Name: Una connessione Wireless, interfaccia bidirezionale per registrazione In Vivo e la stimolazione dellattività neurale a comportarsi liberamente ratti (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-11-07T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 41 s
Description: Scopri un sistema telemetrico wireless bidirezionale per registrazione neurale multicanale e stimolazione in ratti liberamente comportanti. Questo metodo consente di studiare le relazioni causali tra attività cerebrale e comportamento in tempo reale.

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Questo lavoro è stato supportato da un grant di ricerca dalla Federazione tedesca delle associazioni di ricerca industriale (AiF; concessione numero: KF2780403JL3).

tutti i protocolli e gli esperimenti erano in conformità con le attuali linee guida europee (2010/63/UE) e approvato dalle autorità regionali (Regierungspräsidium Gießen, MR 20/35 Nr.25/2015).
 1. animali <ol><li>House maschi ratti adulti di Wistar (200-250 g) in gruppi di 3-4 in condizioni standard di laboratorio per almeno una settimana prima dell'intervento chirurgico per consentire acclimatazione.</li>
	<li>Due giorni dopo la chirurgia, ratti di casa a coppie. Copertura singole gabbie con coperchi acrilici ad alte. Evitare convenzionale coperchi fatta di griglia del metallo, poiché gli impianti possono rimanere incastrati, aumentando il rischio che diventano danneggiato e/o instabile nel corso tempo.</li>
</ol> 2. La chirurgia stereotassica <ol><li>prima di iniziare l'intervento chirurgico, organizzare e preparare le attrezzature e i materiali seguenti: <ol><li>ottenere apparecchiature chirurgiche sterili composto forbici sterili, forcipe smussato-fine, spatole, chirurgiche Clippers, trapano odontoiatrico e cotone boccioli.</li> <li>ottenere farmaci e sostanze chimiche tra cui xylocaine, isoflurano, povidone iodio e 70% di etanolo, tramadolo cloridrato, salve occhio dexpantenol, perossido di idrogeno 3%.</li>
		<li>Ottenere materiale di fissaggio comprese viti in acciaio inox, resina acrilica, colla ultravioletta e tappo protettore.</li>
		<li>Ottenere un'unità microelettrodo, composta da (i) un singolo elettrodo di registrazione (vetro di quarzo isolato microelettrodo di tungsteno platino, con forma della punta conica, diametro esterno: 80 µm, punta conica, impedenza a 1 kHz: 500 kOhm) o un tetrodo (vetro di quarzo coibentato microelettrodo di platino/tungsteno 4 core, diametro esterno: 100 µm, punta conica, impedenza a 1 kHz: 500-800 kOhm); (ii) un elettrodo di stimolazione (filo di platino/iridio (platino 90%, 10% Iridio), core diametro 125 µm, diametro esterno 150 µm, impedenza &#60; 10 kOhm) collegata a una piastra di contatto e (iii) un elettrodo di riferimento di filo di platino (diametro dell'albero, 100 µm; Figura 1A).</li>
		<li>Ottenere portaelettrodo incollato con colla solubile in acqua all'unità microelettrodo e testato per la funzionalità almeno 2 h in anticipo ( Figura 1B).</li>
		<li>Ottenere un convenzionale sistema tethered composto da un preamplificatore differenziale, un amplificatore principale e un passa-banda filtro amplificatore per le registrazioni.</li>
		<li>Ottenere materiale aggiuntivo, come guanti, riscaldamento pad, siringhe e fisiologica.</li>
		<li>Ottenere casa gabbie (L x W x h: 42 cm x 26 cm x 38 cm).</li>
	</ol></li> <li>Procedura Nota: l'impianto dell'elettrodo viene eseguito durante una chirurgia stereotassica convenzionale nell'ambito dell'anestesia isoflurano.
	<ol><li>Garantire che lo sperimentatore è indossare guanti, mascherina chirurgica e camice da laboratorio.</li>
		<li>Iniziare mettendo l'animale in una camera di induzione di anestesia (isoflurano 4-5%, flusso di ossigeno 1 L/min, durata ~ 5 min).</li>
		<li>Test per la perdita di riflessi (punta e coda riflessi) con il forcipe per confermare l'anestesia profonda.</li>
		<li>Collocare la testa dell'animale in una maschera di anestesia fissata attorno al bar incisivo superiore della cornice stereotassica e regolare anestesia (isoflurano 2-3%, flusso di ossigeno 0,7-0,8 L/min).</li>
		<li>Difficoltà e allineare orizzontalmente l'animale &#39; la testa nell'apparato stereotactic usando orecchio bar e bar incisivo superiore</li>
		<li>Radere il campo chirurgico utilizzando clippers chirurgica o una forbice e sterilizzare con povidone iodio.</li>
		<li>Metti l'animale su un rilievo di riscaldamento per prevenire l'ipotermia e curare gli occhi con dexpantenol pomata di occhio per impedire loro di essiccazione.</li>
		<li>Iniettare xylocaine (0.3-0.4 mL, per via sottocutanea, s.c.) al centro del campo chirurgico.</li>
		<li>Test per la perdita dei riflessi ancora.</li>
		<li>Fare una piccola incisione (1,5 cm) con un bisturi nel mezzo del campo chirurgico per esporre il cranio. Separare la pelle delicatamente e rimuovere il tessuto residuo utilizzando pinze, forbici e spatola.</li>
		<li>Pulire accuratamente il cranio utilizzando bastoncini di cotone rivestita con perossido di idrogeno.</li>
		<li>Trapano 4-5 piccoli fori (4,7 mm) nel cranio per il fissaggio delle viti in acciaio inox.</li>
		<li>Collegare unità/pinza porta elettrodo microelettrodo al preamplificatore e per il micromanipolatore stereotassica ( Figura 1B e 1C).</li>
		<li>Praticare un foro (circa 7 mm) nel cranio sopra l'area di destinazione utilizzando le coordinate da un Atlante del cervello secondo l'animale utilizzato. Nello studio presente, posizionare le punte dell'elettrodo ha puntate il colliculus inferiore utilizzando le seguenti coordinate, con il bregma che serve come riferimento: anteriore/posteriore, &#8722; 8,8 mm; mediale/laterale, 1,5 mm; e dorso/ventrale, 3,5 mm 14.</li>
		<li>Assorbire qualsiasi sangue con cotton fioc.</li>
		<li>Introdurre verticalmente l'unità microelettrodo, fino a quando le punte dell'elettrodo raggiungere l'area di destinazione.</li>
		<li>Posizionare il cavo di terra lungo le viti in acciaio inox e sotto la pelle.</li>
		<li>Monitor attività di spike e attentamente regolare posizionamento degli elettrodi con micromanipolatore fino a raggiungere una zona di neuroni attivi nella struttura di destinazione e rilevare attività neurale con un rapporto segnale-rumore, adatto per l'ordinamento di spike.</li>
		<li>Fissare l'unità microelettrodo al cranio con colla ultravioletta e coprire la piastra di contatto e viti con resina acrilica.</li>
		<li>Iniettare soluzione fisiologica (mL 1 i.p.) e tramadolo (25 mg/kg, s.c.) per prevenire la disidratazione e garantire l'analgesia post-operatoria, rispettivamente.</li>
		<li>Scollegare l'unità microelettrodo dalla pinza porta elettrodo con un pennello imbevuto di acqua.</li>
		<li>Stop anestesia, rimuovere con cautela il ratto dalla cornice stereotassica. Staccare il preamplificatore del microelettrodo unità</li>
