16 ottobre 2017
Vi presentiamo un protocollo per dimostrare un sistema di trasferimento di romanzo genica somatica che utilizza RIP-Tag; RIP-tva modello di topo per studiare la funzione dei geni in metastasi. Il retrovirus aviaria vengono consegnati intracardiacally per garantire il trasferimento genico in lesioni pre-maligne, non invasive delle cellule β del pancreas in topi adulti.
L'obiettivo generale di questa procedura è identificare e caratterizzare i fattori metastatici mediante trasferimento genico nel nuovo RIP-Tag; Modello di topo RIP-tva. Questo metodo può aiutare a rispondere a domande chiave nel campo delle metastasi tumorali, come l'identificazione dei driver e dei nuovi bersagli terapeutici. Il vantaggio principale di questo modello murino di cancro è quello di identificare i fattori metastatici mediante trasferimento genico somatico in legioni di precursori delle cellule beta pancreatiche.
Inizia raccogliendo una capsula di 15 centimetri di cellule DF1 che producono virus per topo da infettare. Per prima cosa, raccogli il terreno dai piatti confluenti da 15 centimetri. Quindi rimuovere i detriti cellulari mediante centrifugazione a bassa velocità in una centrifuga pre-raffreddata per 10 minuti a 1650 volte G e quattro gradi Celsius.
Successivamente, trasferire il surnatante virale in provette per ultracentrifuga in poliallomero. Centrifugare in un'ultracentrifuga per 1,5 ore a 9540 volte G e quattro gradi Celsius. Rimuovere quanto più surnatante possibile dalle provette dell'ultracentrifuga.
Quindi aggiungere il PBS alla provetta dell'ultracentrifuga per ottenere la sospensione virale finale da 100 microlitri per piatto da 15 centimetri. Coprire le provette con pellicola di laboratorio e risospendere il pellet virale invisibile vorticando per due minuti a velocità media. Quindi far oscillare le provette dell'ultracentrifuga a quattro gradi Celsius per un'ora o durante la notte.
Dopo l'incubazione, trasferire la sospensione virale in una provetta da microcentrifuga e procedere alla titolazione del virus. Iniziare la procedura di titolazione assicurandosi che le cellule DF1 inserite in piastre di coltura tissutale a 12 pozzetti abbiano raggiunto la confluenza del 30%. Per ogni determinazione del titolo virale è necessaria una piastra a dodici pozzetti.
Iniziare una diluizione seriale di dieci volte dei surnatanti virali mescolando prima cinque microlitri di surnatante virale con 495 microlitri di terreno di crescita in una provetta da microcentrifuga per ottenere una diluizione da dieci alla seconda. Agitare brevemente per alcuni secondi. Quindi trasferire 40 microlitri dei dieci alla seconda diluizione in 360 microlitri di terreno di crescita in una provetta da microcentrifuga per i dieci alla terza diluizione.
Agitare brevemente per alcuni secondi. Continuate questo processo per diluire a dieci al quarto e dieci al quinto. Successivamente, aliquotare 2,25 millilitri di terreno di crescita in ciascuno dei cinque tubi di polistirene da sei millilitri.
E nominali rispettivamente dieci al sesto, dieci al settimo, dieci all'ottavo, dieci al nono e dieci al decimo. Mescolare 0,25 millilitri della dieci-quinta diluizione con 2,25 millilitri di terreno di crescita nella provetta di polistirene da sei millilitri per la decima alla sesta diluizione. Agitare brevemente per alcuni secondi.
Ripetere la procedura per dieci alla settima, dieci all'ottava, dieci alla nona e dieci alla decima diluizione. Quindi, rimuovere il terreno di coltura originale dalle cellule DF1 sulle piastre a 12 pozzetti. E aggiungere un millilitro di virus diluito in ogni pozzetto in duplicato.
Lasciare che le cellule crescano a 37 gradi Celsius e 5 CO2 per almeno sette giorni. Inizia la procedura di infezione anestetizzando prima un topo RIP-Tag RIP-tva di sette settimane. Applicare un lubrificante per gli occhi su entrambi gli occhi per prevenire l'essiccazione della cornea.
Radere i peli dalla cavità toracica del mouse RIP-Tag RIP-tva, posizionare il mouse sulla schiena con il petto rivolto verso l'alto su una carta assorbente da banco da laboratorio sopra uno scalda coccole. Eseguire un pizzicamento delle dita dei piedi per controllare che l'animale non risponda e per confermare l'effetto dell'anestesia completa. Estendi gli arti anteriori e fissali con del nastro adesivo.
