18 agosto 2017
Per piccole specie chirali, Coulomb esplosione Imaging fornisce un nuovo approccio per determinare la manualità delle singole molecole.
L'obiettivo generale di questo esperimento è quello di utilizzare l'esplosione di Coulomb per visualizzare la manualità delle singole molecole in fase gassosa. Questo metodo è un nuovo approccio per affrontare importanti questioni in stereochimica. In particolare, permette di determinare la configurazione assoluta di piccole specie chirali e la loro dinamica fotoindotta.
Il vantaggio principale di questa tecnica è che l'energia e la direzione di emissione di tutti i frammenti di carica da una rottura molecolare possono essere registrate in coincidenza. Abbiamo sviluppato questa tecnica di imaging multicoincidenza per un periodo di oltre 25 anni per saperne di più e misurare i segreti della stereochimica sulla base di singole molecole. Il cuore dell'esperimento è una configurazione per l'imaging coincidente di ioni e un laser a femtosecondi come questo apparecchio COLTRIMS.
Il raggio laser a femtosecondi entra da una stanza adiacente. Le basi della tecnica COLTRIMS sono rappresentate in questa animazione. Un fascio molecolare entra nella camera a vuoto attraverso un ugello e uno skimmer.
Un raggio laser attraversa il fascio molecolare ad angolo retto e porta alla ionizzazione e alla successiva frammentazione. Il campo elettrico nello spettrometro guida gli ioni verso il rivelatore dove vengono registrati i tempi e le posizioni dei loro impatti. Preparare la configurazione per il funzionamento e controllare il vuoto nella camera di interazione.
La pressione dovrebbe essere inferiore a 10 rispetto al negativo nove ettopascale. Con il laser acceso e a bassa intensità, eseguire l'allineamento del raggio. Assicurarsi che il raggio entri nella camera dell'esperimento e venga riflesso dallo specchio di messa a fuoco della camera.
Utilizzare una scheda del raggio per verificare che i raggi in entrata e in uscita coincidano spazialmente. Bloccare il raggio laser prima di continuare. Prepararsi ad accendere lo spettrometro e gli alimentatori del rivelatore.
Innanzitutto, spegnere i vacuometri nella camera di interazione. Quindi, collegare l'uscita del segnale amplificato delle piastre a microcanali a un oscilloscopio veloce. Ora accendi gli alimentatori ad alta tensione per il rivelatore e il campo elettrico nello spettrometro.
Torna a lavorare con il raggio laser prima sbloccandolo. Avere un filtro di polarizzazione ruotabile pronto per regolare l'intensità del raggio. Posizionare un misuratore di potenza nel raggio appena prima della camera e utilizzare il filtro per regolare l'intensità del raggio da meno di 10 a 14 watt per centimetro quadrato.
Per questa configurazione, ciò corrisponde a 100 milliwatt sul misuratore di potenza. Rimuovere il misuratore di potenza e osservare la traccia dell'oscilloscopio. È fondamentale controllare la qualità del segnale e le impostazioni del rivelatore.
Se si registra troppo rumore, le vere coincidenze sono molto difficili da trovare. La frequenza del segnale dovrebbe essere circa il 5% della frequenza di ripetizione del laser. Il segnale dovrebbe avere un picco di diverse centinaia di millivolt senza alcun squillo.
La larghezza dei segnali dalla piastra a microcanali non deve superare i 10 nanosecondi. Ora passa al software di acquisizione dati. Lì, visualizza un'immagine del rilevatore, che dovrebbe essere un cerchio con un punto diffuso al centro a causa del laser.
A questo punto, fornire una barra di argon da una bombola di gas come fonte per il getto di gas. Osservare l'immagine del rivelatore dal vivo nel software di acquisizione dati mentre si regola lo specchio di messa a fuoco. Se appare un punto stretto, è stata individuata una sovrapposizione tra il getto molecolare e il raggio laser.
L'obiettivo è massimizzare la sovrapposizione del fascio del getto e aumentare il numero nel punto del getto. Dopo aver ottimizzato la sovrapposizione del fascio di getto, preparare il campione per l'uso nell'esperimento. Questo campione si trova già in un cilindro compatibile con la configurazione.