		<li>Collegare il cappuccio di protezione sull'unità di microelettrodi impiantati e scollegarlo solo durante le procedure sperimentali.</li>
		<li>Tenere gli animali in coppia nella casa-gabbia dal secondo giorno dopo l'intervento chirurgico.</li>
		Comportamento di <li>animali monitor al giorno per l'infezione della ferita possibile, peso corporeo, stato di salute e generali per un periodo di 7 giorni dopo la chirurgia. Dopo questo periodo di recupero, eseguire in vivo elettrofisiologia ed esperimenti comportamentali. 
		Nota: La procedura chirurgica ha una durata compresa tra 60-90 min. Durante la chirurgia, tail flick riflessi devono essere continuamente monitorati e regolato, anestesia, se necessario.</li>
	</ol></li></ol> 3. In Vivo Elettrofisiologia <ol><li>attrezzature e procedura Nota: registrazioni elettrofisiologiche e lo stimolo sono effettuati utilizzando il TWS.
	<ol><li>Ottenere una fase testa con un preamplificatore integrato e la batteria collegata (registrazione quattro canali; intervallo di input di registrazione analogica: 0-12 mV pk-pk; stimolazione output: ±625 µA; L x W x h: 24 x 22 x 12 mm; Peso: 6 g senza batteria, 12 g con batteria; Scaricamento della batteria tempo fino a 1 h). Questa fase testa è idonea ad essere collegata direttamente all'unità di microelettrodi impiantati tramite un connettore multipolare in miniatura ( Figura 2).</li>
		<li>Ottenere una batteria (accumulatore agli ioni di litio, 3.7-4.2 V DC, 230 mAh, 27 x 20 mm x 6 mm, tempo di funzionamento di 1 h) montato sopra la fase testa ( Figura 2). Se necessario utilizzare sostituzione batteria ricaricabile con capacità di 450 mA per circa 2,5 ore di funzionamento. Assicurarsi che una luce verde si accende in fase di testa mentre la batteria è collegata all'it.</li>
		<li>Ottenere un ricetrasmettitore (ricevitore-trasmettitore) collegato ad un personal computer tramite porta USB standard e permette il funzionamento senza fili per fino a 5 m ( Figura 2E).</li>
		<li>Ottenere un personal computer con software TWS per stimolazione elettrica e la registrazione dell'attività neurale ( Figura 3 e Figura 4 ).</li>
		<li>Ottenere un preamplificatore tethered e un sistema di acquisizione dati utilizzato durante la chirurgia (Vedi punto 2.1.5) per le registrazioni e un generatore di stimolo per la stimolazione, al fine di confrontare l'efficacia di TWS in svegli i ratti una settimana dopo l'intervento chirurgico. 
		Nota: La stimolazione elettrica è fornita e attività extracellulare da singoli neuroni è registrata dalla stessa unità microelettrodo impiantato utilizzando entrambi i sistemi. I parametri di stimolazione (intensità di corrente, impulso e frequenza) devono essere regolati per ogni animale secondo la regione del cervello mirata. Nello studio presente, un 150-250 µA, 2500 Hz corrente è stato utilizzato per stimolare il colliculus inferiore.</li>
	</ol></li> <li>Comportamentale dosaggi Nota: una volta che nessuna barriera metallica è stato introdotto tra il ricetrasmettitore e la fase testa animale, TWS è applicabile a una vasta serie di attività comportamentali. Come esemplare test comportamentali, è stato usato in campo aperto per misurazione di attività comportamentale generale e l'elevato e labirinto, un test standard per valutare il comportamento del tipo di ansia in roditori 15. Una videocamera era posizionata centralmente sopra campo aperto ed elevata plus maze per registrazioni comportamentali.
	<ol><li>Prima del test comportamentali, gestire ogni animale per tre giorni consecutivi (5 min ogni giorno). Prima di ogni periodo di gestione è possibile collegare la fase testa con batteria all'unità microelettrodo precedentemente impiantati. Non eseguire alcuna registrazione o stimolazione durante la manipolazione.</li>
		<li>Campo <ol><li>posto il ratto nel centro del campo aperto (40 x 40 cm x 40 cm; rosso luce ~ 30 Lux) e permettono di esplorare l'apparecchio per almeno 5 min sotto registrazione neurali.</li>
			<li>Determinare la soglia di fuga - intensità di corrente minima produzione di corsa o il salto. Nello studio presente, fornire una stimolazione di 2500 Hz ad alta frequenza (larghezza di impulso: 100 µs; intervallo di impulso: 100 µs) per il colliculus inferiore a intervalli di 1 min aumentando l'intensità di corrente di 20-50 µA passaggi fino a quando i ratti hanno mostrato sfuggire comportamento.</li>
			<li>Tornare ratto alla sua gabbia a casa, pulire il campo aperto (0,1% soluzione di acido acetico) e asciugare it. 
			Nota: Al fine di confrontare l'efficacia di stimolazione di TWS con il tradizionale sistema legato la procedura sopra descritta è stata eseguita utilizzando entrambi i sistemi.</li>
		</ol></li> <li>Elevati plus labirinto Nota: il più-labirinto utilizzato in questi esperimenti era fatta di acrilico grigio e consisteva di due braccia aperte (50 cm lunghezza x larghezza 10 cm) e due chiusi braccia (50 cm lunghezza x 10 cm di larghezza, con pareti alte 40 cm) che esteso da una centrale pla TForm elevata 50 cm sopra il piano 16.
		<ol><li>Posto il ratto nel centro del lato più-labirinto verso un braccio aperto e permettono di esplorare liberamente l'apparato sotto registrazione costante durante 5 min.</li>
			<li>Registrare il numero di voci in, e il tempo trascorso tra le braccia aperte e chiuse per un periodo di 5 min.</li>
			<li>Restituire il topo a sua gabbia a casa, pulito (0,1% soluzione di acido acetico) e asciugare il labirinto prima di ogni test.</li>
		</ol></li> <li>Perfusione e istologia <ol><li>anestetizzare il topo con xilazina/ketamina (150 mg/kg e 100 mg/kg, rispettivamente; i.p.).</li>
			<li>Collegare l'unità elettrodo impiantato al cavo di stimolazione e applicare la stimolazione elettrica (corrente intensità 50 µA, larghezza di impulso: 100 µs; intervallo di impulso: 100 µs) durante 90 s al fine di produrre una piccola lesione intorno alla punta dell'elettrodo.</li>
			<li>Scollegare il cavo di stimolazione e irrorare l'animale attraverso il ventricolo sinistro con fisiologica seguita da 200 mL di paraformaldeide al 4% in tampone fosfato di sodio 0.1 M, pH 7,3 (per una descrizione dettagliata, vedere riferimento 17 ).</li>
			<li>Rimuovere il cervello e immergerlo per 4 h in fissativo fresco a 4 ° C.</li>
			<li>Assicurarsi che la temperatura della camera del criostato principale è a -20 ° C.</li>
			<li>Congelare il cervello su ghiaccio secco e tagliarle a 50 µm seriale sezioni coronali utilizzando un criostato.</li>
			<li>Macchia le sezioni con cresylviolet al fine di individuare le posizioni delle punte dell'elettrodo, secondo l'Atlante di Paxinos e Watson 14.</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
</ol>

