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DOI: 10.3791/56327-v
Lisa Mohr1, Marc Carceles-Cordon1, Jungreem Woo1, Carlos Cordon-Cardo1, Josep Domingo-Domenech1, Veronica Rodriguez-Bravo1,2
1Department of Pathology, Tisch Cancer Institute,Icahn School of Medicine at Mount Sinai, 2Department of Oncological Sciences, Tisch Cancer Institute,Icahn School of Medicine at Mount Sinai
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Resistenza alle terapie del cancro contribuisce alla progressione di malattia e morte. Determinazione delle basi meccanicistiche di resistenza è cruciale per il miglioramento della risposta terapeutica. Dettagli di questo manoscritto, il protocollo di generare modelli di taxano-resistenti delle cellule di carcinoma della prostata (PC) per aiutare le vie di dissezione coinvolti nella progressione alla resistenza di Docetaxel in pazienti del PC.
L'obiettivo generale di questa procedura è quello di generare modelli sperimentali di cellule tumorali resistenti al docetaxel come piattaforma per studiare i meccanismi molecolari che guidano la resistenza alla terapia antimitotica. Questo metodo può aiutare a rispondere a domande chiave nel campo della biologia delle cellule tumorali e della genomatica, come l'identificazione delle vie di segnalazione che contribuiscono alla progressione della malattia e la determinazione di potenziali strategie bersaglianti. Il vantaggio principale di questa tecnica è che è un modo affidabile e semplice per generare modelli sperimentali per studiare le risposte ai farmaci antitumorali oltre a utilizzare campioni di tumore dei pazienti e modelli animali.
A dimostrare la procedura saranno Lisa Mohr, una postdoc del mio laboratorio, e Jungreem Woo, un'altra postdoc del nostro team. Per iniziare questa procedura, piastrate le cellule DU145 o 22Rv1 in palloni quadrati da 150 centimetri contenenti 20 millilitri di terreno. Dopo 24 ore, quando le cellule sono a circa il 70-80% di confluenza, aggiungere Docetaxel a cinque nanomolari.
Dopo 72 ore, aspirare il farmaco contenente terreno e aggiungere terreno fresco privo di Docetaxel. Cambia il supporto ogni tre o quattro giorni. Attendi una o due settimane fino a quando i cloni compaiono nel pallone.
Aspirare il terreno, lavare accuratamente le cellule con 15 millilitri di PBS e incubarle con quattro millilitri di tripsina-EDTA allo 0,05% per tre-cinque minuti a 37 gradi Celsius per staccare le cellule dalla superficie del pallone. Quindi, risospendere le cellule tripsinizzate dal pallone utilizzando otto millilitri di terreno fresco. Estrarre le celle da tutti i palloni trattati e pellettizzarle mediante centrifugazione.
Successivamente, rimuovere il superna-den, risospendere il pellet di cella in 20 millilitri di terreno fresco e placcare le celle in fiasche quadrate di 150 centimetri. Dopo 24 ore, quando le cellule sono a circa il 70-80% di confluenza, aggiungere nuovamente cinque nanomolari di Docetaxel. Ripetere le procedure come mostrato in precedenza fino a quando i cloni non compaiono nel pallone.
Quindi impiattare nuovamente le cellule in fiasche quadrate da 150 centimetri. Dopo 24 ore, quando le cellule sono a circa il 70-80% di confluenza, trattarle con 10 nanomolari di Docetaxel. Ripetere gli stessi passaggi nel modo di aumentare la dose di Docetaxel e continuare a raggruppare i cloni sopravvissuti dopo ogni trattamento di concentrazione.
Alla fine del processo, otterrai un pool di celle resistenti pronte per l'uso sperimentale. In questa procedura, piastra 2.000 cellule utilizzando 2 millilitri di terreno per pozzetto nelle piastre a sei pozzetti. Dopo 24 ore, aggiungere concentrazioni crescenti di Docetaxel per entrambe le linee cellulari DU145 e 22Rv1.
Aggiungere DMSO solo a un pozzetto come controllo allo stesso volume utilizzato per la dose più alta di Docetaxel. Dopo 72 ore, aspirare il farmaco contenente terreno e aggiungere terreno fresco privo di Docetaxel. Incubare le piastre per una o due settimane fino a quando le colonie sono visibili al microscopio.
Per macchiare le colonie, lavarle delicatamente con due o tre millilitri di PBS. Incubarli con due o tre millilitri di soluzione di cristallovioletto per 20 minuti all'interno della cappa di coltura tissutale o di una cappa aspirante. Successivamente, rimuovere la soluzione in piedi e lavare le piastre con due o tre millilitri di acqua.
Quindi rimuovere l'acqua e asciugare le piastre all'aria. Scatta immagini digitali delle lastre per la rappresentazione della figura. Analizza il risultato visualizzando i pozzetti e contando manualmente le colonie con l'aiuto di un pennarello.
E rappresentano la percentuale di vitalità cellulare in un grafico. Ecco un diagramma che illustra la determinazione del Docetaxel IC50 nelle linee cellulari parentali di cancro alla prostata DU145 e 22Rv1. Di seguito sono riportate le percentuali attese di vitalità cellulare nelle concentrazioni crescenti di dose di Docetaxel necessarie.
Ed ecco le immagini rappresentative della microscopia in campo chiaro delle cellule DU145 e 22Rv1 nei tempi indicati durante la generazione della resistenza al docetaxel. Le frecce rosse indicano un clone resistente al docetaxel dopo il completamento del protocollo. Qui sono mostrati i saggi rappresentativi di formazione di colonie corrispondenti alla validazione funzionale delle cellule resistenti a Docetaxel.
Le cellule sono state esposte a concentrazioni crescenti di Docetaxel e la sopravvivenza è stata valutata mediante colorazione con cristallovioletto. Dopo aver visto questo video, dovresti avere una buona comprensione di come generare e convalidare linee cellulari resistenti ai farmaci, che possono quindi essere utilizzate per esami e procedure di tua scelta come l'analisi dell'espressione genica e le manipolazioni genetiche. Grazie per aver guardato e buona fortuna con i tuoi esperimenti.
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