Innanzitutto, raffreddare il cilindro in azoto liquido per uno o due minuti per evitare perdite di campione. Collegare il cilindro raffreddato al sistema a getto e serrare il collegamento per renderlo a prova di vuoto. Quindi, aprire la valvola per pompare il sistema per alcuni secondi per rimuovere l'aria.
Attendere che il campione torni a temperatura ambiente prima di aprire la valvola dell'ugello a getto. La pressione nella camera di origine dovrebbe aumentare. Torna al software di acquisizione dati.
Al computer, verificare che una macchia di getto sia ancora visibile e identificare i picchi più importanti nello spettro del tempo di volo. Continuare a lavorare nel software di acquisizione dati. Per l'analisi, creare un grafico utilizzando il tempo di volo del primo ione rilevato lungo l'asse x e il tempo di volo del secondo ione rilevato lungo l'asse y.
Quando due frammenti sono stati rilevati per coincidenza, appaiono come regioni con molti conteggi. Se due frammenti si sommano alla massa madre, soddisfano la conservazione della quantità di moto e si presentano come linee diagonali nette. Eseguire un'analisi del tempo di volo di quattro particelle con un grafico creato sommando i tempi di volo per il primo e il secondo colpo da utilizzare come valore dell'asse x e sommando i tempi di volo per il terzo e il quarto colpo da utilizzare per il valore dell'asse y.
Le posizioni e le forme delle strutture risultanti rivelano informazioni sulle masse e sui momenti. Regolare la potenza del laser in modo da ottimizzare il numero di conteggi nello spettro. Quando si ottimizza la velocità per la rottura pertinente, dobbiamo tenere presente che la velocità complessiva non deve superare il 10% della frequenza di ripetizione del laser per evitare false coincidenze.
Questi dati provengono da una miscela racemica sintetica di bromoclorofluorometano. Vengono mostrati solo gli eventi in cui è stata registrata una frammentazione in cinque ioni caricati singolarmente. L'asse orizzontale è calcolato utilizzando un triplo prodotto dei vettori di quantità di moto degli ioni alogeni.
L'enantiomero S si trova a sinistra dell'istogramma. Il diagramma illustra i dati angolari associati. L'enantiomero R si trova a destra dell'istogramma insieme a un diagramma per illustrare il suo angolo.
La frequenza di ripetizione del laser era di 100 kilohertz e la misurazione richiedeva circa 11 ore. Questa animazione mostra come sia possibile utilizzare i dati vettoriali di quantità di moto registrati dei frammenti per trasformare il loro orientamento casuale nei getti in un sistema di coordinate molecolari. Dopo aver visto questo video, dovreste avere un'idea di come viene eseguita l'imaging dell'esplosione di Coulomb utilizzando la tecnica COLTRIMS.
La registrazione dei vettori di quantità di moto di quattro o cinque frammenti in coincidenza consente una visione dettagliata della molecola. L'estrazione di queste informazioni dai dati grezzi, tuttavia, richiede un grande sforzo nella fase di analisi. I segreti delle scienze della vita nel mondo delle molecole si verificano su una scala temporale di un miliardesimo di miliardesimo di secondo e il nostro metodo può rivelare e visualizzare queste dinamiche veloci.
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Questo studio utilizza l'immagine dell'esplosione coulombiana per analizzare la chiralità di singole molecole in fase gassosa. Questo approccio innovativo affronta questioni fondamentali nella stereochimica, in particolare riguardo a specie chirali di piccole dimensioni.
L'imaging mediante esplosione coulombiana consente la determinazione diretta della chiralità molecolare a livello di singola molecola, offrendo un approccio innovativo all'analisi stereochemica nelle fasi iniziali della scoperta. Questa capacità supporta la validazione degli obiettivi fornendo informazioni strutturali inequivocabili sui composti chirali, elemento fondamentale per ridurre i rischi associati all'attività biologica enantioselettiva. La tecnica aumenta la sicurezza predittiva nell'identificazione dei composti promettenti risolvendo le interazioni dipendenti dallo stereoisomero che influenzano l'efficacia e la sicurezza dei farmaci.
Il metodo si integra nel percorso di scoperta, dalla validazione iniziale della proteina bersaglio fino all'identificazione del composto capostipite, fornendo una conferma strutturale che orienta lo screening successivo e la valutazione preclinica.