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</ol>

I co-autori Uwe Thomas e Sascha Thomas sono i proprietari di "Thomas registrazione GmbH", che sta sviluppando i prodotti utilizzati in questo studio e relativi al tema di ricerca generali descritto in questa carta. Inoltre, il co-autore Dirk Hoehl riceve il reddito da "Thomas registrazione GmbH". Questa circostanza potrebbe essere utile finanziariamente se l'azienda è riuscita nei suoi prodotti che sono legati a questa ricerca di marketing. L'apparecchiatura di "Thomas RECORDING" utilizzato in questo studio è stato dedicato al dipartimento di Neuroscienze comportamentali, sperimentale e psicologia biologica - Philipps Universität Marburg senza alcun addebito.

Qui, è stato presentato un sistema di registrazione e stimolazione wireless ampiamente accessibile per studi elettrofisiologici e comportamentali in animali liberi di muoversi. TWS è stato convalidato in dosaggi comportamentale utilizzando il colliculus inferiore come una struttura del modello. L'approccio TWS ha diversi vantaggi rispetto a quelli esistenti. In primo luogo, il sistema utilizza un singolo portatile TWS testa-palco dotato di un preamplificatore e una batteria ricaricabile, che permette registrazioni stabile a lungo termine per 1 h con la stessa batteria e operazioni wireless distanza per fino a 5 m. in secondo luogo, la fase di testa TWS è leggera e compatta, peso 12 g compresa la batteria ed è stato sviluppato per impedire il ratto da rimozione della fase di testa e masticare i fili. È stato tollerato dagli animali dal alcun impatto sul repertorio comportamentale umano con e senza il TWS fase testa è stata osservata, rendendo il sistema applicabile a una vasta serie di attività comportamentali. In terzo luogo, il sistema trasmette in tempo reale. In quarto luogo, attraverso la registrazione simultanea bidirezionale e stimolazione dell'attività neurale, il sistema fornisce un sofisticato strumento per valutare i rapporti causali tra pattern di attivazione specifiche del cervello e comportamento, superando così le carenze dei sistemi unidirezionali. Questa caratteristica rende il metodo particolarmente prezioso per il campo di stimolazione cerebrale profonda, che richiede solitamente la valutazione precisa, il monitoraggio e la regolazione dei parametri di stimolazione durante gli esperimenti comportamentali a lungo termine. Infine, un'unità di microelettrodi cronicamente impiantabile è stata sviluppata con integrato di registrazione, stimolazione ed elettrodo di riferimento che può essere facilmente impiantato durante una chirurgia stereotassica convenzionale. Da questo punto di vista, TWS è un sistema wireless integrato che aumenta la riproducibilità degli esperimenti di stimolazione e registrazione. La qualità di registrazione di TWS è stata indicata per essere simile alla qualità di registrazione ha reso con un sistema di registrazione via cavo commercialmente disponibile (vedere Figura 5).
È ampiamente noto che la stimolazione elettrica del colliculus inferiore nel ratto suscita chiaro comportamento di fuga caratterizzata da corsa o il salto, che imita le reazioni alla paura hanno suscitato da sfide ambientali11,12, 13. Questo comportamento è stato indotto nel presente studio stimolando il colliculus inferiore utilizzando il TWS o il tradizionale sistema legato. Al fine di testare l'efficacia della stimolazione di TWS, le soglie di fuga – intensità corrente minima produzione di corsa o il salto – sono state confrontate usando entrambi i sistemi. Ratti con la tappa di testa TWS sono capaci di correre velocemente, saltare e arrampicarsi fuori campo aperto, ossia l'indicazione comportamento tipico di fuga, con una maggiore libertà di movimento. D'importanza, le soglie di fuga erano simili rispetto al tradizionale sistema tethered. Insieme, un paradigma piuttosto impegnativo è stato utilizzato per testare la resilienza di TWS, che ha acquistato padronanza in modo spensierato.
TWS è adatta anche per esperimenti di stimolazione elettrica cronica, poiché l'unità microelettrodo impiantato permette l'uso cronico. TWS permette di regolare i parametri correnti di stimolazione molto proprio in un modo di rilevare con precisione la frequenza e la quantità di stimolazione attuale che è efficace per suscitare una risposta comportamentale. Inoltre, lo stesso animale è stato stimolato con la stessa soglia di corrente 3 giorni più tardi e la stessa risposta comportamentale desiderata è stato tratto. Ciò suggerisce che il tessuto intorno alla punta dell'elettrodo di stimolazione non è stato danneggiato dallo stimolo attuale che richiede solitamente la stimolazione aumentata ampiezza corrente con stimolazioni ripetute al fine di suscitare la stessa risposta comportamentale.
Inoltre, è possibile ridurre significativamente il tempo sperimentale perché il micro TWS-stimolatore aggiorna in tempo reale i parametri di stimolazione quando lo sperimentatore li modifica nell'interfaccia utente grafica. Altri stimolatori elettrici19 utilizzato per necessità di ricerca preclinica per essere riprogrammato per aggiornamento del parametro di stimolo. In questi casi, il dispositivo è programmato tramite il tethering l'animale tramite cavo a un'unità di programmazione. Questo non è necessario quando si utilizza il TWS.
Infine, la batteria è fissata alla parte superiore del palco testa TWS e collegati elettricamente alla fase testa tramite un connettore a due poli magnete per facile cambio della batteria. Il vantaggio è che durante l'esperimento è possibile cambiare la batteria senza scollegare la fase testa TWS dall'unità elettrodo impiantato, che è molto più confortevole per l'animale. Durante lo studio presente, abbiamo usato una batteria in cui il tempo di funzionamento è solo 1 h. Nel caso in cui l'esperimento richiede più di 1 h, è consigliabile avere una batteria carica aggiuntiva disponibile. TWS è collegabile alla sostituzione batterie ricaricabili con capacità di (i) 230 mA per tempo di funzionamento di 1 h o (ii) 450 mA per circa 2,5 ore di funzionamento. Entrambi i tipi di batterie possono essere ricaricati completamente in 15 min.
In sintesi, lo studio presente descrive il funzionamento di TWS progettato per stimolazione neurale e la registrazione da comportarsi liberamente piccoli animali. Un insieme completamente integrato di unità impiantabile microelettrodo, fase testa, ricevitore e il software è presentato come bene. La qualità della registrazione senza fili e stimolazione è simile a che del tethered registrando il sistema con il vantaggio di essere più confortevole, leggero e sicuro per l'animale. Di conseguenza, TWS può essere utilizzato per sostituire il sistema legato poiché esso non limita la mobilità dell'animale e fornisce un metodo flessibile per controllare la stimolazione e registrazione neurale in circostanze dove altri approcci sarebbe difficile o impossibile. Di conseguenza, TWS può essere uno strumento importante per indagare su attività come elettrica nei circuiti neurali definiti genera alcune forme di comportamento, una questione fondamentale in neuroscienze.

Una questione fondamentale in neuroscienza è attività come elettrica nei circuiti neurali definiti genera alcune forme di comportamento. In vivo elettrofisiologia è una tecnica potente per affrontare questa domanda, fornendo uno strumento per registrare o stimolare attività elettrica nel cervello, mentre animali eseguono determinate attività comportamentali. Tuttavia, gli attuali sistemi affidano frequentemente cavo legato registrazioni1,2, probabilmente ridurre la mobilità e prevenire la piena espressione del repertorio comportamentale umano. Inoltre, per la maggior parte unidirezionale sistemi sono usati, permettendo sia registrazione3,4,5 o stimolazione6,7 di attività neurale, ma non allo stesso tempo o stesso bersaglio, rendendo difficile distinguere le relazioni causali tra pattern di attivazione specifiche del cervello e comportamento. Solo pochi wireless, sistemi bidirezionali per le preparazioni di in vivo sono attualmente disponibili. Tuttavia, essi sono solitamente pesante (40-50 g) e sono composti da due distinte unità portatile, cioè una fase testa e uno zaino collegato per alimentazione basata su batteria alimentazione8,9,10, rendendoli meno flessibile e aumentando il rischio di scollegamento del cavo per esempio durante la self-toelettatura comportamento. Nessuno dei suddetti sistemi wireless offrono impiantabili microelettrodo unità per acquisire un concetto integrato completo dell'attività neurale durante l'intero comportamento etologico valido con alta riproducibilità delle condizioni sperimentali.
Qui, è stato introdotto un nuovo wireless, il dispositivo bidirezionale per registrazioni in vivo e la stimolazione dell'attività neurale a comportarsi liberamente ratti. Il sistema Wireless di Thomas (TWS) opera attraverso un rimovibile testa monostadio che può trasmettere un'attività multicanale con fino a quattro canali di registrazione indipendente e può essere mirata per la stimolazione elettrica del cervello in tempo reale. Inoltre, un'unità di microelettrodi cronicamente impiantabili compatibile con TWS è stata sviluppata che permette la registrazione e stimolazione neurale. Un'interfaccia utente grafica del software TWS, per registrazione e stimolazione inoltre è presentata. Questo studio descrive l'implementazione di convalida e in vivo dell'intero dispositivo.
Al fine di convalidare il sistema TWS colliculus inferiore è stato scelto come una struttura neurale di destinazione perché un'evidente risposta comportamentale può essere suscitata dalla sua stimolazione elettrica. È ampiamente noto che la stimolazione elettrica del colliculus inferiore suscita incondizionate 'paura-come' le risposte comportamentali in ratti, come vigilanza, posture lateralmente, inarcando la schiena, congelamento e il comportamento di fuga (volo). Questo modello di risposta imita le reazioni alla paura evocati dalle sfide ambientali, quali un evento dannoso percepita, attacco o minaccia alla sopravvivenza11,12,13. È stato presupposto che l'essere in grado di suscitare tale comportamento chiaro ed inequivocabile fornirebbe una vera sfida per TWS.

