5 febbraio 2018
Un approccio modulare alla sintesi di N- glicani per il collegamento ad un vetro rivestita di ossido di alluminio diapositiva (ACG) come è stato sviluppato un microarray glycan e suo utilizzo per la profilazione di un HIV anticorpo di neutralizzazione ampiamente è stata dimostrata.
L'obiettivo generale di questa metodologia è sviluppare un approccio chimico-enzimatico modulare per la sintesi di N-glicani, costruendo un nuovo microarray di glicani su un vetrino rivestito con ossido di alluminio per rilevare il legame eteroglicano degli anticorpi anti-HIV. Questo metodo può contribuire a rispondere a domande fondamentali nella glicobiologia, identificando glicani specifici di virus cellulari per ulteriori sviluppi. Il principale vantaggio di questo metodo consiste nella capacità di rilevare legami deboli e identificare una miscela di zuccheri che si legano a una proteina, come ad esempio un anticorpo proveniente da un paziente affetto da HIV.
Le implicazioni di questa tecnica si estendono alla diagnosi delle infezioni da influenza, poiché i cataboliti dell'acido sialico sono espressi sulle cellule epiteliali delle vie aeree umane e sono comuni durante i sintomi. Pertanto, il glycoarray rappresenterà uno strumento ideale per determinare la specificità dei sottotipi selvatici. Sebbene questo metodo possa fornire informazioni sulle specificità glicaniche degli anticorpi contro l'HIV, può essere applicato anche ad altri sistemi, come la diagnosi di diversi tipi di cancro basata sul modello di legame degli anticorpi sierici umani verso antigeni sierici specifici dell'uomo stampati sulla superficie.
Per iniziare questa procedura, aggiungere 2-5 micromoli di glicano precedentemente preparato in un pallone a fondo tondo da cinque millilitri. Aggiungere una barretta magnetica al pallone e chiuderlo con un setto di gomma. Aggiungere 400 microlitri di DMF appena essiccato e 10-25 micromoli del legante acido fosfonico al pallone.
Quindi, agitare la miscela di reazione a 800 giri al minuto per cinque ore. Al termine della reazione, evaporare il solvente utilizzando un evaporatore rotante sotto vuoto di cinque-dieci millibar e a 40 gradi Celsius. Successivamente, sciogliere la miscela di reazione essiccata in 0,5 millilitri di acqua e caricare sulla sommità di un letto di gel di poliacrilamide.
Eluisci i prodotti utilizzando acqua e raccogli frazioni da uno a due millilitri. Per verificare le frazioni raccolte mediante TLC, applica ciascuna frazione su una piastra TLC e immergi la piastra in molibdato di cerio e ammonio 0,25 molare. Riscalda la piastra colorata con una piastra riscaldante per visualizzare il prodotto.
Dopo aver combinato le frazioni contenenti il prodotto e aver congelato la soluzione, si biofolizza per ottenere il prodotto desiderato sotto forma di polvere bianca. Successivamente, sciogliere il prodotto essiccato in due millilitri di acqua e aggiungere idrossido di palladio. Collegare al pallone un palloncino contenente idrogeno e agitare la miscela di reazione a 800 giri al minuto per 15 ore in atmosfera di idrogeno.
Una volta terminata la reazione, filtrare la miscela attraverso un letto di Celite e lavare con due millilitri di metanolo e due millilitri di acqua distillata deionizzata. Successivamente, evaporare il solvente utilizzando un evaporatore rotante sotto vuoto a 300 millibar e a 40 gradi Celsius. Dopodiché, sciogliere la miscela grezza in circa un millilitro di acqua e caricarla sulla sommità di un letto di gel di poliacrilamide.
Eluire il prodotto con acqua e raccogliere frazioni da uno a due millilitri. Dopo aver combinato le frazioni contenenti il prodotto e aver congelato la soluzione, eseguire la liofilizzazione per ottenere il prodotto desiderato sotto forma di polvere bianca. Una volta che il prodotto è asciutto, caratterizzarlo mediante NMR e spettrometria di massa utilizzando ossido di deuterio come solvente.
