1 settembre 2017
Questo lavoro presenta un protocollo passo-passo per la valutazione imparziale stereologiche dei numeri di un neurone delle cellule dopaminergiche nel nigra di substantia del mouse utilizzando attrezzature di microscopia standard (cioè, un microscopio ottico, una tabella di oggetto motorizzato (x, y, z aereo) e software di pubblico dominio per analisi digitale delle immagini.
L'obiettivo generale di questo protocollo è quello di descrivere la stima stereologica basata sulla progettazione del numero di cellule dopaminergiche nel SN di topo utilizzando apparecchiature di microscopia standard. Questo metodo è utile per stimare il numero di neuroni dopaminergici nella substantia nigra del topo per la ricerca preclinica sulla malattia di Parkinson utilizzando una stereologia imparziale basata sul disegno. Il vantaggio principale di questa tecnica è che può essere realizzata con apparecchiature di microscopia standard senza la necessità di una configurazione stereologica completa disponibile in commercio.
A dimostrare la procedura sarà Louisa Friez, un tecnico del mio laboratorio. Inizia posizionando un cervello di topo fissato con paraformaldeide in una matrice cerebrale e facendo un taglio di più 0,74 millimetri dal bregma. Trasferire la parte caudale del cervello, compreso il SN, in 4% di PFA in 0,1 molari e fissare durante la notte a quattro gradi Celsius.
Il giorno successivo, sostituire il PFA con il 30% di saccarosio in PBS 0,1 molare e incubare per altri due giorni a quattro gradi Celsius per crioproteggere il campione. Dopo due giorni in cui il cervello è affondato nel saccarosio, posizionare il tessuto in un criomold riempito con un composto a temperatura di taglio ottimale e congelare lentamente il tessuto in ghiaccio secco liquido raffreddato con isopentano. Utilizzare un criostato per tagliare in serie sezioni criogeniche da 30 micron sul piano coronale.
Segna l'emisfero destro praticando un piccolo foro nella regione superiore del tronco encefalico. Raccogli quattro serie di sezioni a partire da meno 2,46 millimetri dalla bregma e terminando a 4,04 millimetri dalla bregma. Trasferire ogni serie di sezioni in una provetta riempita con crioprotettore e conservare a meno 20 gradi Celsius.
Acquisizione di immagini digitali di sezioni SN colorate immunoistochimicamente con tirosina idrossilasi utilizzando un software di imaging accoppiato a un microscopio. Inizia determinando il montaggio e lo spessore effettivi delle sezioni in tre siti di conteggio selezionati casualmente per sezione. Per prima cosa, fare clic su view top offset per definire la parte superiore della sezione.
Quindi fare clic su stop view in alto. Successivamente, fare clic su Visualizza offset inferiore e quindi fare clic su Interrompi visualizzazione inferiore. Annotare lo spessore della sezione.
Calcolate la zona di protezione sottraendo tre micron dall'offset superiore e digitate il risultato nella casella dell'offset superiore. Quindi sottrarre l'altezza di 13 micron del dissettore ottico dal numero di offset superiore e digitare il risultato nella casella di offset inferiore. Selezionare i seguenti parametri, passaggi 14, dimensione 1.00.
Selezionare la directory in cui salvare il file. Fare clic sulla sequenza per avviare l'acquisizione. Dopo che le immagini sono state acquisite, fare clic su elaborazione e selezionare i seguenti parametri, tutti i piani dalla sequenza, il montaggio e le caselle veloci e di cucitura con una sovrapposizione dell'immagine del 10%Inizia a cucire le immagini facendo clic su Inizia.
In questo modo verranno generate immagini dello stack per l'analisi. Per iniziare, apri l'immagine facendo clic su file e apri. Impostare la scala dell'immagine utilizzando il comando analizza e imposta scala.
Da questo passaggio, modifica la dimensione definita da pixel a micron. Seleziona il comando plugin, quindi griglia, quindi griglia per inserire casualmente una griglia. Seleziona la casella di offset casuale.
