24 agosto 2017
Questo manoscritto descrive una tecnica per la rilevazione di mutazioni di bassa frequenza in ctDNA, ER-segg. Questo metodo si differenzia per il suo uso unico di correzione degli errori di bi-direzionale, un fondo speciale filtro ed efficiente acquisizione molecolare.
L'obiettivo generale di questa tecnica è quello di rilevare mutazioni di bassa frequenza nel tumore circolante o nel ctDNA per fornire ai medici clinici un potente strumento per diagnosticare i tumori e monitorare la dinamica del tumore in risposta alla terapia. Il metodo di test del ctDNA può aiutare a rispondere a domande chiave sui tipi di mutazioni di cui un paziente è portatore, come la variazione di un singolo tipo nucleare, la delezione dell'inserzione, la variazione del numero di copie e la variazione strutturale. Il vantaggio principale di questa tecnica è l'elevata sensibilità e specificità che consente di rilevare con precisione le mutazioni a bassa frequenza nel ctDNA.
A dimostrare le procedure sarà Yuliang Yang, un tecnico del mio laboratorio. Per iniziare, prelevare 10 millilitri di sangue periferico in una provetta di raccolta e capovolgere delicatamente la provetta su e giù da sei a otto volte per mescolare il contenuto. Conservare i campioni di sangue nelle provette di raccolta a una temperatura compresa tra sei e 37 gradi Celsius per un massimo di 72 ore.
Centrifugare la provetta di raccolta a 1,600 volte g a temperatura ambiente per 10 minuti. Quindi utilizzare una pipetta per lo smaltimento per trasferire il surnatante o il plasma dalla provetta a quattro provette da centrifuga pulite da due millilitri adeguatamente etichettate senza disturbare il pellet. Utilizzare una pipetta per lo smaltimento pulita per trasferire un millilitro di cellule in una provetta da centrifuga da due millilitri adeguatamente etichettata.
Conservare le cellule a meno 20 gradi Celsius o più freddi prima dell'isolamento genomico o del gDNA. Quindi, centrifugare il plasma a 1.600 volte g a quattro gradi Celsius per 10 minuti. Quindi trasferire il plasma in provette da centrifuga pulite correttamente etichettate come plasma, lasciando circa 0,1 millilitri di volume residuo sul fondo per evitare contaminazioni.
Il buffy coat deve essere evitato dal plasma durante il processo di separazione. In caso contrario, grandi frammenti di DNA estratti dalle cellule potrebbero diluire il ctDNA e influenzare la sensibilità del test. Utilizzando un kit disponibile in commercio, isolare il cfDNA da tre millilitri di plasma raccolto seguendo le istruzioni del produttore.
Quindi, sempre con un kit, isolare il gDNA da 200 microlitri di globuli bianchi seguendo le istruzioni del produttore. Per frammentare il campione di controllo del gDNA mediante sonicazione, preparare un microgrammo di campione di gDNA in 100 microlitri di tampone Tris-EDTA in una provetta di sonicazione pulita. Impostare il programma di sonicazione su 30 secondi di accensione e 30 secondi di spegnimento per 12 cicli per un totale di 12 minuti.
Dopo aver confermato che il prodotto contiene da 200 a 250 frammenti di coppie di basi, trasferire tutti i prodotti di frammentazione in una nuova provetta da 1,5 millilitri contenente 150 microlitri di microsfere magnetiche e incubare il campione per cinque minuti per selezionare i frammenti corretti. Quindi, posizionare la provetta su una griglia magnetica per 30 secondi e rimuovere il surnatante. Quindi, tenendo il tubo sulla griglia, aggiungere 200 microlitri di etanolo all'80% appena preparato per lavare le perline.
Incubare le perle per 30 secondi prima di rimuovere il surnatante e ripetere il lavaggio. Tenere il tubo sulla griglia con il coperchio aperto per asciugare le perline all'aria. Quindi eluire i frammenti di DNA aggiungendo 32 microlitri di Tris-HCL da 10 millimolari alle perle.
Per eseguire la reazione di preparazione finale seguendo le istruzioni del produttore, in una provetta sterile priva di nucleasi, aggiungere sette microlitri di tampone di reazione, tre microlitri della miscela enzimatica, 30 nanogrammi di cfDNA e acqua distillata due volte per un volume totale di 60 microlitri. In una provetta separata, aggiungere gli stessi componenti ma con un microgrammo di gDNA invece di cfDNA. Incubare la miscela in un termociclatore a 20 gradi Celsius per 30 minuti seguiti da 65 gradi Celsius per 30 minuti senza il coperchio riscaldato.
Subito dopo l'incubazione, aggiungere alla provetta 30 microlitri della miscela master di legatura, un microlitro di potenziatore di legatura e quattro microlitri dell'esclusivo adattatore di sequenziamento. Incubare la reazione nel termociclatore a 20 gradi Celsius per 15 minuti senza che il coperchio sia riscaldato. Vortice per risospendere le perle magnetiche e lasciare le perle a temperatura ambiente per almeno 30 minuti.
Quindi aggiungere 87 microlitri di perle magnetiche risospese alla reazione di legatura. Mescolare bene pipettando su e giù e quindi incubare il campione a temperatura ambiente per cinque minuti. Dopo il lavaggio e l'asciugatura all'aria delle perle, eluire il bersaglio del DNA dalle perle aggiungendo 20 microlitri di Tris-HCL da 10 millimolari.