Per l'anodizzazione superficiale, impostare un incubatore a temperatura controllata a quattro gradi Celsius. Successivamente, trasferire una soluzione acquosa di acido ossalico 0,3 M in un becher da 500 millilitri contenente una barretta magnetica per agitazione. Posizionare un'asta di platino lunga 10 centimetri come catodo nella soluzione.
Continuare a mescolare l'acido ossalico a 300 giri/min per tutta la durata del processo di anodizzazione. Nel software del tracciante di laboratorio, fare clic sul pulsante di configurazione e quindi su Scelta della funzione Tensione a rampa. Impostare la tensione iniziale e finale a 25,8 volt.
Impostare il numero di punti a 100, la compliance a uno e il ritardo di sweep a 1200 millisecondi. Quindi, fare clic su ok. Fissare una lamella di vetro rivestita di alluminio con la faccia rivolta verso il catodo.
Fare clic sul pulsante di esecuzione del test e osservare la misurazione della corrente. Dopo l'anodizzazione della superficie, lavare accuratamente il vetrino con acqua doppia distillata ed essiccare con gas azoto. Conservare il vetrino in una camera con umidità relativa del 30% fino all'uso successivo.
Per la fabbricazione, preparare soluzioni di 100 microlitri di tutti i glicani monovalenti in etilene glicole alla concentrazione di 10 millimolari. Diluire le soluzioni di glicani con il buffer di stampa per ottenere soluzioni di 100 micromolari. Per lo studio eteroligando, aggiungere cinque microlitri di glicano MAN-5 a cinque microlitri di ciascuna soluzione di glicano.
Trasferire i glicani preparati nella piastra microtitolazione a 384 pozzetti per il passaggio di stampa del microarray. Dopo aver inserito una piastra microtitolazione nell'apparecchio per la stampa di array, stampare gli microarray mediante pin robotico depositando 0,6 nanolitri di soluzioni di glicani su ciascun vetrino di vetro rivestito di alluminio. Successivamente, preparare 70 microlitri di anticorpo primario PG-9 in tampone PTSB contenente il 3% di BSA.
Quindi preparare 120 microlitri di anticorpo secondario coniugato a un marcatore fluorescente, Donkey Anti-human Immunoglobulin G, in tampone PBST contenente il 3% di BSA al buio. Mescolare PG9 e l'anticorpo secondario coniugato a un marcatore fluorescente in rapporto 1:1. Incubare quindi gli anticorpi pre-miscelati per 30 minuti a quattro gradi Celsius.
Dopo l'incubazione, inserire un vetrino rivestito di alluminio nella camera di incubazione per vetrini, suddivisa in 16 pozzetti. Trasferire 100 microlitri degli anticorpi pre-miscelati sull'array di glicani. Dopo aver incubato a quattro gradi Celsius per 16 ore, rimuovere gli anticorpi pre-miscelati dall'array di glicani mediante pipetta e quindi rimuovere la camera di incubazione per vetrini.
Lavare il vetrino in tampone PBST e acqua deionizzata. Quindi asciugare il vetrino mediante centrifugazione a 2000 ×g. Successivamente, aprire il software di analisi delle immagini del microarray.
Inserire il vetrino in vetro essiccato nello scanner di matrice con le caratteristiche disposte in matrice rivolte verso il basso. Fare clic sul menu delle impostazioni. Impostare la risoluzione dell'immagine a cinque micrometri per pixel.
Impostare la lunghezza d'onda a 635 nanometri con PMT 450 e potenza al 100%. Fare clic sul pulsante di scansione per iniziare l'acquisizione dell'immagine del vetrino. Infine, fare clic sull'icona del file per salvare l'immagine della scansione in formato TIF per l'analisi delle immagini. In questo studio, è stata sintetizzata una vasta gamma di N-glicani utilizzando una strategia chimico-enzimatica modulare.