<table><tbody><tr><td>Thomas Wireless System (TWS) versione 2.0</td><td>Thomas RECORDING GmbH</td><td>AN001165</td><td>Il Thomas Wireless System (TWS) versione 2.0 è un sistema di telemetria multicanale portatile con computer portatile, un sistema operativo Microsoft Windows preinstallato e il software di controllo TWS. Il TWS include: 4 canali a basso rumore e amplificatore principale programmabile con larghezza di banda fissa, canale singolo costante Stimolatore di corrente per l'applicazione di impulsi di corrente bifasici, microstimolatore programmabile via software, sistema di connettori impiantabili e un'unità di base per il montaggio su un animale. Il sistema viene fornito con un ricetrasmettitore con connessione alla porta USB per laptop o personal computer desktop, il software di controllo in esecuzione con sistema operativo Microsoft Windows. Il sistema TWS può essere utilizzato per la stimolazione neurale extracellulare e la registrazione in piccoli animali che si comportano liberamente (ad es. ratti, porcellini d'India). Questo sistema può essere adattato per essere utilizzato anche in animali più grandi (ad esempio i primati).</td></tr><tr><td>Software per il sistema wireless Thomas (TWS)</td><td>Thomas RECORDING GmbH</td><td>incluso nel AN001165</td><td>Il software per il sistema wireless Thomas funziona con il sistema operativo Microsoft Windows e fornisce l'interfaccia utente grafica (GUI) per il sistema wireless Thomas (TWS). L'interfaccia grafica TWS offre il controllo completo delle funzioni TWS: registrazione a 4 canali e stimolazione a 1 canale.</td></tr><tr><td>Tetrodo impiantabile per la registrazione (4 canali) e la stimolazione (canale singolo)</td><td>Thomas RECORDING GmbH</td><td>AN001132</td><td>Tetrodo impiantabile per la registrazione (4 canali) e la stimolazione (canale singolo) per l'uso con Thomas Wireless Systems (TWS). Tetrodo di registrazione Specifiche: Fibra di tetrodo Materiale: fibra di tungsteno di platino isolata in vetro di quarzo, diametro esterno della fibra di tetrodo: 100&micro; m, forma della punta D, impedenza 0,5-0,8 MOHm; Elettrodo di riferimento: forma della punta: D; Impedenza: 300-500kOhm; Materiale: platino/tungsteno isolato in quarzo; Specifiche dell'elettrodo di stimolazione: Materiale della fibra: platino/iridio, diametro: 125&micro; m, isolato laccato, forma della punta : D, impedenza: < 10kOhm, le dimensioni dell'elettrodo possono essere specificate dall'utente finale</td></tr><tr><td>Microelettrodo impiantabile per la registrazione (canale singolo) e la stimolazione (canale singolo)</td><td>Thomas RECORDING GmbH</td><td>AN001118</td><td>Microelettrodo impiantabile per la registrazione (canale singolo) e la stimolazione (canale singolo) per l'uso con Thomas Wireless Systems (TWS). Specifiche dell'elettrodo di registrazione: materiale della fibra dell'elettrodo: fibra di tungsteno platino isolata in vetro di quarzo, diametro esterno della fibra dell'elettrodo: 80&micro; m/250&micro; m (specificare), forma della punta D, impedenza 0,5-0,8 MOHm; Elettrodo di riferimento: forma della punta: D; Impedenza. 300-500kOhm; Materiale: platino/tungsteno isolato in quarzo; Specifiche dell'elettrodo di stimolazione: Materiale della fibra: platino/iridio, diametro: 125&micro; m, isolato laccato, forma della punta : D, impedenza: < Supporto da 10kOhm</td></tr><tr><td>per impianto di elettrodi</td><td>Thomas RECORDING GmbH</td><td>AN000838</td><td>Asta metallica piegata speciale per l'impianto di microelettrodi per portaelettrodi standard. L'asta viene utilizzata per sostenere un elettrodo impiantabile. L'elettrodo impiantabile è fissato all'asta con la speciale colla idrosolubile Thomas RECORDING (AN001080). (Il portaelettrodo non è incluso)</td></tr><tr><td>Alimentatore di ricambio per l'accumulatore Thomas Wireless System (3,7V/230mAh)</td><td>Thomas RECORDING GmbH</td><td>AN001208</td><td>Batteria ricaricabile di ricambio (accumulatore) per il sistema Thomas Wireless con una capacità di 230mA per circa 1 ora di funzionamento. (dimensioni: 27 mm x 20 mm x 6 mm, peso circa 6 g)</td></tr><tr><td>Alimentatore di ricambio per l'accumulatore Thomas Wireless System (3,7V/450mAh)</td><td>Thomas RECORDING GmbH</td><td>AN001209</td><td>Batteria ricaricabile di ricambio (accumulatore) per Thomas Wireless System con una capacità di 450mA per più di 1h di funzionamento. (dimensioni: 48 mm x 30 mm x 4 mm, peso circa 11 g)</td></tr><tr><td>Caricabatterie per accumulatore ricaricabile Thomas Wireless System (TWS)</td><td>Thomas RECORDING GmbH</td><td>AN001207</td><td>Caricabatterie alimentato a rete per accumulatori ricaricabili Thomas Wirless System (TWS) (AN001209 e AN001209)</td></tr><tr><td>Colla idrosolubile</td><td>Thomas RECORDING GmbH</td><td>AN001080</td><td>La colla per elettrodi idrosolubile Thomas RECORDING è un prodotto appositamente selezionato per l'uso con microelettrodi impiantabili nella ricerca neuroscientifica. Le sue proprietà uniche garantiscono un collegamento rigido tra l'elettrodo e il dispositivo di montaggio, sebbene sia facilmente rimovibile con acqua calda. La colla per elettrodi idrosolubile Thomas RECORDING può essere utilizzata immediatamente, senza alcuna preparazione che richiede tempo. La colla per elettrodi idrosolubile Thomas RECORDING non è dannosa per l'uomo, gli animali o l'ambiente. Quantità: 1 scatola da 10 grammi</td></tr><tr><td>Preamplificatore differenziale miniaturizzato</td><td>Thomas RECORDING GmbH</td><td>AN000329</td><td>Il preamplificatore differenziale miniaturizzato, modello MDPA-2 è un preamplificatore di ingresso differenziale a 2 canali progettato per registrazioni a basso rumore da tessuti eccitabili. È destinato alla registrazione extracellulare in combinazione con l'impianto di microelettrodi impiantabili per applicazioni di animali in movimento libero con il sistema wireless Thomas (TWS). Il preamplificatore differenziale miniaturizzato a 2 canali (MDPA-2) è collegato ai microelettrodi impiantabili per fornire lo stadio di amplificazione iniziale decuplicato. Idealmente, gli elettrodi Thomas RECORDING isolati in vetro-quarzo in platino/tungsteno vengono utilizzati per ottenere risultati di registrazione ottimali con elevate ampiezze di segnale e bassi livelli di rumore. L'MDPA-2 dispone di ulteriori ingressi per elettrodi di riferimento e di messa a terra comuni.</td></tr><tr><td>Cavo di collegamento</td><td>Thomas RECORDING GmbH</td><td>AN000330</td><td>Cavo di collegamento per collegare il preamplificatore differenziale miniaturizzato Thomas (MDPA-2) a un amplificatore principale e a un accumulatore.</td></tr><tr><td>Alimentatore ricaricabile per il preamplificatore miniaturizzato</td><td>Thomas RECORDING GmbH</td><td>AN000328</td><td>Alimentatore accumulatore ricaricabile per il preamplificatore differenziale miniaturizzato (MDPA-2).</td></tr><tr><td>Caricabatterie per accumulatori (US)</td><td>Thomas RECORDING GmbH</td><td>AN000167</td><td>Caricabatterie per l'alimentazione elettrica AN000328 (connettore della presa di corrente USA)</td></tr><tr><td>Caricabatterie per accumulatore (UE)</td><td>Thomas RECORDING GmbH</td><td>AN000168</td><td>Caricabatterie per l'alimentazione elettrica AN000328 (connettore della presa di rete UE)</td></tr><tr><td>Preamplificatore differenziale/amplificatore principale/filtro passa-banda</td><td>Thomas RECORDING GmbH</td><td>AN000677</td><td>TREC AC Main Amplifier (LabAmp-03) è un amplificatore principale differenziale a canale singolo per applicazioni neurofisiologiche (ad es. registrazione extracellulare con microelettrodi). Questo strumento è progettato per funzionare con il preamplificatore differenziale miniaturizzato, modello MDPA-2. Il singolo canale del LabAmp-03 contiene uno stadio amplificatore differenziale ad alto guadagno e basso rumore seguito da filtri a bassa frequenza e ad alta frequenza. L'amplificatore ha due diversi amplificatori di filtro, un filtro a singola unità di attività (SUA) &ndash; e un amplificatore con filtro di potenziale di campo locale (LFP), entrambi sono collegati in parallelo nel percorso del segnale. La modalità di registrazione offre due livelli di guadagno del segnale (x10, x100) in un primo stadio e 4 livelli aggiuntivi (x5, x10, x25 e x50) in uno stadio finale dell'amplificatore. Ogni amplificatore ha caratteristiche passa-banda diverse per l'attività di una singola unità (SUA) 500Hz&hellip; 20kHz e potenziali di campo locale (LFP) 0,1Hz&hellip; 140Hz. Un monitor audio e un discriminatore a finestra sono integrati nel dispositivo. Il LabAmp-03 ha un monitor audio integrato con altoparlante. Questa unità fornisce la riproduzione audio di segnali elettrofisiologici. L'unità combina un amplificatore audio in un pacchetto compatto e robusto. Questo è particolarmente adatto per monitorare l'attivazione neurale e le contrazioni muscolari. L'ingresso del monitor audio è collegato internamente all'uscita dell'amplificatore SUA-Filter. Il LabAmp-03 viene fornito con alimentatore esterno per un intervallo di tensione di funzionamento con alimentazione di rete di 100-240 V CA/50-60 Hz.</td></tr><tr><td>Oscilloscopio USB</td><td>Thomas RECORDING GmbH</td><td>AN001096</td><td>USB PC Oszilloskop, 2 canali. Questo oscilloscopio per PC a 2 canali è perfetto per l'uso mobile su un laptop e per l'installazione permanente in armadi di controllo, apparecchiature industriali e molte altre applicazioni in cui è richiesto un oscilloscopio piccolo, leggero e potente. Questo oscilloscopio è collegato all'uscita del segnale dell'amplificatore principale per la visualizzazione dell'attività extracellulare registrata durante l'implanazione dei microelettrodi impiantabili per il sistema wireless Thomas (TWS). L'utente può acquisire i dati di misura tramite le diverse interfacce dati direttamente sul PC con software per PC incluso.</td></tr><tr><td>Sistemi</td><td>multicanale Sistemi multicanale</td><td>STG3008-FA</td><td>Il generatore di stimolo per la stimolazione guidata da corrente (STG) e tensione svolge tre funzioni: stimolazione guidata dalla corrente, stimolazione guidata dalla tensione, controllo e temporizzazione. L'STG è disponibile con 2, 4 o 8 canali di uscita indipendenti. Dotato di unità di isolamento integrate per ogni canale di uscita, l'STG è in grado di fornire qualsiasi forma d'onda arbitraria.</td></tr><tr><td>Cappuccio di protezione per l'elettrodo</td><td>Thomas RECORDING GmbH</td><td>AN001193</td><td>Cappuccio di protezione per elettrodo impiantabile per il sistema wireless Thomas</td></tr><tr><td>Attrezzatura</td><td></td><td></td> chirurgica <td>Forbici, pinze smussate, spatole, tosatrici chirurgiche, trapano dentale e cotton fioc</td></tr><tr><td>Farmaci e prodotti chimici</td><td></td><td></td><td>isoflurano, xilocaina, tramadolo cloridrato (Tramadol-CT, AbZ-Pharma GmbH, Ulm, Germania), collirio dexpantenolo (Bepanthen, Bayer AG, Leverkusen, Germania), perossido di idrogeno al 3%, iodio povidone (Betaisodona, Mundipharma GmbH, Limburgo, Germania) ed etanolo al 70%;</td></tr><tr><td>Materiale di fissaggio, tra cui</td><td></td><td></td><td>viti in acciaio inossidabile (BN650 M1,2x5; 4,7 mm), resina acrilica (Paladur, Heraeus Holding GmbH, Hanau, Germania), colla ultravioletta (Cyberbond U3300, Cyberbond Europe GmbH, Germania) e protezione del cappuccio (Thomas Recording GmbH, Giessen, Germania);</td></tr><tr><td>Materiale</td><td></td><td></td> aggiuntivo <td>Guanti, termoforo, siringhe e soluzione fisiologica.</td></tr><tr><td>Strumento stereotassico per piccoli animali (SASI)</td><td>Thomas RECORDING GmbH</td><td>AN000287</td><td>Il modello deve essere scelto in base all'animale (ratto, porcellino d'India, scimmie, ecc.) utilizzato nello studio</td></tr><tr><td>Videocamera</td><td>EverFocus</td><td></td><td>EverFocus, modello: EQ150</td></tr><tr><td>Campo</td><td></td><td></td> aperto <td>Realizzato in acrilico trasparente o grigio, di forma rotonda che misura 40x40x40cm</td></tr><tr><td>Sopraelevato più labirinto</td><td></td><td></td><td>Realizzato in acrilico grigio e composto da due bracci aperti (50 cm di lunghezza x 10 cm di larghezza) e due bracci chiusi (50 cm di lunghezza x 10 cm di larghezza, con pareti alte 40 cm) che si estendevano da una piattaforma centrale rialzata di 50 cm dal pavimento.</td></tr></tbody></table>

