28 gennaio 2018
Questo metodo permette la colorazione selettiva e quantificazione del DNA in gel immergendo il gel in un SYBR Green mi / Nitro blu di tetrazolio soluzione e poi esporla alla luce solare o una fonte di luce blu. Questo produce un precipitato visibile e quasi non richiede un equipaggiamento, che lo rende ideale per uso sul campo.
Il protocollo di colorazione del DNA prevede tre fasi generali. Il primo consiste nel mettere il gel in una soluzione di SYBR Green I e nitro blue tetrazolium, noto anche come NBT. Il gel viene quindi mescolato per 25 minuti se si tratta di un gel di poliacrilammide e un'ora se si tratta di un gel di agarosio.
L'ultimo passaggio consiste nell'esporre il gel a una fonte di luce blu come LED blu o luce solare. Durante questa fase compaiono alcune bande precipitate. Queste bande hanno una correlazione diretta con la concentrazione di DNA e il gel può quindi essere digitalizzato in uno scanner da ufficio per quantificare il DNA.
Per il gel di poliacrilammide viene preparato un gel di poliacrilammide non denaturante. Il gel viene quindi caricato con i campioni e inizia il processo di elettroforesi. SYBR Green I è stato diluito a 1,2X e le soluzioni NBT da 20 millimolari sono ora pronte.
Il gel viene messo in un contenitore di plastica e vengono aggiunti 16,75 mil di SYBR Green I diluito e 325 mil di NBT a 20 millimolari. Quindi il contenitore viene coperto con Parafilm e foglio di alluminio e mescolato a 60 giri/min per 25 minuti. Infine, il foglio di alluminio e un Parafilm vengono rimossi e il gel viene esposto alla luce solare o a una fonte di luce blu.
Per la quantificazione delle bande e le curve di calibrazione, il gel viene inserito in uno scanner da ufficio, quindi l'immagine viene analizzata utilizzando un software di analisi delle immagini. Infine, viene effettuato un innesto di segnale normalizzato rispetto alla concentrazione. Viene prodotto un gel di agarosio.
I pozzetti sono caricati con un plasmide che ha resistenza all'ampicillina e il gel viene tagliato in due pezzi, ognuno dei quali è colorato con una colorazione diversa. Quindi la banda plasmidica viene estratta e trasformata tramite trasformazione chimica in cellule competenti con terreni che contengono ampicillina. Un gel di agarosio all'1% viene preparato in tampone TAE 1X e caricato con quattro microlitri di plasmide a circa 100 nanogrammi per microlitro.
Il gel nella camera di elettroforesi viene quindi fatto funzionare a 100 volt per un'ora. Metà del gel è colorato con il metodo SYBR Green I e NBT e l'altra metà con il metodo SYBR Green I UV. Per il gel di agarosio, il metodo SYBR Green I NBT viene eseguito utilizzando SBYR Green I a una concentrazione di 1,2X e NBT a 2 millimolari.
Il gel viene messo in un contenitore di plastica e il volume della soluzione viene ridimensionato per coprire il gel e il tempo di agitazione viene esteso a un'ora. Per i gel di agarosio, il metodo SYBR Green I comunemente usato viene eseguito coprendo il gel con la soluzione 1X SYBR Green I e mescolando per un'ora. Quindi il gel viene esposto a un transilluminatore UV per la visualizzazione della banda per due minuti.
Una volta colorato il gel, la banda plasmidica viene tagliata con un bisturi e il plasmide estratto con un kit di estrazione commerciale. Il DNA è normalizzato a 9,1 nanogrammi per microlitro per trasformare i batteri Escherichia coli XL 10 chimici competenti. Infine, si contano le colonie.
Vengono calcolate le unità formanti colonie. Il risultato viene innestato e i risultati ottenuti da SYBR Green I NBT e SYBR Green I UV vengono confrontati. Un precipitato viola di formazan appare dove si trova il DNA.
Nell'esperimento è stata caricata una scala di DNA per creare una curva di calibrazione con un limite di rilevamento di 192 picogrammi a 1.500 coppie di basi. L'uso di gel di agarosio consente il prelievo del campione utilizzando i kit disponibili in commercio e non interferisce con l'estrazione. Un certo recupero utilizzando questo metodo con LED blu si traduce in una qualità migliore rispetto al SYBR Green I che utilizza il transilluminatore.
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Questo metodo consente la colorazione selettiva e la quantificazione del DNA in gel utilizzando una soluzione di SYBR Green I/Nitro Blue Tetrazolium. Il processo richiede un'attrezzatura minima, rendendolo adatto ad applicazioni in campo.
Questo metodo di colorazione del DNA consente la visualizzazione diretta e la quantificazione degli acidi nucleici senza l'uso di attrezzature specializzate, supportando una rapida validazione degli obiettivi in contesti con risorse limitate. Eliminando la dipendenza dai transilluminatori a UV, riduce i rischi per la sicurezza e la complessità operativa nei flussi di lavoro delle fasi iniziali di scoperta. L'approccio aumenta l'affidabilità predittiva grazie a una correlazione riproducibile tra il segnale derivante dal colorante e la concentrazione di DNA, facilitando decisioni di avanzamento o interruzione nei processi di identificazione dei composti promettenti.
Il metodo si inserisce nel percorso di scoperta che va dall'estrazione degli acidi nucleici alla validazione del saggio funzionale, in particolare nei casi in cui l'accesso alle attrezzature è limitato o è richiesta una rapida iterazione.