Contrassegnare il torace del topo per l'iniezione. Segnare la posizione a metà strada tra l'incisura sternale e la parte superiore del processo xifoideo e leggermente a sinistra anatomicamente dello sterno. Quindi strofinare la parete toracica anteriore con uno scrub allo iodio povidone o uno scrub alla clorexidina, seguito da un alcol isopropilico al 70% o da una spugna di garza imbevuta di etanolo al 70%.
Aspirare 50 microlitri d'aria in una siringa da insulina sterile da 28,5 gauge per creare spazio tra lo stantuffo e il menisco di una siringa da 500 microlitri. Prelevare 100 microlitri di virus. Lo spazio aereo senza alcun liquido sulla parete è fondamentale per vedere il polso cardiaco.
Tenere l'ago in posizione verticale, tenere tesa la pelle del topo con una mano e inserire l'ago nella posizione contrassegnata. Quando appare un impulso di sangue rosso vivo nella siringa, interrompere l'avanzamento dell'ago e fissare la profondità dell'ago nel mouse con una mano. Usa l'altra mano per spingere con cautela e lentamente lo stantuffo per erogare la sospensione virale in un periodo di circa 60 secondi.
Erogare 10-20 microlitri ogni volta che appare un polso di sangue rosso vivo nella siringa. L'ingresso continuo di sangue ossigenato rosso nel mozzo dell'ago trasparente indica il corretto posizionamento dell'ago nel ventricolo sinistro. Dopo l'ultimo tentativo del bottino di somministrare la sospensione virale e prima di vedere il successivo impulso rosso di sangue, ritrarre rapidamente l'ago dalla cavità toracica.
Applicare una leggera pressione sul sito di iniezione per almeno un minuto per ridurre il sanguinamento. Quindi spostare con cautela il mouse su un termoforo o sotto una lampada termica fino a quando non è completamente cosciente. I topi RIP-tva sono stati infettati con il retrovirus RCASBP-Bcl-xL indicato a sette settimane di età e soppressi a 16 settimane di età.
Questa fotografia mostra la colorazione rappresentativa della sinaptofisina dei tumori neuroendocrini pancreatici metastatici nei linfonodi pancreatici. Qui i topi RIP-Tag RIP-tva sono stati infettati con l'indicato RCASBP-RHAM B.Questa fotografia mostra la colorazione rappresentativa della sinaptofisina dei tumori neuroendocrini pancreatici metastatici nei linfonodi pancreatici. Qui la colorazione della sinaptofisina si osserva nel fegato dopo l'iniezione del virus RCASBP-RHAMM B.
È importante ricordare che il titolo di più di dieci alle otto unità infettive per millilitro è richiesto per l'infezione in vivo delle cellule TVA proliferanti nel topo RIP-Tag, RIP-tva e RCASBP, rettore virale retro, può fornire CDNA fino a 2,5 kilobasi. Dopo lo sviluppo di questo modello murino, ha aperto la strada a una scoperta di cambiamento di paradigma che BCL-xL promuove effettivamente le metastasi del cancro indipendentemente dalla sua funzione antiapoptotica.
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Questo articolo presenta un protocollo per un nuovo sistema di trasferimento genico somatico che utilizza il modello murino RIP-Tag; RIP-tva per studiare le funzioni geniche nella metastasi. Il metodo prevede la somministrazione intracardiaca di retrovirus aviari per colpire lesioni cellulari β pancreatiche pre-maligne nei topi adulti.
Questo protocollo consente l'identificazione sistematica di geni che guidano la metastasi in un modello ben definito di tumore neuroendocrino del pancreas, colmando una lacuna fondamentale nella validazione preclinica dei bersagli. Permettendo il trasferimento somatico di geni in lesioni premaligne, esso supporta la riduzione dei rischi meccanicistici dei potenziali bersagli terapeutici prima di costosi studi in vivo. La penetranza tumorale del 100% del modello e le sue fasi di progressione definite offrono una piattaforma riproducibile per valutare la funzione genica nella metastasi, fornendo direttamente informazioni utili alle decisioni di conferma del bersaglio e di selezione del portafoglio nella scoperta di farmaci oncologici.
Il metodo si inserisce nel percorso di scoperta che va dalla generazione di ipotesi sul target alla validazione preclinica, consentendo in particolare la validazione funzionale di geni associati alla metastasi identificati mediante analisi omiche o campagne di screening.