una connessione wireless, interfaccia bidirezionale per registrazione in vivo e la stimolazione dell'attività neurale a comportarsi liberamente ratti

A Wireless, Bidirectional Interface for In Vivo Recording and Stimulation of Neural Activity in Freely Behaving Rats

In vivo elettrofisiologia è una tecnica potente per studiare la relazione tra attività cerebrale e comportamento in un millisecondo e micrometro scala. Tuttavia, gli attuali metodi per lo più si basano su registrazioni di cavo legato o utilizzano solo sistemi unidirezionali, permettendo la registrazione o la stimolazione dell'attività neurale, ma non allo stesso tempo o stesso bersaglio. Qui, un nuovo wireless, il dispositivo bidirezionale per registrazione multicanale simultanea e la stimolazione dell'attività neurale a comportarsi liberamente ratti è descritto. Il sistema opera attraverso una singola fase di testa portatile che trasmette attività registrate e possa essere mirata Real-Time per stimolazione del cervello utilizzando un software multicanale basato su telemetria. La fase di testa è dotata di un preamplificatore e una batteria ricaricabile, che permette registrazioni a lungo termine stabile o stimolazione per fino a 1 h. d'importanza, la fase testa è compatta, pesa 12 g (batteria inclusa) e quindi ha un impatto minimo sull'umano repertorio comportamentale, rendere il metodo applicabile a una vasta serie di attività comportamentali. Inoltre, il metodo ha il vantaggio che l'effetto di stimolazione del cervello sull'attività neurale e il comportamento possa essere misurato simultaneamente, fornendo uno strumento per valutare i rapporti causali tra pattern di attivazione specifiche del cervello e comportamento. Questa caratteristica rende il metodo particolarmente prezioso per il campo di stimolazione cerebrale profonda, permettendo la valutazione precisa, il monitoraggio e la regolazione dei parametri di stimolazione durante gli esperimenti comportamentali a lungo termine. L'applicabilità del sistema è stato convalidato utilizzando il colliculus inferiore come una struttura del modello.