Per dimostrare l'efficacia della strategia, una struttura isometrica biantennare è stata sintetizzata mediante metodi chimioenzimatici. La galattosilazione enzimatica del disaccaride 1, seguita dalla fucosilazione del trisaccaride 2, ha prodotto il tetrasaccaride desiderato 3. La saturazione completa e le modifiche all'estremità riducente dei blocchi costitutivi due e tre hanno permesso di ottenere le molecole desiderate quattro e cinque.
La glicosilazione stereoselettiva di tre gruppi O nel modulo quattro del trisaccaride sei ha fornito l'esasaccaride sette. La deprotezione e la reazione precedente al modulo cinque hanno prodotto il dodecasaccaride nove. La deprotezione globale ha consentito di ottenere il glicano 10, che è stato caratterizzato mediante NMR e spettrometria di massa.
Gli zuccheri contenenti una coda di pentilammina all'estremità riducente sono stati modificati con leganti acidi fosfonici e legati alla superficie rivestita di vetro alluminato mediante chimica fosfinidica. L'anticorpo neutralizzante ampiamente efficace contro l'HIV-1, PG9, è stato analizzato per la sua specificità verso gli zuccheri utilizzando matrici di omo- e eterozuccheri, dimostrando per la prima volta la sua interazione con eterozuccheri adiacenti nel loop V1/V2 della superficie PG120 dell'HIV-1. Una volta padroneggiata, questa tecnica può essere eseguita in 24 ore, dall'immobilizzazione degli zuccheri all'analisi beta, se eseguita correttamente.
Nel tentativo di eseguire questa procedura, è importante ricordare di utilizzare un vetrino in vetro ricoperto di alluminio anodizzato fresco per Glycan 10. Per l'esecuzione di questa procedura si utilizzano i vetrini per tecnici di laboratorio. La determinazione della costante corporea può essere effettuata al fine di quantificare le interazioni di legame tra il carboidrato e la proteina di interesse.
Dopo lo sviluppo di questa tecnica, essa ha aperto la strada ai ricercatori per comprendere meglio il ruolo dei carboidrati nelle malattie infettive in Kenya e contribuire a sviluppare nuove terapie contro le malattie. Non dimenticare che lavorare con agenti tossici può essere estremamente pericoloso e che precauzioni come l'indossare abbigliamento, occhiali e maschere devono essere sempre adottate durante l'esecuzione di esperimenti.
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Questo studio presenta un approccio chimico-enzimatico modulare per la sintesi di N-glicani su vetrini di vetro rivestiti con ossido di alluminio, facilitando le applicazioni di microarray di glicani. La metodologia è illustrata mediante il profilo di un anticorpo neutralizzante ampiamente attivo contro l'HIV, dimostrandone il potenziale in glicobiologia.
Questo metodo chemio-enzimatico di sintesi degli N-glicani consente una rapida generazione di librerie diversificate di glicani per l'analisi profilata degli anticorpi basata su microarray, colmando una lacuna fondamentale nel rilevamento di interazioni deboli ed eterogenee tra glicani e proteine rilevanti per la progettazione di vaccini contro l'HIV. Facilitando l'analisi dei comportamenti di legame con ligandi eterogenei di anticorpi ampiamente neutralizzanti come PG9, l'approccio supporta la riduzione del rischio meccanicistica nella scoperta precoce di immunogeni e migliora l'affidabilità predittiva nella selezione degli antigeni. La strategia modulare fornisce una piattaforma scalabile e riutilizzabile per la mappatura degli epitopi e la validazione degli obiettivi in percorsi di ricerca su malattie infettive e oncologia.
Il metodo si integra nel flusso di lavoro di scoperta, dalla validazione iniziale del target fino all'identificazione del lead, consentendo la caratterizzazione di anticorpi dipendenti dai glicani che orienta lo sviluppo preclinico successivo.