Definisci la dimensione di un quadrato all'interno della griglia come 130 micron per 130 micron per essere uguale a 16.900 micron quadrati. Cambia il tipo di immagine da 16 bit a colore RGB facendo clic sull'immagine, quindi digita e poi colore RGB. Individua la substantia nigra pars compacta.
Circonda la regione con lo strumento pennello utilizzando una larghezza del pennello di 11. Annulla il comando di impostazione della scala facendo clic su analizza, quindi su imposta scala, quindi fai clic per rimuovere la scala per calcolare in pixel anziché in micron. Acquisisci uno screenshot, salva il file immagine e apri il nuovo file con ImageJ.
Selezionare il pennello e una larghezza del pennello di 25. Contrassegnare ogni quadrato della griglia che entra in contatto con l'SN per il posizionamento di un dissettore ottico. Selezionare un quadrato della griglia che includa parti del SN. Misurare l'angolo superiore sinistro del quadrato con il cursore in ImageJ per definire le coordinate x e y iniziali.
Seleziona il modello di foglio di calcolo intitolato Posizione del dissettore ottico e calcola la posizione del dissettore ottico. Quindi stimare il numero di celle utilizzando il calcolo del foglio di calcolo del conteggio delle celle come descritto nella parte scritta del protocollo. Questa immagine a bassa potenza mostra una sezione del cervello di topo dopo la colorazione TH per i neuroni dopaminergici.
Un ingrandimento più elevato rappresenta i neuroni dopaminergici TH positivi. Il riquadro mostra la regione in scatola con un ingrandimento maggiore. Questa immagine mostra una serie di sezioni SN colorate con TH che coprono l'intero SN del topo dal rostrale alla caudale.
Ogni sezione è separata dalla sezione consecutiva da 120 micron. Il numero di neuroni TH positivi nel SN di topo destro e sinistro è stato stimato utilizzando il metodo mostrato in questo video e utilizzando un sistema stereologico disponibile in commercio. Come si vede qui, entrambi i metodi hanno portato a conteggi cellulari comparabili e non ci sono state differenze significative tra i set di dati.
Non dimenticare che lavorare con la paraformaldeide può essere estremamente pericoloso e che durante l'esecuzione di questa procedura è necessario prendere sempre precauzioni come l'uso di dispositivi di protezione individuale come guanti protettivi. Dopo aver visto questo video, dovresti avere una buona comprensione di come eseguire una stima stereologica imparziale del numero di neuroni dopaminergici nella substantia nigra del topo utilizzando il metodo della frazione ottica e l'attrezzatura standard per microscopia.
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In questo articolo viene descritto un protocollo per la stima stereologica imparziale del numero di neuroni dopaminergici nella sostanza nera del topo, utilizzando strumenti microscopici standard. Il metodo mira a facilitare la ricerca preclinica nel morbo di Parkinson fornendo un approccio affidabile per la quantificazione cellulare, senza necessità di sistemi stereologici specializzati.
La quantificazione accurata della perdita di neuroni dopaminergici nella sostanza nera rappresenta un punto finale fondamentale nella ricerca preclinica sul morbo di Parkinson, fornendo direttamente informazioni per la validazione degli obiettivi e la riduzione del rischio meccanicistico delle strategie neuroprotettive. Questo protocollo consente una stima stereologica affidabile e priva di bias mediante l'uso di apparecchiature microscopiche standard, riducendo la dipendenza da sistemi stereologici specializzati e aumentando l'accessibilità per i flussi di lavoro di biologia della scoperta. Fornendo dati quantitativi e riproducibili sul conteggio cellulare, il metodo supporta una maggiore affidabilità predittiva nelle fasi iniziali dei test delle ipotesi sugli obiettivi e nelle decisioni di priorità del portafoglio.
Il metodo si inserisce nel percorso di scoperta che va dalla verifica dell'ipotesi sul bersaglio all'identificazione di un composto promettente fino alla valutazione dell'efficacia preclinica, fornendo un risultato quantitativo di istologia che contribuisce alla comprensione dei meccanismi d'azione e alla conferma del bersaglio.