Dati tecnici TWS
Il sistema wireless offre 4 canali di registrazione indipendente e canale 1 stimolazione. Attività extracellulare era prelevati dall'elettrodo di registrazione singolo core e trasmessi all'ingresso del segnale ad alta impedenza del sistema wireless. Il segnale registrato era (x200) pre-amplificato da un preamplificatore di ingresso differenziale, accoppiamento AC e filtrata passa banda (banda del segnale fisso, 500 Hz... 5 kHz) per registrare solo multi-unità attività, perché nello studio presente l'interesse principale era quello di attività dell'unità di registrazione e potenziali di campo non locale. Il principale-amplificatore a guadagno programmabile integrato offre guadagno software-regolabile per i quattro canali di registrazione (x1, x2, x4, x8, x16, x32, x64). La catena di segnale completo del sistema wireless offerto valori di guadagno complessivo di x200, x400, x800, x1600, x 3200, x6400 e x12800. Dopo di filtro e di amplificazione, il segnale analogico è stato digitalizzato da un convertitore analogico-digitale, modulato su un elemento portante ad alta frequenza e trasmesso da un ricetrasmettitore radio utilizza la banda ISM a 2.4-2.5 GHz. Sul lato opposto del percorso di trasmissione è stato utilizzato lo stesso tipo di ricetrasmettitore. Questo secondo ricetrasmettitore è stato collegato ad un personal computer tramite una porta USB. Il percorso di trasmissione è stato utilizzato per la trasmissione dati bi-direzionale per inviare segnali extracellulari registrati dall'animale al computer e viceversa i parametri di controllo per l'amplificazione del segnale e stimolazione dal computer all'animale.
Utilizzando il TWS, era possibile registrare l'attività cerebrale di multi-unit e modificare il comportamento dell'animale stimolando il collicolo inferiore, mentre il topo si muoveva liberamente in campo aperto con successo. Il ricetrasmettitore è stato disposto fino a 5 metri dall'animale ed è stato collegato al computer tramite un USB porta (vedere Figura 2). Un confronto tra la qualità del segnale registrato ha reso con il legato e il sistema wireless è dimostrato nella Figura 5. TWS registra attività multi-unit con una qualità di segnale simile come un sistema di registrazione via cavo. Il micro-stimolatore è un vero stimolatore wireless che aggiorna i parametri di stimolazione in tempo reale, cioè il segnale di stimolazione, i cui parametri sono definiti con il software TWS è passato all'elettrodo di stimolazione collegato alla fase testa all'interno di alcuni millisecondi dopo aver premuto il pulsante di stimolazione. Di conseguenza, era possibile cambiare i parametri di stimolazione senza prendere l'animale fuori dalla gabbia. Questa caratteristica ha il vantaggio che uno può ridurre al minimo il tempo per gli esperimenti di stimolazione.
Un software TWS è stato appositamente progettato per consentire il controllo di tutte le funzionalità del sistema wireless (es. registrazione e stimolazione) tramite una interfaccia grafica (Figura 3 e Figura 4). Per la micro-stimolazione, è stato utilizzato un segnale di stimolazione che è stato sviluppato utilizzando l'interfaccia utente grafica del software TWS. Lo stimolatore di TWS è stato usato in una modalità di equilibrata stimolazione costante-corrente di carica. Il pattern di stimolazione è stato inviato in modalità wireless per lo stimolatore di corrente costante integrato nell'unità wireless fase testa. Corrente di stimolazione è stata applicata tra un microelettrodo di lavoro inserito nel target di interesse (come per esempio il colliculus inferiore nello studio presente) e una più grande controelettrodo distante che è servito come l'elettrodo di terra o riferimento di TWS. Secondo l'impedenza degli elettrodi di stimolazione ed il rispetto di tensione dello stimolatore costante-corrente, è possibile utilizzare una gamma corrente di stimolazione massima di ±625 µA, anche se è stata richiesta una soglia molto bassa corrente negli esperimenti attuali. Qui, bifase carica equilibrata stimolazione costante-corrente è stata utilizzata con correnti di picco fino a 300 µA. In caso di stimolazione bifase, il primo impulso è utilizzato per suscitare l'effetto fisiologico e il secondo impulso inverte solitamente processi elettrochimici che si verificano durante la stimolazione impulsi18. La fase di testa TWS fornisce tempo reale pattern di stimolazione impostata tramite l'interfaccia utente grafica del software TWS (Vedi Figura 4).
Il software TWS è diviso in tre sezioni principali: un (i) finestra principale con controlli per registrazione e stimolazione, una finestra di generatore (ii) stimolo con tutte le opzioni di impostazione per i parametri del segnale di stimolazione e una finestra (iii) riproduttore per riprodurre il file di dati registrati. La finestra principale consente all'utente di visualizzare i segnali registrati di fino a 4 canali di registrazione, impostare il guadagno per tutti i canali e avvio/arresto della registrazione dei segnali visualizzati. I dati del segnale vengono memorizzati in un file sul disco rigido del computer. Il percorso del file è impostato nel menu di configurazione. Oltre i parametri di registrazione, la finestra principale permette di avviare e arrestare il processo di stimolazione. La corrente di stimolazione costante che è passata attraverso l'elettrodo di stimolazione nel cervello degli animali viene visualizzata in tempo reale sullo schermo della finestra principale. I parametri del segnale di stimolazione sono preregolati nella finestra delle impostazioni del parametro di stimolo. È possibile definire mono - o bifasico treni di impulsi di stimolazione e per impostare tutte le stimolazioni comunemente utilizzate parametri di impulso come ad esempio la larghezza, ampiezza di impulso, di impulso tempo tra gli impulsi, ecc (per dettagli Vedi Figura 4). La funzione di impulso di stimolazione che deriva dai valori parametri preselezionati è mostrata in un display grafico nella finestra del generatore di stimolazione.
Il software TWS è stato progettato secondo gli aspetti di usabilità. L'usabilità del software è un fattore essenziale per garantire il corretto svolgimento dell'esperimento wireless stimolazione/registrazione e un ambiente di lavoro sicuro e confortevole. Aiuta anche a migliorare la riproducibilità dell'esperimento.
Unità singola registrazione dati e stimolazione elettrica
Extracellulare multi-unità attività fu successivamente registrato nel colliculus inferiore dallo stesso elettrodo impiantato utilizzando TWS e un sistema di registrazione tethered convenzionale. La figura 5 Mostra rappresentativi dati raw registrati usando entrambi i sistemi, mentre l'animale è stato liberamente commovente in un campo aperto. Confronto diretto dei segnali suggerisce simili forme d'onda di picco e livelli di rumore (Figura 5A e 5B). Una dimostrazione del modulo spike è raffigurata nella A 'e B'.
Dal momento che i ratti non hanno tentato di rimuovere la fase testa TWS dopo chirurgia e durante i giorni successivi, è stato presupposto che non interferisce in modo significativo con i loro movimenti e non ha causato disagio. Così, utilizzando TWS, un problema comune in tethered registrazioni dei ratti è stato evitato come rimozione e masticazione dei connettori e dei cavi. Infatti, i ratti con la tappa di testa TWS erano in grado di esplorare il campo aperto e più labirinto (sEE Movie 1) incroci normale espositrici, allevamento e governare i comportamenti.
Inoltre, i parametri di stimolazione utilizzati con il convenzionale sistema tethered o TWS evocato lo stesso risultato del comportamento, comportamento di fuga qui. A partire da 100 µA, l'ampiezza corrente di stimolazione è stata aumentata gradualmente fino a quando è stata raggiunta la soglia di fuga - intensità di corrente minima produzione di corsa o il salto - e il comportamento di fuga è stato tratto. Le soglie di fuga individuale dei 4 ratti erano simili quando si utilizzano entrambi i sistemi (Figura 5).
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56299/56299fig1.jpg"> 
Figura 1: Microelettrodo TWS unità (1) registrazione singolo elettrodo/tetrodo, elettrodo di stimolazione (2), bordo di collegamento della fibra (3) elettrodo, cavi di collegamento (4) flessibile, filo di terra (5), (6) Connettore piastra, (7) maschio o femmina connettore per TWS sistema (A); TWS microelettrodo unità collegata al preamplificatore (8) e il titolare (9); (B) pronto per essere attaccato a una cornice stereotassica (C). <a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56299/56299fig1large.jpg" target="_blank">Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56299/56299fig2.jpg"> 
Figura 2 : Vista superiore della fase testa TWS montato modulo (A) senza alimentazione dell'accumulatore. Dimensioni di massimo ingombro: altezza 12,5 m, profondità 24 mm (19,3 mm + 4,7 mm), Larghezza 22,1 mm, peso: 5.96 vista inferiore g. (B) risultati connettore dell'unità elettrodo; alimentazione accumulatore, altezza 9 mm, profondità 26 mm, larghezza 20 mm, peso 6 g (C); una panoramica dei componenti TWS utilizzati per questo test: (1) testa tappa unità con accumulatore montato sul cranio umano, (2) ricetrasmettitore l'unità collegata al computer porta USB, software di TWS (3) (D); Foto di un ratto liberamente muoversi e Mostra la fase testa TWS connected to il microelettrodo unità precedentemente impiantati (E) e il software TWS mostrando segnali registrati esemplari (F). La fase di testa TWS fornisce tempo reale pattern di stimolazione impostata tramite interfaccia utente grafica del software TWS. <a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56299/56299fig2large.jpg" target="_blank">Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56299/56299fig3.jpg"> 
Figura 3: interfaccia di utente grafica software TWS, registrazione schermo. Le prestazioni di registrazione di TWS con un elettrodo bipolare singola registrazione, impiantato nel collicolo inferiore, sono raffigurata sullo schermo. <a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56299/56299fig3large.jpg" target="_blank">Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56299/56299fig4.jpg"> 
Figura 4: interfaccia di utente grafica software TWS. schermata di stimolazione (A) e (B) le specifiche dei parametri di stimolazione. I parametri di segnale di stimolazione (C) come larghezza di impulso (PxW), ampiezza di impulso (PxA), inter ritardo di impulso (IPD), il tempo tra gli impulsi (TBP), impulso al treno (PPT) e tempo tra treni (TBT) sono regolabili tramite interfaccia di utente grafica software TWS. <a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56299/56299fig4large.jpg" target="_blank">Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56299/56299fig5.jpg"> 
Figura 5 : Confronto qualitativo tra un segnale multi-unità registrata extracellularly con TWS (A) e una configurazione di registrazione via cavo (B). Entrambe le registrazioni sono state ottenute dalla stessa TWS microelettrodo unità (impedenza 0.5MOhm) impiantata nel collicolo inferiore. Distanza assiale tra i due contatti di elettrodo di registrazione era circa 400 µm. La registrazione di larghezza di banda del sistema via cavo e TWS erano identici (500 Hz... 5 kHz), i segnali sono stati campionati con 40 (sistema metallico) e 32 kHz (TWS). Entrambi i sistemi registrati attività multi-unit con una qualità di segnale simile. Non c'è nessuna chiara differenza di tassi tra il TWS e registrazioni via cavo di infornamento. Forma d'onda del potenziale d'azione del neurone da entrambe le registrazioni sono mostrati nel A 'e B'. Parametri di stimolazione simili erano necessari per 4 ratti raggiungere la soglia di fuga utilizzando un sistema legato (TS) o TWS (C). <a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56299/56299fig5large.jpg" target="_blank">Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.</a>
<img alt="Movie" src="/files/ftp_upload/56299/56299mov1.jpg"> 
Movie 1: Un ratto esemplare presente normale comportamento esplorativo durante il test di labirinto plus. TWS permette all'animale di entrare le braccia aperte e chiuse senza fili sempre aggrovigliati fino nell'apparato di test, ma è piccolo e abbastanza leggero che interferisce solo in minima parte nell'attività stessa. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56299/Movie_1_Exploratory_behavior_JoVE2017.mp4" target="_blank">Per favore clicca qui per vedere questo video. (Tasto destro per scaricare.)</a>