Aggiungere 20 microlitri di frammenti di DNA legati con adattatore, cinque microlitri di primer indice i7, 25 microlitri di master mix di amplificazione della libreria e acqua distillata due volte fino a un volume totale di 50 microlitri. La PCR amplifica il cfDNA o gDNA legato all'adattatore. Quindi aggiungere 45 microlitri di microsfere magnetiche sospese al DNA arricchito con PCR.
Miscelare il campione pipettandolo su e giù e incubarlo per cinque minuti. Dopo aver rimosso il surnatante e lavato le perle, utilizzare 30 microlitri di Tris-HCL da 10 millimolari per eluire i frammenti di DNA con gli adattatori. Per effettuare la cattura mirata del DNA, in una provetta sterile, bloccare il campione aggiungendo 1,5 microgrammi di librerie di pooling, otto microlitri ciascuno di blocco P5 100P e blocco P7 100P e cinque microlitri di un microgrammo per microlitro di un DNA.
Asciugare il contenuto della provetta utilizzando un concentratore sottovuoto impostato a 60 gradi Celsius. Ibridare le sonde di cattura del DNA con la libreria aggiungendo 8,5 microlitri di tampone di ibridazione 2X, 2,7 microlitri di potenziatore di ibridazione e 1,8 microlitri di acqua doppiamente distillata priva di nucleasi. Miscelare pipettando su e giù e incubare nel miscelatore termico a 95 gradi Celsius per 10 minuti.
Quindi aggiungere immediatamente quattro microlitri della sonda personalizzata. Incubare i campioni in un miscelatore termico a 65 gradi Celsius con il coperchio riscaldato a 75 gradi Celsius per quattro ore. Incubare il DNA bersaglio ibridato con perle di streptavidina, quindi lavare le perle per rimuovere il DNA non legato.
Utilizzare il kit commerciale secondo le istruzioni del produttore per ottenere gli ultimi 20 microlitri di perle risospese con frammenti di DNA catturati. La fase di lavaggio del DNA non legato dalle perle di streptavidina dovrebbe essere rapida. In caso contrario, l'efficienza di cattura del DNA bersaglio potrebbe essere compromessa.
Amplificare i frammenti di DNA catturati eseguendo la PCR utilizzando un kit commerciale con due oligonucleotidi micromolari della spina dorsale secondo le istruzioni del produttore. Infine, aggiungere 45 microlitri di perle sospese direttamente al prodotto PCR e arricchire i frammenti di DNA bersaglio amplificati legati alle perle mediante eluizione con 30 microlitri di Tris-HCL da 10 millimolari. Quantificare i frammenti ed eseguire il sequenziamento e l'analisi dei dati secondo il protocollo di testo.
Questa tabella illustra come ER-seq migliori la profondità di copertura del 23% rispetto al metodo tradizionale. Ciò è dovuto al suo efficiente recupero delle molecole di cfDNA, migliorando così notevolmente l'analisi delle mutazioni rare. È anche chiaro che gli esclusivi adattatori di sequenziamento utilizzati nell'ER-seq consentono una facile differenziazione delle duplicazioni naturali e indotte dalla PCR.
Come dettagliato in questa tabella sui risultati delle chiamate, l'analisi basata su ER-seq era coerente al 100% per il rilevamento di EGFR pL858R e la frequenza di rilevamento era leggermente più alta rispetto a un'analisi tradizionale. È importante sottolineare che l'analisi ER-seq ha permesso il rilevamento di altre mutazioni a frequenza relativamente bassa, tra cui l'EGFR pT790M, che non è stato riconosciuto dall'analisi tradizionale a causa dell'elevato rumore di fondo. Una volta padroneggiata, questa tecnica può essere eseguita in 48 ore se eseguita correttamente.
Durante il tentativo di questa procedura, è importante ricordare di evitare la perdita di una quantità molto bassa di cfDNA durante l'estrazione, la preparazione della libreria e il lavaggio delle microsfere dopo l'ibridazione. Dopo aver visto questo video, dovresti avere una buona comprensione di come il ctDNA del paziente è stato raccolto, preparato e mirato in base all'unico identificato per il sequenziamento. Dopo il suo sviluppo, questa tecnica ha aperto la strada ai ricercatori nel campo della biopsia liquida per esplorare pratiche migliori nel prendere decisioni cliniche.
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Questo manoscritto descrive una tecnica per il rilevamento di mutazioni a bassa frequenza nel DNA tumorale circolante (ctDNA) nota come ER-Seq. Questo metodo si caratterizza per la sua unica correzione dell'errore bidirezionale e per l'elevata sensibilità e specificità nel rilevamento preciso delle mutazioni.
Il rilevamento di mutazioni rare nel DNA tumorale circolante (ctDNA) è fondamentale per la diagnosi precoce del cancro, il monitoraggio della risposta al trattamento e l'identificazione dei meccanismi di resistenza. Il metodo ER-Seq aumenta sensibilità e specificità grazie alla correzione bidirezionale degli errori e all'arricchimento mirato, consentendo un rilevamento affidabile di varianti a bassa frequenza. Questo approccio sostiene la presa di decisioni precliniche e cliniche migliorando l'affidabilità predittiva delle applicazioni della biopsia liquida nello sviluppo di farmaci oncologici.
ER-Seq si inserisce nel percorso della scoperta consentendo la verifica di ipotesi nelle fasi iniziali della scoperta, supportando la preparazione dei saggi nello screening e fornendo dati quantitativi sulla frequenza di mutazione per la ricerca traslazionale e la validazione preclinica.