a un tubo collegato all'aria compressa. Assicurarsi di collegare l'uscita della bottiglia con il lievito sperimentale a un tubo che smaltisca l'odore del lievito fuori dalla stanza dell'esperimento, per evitare interferenze con l'esperimento.Collegare un tubo in PVC al lato di uscita del tubo di vetro e indirizzarlo verso i fori inferiori della scatola dell'esperimento. Utilizzando un raccordo a T, con diametro esterno maggiore o uguale a zero virgola cinque centimetri, e brevi spezzoni di tubo in PVC di piccole dimensioni, collegare due pipette serologiche a ciascuna delle due uscite sui lati opposti. Fissare le pipette in piano sul foglio di carta bianca posizionato sotto le telecamere, all'interno della scatola di acciaio.Utilizzare una pipetta a bocca per posizionare una femmina sperimentale in una piccola capsula di Petri al tempo ZT sei. Lasciare che la mosca si abitui all'arena di accoppiamento per un'ora. Trascorsa un'ora, al tempo ZT sette, trasferire un maschio di tipo selvatico nella capsula di Petri.E fare clic su Avvia monitoraggio per 24 ore. Per l'esperimento con la pompa d'aria, posizionare la piastra in modo che l'uscita della pipetta sia collegata al foro di ingresso dell'arena di accoppiamento. Per analizzare il comportamento riproduttivo della coppia, selezionare e aprire tutte le immagini in un software di visualizzazione delle immagini.E sfogliarli in ordine cronologico. Riportare data, numero dell'esperimento, numero della piastra e ora di inizio in un foglio di calcolo all'interno della stessa riga. Prendere l'ora di inizio di ogni arena a partire dal momento in cui viene posizionata sotto la telecamera web.Registrare il timestamp dalle immagini. Segnare l'ora di inizio di ogni accoppiamento nella stessa riga del foglio di calcolo. Considerare un accoppiamento come un evento quando il maschio ha montato la femmina e la coppia rimane moderatamente immobile e nella stessa posizione per almeno cinque fotogrammi consecutivi.L'analisi dell'aria di lievito, separata per il mezzo di coltura, mostra che una coppia in accoppiamento non risponde agli odori del lievito quando non è presente lievito nel mezzo di coltura. Tuttavia, aumentano la frequenza di accoppiamento nell'aria di lievito quando il lievito viene aggiunto anche al mezzo di coltura. La ricettività femminile aumenta in presenza di acido acetico.Ma solo quando la peptone è presente nel mezzo, dimostrando che le mosche devono percepire simultaneamente aminoacidi e acido acetico per aumentare la loro frequenza di accoppiamento. Una volta padroneggiata, questa tecnica può essere allestita in sei ore. E l'analisi del comportamento può essere eseguita in cinque ore, se effettuata correttamente.

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Comportamento

Drosophila melanogaster è un sistema genetico e comportamentale del modello trattabile che è stato utilizzato per comprendere le basi molecolari e cellulari di molti importanti processi biologici per oltre un secolo 1. Drosophila è stata ben sfruttata per acquisire conoscenze in base genetica del comportamento mosca.

Metodi per test Drosophila Comportamento

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drosofila Condizionamento del corteggiamento: un metodo per testare l'apprendimento e la memoria nelle mosche

In questo articolo video, descriviamo un test automatico per misurare l'effetto della fame o sazietà su olfattiva dipende comportamento di ricerca di cibo nel frutto adulto Drosophila melanogaster.

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Qui, presentiamo un protocollo per quantificare l'evitamento degli individui stressati. Questo paradigma è potente ma facile da usare e può essere utilizzato per valutare l'influenza dei geni e dell'ambiente su un tipo di interazione sociale in Drosophila melanogaster.

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Le sostanze chimiche interferenti endocrine (EDC) rappresentano un grave problema per gli organismi e per gli ambienti naturali. La Drosophila melanogaster rappresenta un modello ideale per studiare gli effetti della CED in vivo. Qui, presentiamo metodi per studiare la perturbazione endocrina nella Drosophila, affrontando gli effetti della CED sulla fecondità, la fertilità, i tempi di sviluppo e la durata della vita della mosca.

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