Una connessione wireless, sistema bidirezionale per registrazioni neurale multicanale e stimolazione a comportarsi liberamente ratti è stato introdotto. Il sistema è leggero e compatto, avendo così un impatto minimo sul repertorio del comportamento umano. Inoltre, questo sistema bidirezionale fornisce un sofisticato strumento per valutare le relazioni causali tra pattern di attivazione del cervello e comportamento.

Una connessione Wireless, interfaccia bidirezionale per registrazione In Vivo e la stimolazione dell'attività neurale a comportarsi liberamente ratti

In vivo electrophysiology is a powerful technique to investigate the relationship between brain activity and behavior at a millisecond and micrometer ...

L'obiettivo generale di questo studio era quello di sviluppare un dispositivo telemetrico bidirezionale per eseguire registrazioni neurali multicanale e stimolazione in ratti che si comportavano liberamente. Questo nuovo dispositivo può aiutare a rispondere a domande chiave nel campo delle neuroscienze comportamentali, come le relazioni causali tra i modelli di attivazione cerebrale e il comportamento. Al fine di convalidare il sistema telemetrico, scegliamo il collicolo inferiore come neurostruttura bersaglio, perché una risposta comportamentale evidente può essere suscitata dalla sua stimolazione elettrica.È ampiamente noto che la stimolazione elettrica del collicolo inferiore suscita risposte comportamentali condizionate simili alla paura nei ratti, come la vigilanza, il congelamento e il comportamento di fuga. Pensavamo che essere in grado di suscitare un comportamento così chiaro e inequivocabile avrebbe rappresentato una vera sfida per il nostro sistema telemetrico. Il sistema telemetrico integrato è costituito da uno stadio di testa, una batteria, un ricevitore e un'unità di microelettrodi da impiantare durante la chirurgia stereotassica.Qui è mostrato un sistema wireless completamente integrato sviluppato da noi, che consiste nella registrazione di un singolo elettrodo, tetrodo, elettrodo di stimolazione, scheda di connessione in fibra di elettrodi, cavi di collegamento flessibili, filo di terra, scheda connettore, connettore maschio o femmina per TWS, unità microelettrodo TWS collegata al preamplificatore e supporto per il collegamento a un telaio stereotassico. Per iniziare questa procedura, fissare e allineare orizzontalmente la testa dell'animale nell'apparato stereotassico utilizzando le barre auricolari e la barra incisiva superiore. Successivamente, radere il campo chirurgico, utilizzando un tagliacapelli chirurgico o delle forbici e sterilizzare il cuoio capelluto con iodio povidone.Posiziona un termoforo sotto l'animale per prevenire l'ipotermia e tratta i suoi occhi con dexpantenolo per evitare che si secchino. Quindi iniettare la xilocaina al centro del sito chirurgico. Successivamente, fai una piccola incisione con il bisturi per esporre il cranio.Separare delicatamente la pelle e rimuovere il tessuto residuo. Quindi, pulisci accuratamente il cranio usando bastoncini di cotone rivestiti di perossido di idrogeno. Successivamente, forare quattro piccoli nel cranio per il fissaggio delle viti in acciaio inossidabile.Successivamente, praticare un foro di circa sette millimetri nel cranio sopra l'area target per il fissaggio dell'unità elettrodo. Collegare l'unità microelettrodo e il portaelettrodo al preamplificatore collegato al micromanipolatore stereotassico. Assorbire il sangue con i cotton fioc.Quindi, introdurre verticalmente l'unità microelettrodo fino a quando le punte non raggiungono l'area target. Posizionare il cavo di terra lungo le viti in acciaio inossidabile e sotto la pelle. Successivamente, regolare attentamente l'elettrodo con il micromanipolatore fino a raggiungere una zona di neuroni attivi nella struttura bersaglio.Nel frattempo, monitora l'attività dei picchi e rileva l'attività neurale con il rapporto segnale/rumore adatto per l'ordinamento dei picchi. Quindi fissare l'unità microelettrodo al cranio con colla ultravioletta. Coprire le viti e il cavo di massa con resina acrilica.Successivamente, scollegare l'unità microelettrodo dal portaelettrodo. Coprire la piastra di contatto e i piccoli cavi con resina acrilica. Rimuovere con cautela il brad dal telaio stereotassico e scollegare il preamplificatore dall'unità microelettrodo.Collegare quindi la protezione del cappuccio sull'unità microelettrodo impiantata e scollegarla solo durante le procedure sperimentali. Monitora il benessere degli animali e compila un foglio di valutazione ogni giorno fino alla fine degli esperimenti. Tenere i ratti singolarmente nella gabbia di casa per almeno un giorno dopo l'intervento chirurgico per consentire il recupero e poi alloggiare i ratti in coppia.Le gabbie singole devono essere coperte con coperchi alti in acrilico. Evita i coperchi convenzionali realizzati con griglia metallica, poiché gli impianti possono bloccarsi e danneggiarsi o diventare instabili nel tempo. Aprire il software TWS e collegare il ricetrasmettitore alla porta USB del computer.Il ricetrasmettitore può essere posizionato entro cinque metri sopra l'animale. Una volta che non viene introdotta alcuna barriera metallica tra il ricetrasmettitore e lo stadio della testa dell'animale, il TWS è applicabile a un'ampia gamma di compiti comportamentali. Collegare la batteria alla parte superiore dello stadio principale.Assicurarsi che si accenda una luce verde nello stadio principale mentre la batteria è collegata ad esso. Quindi collegare lo stadio principale direttamente al microelettrodo impiantato. Come test comportamentali esemplari, utilizziamo il campo aperto per la misurazione dell'attività comportamentale generale e il labirinto plus elevato, un test standard per valutare il comportamento ansioso nei ratti.Per il saggio in campo aperto, posizionare il ratto al centro del campo aperto. Lasciare che il ratto esplori l'apparecchio per almeno cinque minuti. Premere il pulsante di connessione per connettere il computer host al sistema di telemetria.Lo stato dovrebbe cambiare da offline a online. Selezionare il menu di impostazione del parametro di stimolo. Seleziona i parametri del generatore di stimolazione in base al tuo esperimento di stimolazione.Ad esempio, ampiezza dell'impulso uno, ampiezza dell'impulso due, frequenza dell'impulso e frequenza del treno. Se tutti i parametri di stimolazione sono impostati sui valori richiesti, spostare il mouse su Stimulus Start e premere il pulsante Stimulus Start. Spostare il puntatore del mouse sul pulsante Avvio visualizzazione grafico.Spostare il puntatore del mouse sul menu Visualizzazione grafico per selezionare i grafici per visualizzare il segnale di stimolazione. Per il test del labirinto plus elevato, il labirinto plus utilizzato in questi esperimenti è realizzato in acrilico grigio ed è costituito da due bracci aperti e due bracci chiusi che si estendono da una piattaforma centrale elevata di 50 centimetri dal pavimento. Posiziona la velocità nel labirinto più centrale rivolto verso un braccio aperto.Lasciarlo esplorare liberamente l'apparecchio per cinque minuti. Premere il pulsante di connessione per connettere il computer host al sistema di telemetria. Lo stato dovrebbe cambiare da offline a online.La potenza di comunicazione e la capacità residua della batteria sono visualizzate dalla barra verde nell'angolo in alto a sinistra. Premi il menu di configurazione per visualizzare le opzioni del grafico. Selezionare il menu del percorso del file per inserire il nome del file e il percorso in cui devono essere memorizzati i dati registrati.Premere Salva per salvare il nome e il percorso del file. Premere start il display per avviare la visualizzazione dei segnali rilevati dei quattro canali di registrazione. Prestare attenzione al fatto che i segnali registrati non sono ancora memorizzati.Selezionare il guadagno dell'amplificatore per stadio principale TWS integrato. Avviare il monitor audio premendo la freccia verde e selezionare una soglia del segnale con il cursore per ridurre il rumore di fondo e visualizzare acusticamente i picchi registrati. Premere il pulsante rosso di registrazione nel menu di registrazione.Quando si preme il pulsante di registrazione, il segnale registrato viene memorizzato sul disco rigido. Il segnale registrato viene visualizzato continuamente sul lato destro. Qui è mostrata l'esecuzione della registrazione del TWS con un singolo elettrodo di registrazione bipolare impiantato nel collicolo inferiore.Successivamente, scollegare lo stadio superiore dall'unità microelettrodo impiantata e collegare la protezione del cappuccio. Successivamente, riporta il topo nella sua gabbia di casa. L'attività extracellulare multi-unità è stata successivamente registrata nel collicolo inferiore dallo stesso elettrodo impiantato utilizzando TWS e un sistema di registrazione collegato convenzionale.Questa figura mostra i dati grezzi rappresentativi registrati utilizzando entrambi i sistemi mentre l'animale si muoveva liberamente in un campo aperto. Qui il confronto diretto dei segnali suggerisce forme d'onda di picco e livelli di rumore simili. Qui abbiamo presentato il nostro sistema di registrazione e stimolazione wireless per studi elettrofisiologici e comportamentali in animali che si muovono liberamente.Il nostro approccio presenta diversi vantaggi rispetto a quelli esistenti. In primo luogo, questo sistema utilizza un singolo stadio di testa portatile. Lo mantiene con un preamplificatore e una batteria ricaricabile.Lo stadio di testa è leggero e compatto, pesa 12 grammi compresa la batteria. In secondo luogo, è stato ben tollerato dagli animali e per questo può essere utilizzato per sostituire il sistema legato poiché non limita la mobilità dell'animale. In terzo luogo, attraverso la registrazione bidirezionale simultanea e la stimolazione dell'attività neurale, questo sistema fornisce uno strumento sofisticato per valutare le relazioni causali tra specifici modelli di attivazione cerebrale e comportamento.Infine, abbiamo sviluppato un'unità di microelettrodi cronicamente impiantabile che può essere facilmente impiantata durante una chirurgia stereotassica convenzionale. Dopo aver visto questo video dovresti avere una buona comprensione di come impiantare l'unità microelettrodo ed eseguire la stimolazione elettrica e le registrazioni neurali extracellulari. Il sistema telemetrico è uno strumento utile per studiare i meccanismi di stimolazione cerebrale.Il sistema telemetrico è uno strumento importante che può essere combinato con un'ampia serie di test comportamentali al fine di indagare come l'attività elettrica in circuiti neurali definiti generi determinate forme di comportamento, una ricerca fondamentale per le neuroscienze.

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Questo video mostra la procedura dettagliata per preparare un ratto anestetizzato per registrazioni elettrofisiologiche dell'attività cerebrale da più siti. Il cuoio capelluto viene sezionato per accedere al cranio e vengono praticati dei fori in punti precisi per installare e fissare gli elettrodi. Gli elettrodi a microfilo di tungsteno vengono quindi inseriti nella posizione mirata per registrare i dati.

Registrazioni elettrofisiologiche in vivo di attività cerebrali da più siti nei ratti

Il video mostra una procedura per impiantare un'unità di elettrodi multicanale bidirezionale wireless nel cervello di un ratto per registrare e stimolare reti neurali multicanale.

Impianto di un sistema di microelettrodi bidirezionali wireless in un cervello di ratto

Questo video dimostra il metodo di impiantare un sistema di elettrodi sulla testa in un ratto anestetizzato per il rilevamento delle crisi in tempo reale. La procedura include il posizionamento di elettrodi di stimolazione e registrazione, il loro fissaggio con cemento dentale e il collegamento a un amplificatore montato sulla testa.

Impianto di un sistema di elettrodi sulla testa in un modello di ratto per il rilevamento delle crisi epilettiche in tempo reale

Il video dimostra il monitoraggio continuo dell'elettroencefalografia (EEG) a lungo termine nei cuccioli di roditore utilizzando un sistema di trasmissione wireless. Il trasmettitore contiene due elettrodi di registrazione e un elettrodo di riferimento che si estendono fino alla superficie del cervello. Dopo aver posizionato il cucciolo in una camera di registrazione, l'EEG può essere monitorato continuamente durante lo sviluppo del cucciolo fino all'età adulta.

Monitoraggio elettroencefalografico continuo a lungo termine in un cucciolo di roditore

Qui dimostriamo l'uso di una tecnologia abilitante wireless per l'elettroencefalogramma (EEG) in modelli di roditori neonatali di malattie umane. Con la telemetria, non ci sono connessioni ingombranti, consentendo così comportamenti naturali.

A lungo termine EEG monitoraggio continuo in piccolo roditore modelli di malattie umane Utilizzo del Sistema Epoch Trasmettitore Wireless

Mostriamo le procedure di impianto e di registrazione chirurgiche per misurare i segnali elettrofisiologici visivi dall'occhio (elettroretinogramma) e il cervello (visivo potenziale evocato) nei ratti coscienti, che è più simile alla condizione umana in cui le registrazioni sono effettuate senza anestesia confonde.

L&#39;impianto e la registrazione di Wireless Elettroretinogramma e potenziale visivo evocato ratto conscio

Questo studio introduce un metodo per la registrazione simultanea di potenziali di campo locale nel cervello, elettrocardiogrammi, i electromyograms e segnali di un ratto liberamente commovente di respirazione. Questa tecnica, che riduce i costi di sperimentali e semplifica l'analisi dei dati, contribuirà alla comprensione delle interazioni tra il cervello e gli organi periferici.

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Qui, presentiamo un impianto unico e stampabile in 3D per ratti, chiamato TD Drive, in grado di registrare elettrodi a filo bilaterali simmetrici, attualmente in un massimo di dieci aree cerebrali distribuite contemporaneamente.

TD Drive: un impianto parametrico open-source per registrazioni elettrofisiologiche multi-area in ratti comportamentali e addormentati

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Un sistema di misurazione elettromiografica indossabile in tempo reale per piccoli animali

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Un protocollo economico e minimamente invasivo per la registrazione dell'elettroencefalografia cronica multisito in topi che si muovono liberamente

Scopri un sistema telemetrico wireless bidirezionale per registrazione neurale multicanale e stimolazione in ratti liberamente comportanti. Questo metodo consente di studiare le relazioni causali tra attività cerebrale e comportamento in tempo reale.

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